质粒DNA的提取和PCR技术
提取质粒dna的方法

提取质粒dna的方法提取质粒DNA的方法是一种从生物样品中提取DNA的方法,用于分析基因组学、遗传学或其他基因相关的研究。
它是所有DNA技术的基础。
提取质粒DNA的方法主要包括三个步骤:破解细胞壁、提取DNA片段和提取DNA片段。
第一步,破解细胞壁。
为了提取细胞内的DNA,必须先破坏细胞壁。
这一步可以通过使用植物激素、酶和其他破坏细胞壁的物质来完成。
第二步,提取DNA片段。
在破坏细胞壁之后,生物样品中的DNA就可以从细胞内被提取出来。
这一步通常是将样品加入一定的溶液,如洗涤溶液,然后用放大器去提取DNA片段。
第三步,提取DNA片段。
在提取DNA片段之后,必须对其进行纯化处理,以便提取的DNA片段不会受到其他物质的干扰。
一般情况下,这一步是通过使用离心机将DNA 片段从溶液中分离出来,然后用水冲洗去除其他物质,最后得到纯净的DNA片段。
提取质粒DNA的方法也可以用来提取植物细胞内的DNA。
与提取动物细胞中的DNA不同,植物细胞内的DNA要更加困难,因为植物细胞周围可能有多层细胞壁,而这些细胞壁很难被破坏。
因此,植物细胞内的DNA提取一般都是采用化学方法,即使用碱性有机溶液,以破坏细胞壁,然后再用放大器提取DNA片段。
此外,还有一些无细胞DNA提取的方法,如PCR法、小RNA测序、质粒提取等。
PCR法是用来检测和检验DNA的一种技术,可以扩增微量DNA,从而获取充足的DNA材料进行检测。
小RNA测序是一种新型的基因测序技术,可以检测植物和动物体内特定的RNA,检测特定靶基因的表达。
最后,质粒提取是一种从生物样品中提取DNA质粒的技术,可以用于分子生物学研究,如基因克隆、DNA测序等。
总之,提取质粒DNA的方法是一种常用的DNA提取技术,也是所有DNA技术的基础。
它可以用于从动物和植物样品中提取DNA片段,以及从无细胞DNA中提取DNA质粒,以用于各种基因组学、遗传学和分子生物学研究。
实验一、质粒DNA的提取及琼脂糖凝胶电泳

三、仪器、材料与试剂
(一)仪器 1.恒温培养箱 2.恒温摇床 3.台式离心机 4.高压灭菌锅 (二)材料 1.含连接外源基因质 粒的E. coli 2.1.5mL Eppendorf管 3.吸头、微量移液器
(三)主要试剂
溶液Ⅰ:由葡萄糖、EDTA、Tris-HCl度,减少抽提过程中的 机械剪切作
四、实验步骤
• (一)、称取0.5g琼脂糖,放入锥形瓶中,加入50 mL 0.5xTAE 缓冲液,置微波炉或水浴加热至完全溶化,温度降至60 ℃左 右时加入少许EB溶液,摇匀,则为1%琼脂糖凝胶液。 • (二)胶板的制备
1.将有机玻璃内槽放置于一水平位置,并放好样品梳子。 2.将冷到60℃左右的琼脂糖凝胶液,加入EB后,缓缓倒入有 机玻璃内槽,直至有机玻璃板上形成一层均匀的胶面(不要形成 气泡)。注意:溴化乙锭为致癌物,须戴一次性塑料薄膜手套操 作,并小心污染环境。
Solution III
5mol/L 乙酸钾 冰乙酸 水 60 mL 11.5mL 28.5mL
TE缓冲液 10mmo1/L Tris· HCl 1mmo1/L EDTA(pH8.0) 胰RNA酶溶液
将RNA酶溶于10mmo1/L Tris· HCl(pH7.5)和 15mmo1/L NaCl中,配成10mg/mL的浓度,于100℃加热 15min,缓慢冷却至室温,保存于-20℃。
3.待胶凝固后,取出梳子,放在电泳槽内。
4.加入电泳缓冲液至电泳槽中。
• (三)加样 • 用移液枪将已加入上样缓冲液的DNA样品 加入加样孔(记录点样顺序及点样量)。 • (四)电泳
1.接通电泳槽与电泳仪的电源(注意正负极, DNA片段从负极向正极移动)。DNA的迁移速 度与电压成正比,最高电压不超过5V/cm。
实验一、质粒DNA的提取及检测实验报告

实验一、质粒DNA的提取及检测【实验目的】1、掌握碱裂解法提取质粒的原理和步骤2、掌握琼脂糖凝胶电泳检测DNA的方法和技术3、学会PCR操作的基本技术第一部分质粒DNA的提取一、实验原理:碱裂解法提取质粒是根据共价闭合环状质粒DNA与线性染色体DNA在拓扑学上的差异来分离它们。
在pH值介于~这个狭窄的范围内,线性的DNA双螺旋结构解开而被变性,尽管在这样的条件下,共价闭环质粒DNA的氢键会被断裂,但两条互补链彼此相互盘绕,仍会紧密地结合在一起。
当加入的乙酸钾高盐缓冲液恢复pH至中性时,共价闭合环状的质粒DNA的两条互补链仍保持在一起,因此复性迅速而准确,而线性的染色体DNA的两条互补链彼此已完全分开,复性就不会那么迅速而准确,它们缠绕形成网状结构,通过离心,染色体DNA与不稳定的大分子RNA,蛋白质-SDS复合物等一起沉淀下来而被除去。
二、仪器与试剂1、仪器恒温摇床、台式离心机2、试剂溶液I、溶液Ⅱ、溶液Ⅲ、无水乙醇、TE缓冲液、胰RNA酶、酚、氯仿三、实验步骤1、将2mL含相应抗生素(Amp:50μg/mL)的LB液体培养基加入到试管中,接入含pUC19质粒的大肠杆菌,37℃振荡培养过夜。
2、取培养物倒入微量离心管中,4000r/min离心2min。
3、吸去培养液,使细胞沉淀尽可能干燥。
4、将细菌沉淀悬浮于100μL溶液I中,充分混匀,室温放置10 min。
5、加200μL溶液Ⅱ(新鲜配制),盖紧管皿,混匀内容物,将离心管放冰上5min。
6、加入150μL溶液Ⅲ(冰上预冷),盖紧管口,颠倒数次使混匀。
冰上放置15min。
7、12000r/min,离心15min,将上清转至另一离心管中。
8、向上清中加入等体积酚:氯仿(1:1)(去蛋白),反复混匀,12000r/min,离心5min,将上清转移到另一离心管中。
9、向上清加入2倍体积无水乙醇,混匀后,室温放置5~10min。
12000r/min,离心5min。
质粒DNA的提取定量PCR鉴定

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定量PCR:使用定量PCR仪进行定量PCR反应,获取质粒DN的拷贝数
提取质粒DN:使用碱裂解法或柱层析法等方法提取质粒DN
数据分析:使用定量PCR软件分析定量PCR结果,获取质粒DN的拷贝数
结果验证:使用电泳法或荧光定量PCR等方法验证定量结果
定量注意事项
确保样品的纯度和完整性
PCR反应需要四种主要成分:模板DN、引物、DN聚合酶和dNTP
PCR反应可以快速复制特定的DN片段,用于基因克隆、突变检测、基因表达分析等领域
PCR反应体系
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模板DN:提供待扩增的DN序列
DN聚合酶:催化DN复制
Mg2+:稳定DN聚合酶活性
酶抑制剂:防止非特异性扩增
电泳试剂:用于电泳分析的试剂,如溴化乙锭、琼脂糖等
荧光定量PCR仪:用于定量PCR分析的仪器
实验步骤和实验操作
质粒DN提取:选择合适的菌株,培养至对数生长期,然后进行质粒DN的提取。
PCR鉴定:设计特异性引物,进行PCR反应,然后进行电泳分析。
实验操作:按照实验步骤进行实验操作,注意操作规范和实验安全。
质粒DN提取:用于基因克隆、基因表达和基因功能研究
PCR鉴定:用于基因突变、基因表达和基因功能研究
质粒DN提取和PCR鉴定:用于药物开发和生物制药
在基因工程中的应用
质粒DN提取:用于基因克隆、基因表达和基因编辑等实验
PCR鉴定:用于检测基因突变、基因表达和基因拷贝数等实验
基因工程:通过改变生物的基因来改变其性状,如抗病、抗虫、抗除草剂等
质粒的提取及酶切实验报告

质粒的提取及酶切实验报告
一、实验目标
本实验旨在提取低分子量DNA、质粒,通过酶切实验检测质粒DNA片段长度,并处理实验结果。
二、实验原理
1、质粒DNA提取:使用特定的提取试剂,先提取溶菌酶凝胶中的质粒DNA;
2、质粒DNA酶切:采用酶切的方法,对质粒DNA进行切割,形成小片段;
3、质粒DNA测序:采用测序仪对质粒DNA片段进行测序,从而确定其长度。
三、实验材料
1、提取试剂:主要由蛋白酶、乙腈、缓冲液、EDTA等混合而成;
2、PCR反应液:主要由dNTP、聚合酶、反应缓冲液等组成;
3、酶:主要由DNA内切酶和DNA外切酶组成;
4、测序仪:用于测序质粒DNA的片段长度;
四、实验步骤
1、提取质粒DNA:将实验样品放入提取试剂中,加热30分钟,然后用混合物洗涤一次,最后离心得到清澈的液体,含有提取的质粒DNA;
2、进行PCR反应:将提取的质粒DNA作为反应液™添加到PCR管中,在适当温度下反应10分钟;
3、酶切:将PCR管中的反应液加入内切酶和外切酶中,在规定温度下酶切1小时;
4、离心质粒DNA片段:将酶切后的反应液离心,以得到质粒DNA片段;
5、进行测序:将质粒DNA片段放置于测序仪中,逐一测序后得到结果;
五、实验结果及分析
实验结果:
质粒DNA片段长度:
0.31kbp、0.48kbp、0.51kbp、0.58kbp、0.68kbp等。
遗传学 实验四 质粒DNA的提取与鉴定

实验四质粒DNA的提取与鉴定一、实验目的1、熟悉细菌的培养和质粒的扩增。
2、学习和掌握从大肠杆菌中提取质粒DNA的原理和方法以及琼脂糖凝胶电泳鉴定质粒DNA的技术。
二、实验原理质粒广泛存在与原核细胞中,大多是双联的共价闭合环状DNA分子,长度可以从1kb 到200kb不等,是染色体外寄生性的自主复制子,在细胞分裂时能恒定地传递给子代细胞。
在分子生物学研究中,为了迅速扩增和提取大量的质粒DNA,通常使用松弛型(其复制受宿主的控制不严格,在宿主细胞中拷贝数较多)质粒。
从大肠杆菌中分离质粒的方法很多,常见的有煮沸法和碱变性抽提法。
碱变性抽提法是基于染色体DNA与质粒DNA的变性与复兴差异而达到分离的目的。
在pH高达12.5的条件下,染色体DNA的氢键断裂、双螺旋解开而变性;质粒DNA的大部分氢键也断裂,但超螺旋共价闭合环状结构的两条互补链未完全分离,当用pH4.8的醋酸钾高盐缓冲液调节pH至中性时,变形的质粒DNA又恢复到原来的构型,通过离心保留在溶液中,而染色体DNA不能复性,形成缠绕的网状结构,与不稳定的大分子RNA、蛋白质等一起沉淀出来。
在抽屉过程中,由于各种因素的影响,同一质粒DNA可能呈现以下不同的构型:①超螺旋型,即共价闭合环状DNA(cccDNA);②一条链发生一处或多处断裂,致使另一条链发生自由旋转,分子内的扭曲折叠消失,形成松弛的分子即开环DNA(ocDNA);③两条链都发生了随机的断裂成为线状DNA。
在这三种构型中,cccDNA由于扭曲折叠,体积很小,在具有分子筛效应的琼脂糖凝胶电泳中受到阻力最小,迁移速度最快;ocDNA因扭曲状态被破坏而呈松弛的环状,迁移速度较慢;线状DNA受到的阻力最大,迁移速度最慢。
DNA分子在琼脂糖凝胶中泳动时,除受分子构型的影响,还受所带净电荷多少的影响。
因此在鉴定质粒DNA纯度时,应尽量减少电荷效应。
增大凝胶浓度可以在一定程度上降低电荷效应,分子的迁移速度主要取决于受凝胶阻滞程度的差异,由此将不同构型的质粒DNA 分开。
质粒DNA的提取和PCR技术
试剂准备 :
1. 溶液Ⅰ: 50mM葡萄糖 平衡渗透压,调节PH值,有利悬浮。 25mM Tris-HCl(pH 8.0) 调节PH值 10mM EDTA(pH 8.0)鏊和离子 抑制DNase活性 高压灭菌15min ,贮存于4℃ 2. 溶液Ⅱ:0.2N NaOH,1% SDS 裂解细菌,变性线性DNA 3. 溶液Ⅲ:醋酸钾(KAc)3M,pH 4.8 中和PH值,并与SDS
溶液二中NaOH不要暴露在空气中太久。可能会与空气中的CO2 与 NaOH作用,减弱了条
带以电泳速度的快慢而排序,分别是超螺旋、开环和复制中间 体(即没有复制完全的两个质粒连在了一起),注意碱法抽提 得到质粒样品中应不含线性DNA ,另外如果发现运动得较慢的 带,可能是由于操作不慎污染的大肠杆菌基因组DNA的片断。
反应参数要素: 反应参数要素
1。PCR反应五要素
(1)Taq酶:酶量:催化一典型的PCR反应约需酶量 2.5U(指总反应体积为100ul时),浓度过高可引起非特 异性扩增,浓度过低则合成产物量减少。保真性: rTaq-1~2kbp,LaTaq-~20kbp,Pfu(Pyrobest)-. 吸取时注意,保存在甘油中故比较粘稠。 (2)dNTP的质量与浓度 :在PCR反应中,一般反应 中每种dNTP的终浓度为20-200µmol/L 。4种dNTP的 浓度要相等( 等摩尔配制),如其中任何一种浓度不同 于其它几种时(偏高或偏低),就会引起错配。 (3)模板;模板可以是DNA片断,基因组,质粒, 噬菌体,菌液等任何含DNA生物样品。可以是单链分 子,也可以是双链分子,可以是线状分子,也可以是环状 分子 一般反应中的模板数量为102 -105 拷贝。模板纯 化程度影响扩增效率。
注意问题:
1。防止核酸污染:PCR反应的最大特点是具有较大扩增能力与极高
质粒DNA的提取、定量、PCR鉴定
1. 菌液煮沸10min 2、取0.2 ml PCR反应管一只,用微量加样枪按下述顺序分别加入各
四、结果分析
1、用1%的琼脂糖凝胶电泳鉴定; 2、加5uLPCR产物进行电泳; 3、预期PCR产物大小约400~500bp;
五、实验原理
* 由1985年穆里斯(K. Mullis)发明,他也因此获得了 1993年的诺贝尔化学奖。
PCR(Polymerase Chain Reaction)即聚合酶链式反应, 是指在DNA聚合酶催化下,以DNA为模板,特定引物 为延伸起点,通过变性、退火、延伸等步骤,在体外复 制DNA的过程。
保存:-20 ℃
引物1
DNA引物
引物2 Taq酶
Taq酶
72℃
Taq DNA聚合酶(thermus aquaticus)
(%)
100
酶 80
活 性
60
40
20
40 50 60 70 80 90
温度(℃)
(四)dNTP
• dNTP浓度取决于扩增片段的长度 • 四种dNTP浓度应相等 • 浓度过高易产生错误碱基的掺入,浓度过低则降低反应产 量 • dNTP可与Mg2+结合,使游离的Mg2+浓度下降,影响DNA 聚合酶的活性。
变性充分:变性温度越高,时间越长变性就越充分。 变性温度、时间要适应:温度过高、时间过长又会影响 Taq DNA 聚 合酶的活性, 变性温度90-95 ℃为宜。
质粒DNA的提取、定量、 与PCR鉴定
质粒DNA提取、定量、酶切与PCR鉴定
限制性内切酶
影响酶切反应的因素
➢ 底物DNA的纯度:主要污染DNA 的某些物质,如酚、氯仿、乙醇等 均能抑制酶反应; ➢ 反应系统:主要是反应缓冲液中的离子强度,如NaCl和Mg2+, 合适 离子强度可以激发酶切反应; ➢ 反应体积:一般应尽量小,且酶切反应中甘油浓度应低于5%; ➢ 保温时间与温度:温度改变会使酶识别错误;
DNA样品较纯,符合实验要求 RNA污染 有蛋白质或其它杂质的污染
实验仪器
核酸蛋白检测仪(Eppendorf BioPhotometer plus)
比色杯
数据处理
测量次数 1 2 3
平均值
质粒DNA浓度
(μg/ml)
Ratio值
(A260/A280)
定量检测
第三部分 酶切鉴定
DNA Restriction Enzyme Digestion
溶液反应温度 升至中温72℃ ,在 Taq酶作 用下,以dNTP 为原料,引物 为复制起点, 模板DNA的一 条单链在解链 和退火之后延 伸为一条双链
延伸
72˚C
实验原理
变性
95˚C
加热使模板DNA 在高温下90℃-95 变性,双链解链
退火
Tm-5˚C
降低溶液温 度,使合成 引物在低温 (35-70℃, 一般低于模 板Tm值的5℃ 左右),与 模板DNA互补 退火形成部 分双链
✓ 注意:我们接下来要用的eppendorf公司生产的紫外分光光 度计,会根据样品的稀释倍数自动算出质粒DNA的最终浓度 和Ratio值.
实验方法
2.根据在260nm以及在280nm的读数比值估计核酸的 纯度(Ratio=A260/A280)
• Ratio= 1.8 • Ratio>1.9 • Ratio<1.6
全质粒pcr基本原理
全质粒pcr基本原理
全质粒PCR(Plasmid PCR)是一种用于检测和鉴定质粒的方法。
质粒是存在于细菌中的环状DNA分子,常用于基因克隆、表达和传递等研究中。
全质粒PCR的基本原理如下:
1. 提取质粒:首先需要从细菌中提取质粒DNA。
通常使用碱裂解法或商业DNA提取试剂盒来提取质粒DNA。
2. 选择引物:根据需要检测的质粒序列,设计合适的引物。
引物应分别位于质粒DNA的两个不同区域上,使得PCR扩增产物能够覆盖整个质粒序列。
3. PCR扩增:将提取的质粒DNA作为模板,与引物一起进行PCR 扩增。
PCR反应包括多个循环,每个循环包括DNA变性、引物结合和DNA复制等步骤。
扩增的温度和时间参数需要根据具体的引物设计和PCR仪器的要求进行设定。
4. 分析PCR产物:将PCR扩增产物进行电泳分析。
可以使用琼脂糖凝胶电泳或毛细管电泳等方法,将扩增产物与DNA分子量标准进行比较,确定质粒是否存在以及扩增的效果如何。
全质粒PCR通过对质粒DNA进行特异性扩增,可以快速、准确地检测和鉴定质粒的存在。
这种方法在基因工程和分子生物学研究中广泛应用,可用于确认克隆的质粒是否正确、筛选质粒带有特定序列的变体等。
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3。琼脂糖电泳进行鉴定质粒DNA时 如果能看到三条带,这三条
带以电泳速度的快慢而排序,分别是超螺旋、开环和复制中间 体(即没有复制完全的两个质粒连在了一起),注意碱法抽提 得到质粒样品中应不含线性DNA ,另外如果发现运动得较慢的 带,可能是由于操作不慎污染的大肠杆菌基因组DNA的片断。
操作步骤注意事项: 操作步骤注意事项
1。配置反应体系。 标准的PCR反应体系: 10×扩增缓冲液 1ul 4种dNTP混合物 200umol/L 引物 各1~10pmol 模板DNA 10~200ng Taq DNA聚合酶 0.25u Mg2+ 1.5mmol/L 加双或三蒸水至 10ul 2。 在加热至90℃以上的PCR仪中预变性94℃ 2分钟, 然后循环: 94℃ 1分钟, 50℃ 1分钟, 72℃ 1.5分钟, 共30轮循环。 3. 循环结束后, 72℃ 10分钟,4℃保存。 4. 电泳结束,观察
注意问题:
1。防止核酸污染:PCR反应的最大特点是具有较大扩增能力与极高
的灵敏性,但令人头痛的问题是易污染,极其微量的污染即可造成假阳 性的产生。
吸样枪:吸样枪污染值得注意.由于操作时不慎将样品或模板核酸 吸 入枪内或粘上枪头是一个严重的污染源。吸头、小离心管应 一次性使用 。 开关盖时注意不要接触到内壁,并且不要开盖时间太长,以免 污染。 2。预混和分装PCR试剂:PCR反应液应预先 配制好,然后小量 分装。节省时间并保证各管成分平行 。最好在加样时都在冰上 低温进行,以防止加入酶后反应立即开始。 3。阳性对照与阴性对照的设立。-重要! 阳性对照与阴性对照的设立。 重要! 阳性对照与阴性对照的设立 重要 有利于问题的解决, 有利于问题的解决,对于优化条件以及排除污染可能性都很有 用!
粒DNA复性,染色体和蛋白质不可逆变性,形成不可溶复合物, DNA复性,染色体和蛋白质不可逆变性,形成不可溶复合物, 复性 同时K+ SDSK+使 同时K+使SDS-蛋白复合物沉淀。
6.12000g离心10min取上清,加入等体积的苯酚/氯仿 /异戊醇,振荡混匀,4℃离心12000g10min。-抽提掉
剩余蛋白。 剩余蛋白。
7.小心移出上清于一新微量离心管中,加入0.5~0.7 倍体积的异丙醇,混匀,4℃离心12000g,10min。-可
以用两倍体积的无水乙醇,室温放置2 离心。 以用两倍体积的无水乙醇,室温放置2-5min 离心。不要沉淀太 久
8.1ml 75%乙醇洗涤沉淀1次,4℃离心,弃上清,将 沉淀在室温下晾干。-不要太干,否则不易溶解。 不要太干, 9.沉淀溶于20μl TE(含RNase A 20μg/ml),37℃ 水浴30min以降解RNA分子,-20℃保存备用。 10.琼脂糖电泳检测。检测,定量。
质粒DNA的提取和 质粒DNA的提取和 PCR技术 PCR技术
质粒提取
基本原理 操作步骤 注意事项 实验室安全
基本原理
细菌质粒是一类双链、闭环的DNA,大小范围从1kb至 200kb以上不等。各种质粒都是存在于细胞质中、独 立于细胞染色体之外的自主复制的遗传成份.质粒已 成为目前最常用的基因克隆的载体分子,碱裂解法是 最常用的方法。 基本原理为:当菌体在NaOH和SDS溶液中裂解时,蛋 当菌体在NaOH和SDS溶液中裂解时, 当菌体在NaOH 溶液中裂解时 白质与线性DNA发生变性,质粒释放到上清中。 DNA发生变性 白质与线性DNA发生变性,质粒释放到上清中。当加 入中和液后,因为闭环的质粒DNA DNA分子虽然氢键破坏 入中和液后,因为闭环的质粒DNA分子虽然氢键破坏 但双链并不分离。能够迅速复性,呈溶解状态, 但双链并不分离。能够迅速复性,呈溶解状态,离心 时留在上清中;蛋白质与染色体DNA变性相互缠绕成 时留在上清中;蛋白质与染色体DNA变性相互缠绕成 DNA 大分子复合物而呈絮状被SDS覆盖, SDS覆盖 大分子复合物而呈絮状被SDS覆盖,当加入溶液三后 形成PDS被离心时可沉淀下来。 PDS被离心时可沉淀下来 形成PDS被离心时可沉淀下来。
4)Mg2+浓度:Mg2+对PCR扩增的特异性和产量有 显著的影响,在一般的PCR反应中,各种dNTP浓度 为200umol/L时,Mg2+浓度为1.5~2.0mmol/L为宜。 Mg2+浓度过高,反应特异性降低,出现非特异扩增, 浓度过低会降低Taq DNA聚合酶的活性,使反应产物 减少。 (5)引物:PCR 产物的特异性取决于引物与模板 DNA互补的程度。最佳的引物浓度一般在0.1到 0.5μM。以最低引物量产生所需要的结果为好,引物 浓度偏高会引起错配和非特异性扩增,且可增加引物 之间形成二聚体的机会。 引物设计的好坏是决定PCR成功与否最重要的因素。
基因组DNA会慢慢断裂 混匀动作要轻柔,既保证细菌沉淀在试 基因组DNA会慢慢断裂 。混匀动作要轻柔 既保证细菌沉淀在试 DNA 剂中充分扩散又要避免机械剪切已变性的质粒DNA和染色体基 剂中充分扩散又要避免机械剪切已变性的质粒 和染色体基 因组DNA 。 因组
5.加入150μl预冷的溶液Ⅲ,将管温和颠倒数次混匀, 见白色絮状沉淀,冰上放置3-5min。-中和溶液,此时质 中和溶液,
PCR的反应动力学 PCR的反应动力学 :
PCR的三个反应步骤反复进行,使DNA扩增量呈指数上升。反 应最终的DNA 扩增量可用Y=(1+X)n计算。平均扩增效率的理 论值为100%,但在实际反应中平均效率达不到理论值。 反应曲线:反应初期,靶序列DNA片段的增加呈指数形式,随 着PCR产物的逐渐积累,被扩增的DNA 片段不再呈指数增加, 而进入线性增长期或静止期, 即出现“停滞效应” ,这种效应 称平台期数(原因:PCR 扩增效率及DNA聚合酶PCR的种类和 活性及非特异性产物的竟争等因素)。
试剂准备 :
1. 溶液Ⅰ: 50mM葡萄糖 平衡渗透压,调节PH值,有利悬浮。 25mM Tris-HCl(pH 8.0) 调节PH值 10mM EDTA(pH 8.0)鏊和离子 抑制DNase活性 高压灭菌15min ,贮存于4℃ 2. 溶液Ⅱ:0.2N NaOH,1% SDS 裂解细菌,变性线性DNA 3. 溶液Ⅲ:醋酸钾(KAc)3M,pH 4.8 中和PH值,并与SDS
反应参数要素: 反应参数要素
1。PCR反应五要素
(1)Taq酶:酶量:催化一典型的PCR反应约需酶量 2.5U(指总反应体积为100ul时),浓度过高可引起非特 异性扩增,浓度过低则合成产物量减少。保真性: rTaq-1~2kbp,LaTaq-~20kbp,Pfu(Pyrobest)-. 吸取时注意,保存在甘油中故比较粘稠。 (2)dNTP的质量与浓度 :在PCR反应中,一般反应 中每种dNTP的终浓度为20-200µmol/L 。4种dNTP的 浓度要相等( 等摩尔配制),如其中任何一种浓度不同 于其它几种时(偏高或偏低),就会引起错配。 (3)模板;模板可以是DNA片断,基因组,质粒, 噬菌体,菌液等任何含DNA生物样品。可以是单链分 子,也可以是双链分子,可以是线状分子,也可以是环状 分子 一般反应中的模板数量为102 -105 拷贝。模板纯 化程度影响扩增效率。
基本原理:
类似于DNA的天然复制过程,其特异性依赖于与靶序列两端互 补的寡核苷酸引物。PCR由变性--退火--延伸三个基本反应步骤 构成:①模板DNA的变性:模板DNA经加热至93℃左右一定时 间后,使模板DNA双链或经PCR扩增形成的双链DNA解离,使 之成为单链,以便它与引物结合,为下轮反应作准备;②模板 DNA与引物的退火(复性):模板DNA经加热变性成单链后,温度 降至55℃左右,引物与模板DNA单链的互补序列配对结合;③ 引物的延伸:DNA模板--引物结合物在TaqDNA聚合酶的作用下, 以dNTP为反应原料,靶序列为模板,按碱基配对与半保留复制 原理,合成一条新的与模板DNA 链互补的半保留复制链重复循 环变性--退火--延伸三过程,就可获得更多的“半保留复制链”, 而且这种新链又可成为下次循环的模板。每完成一个循环需2~ 4分钟, 2~3小时就能将待扩目的基因扩增放大几百万倍。
作用沉淀
4.苯酚/氯仿/异戊醇(25:24:1)苯酚变性抽提蛋白,为
tris-base平衡酚。氯仿防止苯酚与水互溶。异戊醇的作用是降 低表面张力,可以减少泡沫
5.异丙醇,乙醇(无水乙醇、70%乙醇)沉淀质粒 6.TE:10mM Tris-HCl(pH 8.0),1mM EDTA(pH 8.0)。 RNase A:10mg/ml
PCR技术
基本原理 反应动力学 使用步骤及注意事项 反应参数要素 PCR优化 优化
PCR技术
聚合酶链反应(Polymerase Chain Reaction ,PCR)是 80年代中期发展起来的体外核酸扩增技术。 它具有 特异、敏感、产率高、 快速、 简便、重复性好、易 自动化等突出优点;能在一个试管内将所要研究的目 的基因或某一DNA片段于数小时内扩增至十万乃至百 万倍,使肉眼能直接观察和判断 。-可以用于基因克隆, 目的基因检测等。 发展:Taq DNA聚合酶:分离于温泉菌中,耐高温。 PCR和TaqDNA聚合酶被美国《科学》杂志1989年的 “年度分子”,并被列为80年代10项粒质量: 首先实验菌种生长的好坏直接影响质粒DNA的提
取,因此对存放时间较长的菌种需要事先加以活化。其次操作 过程注意:避免基因组断裂,除净蛋白,盐离子清洗干净。 质粒数量:同量摇菌量中质粒量取决于质粒拷贝数。低拷贝 数质粒可以通过添加氯霉素来增大拷贝数。
2。阳性菌破壁裂解比较困难,可以先用溶菌酶处理。
操作步骤及注意事项
1挑取单菌落,接种于含有相应抗生素的LB培养基中, 于37℃振荡培养14~18 h。-培养时间不能太长,否则细 培养时间不能太长,
菌老化,代谢产物太多。影响质粒质量。 菌老化,代谢产物太多。影响质粒质量。