E.Coli 感受态细胞的制备、质粒DNA的转化、提取与酶切鉴定
感受态的制备与转化,质粒提取(原理和操作步骤)

感受态的制备与转化,质粒提取(原理和操作步骤)感受态细胞: 理化方法诱导细胞,使其处于最适摄取和容纳外来DNA的生理状态。
即指细菌细胞在一定的生长阶段,自身或通过人为处理而具有摄取外源DNA并使其基因型和表现型发生相应变化的能力。
如大肠杆菌经CaCl2处理,就成为容易受质粒DNA转化的细胞。
一般来说,感受态细胞的最基本要求是:1、没有质粒2、容易被转进去(一般是G-细菌,细胞壁薄)3、营养条件一般,非苛养菌CaCl2法:操作原理:1.将快速生长的大肠杆菌置于经低温(0℃)预处理的低渗氯化钙溶液中,便会造成细胞膨胀,同时Ca2+会使细胞膜磷脂双分子层形成液晶结构,促使细胞外膜与内膜间隙中的部分核酸酶解离开来,离开所在区域,诱导细胞成为感受态细胞细胞膜通透性发生变化,极易与外源DNA相粘附并在细胞表面形成抗脱氧核糖核酸酶的羟基-磷酸钙复合物。
2.此时,将该体系转移到42℃下做短暂的热刺激(90s),细胞膜的液晶结构会发生剧烈扰动,并随机出现许多间隙,外源DNA就可能被细胞吸收。
进入细胞的外源DNA分子通过复制、表达,实现遗传信息的转移,使受体细胞出现新的遗传性状。
3.将转化后的细胞在选择性培养基上培养,筛选出带有外源DNA分子的阳性克隆。
意义:将构建好的载体转入感受态细胞进行表达,不仅可以检验重组载体是否构建成功,最主要的是感受态细胞作为重组载体的宿主可以进行后续实验,如蛋白质表达纯化等工作。
细菌处于容易吸收外源DNA的状态叫感受态。
转化是指质粒DNA或以他为载体构建的重组子导入细菌的过程。
实验材料:E. col i DH5α菌株: Rˉ,Mˉ,Ampˉ;pBS质粒DNA;eppendorf管。
试剂:1.LB固体和液体培养基2.Amp母液(储存浓度50mg/ml)3.含Amp的LB固体培养基:将配好的LB固体培养基高压灭菌后冷却至60℃左右,加入Amp储存液,使终浓度为50ug/ml,摇匀后铺板。
4.0.05mol/L CaCl2溶液:称取0.28g CaCl2(无水,分析纯),溶于50ml重蒸水中,定容至100ml,高压灭菌。
大肠杆菌感受态细胞的制备与转化

大肠杆菌感受态细胞的制备与转化1. 引言大肠杆菌(Escherichia coli)是一种常见的细菌,广泛应用于生物学研究和工业生产中。
其中,大肠杆菌感受态细胞的制备与转化是生物工程领域中的重要技术,对于基因工程、药物研发等方面具有广泛的应用价值。
2. 大肠杆菌感受态细胞的制备大肠杆菌感受态细胞的制备是通过基因工程手段将目标基因(外源基因)导入大肠杆菌细胞内,使其表达目标蛋白或产生目标产物。
通常情况下,制备大肠杆菌感受态细胞需要进行以下步骤:2.1 培养基的选择在进行大肠杆菌感受态细胞的制备过程中,需要选择适合的培养基。
常用的培养基包括LB培养基、SOB培养基等,这些培养基中含有适量的氨基酸、碳源等,能够满足大肠杆菌细胞的生长需求。
2.2 载体的构建在进行大肠杆菌感受态细胞的制备时,需要将目标基因导入大肠杆菌细胞内。
这一过程中,通常需要将目标基因插入至载体(如质粒)中,构建重组质粒。
2.3 转化大肠杆菌细胞转化是将重组质粒导入大肠杆菌细胞内的过程。
常用的转化方法包括热激转化、电穿孔法等。
通过这些方法,可以将构建好的重组质粒导入大肠杆菌细胞内。
3. 大肠杆菌感受态细胞的转化大肠杆菌感受态细胞的转化是基因工程中的一个重要步骤,该技术可以使外源DNA片段导入并稳定集成到大肠杆菌的染色体内。
3.1 转化方法大肠杆菌感受态细胞的转化有多种方法,如热激转化法、化学转化法和电穿孔法等。
这些方法都是通过改变细菌细胞膜通透性,使外源DNA片段能够进入细胞内。
3.2 转化效率的影响因素影响大肠杆菌感受态细胞转化效率的因素很多,包括DNA片段的长度、外源DNA的纯度、细胞复活时间、转化温度等。
在进行大肠杆菌感受态细胞的转化时,需要考虑这些因素,以提高转化效率。
4. 个人观点和理解大肠杆菌感受态细胞的制备与转化是生物工程中的重要技术,对于基因工程、蛋白表达等方面具有重要意义。
通过对该技术的深入了解和实践,可提高对基因工程的理解与实践能力。
DNA的酶切、连接、转化和重组子的筛选与鉴定

第二次分子生物学实验报告DNA的酶切、连接、转化和重组子的筛选与鉴定一、实验目的1、学习和掌握限制性内切酶的分类、特性与作用原理,掌握载体和外源目的DNA酶切的操作技术。
2、学习利用T4 DNA 连接酶把酶切后的载体片段和外源目的DNA 片段连接起来,构建体外重组DNA 分子的技术,了解并掌握几种常用的连接方法。
3、掌握利用CaCl2 制备感受态细胞的方法;学习和掌握热击法转化E. coli 的原理与方法。
4、学习并掌握使用红白菌落法筛选获得重组子以及α互补筛选法的原理及方法。
5、学习和掌握使用试剂盒抽提质粒的方法;6、复习琼脂糖凝胶电泳的原理和方法;7、通过对重组子进行重组质粒DNA 的抽提与酶切鉴定,进一步确定重组质粒中含有外源目的DNA 片段,并验证重组子是期望的重组子。
二、实验原理1、限制性内切酶限制性核酸内切酶是一类能够识别双链DNA 分子中的某种特定核苷酸序列,并由此切割DNA 双链结构的酶,主要是从原核生物中分离纯化出来的。
在限制性核酸内切限制酶的作用下,侵入细菌的“外源”DNA 分子便会被切割成不同大小的片段,而细菌自己固有的DNA 由于修饰酶(通常是一种甲基化酶)的保护作用,则可免受限制酶的降解。
目前已经鉴定出3 种不同类型的限制性核酸内切酶,即Ⅰ型酶、II 型酶和III 型酶。
Ⅰ型酶切割位点是随机的,至少距识别位点1000bp。
Ⅲ型限制酶的切割位点距识别序列3'端为24—26bp。
Ⅱ型限制酶的切割位点一般在识别序列上或与之靠近,而且具有序列特异性,故在基因克隆中有特别广泛的用途。
Ⅱ型核酸内切限制酶具有3个基本的特性:①在DNA 分子双链的特异性识别序列部位切割DNA 分子,产生链的断裂;②2个单链断裂部位在DNA 分子上的分布通常不是彼此直接相对的;③断裂结果形成的DNA 片段往往具有互补的单链延伸末端。
限制性核酸内切酶对DNA 底物的酶切作用是否完全,直接关系到连接反应、重组体分子的筛选和鉴定等实验结果。
大肠杆菌感受态细胞的制备和转化

第一节概述在自然条件下,很多质粒都可通过细菌接合作用转移到新的宿主内,但在人工构建的质粒载体中,一般缺乏此种转移所必需的mob基因,因此不能自行完成从一个细胞到另一个细胞的接合转移。
如需将质粒载体转移进受体细菌,需诱导受体细菌产生一种短暂的感受态以摄取外源DNA。
转化(Transformation)是将外源DNA分子引入受体细胞,使之获得新的遗传性状的一种手段,它是微生物遗传、分子遗传、基因工程等研究领域的基本实验技术。
转化过程所用的受体细胞一般是限制修饰系统缺陷的变异株,即不含限制性内切酶和甲基化酶的突变体(Rˉ,Mˉ),它可以容忍外源DNA分子进入体内并稳定地遗传给后代。
受体细胞经过一些特殊方法(如电击法,CaCl2 ,RbCl(KCl)等化学试剂法)的处理后,细胞膜的通透性发生了暂时性的改变,成为能允许外源DNA分子进入的感受态细胞(Compenent cells)。
进入受体细胞的DNA分子通过复制,表达实现遗传信息的转移,使受体细胞出现新的遗传性状。
将经过转化后的细胞在筛选培养基中培养,即可筛选出转化子(Transformant,即带有异源DNA分子的受体细胞)。
目前常用的感受态细胞制备方法有CaCl2和RbCl(KCl)法,RbCl(KCl)法制备的感受态细胞转化效率较高,但CaCl2 法简便易行,且其转化效率完全可以满足一般实验的要求,制备出的感受态细胞暂时不用时,可加入占总体积15%的无菌甘油于-70℃保存(半年),因此CaCl2法为使用更广泛。
为了提高转化效率, 实验中要考虑以下几个重要因素:1. 细胞生长状态和密度: 不要用经过多次转接或储于4℃的培养菌,最好从-70℃或-20℃甘油保存的菌种中直接转接用于制备感受态细胞的菌液。
细胞生长密度以刚进入对数生长期时为好,可通过监测培养液的OD600 来控制。
DH5α菌株的OD600 为0.5时,细胞密度在5×107 个/ml 左右(不同的菌株情况有所不同),这时比较合适。
大肠杆菌感受态细胞的制备与质粒DNA的转化ppt课件

• CaCl2 法是目前常用的感受态细胞制备方 法,简便易行,且其转化效率完全可以
满足一般实验的要求,制备出的感受态 细胞暂时不用时,可加入占总体积15% 的无菌甘油于-70℃保存(半年),因此 CaCl2法使用更广泛。
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感受态细胞(Competent cells)
受体细胞经过一些特殊方法(如:电击 法, CaCl2等化学试剂法)的处理后,细胞膜 的通透性发生变化,成为能容许外源DNA的 载体分子通过的感受态细胞(competent cell) 。
转化(transformation)
是将异源DNA分子引入一细胞株系,使 受体细胞获得新的遗传性状的一种手段,是基 因工程等研究领域的基本实验技术。
2.抗生素使用错 策
用正确的抗生素
误
3.转化后温浴30min左
3.转化后立即涂 板忘记温浴
右,让抗性基因得 以表达
七、问题与讨论
1.感受态细胞有何特点?如何保证它的质 量?
2.如阴性对照中长出菌,原因?
3.还有哪些方法可以将外源基因导入受体 细胞?各有什么优缺点?
图1
图2
如果转化成功,由于质粒DNA上带有Amp抗性 基因导致本来Amp敏感的菌株也可以在含有 Amp的LB固体培养基上生长,如图1。如转化不 成功则Amp敏感的菌株和阴性对照不会在含有 Amp的LB固体培养基上生长,如图2。
• 克隆的筛选:
主要用不同抗生素基因筛选。常用的抗生 素有:氨苄青霉素、卡那霉素、氯霉素、 四环素、链霉素等。
重组DNA转化 细菌过程示意图
〖医学〗感受态细胞的制备与质粒DNA的转化

一、实验原理
转化(Transformation)是将外源DNA分子引入受体细胞, 使之获得新的遗传性状的一种手段,它是微生物遗传、分 子遗传、基因工程等研究领域的基本实验技术。
受体细胞经过一些特殊方法(如电击法,CaCl2 ,RbCl(KCl) 等化学试剂法)的处理后,细胞膜的通透性发生了暂时性 的改变,成为能允许外源DNA分子进入的感受态细胞 (Competent cells)。将经过转化后的细胞在筛选培养基 中培养,即可筛选出转化子(Transformant,即带有异源 DNA分子的受体细胞)。
实验结果:下次实验观察并分析筛选结果
四、注意事项
➢ 为了提高转化效率, 实验中要考虑以下几个重要因 素: 1. 细胞生长状态和密度: 不要用经过多次转接 或储于4℃的培养菌,最好从-70℃或-20℃甘油 保存的菌种中直接转接用于制备感受态细胞的菌 液。细胞生长密度以刚进入对数生长期时为好,可 通过监测培养液的OD600 来控制。DH5α菌株 的OD600 为0.5时,细胞密度在5×107 个/ml左右 (不同的菌株情况有所不同),这时比较合适。密度 过高或不足均会影响转化效率。
四、注意事项
➢ 3. 试剂的质量: 所用的试剂,如CaCl2 等均需是 最高纯度的(GR.或AR.),并用超纯水配制,最好 分装保存于干燥的冷暗处。
➢ 4. 防止杂菌和杂DNA的污染:整个操作过程均 应在无菌条件下进行, 所用器皿, 如离心管, tip 头等最好是新的,并经高压灭菌处理,所有的试 剂都要灭菌,且注意防止被其它试剂、DNA酶 或杂DNA所污染, 否则均会影响转化效率或杂 DNA的转入, 为以后的筛选、鉴定带来不必要 的麻烦。
五、质粒DNA转化常见问题
感受态细胞的制备、质粒DNA的转化和提取流程.

感受态细胞的制备过程— LB 液体培养基:胰蛋白胨, 1%(W/V ;酵母提取物, 0.5%(W/V ; NaCl ,1%(W/V ,用固体 NaOH 调节 pH 为 7.0~7.2,分装于三角瓶中,灭菌后存于室温。
摇动三角瓶,如果发现变浑浊,表明已染菌,应弃掉重新配制; — 0.1 mol/L CaCl2:称取 1.47 g CaCl2•2H 20(Amresco 分装溶于 100 mL去离子水中,灭菌后存于 4℃;—离心管(50 mL或 80 mL或 100 mL ,灭菌;—培养试管,灭菌;— 1 mL枪头,灭菌;— 1 mL加样枪;—滤纸,用牛皮纸包好后灭菌;— 10 mL量筒,灭菌;— 5 mL移液管,用棉花塞入管口,卷于报纸中灭菌;—冰,离心管架;—恒温摇床,可见分光光度计,玻璃比色杯。
1.接种空白大肠杆菌于 3 mL LB培养基中, 37℃剧烈震荡培养过夜;2.将已培养好的种子液转入 100 mL LB培养基中扩大培养至 OD 650=0.3后,将培养好的细菌置于冰上冷却 10 min;3. 4℃, 4 000 rpm离心 10 min收集细菌,倒出上清,将离心管倒置于一干净滤纸上,将培养基控干;4.用 40 mL 冰预冷的 CaCl 2悬浮细菌,用加样枪冲吸,使菌体尽可能分散。
冰上放置 30 min;5. 4℃, 4 000 rpm离心 10 min收集细菌,倒出上清,再用 4 mL冰预冷的 CaCl 2悬浮细菌,这些细菌可以立即使用,或者于 4℃放置 12~24 h以增加其敏感性后使用。
6.如果证明所制备的感受态细胞可用,可以在冰上分装为100 μL每管,再加入100 μL甘油(注意:甘油非常黏稠,吸取时应该多一点。
,于液氮或 -70℃冰箱中存放。
存于低温下的感受态细胞, 一定不能融解。
如果已经融解, 应丢弃, 而不能再冻结保存而继续使用。
注意事项:1.本实验室所用空白大肠杆菌菌株为 JM109。
质粒的构建、转化、筛选和鉴定

重组质粒的构建、转化、筛选和鉴定实验目的:1.学习在实现DNA体外重组过程中,正确选择合适的载体和限制性内切酶并能对限制性核酸内切酶对载体和目的DNA进行切割,产生利于连接的合适末端。
2.学习设计构建重组DNA分子的基本方法,掌握载体和外源目的DNA酶切的操作。
3.学习利用T4DNA连接酶把酶切后的载体片段和外源目的DNA片段连接起来,构建体外DNA分子的技术,了解并掌握几种常用的连接方式。
4.掌握利用Cacl感受态细胞的方法。
25.学习掌握热击法转化E.coli的原理和方法。
6.掌握α互补筛选法和PCR检测法筛选重组子的方法。
并鉴定体外导入目的DNA片段的大小。
7.学习和掌握PCR反应的基本原理和操作技术,了解引物设计的基本要求。
实验原理:外源DNA与载体分子的连接即为DNA重组技术,这样重新组合的DNA分子叫做重组子。
重组的DNA分子式在DNA连接酶的作用下,有Mg2+、ATP存在的连接缓冲系统中,将分别经限制性内切酶酶切的载体分子和外源DNA分子连接起来。
将重组质粒导入感受态细胞中,将转化后的细胞在选择性培养基中培养,可以通过α互补筛选法筛选出重组子,并可通过酶切电泳及PCR检验的方法进行重组子的鉴定。
1.重组子的构建酶切时首先要了解目的基因的酶切图谱,选用的限制性内切酶不能目的基因内部有专一的识别位点,否则当用一种或两种限制性内切酶切割外源工体DNA时不能得到完整的目的基因。
其次要选择具有相应的单一酶切位点质粒或者噬菌体载体分子。
常用的酶切方法有双酶切法和单酶切法两种。
本实验采用单酶切法,即只用一种限制性内切酶切割目的DNA片段,酶切后的片段两端将产生相同的黏性末端或平末端,再选用同样的限制性内切酶处理载体。
在构建重组子时,除了形成正常的重组子外,还可能出现目的DNA片段以相反方向插入载体分子中,或目的DNA串联后再插入载体分子中,甚至出现载体分子自连,重新环化的现象。
单酶切法简单易行单是后期筛选工作比较复杂。
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在胶中的位置。 色,可确定DNA在胶中的位置。 可确定 在胶中的位置 影响琼脂糖凝胶电泳DNA迁移率的因素: 影响琼脂糖凝胶电泳DNA迁移率的因素: DNA迁移率的因素
DNA的分子大小; 琼脂糖浓度; DNA构象 电场强度; 构象; DNA的分子大小; 琼脂糖浓度; DNA构象; 电场强度; 的分子大小 碱基组成与温度;嵌入染料的存在;电泳缓冲液的组成。 碱基组成与温度;嵌入染料的存在;电泳缓冲液的组成。
镊子、试管三角瓶、玻璃涂棒、酒精灯、无菌牙签、 镊子、试管三角瓶、玻璃涂棒、酒精灯、无菌牙签、 吸水纸,一次性塑料手套等; 吸水纸,一次性塑料手套等; E.coli DH5α受体菌 -M-), pGEX-PDIP-r质粒 受体菌(R 受体菌 , 质粒 (AmpR) 2、试剂: LB培养基: 10g/L, 5g/L, LB培养基:蛋白胨 10g/L,酵母提取物 5g/L, 培养基 10g/L, 15g/L(固体培养基), ),用 NaCl 10g/L,琼脂粉 15g/L(固体培养基),用10 mol/L的NaOH调节pH为7.0,高压灭菌; 调节pH mol/L的NaOH调节pH为7.0,高压灭菌; 氨苄青霉素贮存液:浓度50-100mg/mL; 氨苄青霉素贮存液:浓度50-100mg/mL; 50 含有抗菌素的LB平板培养基:将配置好的LB LB固体培 含有抗菌素的LB平板培养基:将配置好的LB固体培 LB平板培养基 养基高压灭菌后,冷却到60度左右, 60度左右 养基高压灭菌后,冷却到60度左右,加入氨苄青霉素 终浓度为50µg mL浓度50-100µg/mL); 50µg/ 浓度50 (终浓度为50µg/mL浓度50-100µg/mL);
影响核酸限制性内切酶活性的因素:
DNA的纯度; DNA的甲基化程度 的甲基化程度; 酶切消化反应的温度; DNA的纯度; 的纯度 DNA的甲基化程度; 酶切消化反应的温度; DNA的分子结构 溶液中离子浓度及种类; 的分子结构; pH值 DNA的分子结构;溶液中离子浓度及种类; 缓冲液的 pH值。
二.实验原理 实验原理
感受态细胞制备: 1 、 感受态细胞制备 : 所谓感受态是指受体细胞处 于容易吸收外源DNA的一种生理状态, DNA的一种生理状态 于容易吸收外源DNA的一种生理状态,可以通过物理 与化学方法诱导形成, 也可以自然形成, 与化学方法诱导形成 , 也可以自然形成 , 在基因工 程技术中通常采用诱导的方法。 程技术中通常采用诱导的方法 。 用于转化的受体菌 Restriction细 胞 一 般 是 限 制 - 修 饰 系 统 ( RestrictionModification) 缺陷的变异株, Modification ) 缺陷的变异株 , 以防止对导入的外 DNA的切割 用符号R 表示。 其基本原理是: 的切割, 源 DNA 的切割 , 用符号 R-M- 表示 。 其基本原理是 : 细 菌处于0℃的CaCl2低渗溶液中,会膨胀成球形,细胞 菌处于0 低渗溶液中,会膨胀成球形, 膜的通透性发生变化,转化混合物中的质粒DNA DNA形成 膜的通透性发生变化,转化混合物中的质粒DNA形成 DNase的羟基 钙磷酸复合物黏附于细胞表面, 的羟基抗DNase的羟基-钙磷酸复合物黏附于细胞表面,经
复合物, 过 42℃ 短时间的热激处理 , 促进细胞吸收 ℃ 短时间的热激处理, 促进细胞吸收DNA复合物 , 复合物 在丰富的培养基上生长数小时后, 在丰富的培养基上生长数小时后 , 球状细胞复原并分 裂增殖,在选择培养基上可获得所需的转化子。 裂增殖,在选择培养基上可获得所需的转化子。 2、 碱裂解法小量制备质粒 、 碱裂解法小量制备质粒DNA: 碱裂解法是基于 : 线性大分子染色体DNA与小分子环形质粒 与小分子环形质粒DNA的变性 线性大分子染色体 与小分子环形质粒 的变性 复性的差异达到分离目的的, 复性的差异达到分离目的的 , 在 pH12.0~ 12.6的碱性 ~ 的碱性 环境中,线型染色体DNA和环型质粒 和环型质粒DNA氢键会发生 环境中,线型染色体 和环型质粒 氢键会发生 断裂,双链解开而变性,但质粒DNA由于其闭合环型 断裂 ,双链解开而变性 ,但质粒 由于其闭合环型 结构,氢键仅发生部分断裂, 结构 , 氢键仅发生部分断裂 , 而且其互补链不完全分 当将pH值调节到中性并在高盐浓度下 值调节到中性并在高盐浓度下, 离;当将 值调节到中性并在高盐浓度下,已分开的 染色体DNA互补链不能复性而交联形成不溶的网状结 染色体 互补链不能复性而交联形成不溶的网状结 通过离心,大部分染色体DNA、不稳定的大分子 构,通过离心,大部分染色体 、
三.实验材料与设备: 实验材料与设备:
1、用品与与仪器: 用品与与仪器: 超净工作台、电热恒温水浴、分光光度计、恒温培养 超净工作台、电热恒温水浴、分光光度计、 恒温振荡器、移液器、微型离心管等、 箱、恒温振荡器、移液器、微型离心管等、台式冷冻高速 离心机、旋涡震荡器、电泳仪、电泳槽、紫外透射仪, 离心机、旋涡震荡器、电泳仪、电泳槽、紫外透射仪,凝 胶成像仪、冰箱、制冰机等; 胶成像仪、冰箱、制冰机等; tip头 烧杯、 1.5mL 与0.5mL Eppendorf 管、tip头 、烧杯、量筒
RNA和蛋白质 和蛋白质-SDS复合物等一起沉淀下来而被除去,而 复合物等一起沉淀下来而被除去, 和蛋白质 复合物等一起沉淀下来而被除去 部分变性的闭合环状的质粒DNA在中性条件下很快复 在中性条件下很快复 部分变性的闭合环状的质粒 性,恢复到原来的构型,呈可溶性状态保存与溶液中, 恢复到原来的构型,呈可溶性状态保存与溶液中, 离心后上清中便含有所需要的质粒DNA。 。 离心后上清中便含有所需要的质粒 3、限制性内切酶:又称为内切酶或限制酶,是一 、限制性内切酶:又称为内切酶或限制酶, 类能识别双链DNA分子特异性核酸序列的 分子特异性核酸序列的DNA水解酶, 水解酶, 类能识别双链 分子特异性核酸序列的 水解酶 是体外剪切基因片段的重要工具, 是体外剪切基因片段的重要工具,主要存在于原核生物 中。根据限制酶的识别切割特性, 催化条件及是否具 根据限制酶的识别切割特性, 有修饰酶活性可分为Ⅰ 有修饰酶活性可分为Ⅰ、Ⅱ、III型三大类,Ⅰ类和III III型三大类, 类和III 型三大类 类限制性内切酶, 类限制性内切酶,在同一蛋白分子中兼有甲基化作用及 依赖ATP的限制性内切酶活性。 依赖ATP的限制性内切酶活性。Ⅰ类限制性内切酶结合 的限制性内切酶活性 于特定识别位点, 于特定识别位点,但却随机地切割回转到被结合
5×TBE缓冲液:0.45mol/L Tris-硼酸,0.01 × 缓冲液: -硼酸, 缓冲液 mol/L EDTA, pH 8.0; ; 10×Loading buffer:1% SDS, 0.05%溴酚兰,50 × 溴酚兰, : 溴酚兰 的甘油; %的甘油; 无水乙醇; 无水乙醇; 70%乙醇; 70%乙醇; 标准分子量片段; 标准分子量片段; 核酸内切酶 EcoR I (TaKaRa); ; EcoR I酶解缓冲液 × buffer H); 酶解缓冲液(10× ; 酶解缓冲液 琼脂糖; 琼脂糖; 溴化乙啶( )染色液(10mg/ml)。 溴化乙啶(EB)染色液 。
实验54 实验54
E.Coli 感 受 态 细 胞 的 制 备 、 质 粒 DNA的转化、 DNA的转化、提取与酶切鉴定 的转化
制作人: 制作人:刘如石
一. 实验目的和要求
1、通过本实验了解和掌握氯化钙法制备大肠杆菌感 、
受态细胞和质粒DNA转化受体菌细胞的原理与技术; 受态细胞和质粒DNA转化受体菌细胞的原理与技术; DNA转化受体菌细胞的原理与技术 的特性, 2、了解质粒DNA的特性,掌握碱裂解法从大肠杆菌 了解质粒 的特性 的方法; 细胞中分离、提取质粒DNA的方法 细胞中分离、提取质粒DNA的方法; 3、掌握限制性内切酶的特性、酶解和琼脂糖凝胶电 、掌握限制性内切酶的特性、 泳的操作方法; 泳的操作方法; 通过本实验了解大肠杆菌感受态细胞制备、 通过本实验了解大肠杆菌感受态细胞制备、DNA 转化、 转化、限制性内切酶在分子生物学研究中的意义与作 用。
4、琼脂糖凝胶电泳: 琼脂糖溶化再凝固后能形成 、琼脂糖凝胶电泳 带具有一定形状、 带具有一定形状、大小与孔隙度的固体基质 (密度与 密度与 琼脂糖浓度相关);而生理条件下,核酸分子的糖-磷 琼脂糖浓度相关 ;而生理条件下,核酸分子的糖 磷 酸骨架中磷酸基团呈离子化状态, 酸骨架中磷酸基团呈离子化状态,因此将核酸分子置 于电场中时,它们会向正极迁移,由于糖-磷酸骨架在 于电场中时,它们会向正极迁移,由于糖-磷酸骨架在 结构上的重复性,相同数量的双链DNA几乎具有等量 结构上的重复性,相同数量的双链 几乎具有等量 的净电荷,因此他们能以同样的速度向正极方向迁移。 的净电荷,因此他们能以同样的速度向正极方向迁移。 在一定的电场强度下,DNA分子的迁移率取决于核酸 在一定的电场强度下, 分子的迁移率取决于核酸 分子本身的大小和构象。分子量较小的DNA分子,比 分子, 分子本身的大小和构象。分子量较小的 分子 分子量较大的DNA分子,具有较紧密的构型,所以其 分子, 分子量较大的 分子 具有较紧密的构型, 电泳迁移速率也就比同等分子量的松散型的开环DNA 电泳迁移速率也就比同等分子量的松散型的开环 分子或线性DNA分子要快。直接用低浓度的 进行染 分子要快。 分子或线性 分子要快 直接用低浓度的EB进行染
处的DNA。 类限制性内切酶在识别位点上切割, 处的DNA。Ⅲ类限制性内切酶在识别位点上切割,然 后从底物上解离下来。故Ⅰ类和Ⅲ限制酶在基因工程中 类和Ⅲ 后从底物上解离下来。 基本不用,II类酶在分子克隆中使用广泛 类酶在分子克隆中使用广泛, 基本不用,II类酶在分子克隆中使用广泛,其基本特点 如下: 如下: (1)、专一性地识别并切割特定的核苷酸序列,如 (1)、专一性地识别并切割特定的核苷酸序列, EcoR I识别与切割序列为5`····GAATTC····3` I识别与切割序列为 ····GAATTC····3` 识别与切割序列为5` 3`····CTTAAG····5` (2) 、识别的核苷酸数目大多数为4~6个,少数识别 识别的核苷酸数目大多数为4 8~13个; 13个 (3)、识别序列大多数为二重对称(回文序列),大 (3)、识别序列大多数为二重对称(回文序列),大 ), 多数酶产生的是具有凸出的粘性末端: 多数酶产生的是具有凸出的粘性末端: