细胞生物学实验⑤植物组织切片的制备
植物切片相关实验报告(3篇)
第1篇一、实验目的1. 了解植物切片的制作过程及注意事项。
2. 掌握植物组织切片技术在植物学研究中的应用。
3. 通过观察植物切片，了解植物组织的结构特征。
二、实验原理植物切片技术是一种重要的植物学研究方法，通过将植物组织制成薄片，便于在显微镜下观察其结构特征。
本实验采用石蜡切片法，将植物组织固定、脱水、透明、包埋、切片、染色，最后进行封片。
三、实验材料与仪器1. 实验材料：洋葱鳞片叶、马铃薯块茎、胡萝卜根等。
2. 仪器设备：切片机、显微镜、显微镜载物台、显微镜镜头、载玻片、盖玻片、酒精灯、酒精、二甲苯、甲醛、石蜡、刀片、剪刀、镊子、滴管、烧杯、滤纸等。
四、实验步骤1. 固定：将植物材料放入装有甲醛的烧杯中，浸泡24小时。
2. 脱水：将固定后的植物材料依次放入50%、70%、90%、95%、无水酒精中，每级酒精浸泡30分钟。
3. 透明：将植物材料放入二甲苯中，室温下浸泡，使组织透明。
4. 包埋：将透明后的植物材料放入熔化的石蜡中，使其成为石蜡块。
5. 切片：将石蜡块放入切片机中，切取5-10微米的薄片。
6. 染色：将切片放入染液中，如苏木精-伊红染色液，室温下染色30分钟。
7. 水洗：将染色后的切片用蒸馏水冲洗，去除多余的染液。
8. 封片：将冲洗后的切片用中性树胶封片，制成植物切片。
五、实验结果与分析1. 洋葱鳞片叶切片观察：- 表皮细胞：细胞呈长方形，排列紧密，细胞壁较厚，细胞核较大，染色较深。
- 保卫细胞：位于表皮层，呈肾形，细胞壁较薄，细胞核较小。
- 保卫细胞间隙：保卫细胞之间形成的空隙，有利于气体交换。
- 气孔：保卫细胞之间形成的开口，是气体交换的主要通道。
2. 马铃薯块茎切片观察：- 表皮细胞：细胞呈多边形，排列紧密，细胞壁较厚，细胞核较大。
- 薄壁组织：位于表皮下方，细胞较大，细胞壁较薄，含有丰富的营养物质。
- 维管束：由韧皮部和木质部组成，负责水分和养分的运输。
3. 胡萝卜根切片观察：- 表皮细胞：细胞呈长方形，排列紧密，细胞壁较厚，细胞核较大。
植物切片图实验报告内容
植物切片图实验报告内容引言植物切片图是植物解剖学研究中常用的技术手段之一，通过对植物的组织结构进行切片、染色和观察，可以了解植物不同部位的细胞和组织的形态特征、结构组成以及功能等方面的信息。
本实验旨在通过对一种植物的切片制备、染色和观察，掌握植物切片图的制备和解读方法。
材料与方法材料1. 鲜嫩的植物组织（例如青菜、茄子等）2. 苏木精3. 95%乙醇4. 伊红（或其他染色剂）5. 水6. 显微镜7. 切片刀8. 干燥培养皿9. 轻柔镊子10. 毛细管方法1. 取一片新鲜的植物组织，使用切片刀将其切成薄片。
2. 将切片放入干燥培养皿中，用毛细管吸取适量的苏木精液覆盖切片，浸泡10分钟。
3. 将切片捞出，放入另一个干燥培养皿中，用毛细管滴加少量95%乙醇漂洗，漂洗时间为2-3分钟，使苏木精被乙醇溶解出来。
4. 用毛细管滴加适量的伊红液覆盖切片，浸泡5-10分钟，使切片染色。
5. 将切片捞出，用毛细管滴加水漂洗，漂洗时间约为1分钟。
6. 将切片用毛细管转移到显微镜玻片上，轻轻压平并吸走多余的水。
7. 将显微镜玻片放入显微镜平台上，使用显微镜观察切片，调节放大倍率和焦距，观察并记录切片中的细胞和组织结构。
结果与分析经过染色和观察，我们成功制备了一张植物切片图，以青菜叶片为例，我们观察到了以下几个主要部分：1. 表皮细胞：位于叶片表面的一层细胞，通常为长方形或多角形，覆盖在叶片的外表面，起到保护作用。
2. 导管组织：植物体内的维管束组成，由导管细胞和同伴细胞组成，用于水分和养分的运输。
3. 叶肉细胞：叶片内部组织，通常为长方形或多角形，负责光合作用和储存养分。
4. 维管束：包括导管组织和伴随细胞，负责水分和养分的输送，使得叶片能够正常生长和供养整个植物。
5. 叶脉：位于叶片中央的部分，主要由维管束组成，可分为主脉和次脉，起到支持和运输的功能。
通过观察植物切片图，我们可以了解到不同组织的形态特征和结构组成，从而推测其功能和作用。
一款制作植物组织永久切片的简单工序
一款制作植物组织永久切片的简单工序制作植物组织永久切片的简单工序___________________________________________植物的永久切片是由植物学家和生物学家制作的一种技术，可以用来观察植物细胞的结构和形态，从而获得有关植物生长、发育、适应性等的重要信息。
制作植物永久切片的工序简单易行，但需要一定的技术。
下面介绍了制作植物组织永久切片的简单工序：### 一、准备材料要制作植物组织永久切片，需要准备如下材料：1. 植物样本：通常是取自健康的植物，尽量避免使用伤口或染色体变异的植物；2. 水和盐水：用于浸泡样本；3. 一把实验剪刀：用来剪取植物样本；4. 盐酸：用于脱落去除样本表面的死细胞和细胞外物质；5. 水溶性胶：用于将样本固定在显微镜片上；6. 水溶性染料：用于染色切片；7. 显微镜片：用于观察切片；8. 盐水：用于保存切片。
### 二、准备样本1. 将样本浸泡在水中或盐水中10-15分钟，以便其表皮和内部的细胞均匀地膨胀；2. 使用剪刀剪取样本的一小部分，然后放入盐酸中浸泡5-10分钟，以去除表皮死细胞和外部物质；3. 用凉水冲洗样本，直至表皮无法剥离。
### 三、固定样本并制作切片1. 将样本放入水溶性胶中浸泡10-15分钟，以将样本固定在显微镜片上；2. 使用一把实验剪刀将样本剪成3-4微米厚的切片；3. 将制作出的切片放入盐水中浸泡5-10分钟，以保证细胞不被剪断。
### 四、染色并观察切片1. 将样本切片浸泡在水溶性染料中10-15分钟，以使其形成彩色染色效果；2. 将彩色的样本切片放入显微镜下观察，以获得关于植物生长、发育、适应性等信息。
### 五、保存切片1. 将彩色的样本切片取出后用凉水冲洗干净；2. 将冲洗后的样本切片放入盐水中保存。
通过以上步骤就可以完成一份优秀的植物永久切片。
在制作过程中要尽量避免使用伤口或变异的样本，以便得到真实而准确的信息。
一款制作植物组织永久切片的简单工序
一款制作植物组织永久切片的简单工序
植物组织永久切片，是一种实验室常用的技术，它能够精确地显示出细胞结构和组织关系，为进一步的生物学研究提供重要的实物参考。
本文将介绍一种简易的制作植物组织永久切片的工序。
1. 收集静态干燥的植物组织样品，若有生长的植物组织，可使用锋利的剪刀将其剪成稍细的片段，然后将其放入焦磷酸盐纸中，处理到它们在纸中能够保持它们的原形；
2. 将其从焦磷酸盐纸中取出，放入70%甲醇中浸泡5分钟，然后将甲醇沥干；
3. 将该块片段放入离心瓶中，倒入脱水甲醇，再加入2-3滴甲醇衍生物，然后像正常甲醇操作一样在37℃处理一小时；
4. 将片段放入脱模剂中浸泡5分钟，然后抽出片段，放入彻底的脱水甲醇中，处理2-3分钟；
5. 用混合85%醇，5％玻璃胶和10％蓝指甲油的溶液将片段放入，加热至60-65℃，处理五分钟；
6. 将处理过的植物片段放入原位置，放入含石蜡的贴片切片机中，切片，厚度约为4-5微米；
7. 将切好的片段放入石蜡胶片中，再放入至少5％氢氧化钾溶液中浸泡；
8. 胶片冷却到室温后，用正常的洗涤法洗涤，再用100％乙醇洗涤；
9. 用染料渗透染色，准备放大装配的抛光膜，细腻制作，就可以得到完美的植物组织永久切片了。
本方法均为视个体样品的不同而定，步骤或配方可调整。
作出完美切片不仅需要操作工具与药剂的加减，还需要有足够的经验和技能，只有经过细致的操作，才能将植物组织永久切片做得完美。
细胞生物学实验⑤植物组织切片的制备
植物组织切片的制备生物122 祝洪晨1202040220 实验目的：通过石蜡切片法了解和掌握动物和植物材料切片制作的基本原理和一般方法。
实验原理：进行组织学和细胞学研究，必须把新鲜的组织或器官制作成切片，以便在显微镜下观察。
制作生物制片要求尽量保持细胞结构的完整性和真实性。
石蜡切片法是一种较常用的制片法。
一般操作步骤是：取材→固定→冲洗→脱水→透明→浸蜡→包埋→切片→贴片→烤片→脱蜡→复水→染色→脱水→透明→封藏。
其原理是将样品固定后，包埋于石蜡中，使其具有一定的硬度，便于在石蜡切片机上切片成足够薄的切片。
切片染色后经封藏可制作成永久制片。
实验步骤：1)取材、固定与抽气：本实验用蚕豆根、向日葵茎、夹竹桃叶为材料，制作横切片观察其内部结构。
用刀片切取所需根和茎的部位3-4㎜为一段，叶应取叶片中部主脉约4㎜宽的叶片。
小组各取5-6块，立即用FAA固定液固定。
固定过程中必须进行抽气。
2)洗涤与保存：教师代做。
3)脱水：70%酒精(1h)→80%酒精(1h)→90%酒精(1h)→95%酒精(1h)→无水乙醇(1h)→无水乙醇(1h)。
4)透明：无水乙醇(1h)→2/3酒精+1/3二甲苯(1h)→1/2酒精+1/2二甲苯(1h)→1/3酒精+2/3二甲苯(1h)→二甲苯(1h)→二甲苯(1h)。
5)浸蜡：教师代做。
6)包埋：折叠纸盒→灌蜡水→竖直放置植物材料于纸盒底部→冷却石蜡。
7)切片：将包埋好的蜡块用刀片修成较规则的梯形，以少量热蜡液将其底部迅速贴附于小木块上，夹在轮转式切片机的蜡块钳内，使蜡块切面与切片刀刃平行，旋紧。
切片厚度通常为5~12μm，切出一片接一片的蜡带，用毛笔轻托轻放在纸上。
8)贴片与烤片：在洁净的载玻片上直接滴加两滴蒸馏水，再将一定长度的蜡带放至载玻片上铺正，在温台上略加热使蜡片铺展开来，最后用滤纸吸去多余的水分，将载玻片放入45℃的温箱中干燥。
9)染色：二甲苯(5min)→二甲苯(5min)→2/3二甲苯；1/3乙醇(1min)→1/2二甲苯；1/2乙醇(1min)→1/3二甲苯；2/3乙醇(1min)→100%乙醇(1min)→95%乙醇(1min)→90%乙醇(1min)→80%乙醇(1min)→70%乙醇(1min)→50%乙醇(1min)→番红染色(40min)→50%乙醇(1min)→70%乙醇(1min)→80%乙醇(1min)→90%乙醇(1min)→95%乙醇(1min)→0.5%固绿(1min)→95%乙醇(1min)→100%乙醇(1min)→1/3二甲苯；2/3乙醇(1min)→1/2二甲苯；1/2乙醇(1min)→2/3二甲苯；1/3乙醇(1min)→二甲苯(1min)→二甲苯(1min)。
安徽高等院校植物细胞及组织切片标本制作步骤
安徽高等院校植物细胞及组织切片标本制作步骤制作植物细胞和组织切片是植物学和生物学研究中常用的实验方法之一、下面是一般的植物细胞和组织切片制作步骤。
1.实验材料准备-植物标本：选择具有代表性的植物标本，新鲜度较高的嫩叶、茎和根部适合制作细胞和组织切片。
-植物细胞和组织固定剂：常用的固定剂有乙醇、乙酸、福尔马林等。
选择适当浓度的固定剂根据样本的特性来确定。
-切片工具：显微刀片、玻璃切片、切片夹和切片盒等。
-切片染色剂：苏木素、伊红等。
2.样本处理-选择适当大小的植物标本，将其放置在固定剂中固定一段时间，常规处理时间为1-24小时，具体时间根据固定剂浓度和标本的特性来确定。
较硬的组织可选择用150-200mL的固定液浸泡2-12小时，较脆弱的组织可缩短固定时间。
-固定后，将样本从固定剂中取出，用纸巾轻轻擦干外表水分。
3.组织松解-对于较厚的植物组织，需要进行松解以使细胞方便切片观察。
通常，可用腐解溶液进行松解。
常用的腐解溶液有酶解液、盐酸和氯化铁等。
将样本浸泡在腐解溶液中，温度和处理时间根据样本的特性而定，通常需要温和的温度（如37°C）并持续一段时间（如30分钟-4小时），直到细胞组织松解。
4.切片制备-用镊子将处理好的样本取出，用切片钳将样本固定在切片夹上。
夹住样本的位置要仔细选择，以尽量保留较好的细胞和组织结构。
-使用显微刀片沿着横切面或纵切面将样本切割成较薄的切片。
刀片的角度和力度要适中，避免切片过厚或者过薄。
厚度通常为10-20微米。
-将切好的样本放在预先准备好的玻璃切片上。
用切片钳将切片夹住，并用切片盒盖上，防止灰尘和水分进入。
5.切片染色-拿起玻璃切片，将其放在染色剂（如苏木素溶液）中浸泡。
染色时间根据样本和染色剂而定，通常需要15-30分钟。
-取出染色剂，用去离子水或蒸馏水冲洗切片，直到水洗液透明。
-将切片用纸巾轻轻吸干水分，然后放在显微镜玻片上。
6.保存和观察-将切片放在带盖玻片上，用透明胶带黏贴边缘以防止切片移动。
植物组织切片技巧
植物组织切片技巧植物组织切片技巧是生物学研究中非常重要的一项实验技术，它能够帮助我们观察和研究植物的细胞结构、组织构成以及生理功能。
本文将介绍一些常用的植物组织切片技巧，希望能够对读者有所帮助。
1. 样品采集与固定在进行植物组织切片之前，首先需要采集新鲜的植物样品，并将其固定。
样品的选择应根据研究目的而定，可以是植物的叶片、茎、根等部位。
固定样品的目的是保持其原有的形态和结构，常用的固定剂有福尔马林、醋酸乙酯等。
固定时间一般为数小时至数天，具体时间根据样品的大小和组织结构而定。
2. 组织切片的准备在进行组织切片之前，需要将固定的样品进行处理和准备。
首先，将样品进行脱水处理，这可以通过逐渐将样品浸泡在浓度递增的酒精溶液中来实现。
脱水的目的是去除样品中的水分，以便后续的切片操作。
接下来，将样品进行透明化处理，这可以通过将样品浸泡在透明剂（如苯酚、甘油等）中来实现。
透明化的目的是使样品变得透明，以便于观察切片。
3. 切片的技巧在进行组织切片时，需要使用显微镜和切片刀。
首先，将透明化的样品取出并放置在显微镜玻片上。
然后，使用切片刀将样品切成薄片，薄片的厚度一般为几十至几百微米。
切片时需要保持手稳定，刀片锋利，以免损坏样品或者切出不理想的切片。
切片完成后，将切片放置在显微镜玻片上，并加入一滴适当的显微镜溶液，以保持切片的湿润。
4. 切片染色与观察为了更好地观察和研究植物组织的细胞结构，可以对切片进行染色处理。
常用的染色剂有甲苯胺蓝、伊红等。
染色的目的是使细胞和组织的结构更加清晰可见。
将染色剂滴在切片上，静置片刻后，用纸巾轻轻吸去多余的染色剂。
然后，将切片放置在显微镜下观察。
可以调节显微镜的放大倍数和焦距，以获得更清晰的图像。
总结起来，植物组织切片技巧是一项需要细心和耐心的实验技术。
在进行植物组织切片之前，需要采集和固定样品，然后进行脱水、透明化和切片处理。
最后，可以对切片进行染色处理，并使用显微镜观察和研究植物组织的细胞结构。
植物切片实验报告
一、实验目的1. 掌握植物切片的制作技术，了解植物组织结构。
2. 通过显微镜观察植物组织的细胞结构，学习植物细胞的基本形态和特征。
3. 熟悉植物组织的分类和功能，加深对植物生理学知识的理解。
二、实验原理植物切片实验是通过将植物组织切成薄片，在显微镜下观察其细胞结构，从而了解植物组织的形态、结构和功能。
实验过程中，需使用切片机将植物组织切成薄片，然后通过染色、封片等步骤，使细胞结构清晰可见。
三、实验材料与仪器1. 实验材料：植物叶片、茎、根等新鲜或干燥的组织。
2. 实验仪器：切片机、显微镜、染色液、封片剂、载玻片、盖玻片等。
四、实验步骤1. 切片制作a. 将植物组织洗净，切成适宜大小的块状。
b. 将组织块放入切片机中，调整切片厚度（一般为10-20微米）。
c. 将切片取出，用毛刷轻轻扫入盛有清水的培养皿中。
2. 染色a. 将切片用吸水纸吸干水分。
b. 将切片放入染色液中，根据不同组织选择合适的染色液（如苏木精-伊红染色液）。
c. 染色时间根据组织类型和染色液浓度进行调整，一般为5-15分钟。
3. 封片a. 将染色后的切片用吸水纸吸干水分。
b. 将切片放置在载玻片上，用封片剂覆盖，使其与载玻片牢固粘合。
4. 显微镜观察a. 将封片后的载玻片放置在显微镜载物台上，调整焦距，观察植物组织的细胞结构。
b. 观察不同植物组织的细胞结构，如叶片的表皮、叶肉、叶脉；茎的韧皮部、木质部；根的皮层、维管束等。
五、实验结果与分析1. 叶片切片a. 表皮细胞：多为长方形，排列紧密，细胞壁较厚，具有气孔器。
b. 叶肉细胞：分为栅栏组织和海绵组织，栅栏组织细胞排列紧密，海绵组织细胞排列疏松。
c. 叶脉：由维管束构成，包括木质部和韧皮部。
2. 茎切片a. 韧皮部：细胞排列紧密，细胞壁较厚，具有韧性和保护作用。
b. 木质部：细胞排列紧密，细胞壁较厚，具有输送水分和养分的功能。
3. 根切片a. 皮层：细胞排列疏松，具有吸收水分和养分的功能。
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二甲苯(5min)→二甲苯(5min)→二甲苯；乙醇(1min)→二甲苯；乙醇(1min)→二甲苯；乙醇(1min)→100%乙醇(1min)→95%乙醇(1min)→90%乙醇(1min)→80%乙醇(1min)→70%乙醇(1min)→50%乙醇(1min)→番红染色(40min)→50%乙醇(1min)→70%乙醇(1min)→80%乙醇(1min)→90%乙醇(1min)→95%乙醇(1min)→
切片染色后经封藏可制作成永久制片。
实验步骤：
1)取材、固定与抽气：
本实验用蚕豆根、向日葵茎、夹竹桃叶为材料，制作横切片观察其内部结构。用刀片切取所需根和茎的部位3-4㎜为一段，叶应取叶片中部主脉约4㎜宽的叶片。小组各取5-6块，立即用FAA固定液固定。固定过程中必须进行抽气。
2)洗涤与保存：
教师代做。
植物组织切片的制备
生物122xx实验目的：
通过石蜡切片法了解和掌握动物和植物材料切片制作的基本原理和一般方法。
实验原理：
进行组织学和细胞学研究，必须把新鲜的组织或器官制作成切片，以便在显微镜下观察。
制作生物制片要求尽量保持细胞结构的完整性和真实性。
石蜡切片法是一种较常用的制片法。一般操作步骤是：
取材→固定→冲洗→脱水→透明→浸蜡→包埋→切片→贴片→烤片→脱蜡→复水→染色→脱水→透明→封藏。其原理是将样品固定后，包埋于石蜡中，使其具有一定的硬度，便于在石蜡切片机上切片成足够薄的切片。
0.5%固绿(1min)→95%乙醇(1min)→100%乙醇(1min)→二甲苯；乙醇(1min)→二甲苯；乙醇(1min)→二甲苯；乙醇(1min)→二甲苯(1min)→二甲苯(1min)。
10)封片：
将切片从二甲苯中取出，用滤纸擦去材料周围的二甲苯。在材料中央滴加一滴加拿大树胶，然后用镊子轻轻加盖盖玻片。
3)脱水：70%酒精(1h)→80%酒精(1h)→90%酒精(1h)→95%酒精(1h)→无水乙醇(1h)→无水乙醇(1h)。
4)透明：
无水乙醇(1h)→酒精二甲苯(1h)→酒精二甲苯(1h)→酒精二甲苯(1h)→二甲苯(1h)→二甲苯(1h)。
5)浸蜡：
教师代做。
6)包埋：
折叠纸盒→灌蜡水→竖直放置植物材料于纸盒底部→冷却石蜡。
11)镜检。
实验结果：
维管束结构比较
相同差异
表皮
一般由单层细胞
初生结构均
蚕豆根横切装片
疏
松)和维管束
向日葵茎横切装片
组成。厚，存在角质层。表皮细胞外壁较
构成，向外突出形皮层
细胞间隙明显。所占茎较大部分。
具有细胞间隙，所占茎较小部分。
7)切片：
将包埋好的蜡块用刀片修成较规则的梯形，以少量热蜡液将其底部迅速贴附于小木块上，夹在轮转式切片机的蜡块钳内，使蜡块切面与切片刀刃平行，旋紧。切片厚度通常为5~12μm，切出一片接一片的蜡带，用毛笔轻托轻放在纸上。
8)贴片与烤片：
在洁净的载玻片上直接滴加两滴蒸馏水，再将一定长度的蜡带放至载玻片上铺正，在温台上略加热使蜡片铺展开来，最后用滤纸吸去多余的水分，将载玻片放入45℃的温箱中干燥。