【VIP专享】临床微生物标本的采集与送检
临床微生物标本的规范采集和送检
如果2套血培养和导管片段(-) ，则不可能是CRBSI 。
CRBSI-保留导管
应至少做2套血培养，其中至少有1套外周血，同 时应尽快无菌操作从导管采集另一套血培养。
2套 (+)，且分离的菌种相同，导管血(+)报警时间比外周 血(+)报警时间早≥120min，又没有其它明确感染源，则 提示为CRBSI。
根据指征行相应的细菌学检查 应在使用抗菌素之前采取标本 痰涂片意义很大
HAP
血培养 胸腔积液培养 保护性毛刷 气管吸取物 支气管肺泡灌洗液
我国痰培养的现状
苛养菌检出率低
结果重复性差
标本送检率高
药敏结果与治疗反应 存在差距
感染、定植难以区 分
临床上约半数咳痰标本不合格！
痰培养的局限性
易受到口咽部定植菌污染，不一定真正代表下呼吸道菌群 尽量在使用抗菌药物之前采样,否则降低肺炎链球菌，流感嗜血杆
菌等苛养菌分离率 以晨痰为佳，采集标本前1-2小时不可进食 指导采样!!!采集前应使用清水或生理盐水嗽口，有假牙的应先取
下假牙，嘱病人采集深部咳痰，直接收集入无菌痰杯。 1-2h内送检，如延长送检应保存在2~8⁰C，但会降低苛养菌培养阳
微生物学标本采集的一般原则
早期采集
用抗菌药物前 下次用药前
无菌观念 不污染标本 无菌密闭容器
正确的采集方法 如：针吸或组织培养 少用拭子
适量的标本
运送时间
1小时，最长不超过2小时
二区三区生长
一区（原始区）
？ 无生长
三区
临床微生物标本的采集与送检资料
血培养采集次数
成年患者：推荐同时采集２－３套（不同部位）血培养 标本（即双瓶双臂同时采集血培养标本）。 婴幼儿患者：推荐同时采集２次（不同部位）血培养标 本。 原因： 血培养做1套的检出率为65%。 做2套和3套检出率的检出率分别为80%和90%。 单瓶的血培养检出率不高，而且结果很难临床解释。 在采取血培养后的2至5天内，无需重复采取血培养。 两个例外：细菌性心内膜炎和金黄色葡萄球菌菌血症。
保存（15-30℃），切勿放冰箱保存。
骨髓标本的微生物学检查
采集部位：骨髓穿刺法从髂骨采集标本。
采集时间：在用药前、发热初期或高热期
当骨髓炎时或长期使用抗菌药物患者，抽取骨髓培养阳性率远 高于血液培养
二、尿液标本的采集
尿液标本的送检指征
1 有典型的尿路感染症状； 2 肉眼脓尿或血尿； 3 尿常规检查表现为白细胞和/或亚硝酸盐阳性； 4 不明原因的发热，无其他局部症状； 5 留置导尿管的病人出现发热； 6 膀胱排空功能受损； 7 泌尿系统疾病手术前。
3 男性生殖系统表现
4 女性生殖系统表现
5 疑为下列疾病时需送检标本：前庭大腺脓肿、外阴阴 道念珠菌病、细菌性阴道病、急性子宫颈炎、急性盆腔 炎、急性尿道炎、急性膀胱炎、羊膜腔感染、产褥期感 染。
生殖道标本采集容器
无菌试管、男性拭子、女性拭 子
生殖道标本采集方法
1 尿道分泌物 ①男性：清洗尿道口，用灭菌纱布或棉球擦拭，采取从 尿道口溢出的脓性分泌物或用无菌男性拭子插入尿道内 2～4厘米取出分泌物。如无脓液溢出，可从阴茎的腹面 向龟头方向按摩，促使分泌物溢出。 ②女性：清洗尿道口，用灭菌纱布或棉球擦拭，然后从 阴道内诊压迫尿道，或从尿道的后面向前按摩，使分泌 物溢出。无肉眼可见的脓液，可用灭菌拭子轻轻深入前 尿道内，旋转拭子，采集标本。
临床微生物标本采集与送检规范
临床微生物标本采集与送检规范（－）医院感染标本的采集和运送基本原则1、发现医院感染病例应及时采集微生物标本做病原学检查，三级医院感染病微生物标本送检率力争不应低于70％。
2、尽量在抗菌药物使用前采集标本。
3、标本采集时应严格执行无菌操作，减少或避免机体正常菌群及其他杂菌污染。
4、标本采集后立即送至实验室，床旁接种可提高病原菌检出率。
5、以棉拭子采集的标本如咽拭、肛拭或伤口拭子，应立即送检。
6、盛装标本的玻璃容器须经灭菌处理。
7、送检标本应详细注明来源和检验目的，以便实验室能正确选用相应的培养基和适宜的培养环境，必要时应注明选用何种抗菌药物。
（二）常见医院感染标本送检方法l、血液与骨髓（1）通常采血部位为肘静脉。
疑似细菌性心内膜炎时，以肘动脉或股动脉采血为宜。
切忌在静脉滴注抗菌药物的静脉处采取血标本。
（2）采血部位的局部皮肤应严格消毒。
将采集的血液注入血培养基前，应更换针头或过火消毒针头。
血培养瓶应在避光室温中保存，不必置冰箱保存。
（3）每次采血量成人5—10ml，婴幼儿1－5ml，培养基与血液之比以10：1为宜，以稀释血液中的抗生素、抗体等杀菌物质。
（4）怀疑菌血症应尽早采血，体温上升阶段采血可提高阳性率，但要防止因等待而延误时机。
对已用抗菌药物而又不能停药者，可在下次用药前采血。
（5）每例血培养病人，至少采血两次，间隔0.5－1小时，以利于提高阳性率和区分感染菌与皮肤污染菌。
（6）对疑为细菌性骨髓炎或伤寒病人，在病灶部位或髂前（后）上棘处严格消毒后抽取骨髓lml做细菌培养。
2、尿液（l）中段尿：女性采样前应先用肥皂水或0.1％高锰酸钾溶液沪洗外阴部及尿道口；男性须翻转包皮冲洗，用0.1%新洁尔灭消毒尿道口，无菌纱布擦干后收集标本。
（2）导尿管导尿采样，可减少污染，对留置导尿者，可用碘酒消毒尿道口处的导尿管壁，用空针细针头斜穿管壁抽吸尿液，或消毒后解开接口，弃去导尿管前段尿、留无污染的膀胱内尿液数毫升送检。
临床微生物标本采集及运送PPT课件
，避免碰到其它
组织
1. 用一压舌板压 住舌
2. 用无菌拭子在 后咽部、扁桃体 及发炎部位采集 标本
1.将一藻酸钙拭子经 鼻腔轻轻插入鼻咽 喉部
2. 缓慢转动拭子5秒 钟吸收分泌物
3. 取出拭子并床边 接种或将拭子放入 运送培养基
采集注意事项
采集标本应于抗生素治疗前，以晨起进食前为宜，取样前数小时内不 得用消毒药物漱口或涂抹病灶部位。
好的微生物检验标本可提升实验室工作效率及病患照顾质量，降低医疗 成本。
临床标本的分类
带菌体液 痰液 咽拭子 尿液 粪便
其他类别
无菌体液 血液 脑脊液
关节腔积液 胸腹水、胆汁
其他类别
1. 发现感染应及时采集微生物标本作病原学检查，二、三级医院微生物标本 送 检率不应低于70%。
2. 尽量在抗菌药物使用前采集标本。
脑脊液标本的运送
采集后应正确盖好，防止泄漏或容器外部留有残留物。常 温立即送检，实验室收到标本后应立即接种。脑脊液标本 送检的理想时间为 15 分钟内，半小时送检是可接受的，如 果送检时间超过 1 小时，则会影响结果。
注：某些细菌具有自溶酶，放置时间过长易自溶死亡，因此， 标本应立即送检，并且保温（禁止放冰箱，因脑膜炎双球 菌遇冷死亡）
标本采集
一般认为来自正常尿液是无菌的，而尿道口有正常菌群寄生，标本的采集 必须无菌操作。
临床微生物标本采集与运送标准操作流程
临床微生物标本采集与运送标准操作流程下载提示：该文档是本店铺精心编制而成的，希望大家下载后，能够帮助大家解决实际问题。
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临床微生物标本的采集与运送共110页文档
检验误差发生率哪个阶段最高
“正确的微生物学检验始自正确的 标本采取。临床医师、护师及检 验技师都必须通晓其要领。”
著名的临床微生物检验专著Manual of Clinical Microbiology 的主编Patrick Murray
60%以上实验误差发生在分析前
1997年，一位意大利著名检验专家就对急诊检 验误差发生的种类和发生率进行了统计。结果显 示，约有68.2%的检验误差发生在检验前期，而来 自于检验中期和检验后期的误差率分别为13.3%和 18.5%。
‧医师判读病原菌培养结果 ‧选择适当治疗方法
临床医生要合理用好两种数据
❖ 1. 本地区、本单位病原流行病学资料，指 导经验用药。（微生物室、院感科、临床 科室）
❖ 2.药敏试验报告，纠正经验用药。 重视病原学检查,尽可能在应用抗菌药物
之前留取标本送检。以提高病原学诊断率, 为选药和调整药物提供依据。
❖ 再现传染病：以往已被认为得到很好控制的 传染病，如结核、登革热等的流行和传播又 重新抬头。
现代感染性疾病的新特点
❖ 细菌的耐药性不断增强：同一种细 菌对抗生素的耐药性可以完全不同， 甚至出现同时耐多种抗生素的“多 重耐药”细菌，往往使临床医师的 “经验性”治疗或所谓的常规治疗 根本无效。
提高感染样本送检率 加强细菌耐药监测
CSF（脑脊液），淋病检查样本， 血液培养瓶（或室温）
临床微生物标本采集与运送
临床微生物标本采集与运送LG GROUP system office room 【LGA16H-LGYY-LGUA8Q8-LGA162】临床微生物标本采集与运送一、血培养标本采集、运送与报告标准操作规程一、血培养指征患者出现寒战，体温超过38℃或低体温，怀疑血流感染时，尤其存在以下情况时，应抽血做细菌和真菌培养：医院内肺炎；留置中心静脉导管超过72 h；感染性心内膜炎；骨髓炎；有严重基础疾病、免疫缺陷伴全身感染症状；临床医生怀疑有血流感染可能的其他情况。
二、采血时机一旦怀疑有血流感染可能，应立即采血做血培养，最好在抗菌治疗前或停用抗菌药物24 h后，以寒战、发热时采集为宜。
三、采血流程(一)消毒1．培养瓶消毒程序：用消毒液消毒培养瓶橡皮塞，待干燥后使用。
2．皮肤消毒程序：用消毒液从穿刺点向外画圈消毒，至消毒区域直径达5 cm以上，待消毒液挥发干燥后(常需30 s以上)穿刺采血。
(二)静脉穿刺和培养瓶接种成人用注射器无菌穿刺取血后，排尽针头内空气，直接注入血培养瓶，勿换针头(如果行第二次穿刺或用头皮针取血时，应换针头)，先注于厌氧培养瓶，避免注入空气，然后注入需氧培养瓶，轻轻混匀以防血液凝固。
近年来，临床普遍采用负压血培养瓶，将血从患者静脉直接吸入血培养瓶，减少污染环节。
(三)注意事项1．检验单需注明抗菌药物使用情况、血液采集时间和部位、临床诊断等患者信息。
2．采血部位通常为肘静脉，疑为细菌性心内膜炎时以肘动脉或股动脉采血为宜，切忌在静滴抗菌药物的静脉处采血。
除非怀疑有导管相关的血流感染，否则不应从留置静脉或动脉导管取血，因为导管易被皮肤正常菌群污染。
3．采血次数：对于成年患者，应该同时分别在两个部位采集血标本，在两个不同部位分离到同样菌种才能确定是病原菌。
4．细菌性心内膜炎：在24 h内取血3次，每次间隔不少于30 min；必要时次日再做血培养2次。
5．采血量：以培养基与血液之比10：1为宜，以稀释血液中的抗菌药物、抗体等杀菌物质。
临床微生物标本的采集方法与运送图文
临床微生物标本的采集方法与运送图文在医学诊断中，微生物检测被广泛应用于诊断及治疗方案制定。
正确采集和运送微生物标本是确保检测结果准确的关键步骤之一。
本文将详细介绍临床微生物标本的采集方法及运送注意事项。
采集方法血液标本血液标本采集是常用的微生物检测方法之一。
常规采集方法包括静脉血采集、指尖穿刺采集和动脉血采集等。
1.静脉血采集静脉血采集通常用于需要采集大量样本的情况下，如血培养、真菌检测、病毒检测等。
采集前应先消毒采血部位，选定静脉进行穿刺，然后注入抗凝剂。
2.指尖穿刺采集指尖穿刺采集用于小儿或需要采集微量血液时。
采集前应消毒手指或手掌，然后用专用的采血器进行采集。
3.动脉血采集动脉血采集比较少用于微生物检测，但对于严重感染、危重患者或需要测定动脉血分析得出合理治疗方案的情况下，动脉血采集是必要的。
采集前应选择合适的部位和方法，如可以选择桡动脉或股动脉，用专用的采血器进行采集。
呼吸道标本呼吸道标本采集常用于肺炎、支气管炎等疾病的微生物检测。
常规采集方法包括咳痰、纤维支气管镜、气管切开等。
1.咳痰采集咳痰采集过程中患者需要深呼吸几次，准备好试管，让患者咳出一口痰，不能含有口沫、唾液或食物颗粒等，尽可能采集量充足，同时尽量避免污染。
2.纤维支气管镜纤维支气管镜是通过口腔或鼻腔插入支气管，然后利用摄像技术和采样器具进行采集的方法。
此方法是针对深部病菌感染的有效手段。
3.气管切开气管切开是一种采集深部呼吸道标本的方法，因为它可以避免口咽部的影响。
采集前应选择合适的气管穿刺部位、清洁穿刺部位、取下上管再采集等步骤。
尿液标本尿液标本的采集主要是为了检测尿路感染等微生物，采集前需要保持尿液清洁，防止细菌污染。
1.中段尿采集中段尿采集是指采集尿液的中部部分，采集前应积极清洗外阴，然后让患者将外阴分开并向前弯腰（女性可用专用的尿盆）。
取适量中段尿，例如5ml，尽量避免皮肤分泌物或洗浴用品污染。
2.空腹尿采集空腹尿采集是指清晨患者从自然排空开始（胆红素改变尿色）到第二个排尿前采集尿样，此时虽然尿液浓度高，但细菌数量少，采集丰富，适用于对尿细菌进行检测。
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【VIP专享】临床微生物标本的采集与送检临床微生物标本的采集与送检主要内容：标本采集、运送意义与原则血液标本采集尿标本采集粪便标本采集痰标本采集咽拭子标本采集标本拒收的标准与处理方法一、（一）标本采集、运送规范化的意义正确的标本采集、运送、保存和处理对于提高培养结果的阳性率以及保证细菌室的工作质量至关重要正确的标本采集和运送是准确的病原学诊断的前提不规范的标本采集、保存和运送是导致细菌培养阳性率低、临床符合率差的重要原因。
规范的标本采集和运送是细菌培养成功的关键！（二）、微生物检查的标本采集、运送原则1.及时采集微生物标本作病原学检查。
2.尽量在抗菌药物使用前或停药一周后采集标本，如不能停用抗菌药物，应于下次抗菌药物应用前采集。
应在感染的急性期或伤口局部治疗前采集标本。
3.选择正确的部位，并以适当的技术、方法与容器收集足量的标本。
4.采样时严格执行无菌操作，将污染情形降至最低。
5.收集真正感染病灶处的标本，且避免邻近区域微生物的污染。
6.采用无菌器材收集标本，并装于坚固且密合性佳的无菌容器中。
容器须灭菌处理，防止渗漏，但不得使用消毒剂。
标本中不可添加防腐剂。
7.采样后立即送检，最好在2h内。
如不能及时送检，应将标本置于适当的储存环境待送，但存放一般不能超过24h。
8.尽量不要以棉花拭子收集标本。
以棉拭子采集的标本如咽拭子、伤口拭子等宜插入恰当的运送培养基送检。
淋球菌培养等标本应使用专用的纤维拭子，不得使用一般棉拭子。
9.混有正常菌群的标本如痰、尿液等，不可置肉汤培养基内送检。
10.每份标本都应贴上标签并标明必要信息，在检验申请单上填写足够的有关临床资料。
包括病人情况（病区、病人姓名、住院号）和标本情况（标本类型、检验目的、采集部位、采集方法、采集时间等）11.同一天同一检测目的的标本（血液标本除外）一般只需检测一次（份）。
涂片检查最好和细菌培养同时做！（三）、如何提高细菌阳性检出率？1、标本采集时机；2、标本采集方法；3、标本的质与量；4、标本的运送与保存；5、筛选合格标本（退检制度）；6、高质量、多种分离培养基；7、培养环境；8、合理的收费制度（四）、临床常见标本血液（生化、免疫及微生物检验）尿液粪便痰及上呼吸道标本穿刺液标本（脑脊液、胆汁、胸腹水等）脓液及创伤感染分泌物标本生殖道标本组织标本（五）、血标本检验的意义血液是临床最常见的检验项目它可以反映血液系统本身的病变还可判断病人病情进展程度为治疗疾病提供参考。
二、血标本采集方法1、静脉血标本（最常用）2、动脉血标本(血气分析)3、毛细血管标本（血常规）（1）静脉血标本分类及目的①全血标本静脉血采集操作步骤及要点携用物至床边，核对床号、姓名、解释戴手套，选择静脉，常规系止血带、消毒皮肤，嘱患者握拳行静脉穿刺、取血、松止血带、嘱患者松拳、按压针眼、迅速拔针穿刺点按压2～3min②血液注入标本瓶内方法：血清标本：取下针头，将血液顺试管壁缓慢注入干燥试管（最常用）内。
注意事项（1）严禁在输液、输血的针头处抽取标本，以免影响检验结果。
（最好在对侧采集）注意事项（2）若同时抽取几个项目的血标本，一般注入容器的顺序为：血培养瓶→抗凝瓶→干燥试管. 动作要迅速准确，避免溶血。
（2）、血标本的微生物学检查概述：血液和骨髓的细菌学培养对菌血症的诊断具有重要价值。
临床菌血症按病程可分为一过性菌血症、间歇性菌血症、持续性菌血症。
菌血症患者多数为间歇性菌血症，病原菌周期性出现在血液中，而且患者血液中病原菌浓度很低，因此要求临床多次采集血液标本进行培养，但24h内一般不超过3次。
1.采血指征：一般患者出现以下一种体征时可作为采血的重要指征:发热(≥38℃) 或低温(≤36℃) ,寒战,白细胞增多,皮肤黏膜出血、昏迷、多器官衰竭,血压降低,C 反应蛋白升高及呼吸加快,血液病患者出现粒细胞减少,血小板减少等,或同时具备上述几种体征时而临床可疑菌血症应采集血液培养。
新生儿可疑菌血症,应该同时做尿液和脑脊液培养。
2.采血时机：据研究表明：细菌通常在病人寒战和发烧前1小时进入血流，因此规范规定在病人发热高峰前1小时抽血。
考虑到方便操作，建议常规血培养应尽量在使用抗菌药物前，于病人寒战或发热开始时30-60分钟内同时于不同部位采集2-3份血培养。
3.采血次数①.留置深静脉导管且怀疑导管相关血流感染：至少同时采集2套血培养，其中至少一套来自外周静脉，另一套从导管采集。
（1套血培养定义：从一个部位如静脉穿刺或静脉导管所获血液的培养，不论被接种在1个还是多个血培养瓶内都只能算是1套）②.未留置深静脉导管的血流感染（非导管相关）：a. 怀疑血流感染时，独立的外周静脉无菌采集2套血培养b. 当怀疑骨髓炎、脑膜炎、肺炎和肾盂肾炎合并菌血症时，在抗菌药物使用前从不同部位抽取2套血培养c. 伤寒患者应在发热1-2周内抽血d. 化脓性脑膜炎、鼠疫或野兔热患者应在发热1-2d内抽血e. 急性败血症应在24小时内抽血3次或更多次，并可在不同部位，如左、右手臂或颈部f. 不明原因发热应不定期多次、多部位采样送检。
24小时内不超过3次，如培养阴性应继续采样送检g. 急性心内膜炎应在治疗前1-2小时内分别在3个不同部位抽血，分别进行培养。
h.亚急性心内膜炎及布鲁菌感染的患者，除在发热采血外，并要多次抽血（24h内3-4次）和增加抽血量（可增至10ml）。
4.抽血套数与血培养阳性率关系：抽血部位及抽血量成人采血量8-10ml，儿童采血量2-4ml。
血液和肉汤之比为1：5~1：10。
骨髓采集量1-2ml。
Why?成人菌血症血液含菌量很低（通常＜1CFU/ml）, 因此增加送检血液量可以提升检出率;而儿童菌血症血液含菌量常超过100CFU/ml，是成人10-100倍，因此采集血量少于成人不会影响培养阳性率。
1CFU=1百万个细菌。
5.血培养的采集程序皮肤消毒程序（推荐三步法）:①70％酒精擦拭静脉穿刺部位待30s以上②用一根蘸有碘酊或碘伏的棉签消毒皮肤（1％-2％碘酊作用30s或10％碘伏60s），从穿刺点向外以1.5cm-2cm直径画圈消毒。
③70％酒精脱碘：用70％酒精涂去碘液，待酒精干燥后采血。
培养瓶消毒程序：打开塑料瓶盖用70%酒精消毒血培养瓶橡皮塞，作用60s，注入血液之前用无菌纱布或棉签擦干表面残余酒精。
静脉穿刺和培养瓶接种程序：可戴乳胶手套固定静脉（不可接触穿刺点），用注射器无菌穿刺取血后，直接注入血培养瓶中（不推荐换针头），并轻轻颠倒混匀数次以防血液凝固。
立即送检，切勿冷藏！骨髓标本的微生物学检查采集部位：骨髓穿刺法从髂骨采集标本。
采集时间：在用药前、发热初期或高热期当骨髓炎时或长期使用抗菌药物患者，抽取骨髓培养阳性率远高于血液培养6.培养基的选择：普通需氧培养瓶（黄色）：采血量4ml，用于未使用抗菌素患者的需氧培养。
主要用于小儿。
高渗需氧培养瓶（绿色）：采血量10ml，用于使用抗菌药物后患者的需氧或无菌体液培养。
厌氧培养瓶（紫色）：用于怀疑有厌氧菌感染的血液培养。
建议不管患者是否使用过抗生素，是做细菌培养还是真菌培养成人绿色瓶采血量10ml小儿黄色瓶采血量4ml注意事项①严格做好患者抽血部位的无菌操作。
严禁在输液、输血的针头处抽取标本，以免影响检验结果（要在对侧采集）。
②注入标本后的血培养瓶务必立即送至临床细菌室，如因某种原因不能立即送检时，应将已接种样本的培养瓶放在室温，切勿放冰箱存放。
③每次领培养瓶不宜过多，以防过期，未使用的培养瓶亦应室温保存（15-30℃），切勿放冰箱保存。
④标签不能贴于机器码识别区，以免仪器无法识别三、尿液标本的采集留取尿液标本作物理、化学、细菌和显微镜等检查以助诊断和观察疗效。
（一）、尿液标本采集时间：一般原则通常应采集晨起第一次尿液送检。
原则上应选择在抗菌药物应用之前采集尿液。
结核分枝杆菌感染留取晨尿或24小时尿的沉渣部分10-15ml作涂片检查，若为培养，患者应停药1-2天后再采样，以提高阳性率沙门菌、钩端螺旋体感染感染后2周左右采集（二）、采集方法中段尿采集方法（最常用）集尿法结核分枝杆菌检查时，可用一清洁容器，留24小时尿取其沉渣10-15ml送检导尿法、肾盂尿采集法、膀胱穿刺采集法女性：成年女性外阴部先以肥皂水清洗，再以无菌水冲洗，然后排尿弃去前段尿，留取中段尿10ml左右于无菌试管内送检男性：先用肥皂水清洗尿道口，后用清水冲洗，留取中段尿儿童、婴儿：先以无菌生理盐水清洗外阴部或外生殖器，将无菌试管对准尿道口，待尿排出后送检注意事项严格进行无菌操作，因为尿液标本的采集和培养中最大的问题是污染杂菌通常应取晨起第一次尿液送检多数药物均通过尿液排泄，因此采集尿液应在用药前进行长期留置导尿管的患者应在更换新管时留取尿标本。
导尿留取尿液时，集尿袋内的尿液和导尿管末端的尿液不能用于培养。
四、粪便标本的采集收集粪便标本，做实验室检查，有助于评估病人排泄功能及准确评估疾病。
（一）采集时间：1．采样原则腹泻病人应在急性期采集（3天以内），以提高检出率，亦最好在用药之前。
2．沙门菌感染肠热症在2周以后；胃肠炎病人在急性期，早期采集新鲜粪便（二）采集方法自然排便采集法自然排便后，挑取其脓血、粘液部分2-3g，液状粪便取絮状物2-3ml，盛于灭菌容器内或保存液中送检直肠拭子方法如不易获得粪便时，或排泄困难的患者及婴儿，可用直肠拭子采取，即以无菌棉拭子用生理盐水湿润后，插入肛门内4-5cm（幼儿2-3cm）轻轻转动取出，插入无菌试管内送检。
注意事项虽粪便含有多种杂菌，但应尽量采用无菌容器。
为提高检出率，要采集新鲜粪便作培养，且应挑取其脓血、粘液部分。
五、痰及上呼吸道标本的采集采集痰标本作细菌培养，或涂片后经特殊染色以检查细菌、真菌或抗酸杆菌等，以助诊断；从咽部及扁桃体采取分泌物作细菌培养或病毒分离（一）采集时间:痰：一般以晨痰为好；支气管扩张症患者，清晨起床后进行体位引流，可采集大量痰标本。
咽拭标本：时间上虽无严格限制，但应于抗菌药物治疗前为好。
咽部又是呼吸和食物的通路，因此亦以晨起后采集为宜（二）采集方法：自然咳痰法：患者清晨起床后，先用朵贝尔氏液（复方硼砂溶液）漱口，再以开水或生理盐水漱口，以减少口腔常居菌群的污染，然后用力自气管深部咳出第一口痰于无菌痰怀内送检采集方法：小儿取痰法：用压舌板向后压舌，用棉拭子伸入咽部，小儿经压舌刺激咳嗽时，可喷出肺部或气管分泌物粘在拭子上，送检上呼吸道标本（咽拭子）：采集上呼吸道标本通常采用无菌棉拭子。
采集前患者应用开水或生理盐水反复漱口，由检查者将舌向外拉，使腭垂尽可能向外牵引，将棉拭子通过舌根到咽后壁或腭垂的后侧，涂抹数次，但拭子要避免接触口腔和舌粘膜注意事项：1.痰标本送检每天1次，连续2～3天。