植物生理学实验指导
植物生理学实验报告植物生理学实验基本理论
植物生理学实验报告植物生理学实验基本理论一、植物生理学实验的基本理论1.植物生理学的基本概念：植物生理学是研究植物的生命过程和功能的学科，包括植物的营养、吸收与运输、呼吸、光合作用、生长发育等方面的研究。
2.实验的重要性：实验是科学研究的基础，通过实验可以验证理论，揭示现象背后的机制，推动学科的发展。
3.实验设计的原则：实验设计应具有科学性、可重复性、控制性和操作性。
科学性是指实验要有明确的科学目的和科学问题；可重复性是指实验的方法和结果可以被其他人重复验证；控制性是指实验中要对可能影响结果的因素进行控制；操作性是指实验的方法和步骤应具有可行性和操作性。
二、植物生理学实验的实施步骤1.实验前的准备工作：确定实验的目的和科学问题，收集相关的文献资料，了解实验的背景和已有研究成果。
2.实验器材和试剂准备：选择适当的实验仪器和试剂，确保其质量和可靠性。
3.实验的操作步骤：按照实验设计的方法和步骤进行实验操作，记录下关键的观察和测量数据。
4.实验结果的分析与讨论：将实验数据进行统计和分析，通过统计学方法对结果进行验证，并对实验结果进行解释和讨论。
5.实验结论的总结：根据实验结果和讨论的内容，总结出实验结论，并对下一步的研究方向提出建议。
三、实验示例：光合作用速率与光强的关系实验1.实验目的：探究光合作用速率与光强之间的关系。
2.实验步骤：(1)实验器材准备：太阳光度计、荧光光度计、并联光电度数计、光源、植物叶片。
(2)实验操作：a.在不同的光强条件下，测量光合作用速率和光强的关系。
b.分析测量结果，绘制光合作用速率与光强的曲线图。
c.讨论实验结果，解释光合作用速率与光强之间的关系。
3.实验结果：(1)测量结果表明，光合作用速率与光强之间存在正相关关系。
(2)高光强条件下，光合作用速率较高；低光强条件下，光合作用速率较低。
4.实验结论：光合作用速率与光强呈正相关关系，即光合作用速率随着光强的增加而增加。
通过以上实验示例，我们可以看到植物生理学实验的基本理论和实验设计。
植物生理学实验9呼吸商的测定
使用数据处理软件如Excel、SPSS等，进行数据整 理、统计分析以及图表制作。
实验结果展示
表格展示
将实验数据整理成表格，包括实验组 和对照组的数据，以便对比分析。
数据解读
根据实验数据，解读呼吸商的变化趋 势以及可能的原因。
结果分析与讨论
01
数据分析
对实验结果进行深入分析，探讨 呼吸商变化的可能原因，如植物 种类、生长环境等。
RQ=释放的二氧化碳量/吸收的氧气量，其值的变化范围在 0.7-1.0之间。
呼吸商的测定原理
01
通过测定植物在一定时间内释放 的二氧化碳量和吸收的氧气量， 可以计算出植物的呼吸商。
02
常用的测定方法包括气袋法、气 室法和红外线气体分析法等。
呼吸商与植物生理状态的关系
01
RQ值的大小可以反映植物的光合作用和呼吸作用的相对强弱，进而反映植物的 生长状况和生理状态。
02
RQ值接近0.7，表明植物光合作用较弱，呼吸作用较强，植物生长状况可能不佳； RQ值接近1.0，表明植物光合作用较强，呼吸作用较弱，植物生长状况可能较好。
03
RQ值的变化还可以反映环境因素对植物生理状态的影响，如光照、温度、水分 等。
03
实验步骤
准备实验材料和器具
01
02
03
实验材料
选择健康、生长状况良好 的植物材料，如叶片、茎 秆等。
学习呼吸商的测定方法
测定呼吸商的方法主要包括气 体分析法和同位素示踪法。
气体分析法是通过测定植物 在光合作用过程中释放的二 氧化碳和吸收的氧气的量，
计算出呼吸商的值。
同位素示踪法则是利用同位素 标记技术，追踪光合作用过程 中碳和氧的来源和去向，从而
植物生理学实验 植物组织渗透势的测定
4 将结果记录于表中。确定引起半数以上细胞刚 发生质壁分离的蔗糖溶液最低浓度和不能引起 质壁分离的最高浓度。
5 这两个浓度的平均值为等渗浓度。
6 可按下列公式计算在常压下该组织细胞质液的 渗透势。
四、结果与计算
细胞渗透势 ψs=－RTiC R 为气体常数=0.083×105/L·Pа/mol·K。 T 为绝对温度，单位K，即273℃+t，t 为实验 温度。 I 为解离系数，蔗糖为1。 C 为等渗溶液的浓度，单位为mol/L。 则： =0.083×105×(273℃+t)×1×C
质壁分离现象——水分的渗透作用
高渗溶液
二、实验设备与材料
– 显微镜； – 镊子； – 载玻片； – 盖玻片； – 刀片；培养皿； – 移液管； – 蔗糖； – 洋葱 –
水绵
三、实验步骤
1． 配制一系列不同浓度的蔗糖溶液10ml于试管中， 编号，浓度分别为0.1、0.2、0.3、0.4、0.5、0.6M。
编号 1 浓度 0 M
1M 蔗糖 ml数 水ml 数
2 0.1
3 0.2
4 0.3
5 0.4
6 0.5
7 0.6
8 0.7
9 0.8
记录
适于水绵
编 号 1
0
2
0.05
30.14 Nhomakorabea0.15
5
0.2
6
0.25
7
0.3
8
0.35
9
0.4
浓 度
1M 蔗糖 ml数 水ml 数
记 录
2． 用镊子撕取洋葱的外表皮（水绵）投入各浓 度的蔗糖溶液中，使其完全浸没。投入时先从 高浓度开始，每隔5min向下一浓度放2~3片洋 葱表皮。 3． 在洋葱表皮在各浓度的蔗糖溶液中平衡 30min后，从高浓度开始依次取出放入显微镜 下观察质壁分离的情况（低倍镜即可），记录 观察结果。
植物生理学实验教案
植物生理学实验教案实验指导书：候书林主编. 植物生理学实验指导.科学出版社，2004 实验一、植物组织渗透势测定-质壁分离法实验二、植物组织水势测定-小液流法实验三、叶绿体色素的提取与分离及理化性质鉴定实验四、叶绿素a,b 含量测定实验五、植物体内几种呼吸酶的测定实验六、植物叶面积测定实验七、植物根系对离子的选择性吸收实验八、叶片光合速率的测定及光合仪的使用实验九、种子活力的快速测定实验十、植物组织可溶性糖含量的测定实验十一、低温对植物的伤害实验十二、丙二醛含量的测定实验一、植物组织渗透势测定-质壁分离法[原理]将植物组织置于对其无毒害的一系列不同浓度的溶液里处理一定时间，然后镜检发生质壁分离的细胞数，通常视野中有50％的细胞发生质壁分离时定为初始质壁分离，细胞初始质壁分离时压力势为零，因而可把引起细胞初始质壁分离的外界溶液称之为等渗溶液，其溶液具有的渗透势即为细胞的渗透势。
由于很难正好找到引起50％细胞发生质壁分离的浓度。
因此通常用插值法求得等渗溶液浓度，代入公式即可计算渗透势。
[器材与试剂]器材：显微镜，载玻片，盖玻片，镊子，刀片，培养皿(或具塞试管)，记号笔，滴管。
试剂：蔗糖。
[方法与步骤]1. 配制0.2、0.3、0.4、0.5、0.6、0.7mol蔗糖/L水的质量摩尔浓度，贮6个试剂瓶中，必要时配制溶液浓度的相差可≤0.05mol蔗糖/L水。
2. 取6套干净清洁的小培养皿，用记号笔编号，将配制好的不同浓度的蔗糖溶液按顺序倒入各个培养皿中使成一薄层，盖好皿盖。
3. 将带有色素的植物组织或叶片(可选用有色素的洋葱鳞片的外表皮，紫鸭跖草，蚕豆，小麦，玉米等叶的表皮)撕取表皮迅速分别投入各种浓度的蔗糖溶液中，每个培养皿中放材料3个左右，使其完全浸没，浸泡20-40分钟。
4. 到时后，取出表皮，放在载玻片上，滴一滴相同浓度的蔗糖，盖上盖玻片，在显微镜下观察质壁分离的细胞数和细胞总数，直接或间接(插值法)地找出引起50％细胞发生质壁分离的外界溶液浓度，即为细胞渗透浓度值。
植物生理学实验报告植物组织水势测定
植物生理学实验报告植物组织水势测定实验目的：本实验旨在通过测量植物组织的水势，了解植物在不同生理状态下的水分状况和水分调节能力。
实验原理：植物组织的水势是一个重要的生理指标，用来描述植物的水分状态。
水势的测定是通过测量植物组织与纯水之间的压力差来实现的。
当植物组织的水势为负值时，说明组织在吸水，而正值则表明组织有排水的趋势。
实验步骤：1.准备材料：取一盆植物，将其叶片切下并放入离心管中；准备一些试管和纯水。
2.测量植物组织的水势：将离心管放入测水袋中，并将测水袋连至一根透气玻璃管，然后将试管插入水槽中以保持温度恒定。
通过气压计记录水势值。
3.测量植物组织在不同条件下的水势：可以在不同的实验条件下测量植物组织的水势，如在光照、温度变化或干旱条件等。
4.数据记录与分析：记录测得的水势数值，并进行统计和比较，以检验不同条件对植物组织水势的影响。
实验结果与讨论：通过对植物组织水势的测定，我们可以得到一些有意义的结果。
首先，测量不同植物组织在水势上的差异。
由于植物不同部位的组织结构和功能不同，其水分状况也会有差异。
比如，叶片的水势可能会更高，因为它们是光合作用和气体交换的主要结构。
其次，测定不同环境条件下植物组织的水势变化。
例如，在干旱条件下，植物会通过减少蒸腾作用和调节根部的水分吸收来保持水势平衡。
因此，测量植物组织在干旱条件下的水势，可以帮助我们了解植物对干旱的应对机制。
此外，还可以通过对不同温度和光照条件下植物组织水势的测定，来研究植物的生长和适应性。
不同的温度和光照条件会影响植物的光合作用和蒸腾作用，从而改变植物的水分平衡。
综上所述，植物组织水势的测定是一个重要的植物生理学实验，在研究植物的水分状况和水分调节能力方面具有重要意义。
通过进行多方面的测定和分析，我们可以更好地了解植物的生理机制和适应性。
植物生理学 实验4叶绿素提取
2) 叶绿素含量测定 以95%乙醇作为空白对照，测OD652
4.4 叶绿素的化学性质
1)取代反应
– 稀酸：
• 取5 ml叶绿素原液，一滴滴加入醋酸，观察颜色变化； • 向上述加醋酸的叶绿素溶液中加少量CuAc颗粒，65℃
实验四 叶绿素的提取、理化 性质和含量测定
1. 实验目 的
➢ 提取叶绿素 ➢ 叶绿素的物理性质 ➢ 叶绿素的化学性质 ➢ 叶绿素含量的测定
2. 实验原 理
1. 用含水的有机溶剂提取叶绿素 2. 叶绿素的物理性质
– 吸收光谱 – 荧光现象 3. 叶绿素的化学性质 – 取代反应 – 皂化反应
2.1 用含水的有机溶 剂提取叶绿体色素
水浴加热，观察其颜色变化。 – 浓酸
• 取5 ml叶绿素原液，加入一滴浓盐酸，观察颜色变化。 1) 皂化反应
– 取3 ml叶绿素原液，加1 ml 20% NaOH-甲醇溶液，摇匀， 65℃水浴5 min；
– 取出冷却后，先加3 ml苯，再加3 ml水（沿壁慢慢加 入），轻轻摇匀，静置观察其分层现象。
在低温下发生皂化反应的叶绿体色素溶液，易乳化 而出现白絮状物，溶液浑浊，且不分层。可激烈摇 匀，放在30-40℃的水浴中加热，溶液很快分层， 絮状物消失，溶液变得清澈透明。
7 思考题
➢ 提取时为何要加入MgCO3？ ➢ 为何选用652 nm 测叶绿素的含量？ ➢ 解释皂化反应的分层现象。
实验操作指导
➢ 浓酸 – 叶绿素溶液与浓酸作用，除了代换Mg外，可使去镁 叶绿素迅速分解出叶绿醇，并形成去镁叶绿酸，呈褐 绿色。
植物生理学实验
植物生理学实验课程名称：植物生理学实验名称：植物组织含水量的测定（一）实验属性：基本实验计划时数：3学时教学目标与基本要求：1．掌握植物组织自然含水量和相对含水量的测定方法2．能够利用所学测定方法测定同一植物在不同生态环境下的自然含水量和相对含水量。
实验内容或指导思想：1．自然含水量：⑴求称量瓶重量；⑵求称量瓶与植物样品总重量；⑶将材料烘至恒重；⑷结果计算。
2．相对含水量：⑴同1方法先求材料鲜重；⑵求饱和鲜重；⑶求组织干重；⑷结果计算。
实验教材及参考书：1．张志良，1997。
植物生理学实验指导，高等教育出版社。
2．A.И.耶尔马科夫等著，吴相钰译：1956。
植物生物化学研究法，科学出版社。
实验名称：植物组织渗透势的测定（二）实验属性：基本实验计划时数：3学时教学目标与基本要求：1．学习以质壁分离法测定植物组织渗透势的方法。
2．以所学方法测定不同植物材料的组织渗透势。
实验内容或指导思想：1.配制梯度浓度蔗糖溶液；2.撕取植物材料表皮，浸入不同溶液5—10分钟；3. 显微镜观察确定引起半数以上细胞发生初始质壁分离的浓度和不引起质壁分离的最高浓度；④计算。
实验教材及参考书：1．张志良，1997。
植物生理学实验指导，高等教育出版社。
2．F.H.魏海姆等，中国科学院植物研究所生理生化研究室译：1974。
植物生理学实验，科学出版社。
实验名称：植物组织水势的测定（三）实验属性：基本实验计划时数：3学时教学目标与基本要求：1．学习以小液流法测定植物组织水势的方法；2．运用所学方法测定不同生态环境下植物组织的水势。
实验内容及指导思想：1. 配制浓度梯度蔗糖溶液并将各浓度溶液分为试验组和对照组；2 将植物材料置试验组溶液中30min，并在其中加入甲烯蓝粉末少许，震荡均匀；3 以弯头滴管取蓝色溶液置于相应浓度对照组试管中部，轻轻挤出，观察蓝色液流动向。
4 计算。
实验教材及参考书：1．张志良，1997。
植物生理学实验指导，高等教育出版社。
植物生理综合实验报告(3篇)
第1篇一、实验目的1. 深入了解植物生理学的基本原理和实验方法。
2. 掌握植物细胞质壁分离与质壁分离复原、植物蒸腾作用、植物光合作用等实验技术。
3. 分析实验数据，提高分析问题和解决问题的能力。
二、实验材料与仪器实验材料：1. 黄丝藻2. 小麦幼苗3. 麝香百合花粉实验仪器：1. 显微镜2. 载玻片3. 盖玻片4. 单面刀片5. 尖头镊子6. 小培养皿7. 电子天平8. 量筒9. 烧杯10. 搅拌子11. 搅拌器三、实验内容与步骤（1）实验目的：熟悉质壁分离发生的条件，区分初始质壁分离、凹形质壁分离、凸形质壁分离等的不同。
（2）实验步骤：a. 取黄丝藻制片，观察细胞结构。
b. 将制片置于不同浓度的硝酸钾溶液中，观察细胞质壁分离现象。
c. 将制片取出，置于蒸馏水中，观察质壁分离复原现象。
2. 植物蒸腾作用（1）实验目的：观察植物蒸腾作用的现象，分析蒸腾作用的影响因素。
（2）实验步骤：a. 选择不同品种的小麦幼苗，测量其蒸腾速率。
b. 改变外界环境条件（如温度、湿度等），观察对蒸腾速率的影响。
3. 植物光合作用（1）实验目的：测定植物光合强度，分析光合作用的影响因素。
（2）实验步骤：a. 选择不同品种的小麦幼苗，测定其光合强度。
b. 改变外界环境条件（如光照强度、CO2浓度等），观察对光合强度的影响。
4. 花粉萌发及花粉管生长观察（1）实验目的：观察花粉萌发及花粉管生长过程，分析影响因素。
（2）实验步骤：a. 选取麝香百合花粉，进行体外培养。
b. 观察花粉萌发及花粉管生长过程，记录数据。
c. 分析硼酸和钙离子对花粉萌发及花粉管生长的影响。
四、实验结果与分析实验结果显示，不同浓度的硝酸钾溶液对黄丝藻细胞质壁分离的影响不同，质壁分离复原现象明显。
2. 植物蒸腾作用实验结果显示，小麦幼苗的蒸腾速率在不同外界环境条件下存在差异，高温、低湿条件下蒸腾速率较高。
3. 植物光合作用实验结果显示，小麦幼苗的光合强度在不同外界环境条件下存在差异，光照强度、CO2浓度等对光合强度有显著影响。
植物生理学实验-实验三_电导率仪法测定离体植物叶片的抗逆性
实验三电导率仪法测定离体植物叶片的抗逆性一实验目的进一步认识细胞膜系统的结构和功能；掌握电导率仪法测定离体植物叶片抗逆性的原理与方法。
二实验原理植物抗逆性是指植物在长期系统发育中逐渐形成的对逆境的适应和抵抗能力。
在同样的逆境条件下，有些植物（或品种）不受害或受害很轻，有些植物则受害较重。
植物组织受到逆境伤害时，由于膜的功能受损或结构破坏而透性增大，细胞内各种水溶性物质不同程度的外渗，将植物组织浸入无离子水中，水的电导率将因电解质的外渗而加大，膜伤害越重，电解质外渗越多，电导率的增加也越大。
故可用电导率仪测定外液的电导率而得知伤害程度，从而反映植物的抗逆性强弱。
三实验材料植物离体叶片四设备与试剂电导率仪、真空泵（附真空干燥剂）、恒温水浴锅、水浴试管架、20ml具塞刻度试管、打孔器（或双面刀片）、10ml移液管（或定量加液器）、试管架、电炉、镊子、剪刀、搪瓷盘、记号笔、去离子水、滤纸、塑料纱网（约3cm2）。
五实验步骤（一）容器的洗涤电导率仪法对水和容器的洁净度要求严格，所用容器必须用去离子水彻底清洗干净，倒置于洗净而垫有洁净滤纸的搪瓷盘中备用。
水的电导率要求为1~2μS/cm。
为了检查试管是否洁净，可向试管中加入1~2ml电导率在1~2μS/cm的新制去离子水，用电导率仪测定是否仍维持原电导率。
（二）实验材料的处理分别在正常生长和逆境胁迫的植株上取同一叶位的功能叶若干片。
若没有逆境胁迫的植株，可取正常生长的植株叶片若干，分成2份，用纱布擦净表面灰尘。
将一份放在-20度左右的温度下冷冻20分（或置40度左右的恒温箱中处理30分）进行逆境胁迫处理。
另一份裹入潮湿的纱布中放置在室温下作对照。
（三）测定将处理组叶片与对照组叶片用离子水冲洗2次，再用洁净滤纸吸净表面水分。
用6~8mm 的打孔器避开主脉打取叶圆片（或切割成大小一致的叶块），每组叶片打取叶圆片60片，分装在3支洁净的刻度试管中，每管放20片。
在装有叶圆片的各试管中加入10ml的去离子水，并将大于试管口径的塑料纱网放入试管距离液面1cm处，以防止叶圆片在抽气时翻出试管。
植物生理学实验
营养胁迫条件下生物量积累的减少可能与 植物对营养元素的吸收和利用受限有关， 这会影响植物的生长和发育进程。
实验结论
实验结论1
光照条件对植物叶绿素含量 具有显著影响，适当增加光 照强度可以提高植物的光合 作用效率。
实验结论2
水分胁迫条件下，植物会通 过降低蒸腾速率来维持水分 平衡，因此在干旱地区种植 作物时应注意合理灌溉。
改进方向
优化实验设计，缩短实验周期；采用更加智能的环境调控系统，提高实
验效率；改进生理指标的测定方法，减少对植物组织的破坏，提高实验
的准确性。
05
CHAPTER
参考文献
参考文献
APA格式
主要用于社会科学和人文学科的参考文献引 用。
MLA格式
主要用于文学作品的参考文献引用。
Chicago格式
主要用于历史和传记作品的参考文献引用。
数据整理
对实验数据进行整理、分类和 归档，以便后续分析和处理。
结果分析
根据实验数据，进行统计分析 ，得出实验结论，并撰写实验
报告。
数据记录
准确记录
在实验过程中，应准确记录每个步骤 的操作和结果，包括使用的试剂、仪 器型号和规格、实验条件等。
及时记录
实验过程中应随时记录数据，避免遗 漏或错记，确保数据的真实性和完整 性。
水分、二氧化碳浓度等多种因素的影响。
输标02入题
植物适应性：植物通过调整自身生理生化过程，适应 不同的环境条件，如温度、光照、水分、土壤类型等。
01
03
植物激素的作用：植物激素如生长素、赤霉素、细胞 分裂素等对植物的生长发育具有调控作用，影响植物
的形态建成和生理生化过程。
04
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植物生理学实验指导目录植物材料的采集、处理与保存植物生理实验使用的材料非常广泛，根据来源可划分为天然的植物材料（如植物幼苗、根、茎、叶、花等器官或组织等）和人工培养、选育的植物材料（如杂交种、诱导突变种、植物组织培养突变型细胞、愈伤组织、酵母等）两大类；按其水分状况、生理状态可划分为新鲜植物材料（如苹果、梨、桃果肉，蔬菜叶片，绿豆、豌豆芽下胚轴，麦芽、谷芽，鳞茎、花椰菜等）和干材料（小麦面粉，玉米粉，大豆粉，根、茎、叶干粉，干酵母等）两大类，因实验目的和条件不同，而加以选择。
植物材料的采集和处理，是植物生理研究测定中的重要环节。
在实际工作中，往往容易把注意力集中在具体的仪器测定上，而对于如何正确地采集和处理样品却不够注意，结果导致了较大的实验误差，甚至造成整个测定结果的失败。
因此，必须对样品的采集、处理与保存给予足够的重视。
一、原始样品及平均样品的采取、处理植物生理研究测定结果的可靠性（或准确性），首先取决于试材对总体的代表性，如果采样缺乏代表性，那么测定所得数据再精确也没有意义。
所以，样品的采集除必须遵循田间试验抽样技术的一般原则外，还要根据不同测定项目的具体要求，正确采集所需试材。
目前，随着研究技术的不断发展，应该不断提高采样技术的水平。
在作物苗期的许多生理测定项目中都需要采集整株的试材样品，在作物中后期的一些生理测定项目中，如作物群体物质生产的研究，也需要采集整株的试材样品，有时虽然是测定植株的部分器官，但为了维持器官的正常生理状态，也需要进行整株采样。
除研究作物群体物质生产外，对于作物生理过程的研究来说，许多生理指标测定中的整株采样，也只是对地上部分的采样，没有必要连根采样，当然对根系的研究测定例外。
采样时间因研究目的而不同，如按生育时期或某一特殊需要的时间进行。
除逆境生理研究等特殊需要外，所取植株应是能代表试验小区正常生育无损伤的健康植株。
为了保证植物材料的代表性，必须运用科学方法采取材料。
从大田或实验地、实验器皿中采取的植物材料，称为“原始样品”，再按原始样品的种类（如植物的根、茎、叶、花、果实、种子等）分别选出“平均样品”，然后根据分析的目的、要求和样品种类的特征，采用适当的方法，从“平均样品”中选出供分析用的“分析样品”。
（一）原始样品的取样法1.随机取样在试验区（或大田）中选择有代表性的取样点，取样点的数目视田块的大小而定。
选好点后，随机采取一定数量的样株，或在每一个取样点上按规定的面积从中采取样株。
2.对角线取样在试验区（或大田）可按对角线选定五个取样点，然后在每个点上随机取一定数量的样株，或在每个取样点上按规定的面积从中采取样株。
（二）平均样品的取样法1.混合取样法一般颗粒状（如种子等）或已碾磨成粉末状的样品可以采取混合取样法进行。
具体的做法为：将供采取样品的材料铺在木板（或玻璃板、牛皮纸）上成为均匀的一层，按照对角线划分为四等分。
取对角的两份为进一步取样的材料，而将其余的对角两份淘汰。
再将已取中的两份样品充分混合后重复上述方法取样。
反复操作，每次均淘汰 50 ％的样品，直至所取样品达到所要求的数量为止。
这种取样的方法叫做“四分法”。
一般禾谷类、豆类及油料作物的种子均可采用这个方法采取平均样品，但注意样品中不要混有不成熟的种子及其他混杂物。
2.按比例取样法有些作物、果品等材料，在生长不均等的情况下，应将原始样品按不同类型的比例选取平均样品。
例如对甘薯、甜菜、马铃薯等块根、块茎材料选取平均样品时，应按大、中、小不同类型的样品的比例取样，然后再将每一单个样品纵切剖开，每个切取 1/4 、 1/8 或1/16 ，混在一起组成平均样品。
在采取果实的平均样品时，如桃、梨、苹果、柑橘等果实，即使是从同一株果树上取样，也应考虑到果枝在树冠上的各个不同方位和部位以及果实体积的大、中、小和成熟度上的差异，按各自相关的比例取样，再混合成平均样品。
（三）取样注意事项1.取样的地点，一般在距田埂或地边一定距离的株行取样，或在特定的取样区内取样。
取样点的四周不应该有缺株的现象。
2.取样后，按分析的目的分成各部分（如根、茎、叶、果等），然后捆齐，并附上标签，装入纸袋。
有些多汁果实取样时，应用锋利的不锈钢刀剖切，并注意勿使果汁流失。
3.对于多汁的瓜、果、蔬菜及幼嫩器官等样品，因含水分较多，容易变质或霉烂，可以在冰箱中冷藏，或进行灭菌处理或烘干以供分析之用。
4.选取平均样品的数量应当不少于供分析用样品的两倍。
5.为了动态地了解供试验用的植物在不同生育期的生理状况，常按植物不同的生育期采取样品进行分析。
取样方法系在植物的不同生育时期先调查植株的生育状况并区分为若干类型，计算出各种类型植株所占的百分比，再按此比例采取相应数目的样株作为平均样品。
二、分析样品的处理和保存1．从田间采取的植株样品，或是从植株上采取的器官组织样品，在正式测定之前的一段时间里，如何正确妥善的保存和处理是很重要的，它也关系到测定结果的准确性。
一般测定中，所取植株样品应该是生育正常无损伤的健康材料。
取下的植株样品或器官组织样品，必须放入事先准备好的保湿容器中，以维持试样的水分状况和未取下之前基本一致。
否则，由于取样后的失水，特别是在田间取样带回室内的过程中，由于强烈失水，使离体材料的许多生理过程发生明显的变化，用这样的试材进行测定，就不可能得到正确可靠的结果。
为了保持正常的水分状况，在剪取植株样品后，应立即插入有水的桶中，对于枝条，还应该立即在水中进行第二次剪切，即将第一次切口上方的一段在水中剪去，以防输导组织中水柱被拉断，影响正常的水分运输。
对于器官组织样品，如叶片或叶组织，在取样后就应立即放入已铺有湿纱布带盖的瓷盘中，或铺有湿滤纸的培养皿中。
对于干旱研究的有关试材，应尽可能维持其原来的水分状况。
采回的新鲜样品（平均样品）在做分析之前，一般先要经过净化、杀青、烘干（或风干）等一系列处理。
（1）净化：新鲜样品从田间或试验地取回时，常沾有泥土等杂质，应用柔软湿布擦净，不应用水冲洗。
（2）杀青：为了保持样品化学成分不发生转变和损耗，应将样品置于 105 ℃的烘箱中烘 15min 以终止样品中酶的活动。
（3）烘干：样品经过杀青之后，应立即降低烘箱的温度，维持在 70-80 ℃，直到烘至恒重。
烘干所需的时间因样品数量和含水量、烘箱的容积和通风性能而定。
在无烘箱的条件下，也可将样品置蒸笼中以蒸汽杀青，而后于阴凉通风处风干。
但在蒸汽杀青过程中，常有可溶性物质的外渗损失，因此，此法仅可作为测量大量样品干重时的变通方法，在进行成分分析时应尽量避免。
烘干时应注意温度不可过高，否则会把样品烤焦，特别是含糖较多的样品，在高温下更易焦化。
为了更精密地分析，避免某些成分的损失（如蛋白质、维生素、糖等），在条件许可的情况下最好采用真空干燥法。
此外，在测定植物材料中酶的活性或某些成分（如维生素 C 、 DNA 、 RNA 等）的含量时，需要用新鲜样品。
取样时注意保鲜，取样后应立即进行待测组分提取；也可采用液氮中冷冻保存或冰冻真空干燥法得到干燥的制品。
放在 0-4 ℃冰箱中保存即可。
在鲜样已进行了匀浆，尚未完成提取、纯化，不能进行分析测定等特殊情况下，也可加入防腐剂（甲苯、苯甲酸），以液态保存在缓冲液中，置于 0-4 ℃冰箱即可。
但保存时间不宜过长。
2．已经烘干（或风干）的样品，可根据样品的种类、特点进行以下处理：（1）种子样品的处理：一般种子（如禾谷类种子）的平均样品清除杂质后要进行磨碎，在磨碎样品前后都应彻底清除磨粉机（或其他碾磨用具）内部的残留物，以免不同样品之间的机械混杂，也可将最初磨出的少量样品弃去，然后正式磨碎，最后使样品全部无损地通过1 mm 筛孔的筛子，混合均匀作为分析样品贮存于具有磨口玻塞的广口瓶中，贴上标签，注明样品的采取地点、试验处理、采样日期和采样人姓名等。
长期保存的样品，贮存瓶上的标签还需要涂蜡。
为防止样品在贮存期间生虫，可在瓶中放置一点樟脑或对位二氯甲苯。
对于油料作物种子（如芝麻、亚麻、花生、蓖麻等）需要测定其含油量时，不应当用磨粉机磨碎，否则样品中所含的油分会吸附在磨粉机上将明显地影响分析的准确性。
所以，对于油料种子应将少量样品放在研钵内研碎或用切片机切成薄片作为分析样品。
（2）茎秆样品的处理：烘干（或风干）的茎秆样品，均要进行磨碎，磨茎秆用的电磨与磨种子的磨粉机结构不同，不宜用磨种子的电磨来磨碎茎秆。
如果茎秆样品的含水量偏高而不利于磨碎时，应进一步烘干后再进行磨碎。
（3）多汁样品的处理：柔嫩多汁样品（如浆果、瓜、菜、块根、块茎、球茎等）的成分（如蛋白质、可溶性糖、维生素、色素等）很容易发生代谢变化和损失，因此常用其新鲜样品直接进行各项测定及分析。
一般应将新鲜的平均样品切成小块，置于电动捣碎机的玻璃缸内进行捣碎。
若样品含水量不够（如甜菜、甘薯等）可以根据样品重加入倍的蒸馏水。
充分捣碎后的样品应成浆状，从中取出混合均匀的样品进行分析。
如果不能及时分析，最好不要急于将其捣碎，以免其中化学成分发生变化而难以准确测定。
有些蔬菜（如含水分不太多的叶菜类、豆类、干菜等）的平均样品可以经过干燥磨碎，也可以直接用新鲜样品进行分析。
若采用新鲜样品，可采用上述方法在电动捣碎机内捣碎，也可用研钵（必要时加少许干净的石英砂）充分研磨成匀浆，再进行分析。
在进行新鲜材料的活性成分（如酶活性）测定时，样品的匀浆、研磨一定要在冰浴上或低温室内操作。
新鲜样品采后来不及测定的，可放入液氮中速冻，再放入﹣70 ℃冰箱中保存。
供试样品一般应该在暗处保存，但是，对于供光合、蒸腾、气孔阻力等的测定样品，在光下保存更为合理。
一般可将这些供试样品保存在室内光强下，但从测定前的小时开始，应对这些材料进行测定前的光照预处理，也叫光照前处理。
这不仅是为了使气孔能正常开放，也是为了使一些光合酶类能预先被激活，以便在测定时能获得正常水平的值，而且还能缩短测定时间。
光照前处理的光强，一般应和测定时的光照条件一致。
测定材料在取样后，一般应在当天测定使用，不应该过夜保存。
需要过夜时，也应在较低温度下保存，但在测定前应使材料温度恢复到测定条件的温度。
对于采集的籽粒样品，在剔除杂质和破损籽粒后，一般可用风干法进行干燥。
但有时根据研究的要求，也可立即烘干。
对叶片等组织样品，在取样后则应立即烘干。
为了加速烘干，对于茎秆、果穗等器官组织应事先切成细条或碎块。
实验一拟南芥种植和形态观察一、实验原理拟南芥属(Arabidopsis thaliana）十字花科，被子植物门，双子叶植物纲。
二年生草本，高7-40厘米。
基生叶有柄呈莲座状，叶片倒卵形或匙形；茎生叶无柄，披针形或线形。
总状花序顶生，花瓣4片，白色，匙形。
长角果线形，长厘米。
花期3-5月。
我国内蒙、新疆、陕西、甘肃、西藏、山东、江苏、安徽、湖北、四川、云南等省区均有发现。