血小板浓缩制品PRP PRF CGF 综述(仅供参照)

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血小板浓缩制品PRP PRF CGF 综述(仅供参照)

血小板浓缩制品

血小板作为一种多功能细胞,不仅在血栓形成和止血中发挥作用,而且在血管发生、组织修复和炎症过程中也扮演着重要的角色[1]。血小板被激活后,可释放多种生物活性物质,在促进组织愈合方面起重要作用。目前的血小板浓缩制品经过几代发展主要有以下几种:富血小板血浆(platelet rich plasma,PRP),富血小板纤维蛋白(platelet rich fibrin,PRF),浓缩生长因子(CGF,Concentrate Growth Factors)。

一发展历史

1984年,As s o i o n[2]等发现了人血浆中提取的富血小板血浆(platelet—rich plasma,PRP)中含有多种生长因子,当PRP与氯化钙以及牛凝血酶混合后,各种生长因子即从血小板中的α颗粒中释放出来。但是牛凝血酶的使用往往伴随着凝血因子Ⅴ、Ⅺ抗体的形成,并且存在着威胁生命的凝血紊乱发生的可能性[3]。作为第二代浓缩血小板,富血小板纤维蛋白(PRF)是由Choukroun。PRF是富纤维蛋白凝胶,由患者静脉中抽取的新鲜血液制作而成,属于新一代的血小板浓缩物,它制备简单无需任何生物添加剂的处理。在PRF通过离心分离的制备过程中,血小板被激活同时大量脱颗粒细胞中蕴含的重要的生长因子释放出来[4]。浓缩生长因子(CGF)是Sacco首先研发的[5],与PRF一样,CGF由静脉血分离制备而成。不过,两项技术的离心速度有所不同。与PRF不同,CGF技术采用的速度从2400到2700rpm不等,这是为了分离静脉血中的细胞,因此CGF中富含纤维蛋白凝块比PRF中的大得多,而且更粘稠,纤维蛋白的含量也更多。

二详细介绍

1 PRP

1.1 PRP 制取方法及组成结构

PRP 最早由 Assoian 于 1984 年提取制备[2],是自身静脉血经梯度离心分层后位于白细胞上方的富含血小板的血浆部分,含有全血中 70%以上的血小板,于其中加入凝结剂(常用 10%氯化钙和凝血酶)可形成胶状物,激活后血小板α颗粒释放出多种生长因子,如转化生长因子-β(TGF-β)、骨形成蛋白(BMPs)、血小板衍生生长因子(PDGF)、类胰岛素生长因子(IGF)、血管内皮生长因子(VEGF)、表皮生长因子(EGF)和成纤维细胞生长因子(FGF)等[6-8]。这些生长因子在 PRP 中浓度很高,根据不同的制作方法,约为体内正常浓度的几倍甚至几百倍[9-11]。PRP 血浆成分中的纤维素,纤连蛋白及亲玻粘连蛋白,可作为生长因子的载体,同时也是一种非常良好的细胞黏附分子。

1.2 PRP 的现状

在过去的20余年间,PRP已经逐渐被应用于临床,其中包括促进软组织愈合和促进骨组织再生方面的应用。应用较多的领域主要有整形美容和创伤外科专业等[12,13]。1998年PRP由Marx首次引入口腔医学领域中,并逐渐成为口腔医学的研究热点之一。其中PRP在口腔种植学骨增量方面相关的研究进行的较多,并且得到了多数的肯定。但是,PRP的应用一直争议不断,这些争议集中于其疗效的稳定性[14-19]和使用的安全性上。后者的矛盾最为尖锐。此矛盾的产生源于PRP在制备过程中需要加入异种凝血酶和抗凝血制品,这被认为可能导致免疫排斥反应的发生和感染性疾病的传播。

2 PRF

2.1 PRF 制取方法及组成结构

为了延续PRP的优势,同时避免争议,法国科学家Choukroun等于2000年提取制备了新一代自体血液制品Choukroun富血小板纤维蛋白(Choukroun platelet-rich fibrin,Choukroun’s PRF)[20]。Choukroun’s PRF 是自身静脉血经离心分层后位于贫血小板血浆层(Platelet poor plasma,PPP)与红细胞碎片层之间的富含血小板的纤维蛋白凝胶。在制备过程中,Choukroun’s PRF 的纤维蛋白原发生缓慢的聚合,形成三分子的立体网状结构,其凝胶组织具有疏松、孔隙大、弹性好,滞留大量血小板及生长因子的特点。传统的 PRP 为四分子结构,而 PRF 经过缓慢自然的聚合,产生的纤维蛋白为三分子立体网状结构,其凝胶组织较为疏松,孔隙大,弹性高。组织细胞及循环血中的干细胞能更快的长入其中,细胞因子也被大量的滞纳,并与纤维蛋白发生化学键结合。PRF 的纤维蛋白作为一种基质为细胞的附着,迁移以及分化提供了有利的场所[22]。生长因子主要包括转化生长因子-β(Transforming growth factor-β,TGF-β)、血小板衍生生长因子-AB(platelet-derived growth factor-AB,PDGF-AB)、类胰岛素生长因子-Ⅰ(insulin-likegrowth factor-Ⅰ,IGF-Ⅰ)等。由于Choukroun’s PRF 纤维蛋白原发生缓慢聚,使血小板和生长因子以化学键结合于 PRF 的纤维蛋白原上,利于其充分发挥协同作用[21]。纤维蛋白基质内还含有大量的免疫细胞,可能参与炎症反应的调节。

2.2 Choukroun’s PRF 促进骨组织再生的机制、机理

Choukroun’s PRF 作用的发挥有赖于其富含血小板内的α- 颗粒脱颗粒后释放的多种生长因子。生长因子可以诱导成骨细胞迁移、增殖、分化,促进骨愈合。Choukroun’s PRF 内还富含散在的免疫细胞,这些免疫细胞可以释放多种炎症因子,可能参与炎症调节,从而减轻周围软组织的炎症反应,同时具有抗感染能力。Dohan 等提出Choukroun’s PRF 不仅含有大量血小板,而且可以加强机体的防御反应[23]。在制备 Choukroun’s PRF 过程中,采集的血液中未添加抗凝剂,也未使用凝血酶和氯化钙诱导血小板活化及纤维蛋白聚合,模拟生理性的凝血过程,发生了类似天然纤维蛋白网形成的缓慢聚合,形成三分子立体网状结构[24]。这种网状结构便于营养物质和氧气弥散至细胞周围,为成骨细胞的迁移、增殖及分化提供场所;网状结构还可以为骨愈合提供支架。与 PRP 相比,Choukroun’s PRF 具有更强的成骨能力。Ling He 等研究认为Choukroun’s PRF 具有逐步释放生长因子的生物特性,并使其保持较高水平[25],从而表现更优越的成骨作用。孙洁等研究显示 Choukroun’s PRF 内大部分血小板外膜完整,大量α- 颗粒完整未破裂,从而证明 PRF 内大量血小板仍处于未完全激活状态[26]。同时,Dohan DM 等研究认为 PRF 的网状结构将血小板、生长因子以化学键结合[24]。因此,随着纤维蛋白逐渐溶解,结合的生长因子缓慢释放,同时结合的血小板被激活后脱颗粒释放出生长因子,使生长因子持续发挥作用,延长了生长因子的作用时间,加强了成骨效果。还有研究提出,Choukroun’s PRF 内的大量免疫细胞也可以使 Choukroun’sPRF 内释放的 TGF-β和 VEGF 在实验过程中始终保持较高水平[27]。上述研究证实Choukroun’s PRF 具有良好的成骨能力。

2.3 PRF 促进软组织愈合影响的作用原理

首先,PRF 富含的多种生长因子可协同作用,促进Ⅰ型胶原及纤连蛋白的合成,促进基质干细胞的趋化及增殖,刺激成纤维细胞及血管内皮的分化增殖[29],在组织愈合过程中起重要调控作用。

其次,PRF 的三维立体网状结构作为基质,为细胞的附着,迁移以及分化提供了有利的场所[28],使组织细胞及循环血中的干细胞能更快的长入其中,并且,这种结构弹性好,孔隙大,利于营养物质及氧气的弥散,加速愈合过程。

第三,大量的滞纳的血小板及生长因子与纤维蛋白发生化学键结合,这种特殊的结构与多种生长因子有较强的亲和力,从而使生长因子缓慢释放,延长 PRF 在创口的作用时间[30]。也有研究表明,PRF 的立体结构可以滞纳大部分白细胞,调节炎症反应,并使多种细胞因子缓慢持续释放,对于组织修复产生积极效果[31-33]。

2.4 Choukroun’s PRF的突出特点:

制备操作简单;制备过程无需添加抗凝试剂及凝血酶制品,种植手术术前术中均可进行,不存在交叉感染危险[34],使用安全;完全取自自体血,经济方便;制备过程模拟天然凝血过程,制得的纤维蛋白凝胶分子结构类似于天然血凝块中的纤维蛋白;富含血小板及各种细胞因子,具有促进组织愈合的能力;含有免疫细胞释放的炎症因子和修复介质,具有调节炎症反应和抗感染的能力[35]。

在制备上,其突出之处在于不添加任何生物制剂,只需简单的离心,这就避免了以往血液制品存在的伦理道德争议和疾病传播的风险。

在生物性能上,其突出之处在于富含具有调节组织修复能力的血小板及其活化后释放的多种细胞因子[36],如转化生长因子(transforming growthf actor-β1,TGF-β1),血小板衍生生长因子(platelet-derived growth factor-AB,PDGF-AB),血管内皮生长因子(vascular endothelial growth factor,VEGF)以及胰岛素样生长因子(insulin-like growth factor-Ⅰ,IGF-Ⅰ),这些生长因子可以有效的调控成骨细胞,成纤维细胞等与组织修复紧密相关的细胞的增殖、分化以及凋亡[37-40]。

最值得关注的是,由于Choukroun’s PRF的制备过程促发纤维蛋白的缓慢聚合,使得其内的各种细胞因子有充分的时间和条件与纤维蛋白分子发生化学键结合,以及发挥相互的协同作用[41],这将大大减少细胞因子的流失,加强其生物学功能。

由于Choukroun’s PRF生物学功能的发挥有赖于其特殊的分子结构,因此,分子结构也是其突出特点之一。Choukroun’s PRF的纤维蛋白聚合过程为缓慢自然的聚合,产生的纤维蛋白分子为三分子结构,呈立体网状,形成的凝胶较为疏松,具有较大的孔隙及良好的弹性。这是Choukroun’s PRF不同于PRP的显著特点。由于PRP为人工加入的凝血酶促发的纤维蛋白聚合,聚合速度快。因此产生的纤维蛋白为四分子结构,较为致密,不利于细胞因子的滞纳和细胞的长入。

2.5 小结

Choukroun’s PRF 用于口腔种植领域具有以下优势:1、完全取自自体血,未加入任何人工生物制品,既避免了伦理道德的争议,又避免了血液交叉感染的风险;2、富含大量血小板、生长因子,具有促进骨组织再生的功能;3、富含大量免疫细胞,可以减轻组织愈合过程中的炎症反应及具有抗感染能力;4、Choukroun’s PRF 形成的网状结构利于成骨细胞迁移,增殖及分化,充分发挥生长因子的作用,同时为组织愈合提供支架;5、制备过程简单,便于操作。

3 CGF

3.1 CGF的制备方法

浓缩生长因子(CGF)是Sacco首先研发的[5],与PRF一样,CGF由静脉血分离制备而成。不过,两项技术的离心速度有所不同。首先采集10ml患者的静脉血,

注入试管中,注满后勿摇动,立即放入Medifuge(Silfradent 意大利)离心加速机的转筒中。设定制备CGF程序,旋转12分钟后,可见试管中分为三层(最上层为血清,中间纤维蛋白层,底层为红细胞及血小板),将血清分离出来,并存储在特定的存储器皿中。CGF被分离出来,并存储在稀释的抗菌溶液中(Lincocin 600mg)。底层的红细胞部分及血小板立即存储在器皿中,其中富含红细胞、血小板以及铁、钙和其他基本元素、可以用来制备截骨术中的填料,以便混合生物材料及自体骨。将CGF切割成1-2mm的微粒,随后依次与收集的红细胞部分和骨代材料混合,为增加混合物的柔软度,可添加一些血清。使用特定的收集设备(Silfradent 意大利)旋转6秒钟左右将其混合并搅匀,将这种密度大的糊状粘结剂嵌入骨缺损处。另外CGF具有极大的可模制性,通过压缩,这种凝结物可能表现为薄膜的形式,或是凝结物本身破碎而产生的碎片,通过用手术钳压制获得CGF隔膜,然后在受损区域敷上CGF隔膜,由于隔膜具有一定的粘附力与弹性,使这些区域得以粘结愈合,手术结束时可以用少许血清来清洗伤口。

3.2 CGF的主要成分及生物学特性

CGF作用的发挥有赖于其高浓度的各类生长因子及纤维蛋白原所形成的纤维网状支架。制备CGF过程中特殊的变速离心使得血小板被激活,其中的血小板α颗粒释放出各种生长因子,他们能促进细胞增殖、基质合成和血管生成,而纤维网状支架又能支持生长因子所诱导生成的新生组织。其中的浓缩生长因子包括血小板衍生生长因子(PDGF)、转移生长因子-β(TGF-β)、类胰岛素生长因子(IGF)、血管内皮生长因子(VEGF)、表皮生长因子(EGF)以及成纤维细胞生长因子(FGF、骨形成蛋白(BMPs) 等。

他们各自作用分别为:

(1)血小板衍生生长因子—PDGF 是一种相对分子量大约为30 kD的糖蛋白,首先在血小板的α颗粒中发现.也可由巨噬细胞、上皮细胞等合成和分泌,是最早出现在伤口的生长因子,可促进结缔组织的修复和再生[42]。PDGF在血小板中有3种同分异构体:PDGFαα、PDGFββ和PDGαβ,在人类主要以PDGFαβ杂二聚体存在。在机体遭受损伤时。PDGF从脱颗粒的血小板中释放.激活其靶细胞(如巨噬细胞、成纤维细胞、骨髓干细胞等)的细胞膜受体,细胞浆内的信号蛋白获得高能磷酸键,信号蛋白活化后诱发一系列反应。包括促进伤口处细胞的有丝分裂,形成功能性毛细血管.巨噬细胞发挥吞噬作用并释放生长因子等。PDGF 主要具有丝裂原作用,作为一种促有丝分裂因子,在损伤部位表达较高,促进细胞趋化、增殖,并且可增加胶原蛋白的合成能力 [43]。

(2)转移生长因子-β(TGF-β) 有两种形式,即TGF-β1和

TGF-β2,相对分子量大约为25 kD。在血小板、巨噬细胞等内合成。由血小板脱颗粒释放或活化巨噬细胞分泌,以旁分泌形式作用于成纤维细胞、骨髓干细胞和前体成骨细胞。这些细胞又可合成和分泌TGF-β,以旁分泌或自分泌形式发挥作用[42]。因此,Marx等认为TGF-β是能支持长期组织愈合的骨再生因子。TGF的主要功能是促进前体成骨细胞趋化和有丝分裂。促使伤口处胶原基质中的成骨细胞聚集。此外,TGF可以抑制破骨细胞形成和骨吸收,使得骨形成大于骨吸收。

(3)类胰岛素生长因子(IGF)是具有多种生理功能的生长因子,

它对多种细胞具有促进有丝分裂的作用,包括成骨细胞、平滑肌细胞、骨骼肌细胞、角质细胞等。作为促进细胞增殖的另一种表现,IGF可以抑制许多细胞在成

熟之前的凋亡。此外,它还参与皮肤、骨骼和神经系统的发育和分化[44]。其作用机制是:IGF与细胞受体结合发生受体自身磷酸化,后激活酪氨酸蛋白酶。促使胰岛素受体底物磷酸化,从而调节细胞的生长、发育和代谢。

(4)血管内皮生长因子(VEGF)是1989年Fe r r a r a等首先从牛垂体的滤泡状细胞中纯化的同源二聚体糖蛋白。其主要生理作用是:VEGF与受体结合后促进微血管周围内皮细胞的增殖、迁移,并改变其基因表达;增强血管通透性,促进血浆蛋白的渗出,形成富含纤维素并有利于新血管形成的细胞外基质。在骨折部位存在氧梯度,在低氧状态下,VEGF表达增高,促进成骨细胞的分化,提高碱性磷酸酶的表达,促进骨折愈合[45]。

(5)表皮生长因子(EGF)是一种由53个氨基酸组成的低分子量单链多肽,具有多种生物学活性。其中以刺激体内多种类型组织细胞分裂和增殖最为突出。此外,EGF能促进基质合成和沉积。促进纤维组织形成[46]。

(6)成纤维细胞生长因子(FGF)对骨再生和发育以及骨折的恢复起重要作用。他们的主要任务是诱导骨再生,而骨再生是骨组织形成过程中最重要的阶段。 (7)BMPs(bone morphogenetic proteins):BMP是一种疏水性酸性多肽,与羟基磷灰石有较高的亲和力,在诸多因子中唯一能够单独诱导骨组织异位成骨。这种活性蛋白使未分化的间充质细胞化学趋化、聚集、定向分化为成骨细胞,合成胶原促进骨基质形成,形成钙化的骨组织。目前确定的已有20种BMPs,以BMP-2为中心,构成网络化自身调节骨髓基质干细胞的诱导成骨分化[47]。

除了以上提到的这些生长因子外,CGF中还具有特殊的网架结构。采用Medifuge分相器进行精准的分离处理,通过纤维蛋白原分子(FG)的聚合作用,获取的纤维蛋白块可组成三维聚合物网络,内部纤维交织,均以凝胶状态单相连接。在聚合过程中,纤维的直径不断增长,直至发生相互作用。纤维蛋白为富含弹性的有机纤维蛋白网格,纤维单体间的浓缩是三分子和多分子性的,这种纤薄,柔软,弹性及可渗透的网状结构使得骨细胞、红细胞、白细胞、血小板及抗体易于增殖。CGF纤维蛋白分子结构为三键式联结,呈立体网状结构,可有效的滞纳血小板及各种循环分子(如细胞因子)。

3.3 小结与展望

CGF可以促进血管有效增长,它使原有骨量的维持或重建成为可能,CGF可以加速移植的生物材料的融合与重整,几乎不会引起任何感染。纤维蛋白能单独引起血管新生,这一极其重要的特性可以通过纤维蛋白胶的三维结构来解释,此外还有困在其中的细胞因子的联合作用,纤维蛋白原和纤维蛋白降解产物促进了中性粒细胞的迁移,增大了其表面上的受体CD11和CD18的容量,使中性粒细胞可以粘附内皮细胞并游出,同时还可以使中性粒细胞粘附到纤维蛋白原上,这些要素还能形成噬菌作用和酶降解过程。纤维基质能对上皮细胞和成纤维细胞起作用,从而引导受伤部位所覆盖区域的愈合。所有这些因素使我们可以将CGF视作一个纤维蛋白凝结物,它能引起微脉管化,影响上皮细胞在其表面上的迁移。 CGF应用于损伤的组织时,通过引导损伤组织的再血管化,免疫调节以及捕获循环血中的干细胞,最终促进组织愈合再生。在离心作用过程中,尤其是聚合阶段,纤维蛋白胶凝块的发育与生长使链结构向各个方向膨胀。这样,许多细胞成分被阻止,从而起到多种治疗作用,例如:血浆和血小板细胞因子起到修复、消炎和止痛(TNF-a)的作用;血小板传送信号,释放各种生长因子,其中最重要的是PDGF、TGFβ-1和IGF-1,促进骨再生。因此,我们获得体积较大、具有极

浓缩血小板的制备及临床应用

浓缩血小板的制备及临床应用 【摘要】随着现代医学科学技术的迅速发展,使现代输血法进入了成分输血的新时代。成分输血能够提高临床输血疗效,减少输血不良反应,并且还可以使血液综合利用,因此,它被视为临床输血中的一大重要进展。当今,成分输血成为临床治疗中一种新的特殊方法。其中,浓缩血小板可为骨髓移植病人提供血液保障,使他们能够安全度过骨髓抑制期,为骨髓移植的成功提供了保证。 【关键词】血小板的制备;临床应用 制备浓缩血小板的技术目前主要有手工分离法和自动化的机器分离法。前者需要多个供血者才能达到一个治疗量,后者只需要一个供血者即可达到治疗量,并且产品纯度高,质量好超浓缩,治疗效果好,最大限度地减少了肝炎、梅毒、艾滋病等血液传染病的传播。我们利用美国BAXTER公司CS3000PLUS的血细胞分离机采集血小板10袋,与手工采集血小板对比,其特点总结见下表。 附表采集血小板方法比较 1 制备方法 应用美国BAXTER公司生产的CS3000 PLUS血细胞分离机,选择程序:①分离夹TNS-6; ②产品收集夹A-35; ③抗凝剂ACD-A; ④采用双臂式循环采血,分别穿刺双肘正中静脉,一侧采血,一侧回输; ⑤采用1次性全密闭式分离管道,采集过程中献血员血容量始终保持平衡;⑥全血与抗凝剂之比为9~11:1,离心速度为1600rpm,产品容量为190ML,血小板计数可达3.0~5.0×1011个。 浓缩血小板采集后,可以立即输注,也可以保存5天,保存时需放在22°C 振荡器上,保存期末PH值顺大于6.0。 2 质量标准 浓缩血小板的质量与供血者密切相关。选择供血者,除了要符合国家卫生部献血员体检标准外,还要求献血员血小板计数为1.5×1011/L以上,且供血者前1周不得服用阿司匹林、消炎药、保太松、布洛芬、潘生丁及抗过敏药物。以避免血小板功能遭到抑制,造成受血者输注无效。供血者前一天避免进食高脂肪食物,以防出现脂肪血。 3 采集过程 血小板在采集过程中,供血者血小板计数越高,产量也高;采集时间长,处理全血量多,产量亦高,血流速度增加至≥50min时,产量也有所增高。机采的每份浓缩血小板应采取作PH测定,血小板计数,白细胞,红细胞计数,以保证

浓缩血小板悬液的三种制备方法比较

浓缩血小板悬液的三种制备方法比较 作者:杨世明张勇萍杨枨林费红毅【关键词】制备方法关键词:制备方法;检测比较;血小板悬液0引言浓缩血小板悬液(PC)在白血病、再障等血小板减少的出血及外科手术中均有显著的止血作用,而PC中血小板数量的多少和质量的高低又是影响临床输注效果的重要因素.为探讨PC的最佳制备方法和条件,我们对二次离心法、白膜回浆法和机器单采法三种方法制备的PC细胞参数进行了检测比较. 1材料和方法 1.1供血者选择按国家卫生部规定标准,对献血员进行体格检查和ALT,HA V,HBV,HCV,HIV及RPR等化验检测均合格,5d内未服阿斯匹林等影响血小板功能的药物,静脉血管良好,血小板计数在150×109・L-1以上者. 1.2器材设备图门产LSG-04R型大容量低温离心机,超净台,分浆夹,F-800型血细胞分析仪(日本产),CPD保养液三联血袋,规格为400mL. 1.3制备方法①二次离心法:采集全血400mL按文献[1]规程进行分离制备;②白膜回浆法:采集与受血者ABO血型相同的全血400mL,置低温离心机,在22℃以3500r・min-1离心10min,在超净台内分出血浆至1号袋,保留80~100mL血浆,白膜层分至2号袋,静置30~40min后,在22℃以1400r・min-1离心6min后,将白膜层以上部分分出约60mL呈浑浊状的血浆,即为白膜回浆法制备的1U 浓缩血小板悬液;③机器单采法:由西安市中心血站制备. 1.4检测方法及指标血小板、红细胞、白细胞计数,均用F-800型血细胞分析仪进行测定.血小板回收率=(PC中血小板数/制备前血小板总数)×100%;PC中血小板数=血小板计数/L÷1000×容量(mL). 2结果用F-800型血细胞分析仪,对三种不同方法制备的浓缩血小板悬液细胞参数检测,结果见表1. 表1三种方法制备浓缩血小板悬液的检测结果(略)3讨论二次离心法制备浓缩血小板悬液的优点是简单易行,缺点是PC中血小板数量少,而WBC含量较多.PC中混入过多的WBC不利于血小板的贮存,另外血小板的贮存质量也与制备过程中血小板的损伤程度有关.PC中混入过多的WBC可使患者产生白细胞凝集素或HLA抗体而影响输注效果,一般认为PC中WBC<106才能有效地防止同种免疫,本文二次离心法制备的PC中WBC计数达6.98×109・L-1,输注后仍有产生免疫的可能. 机器单采法制备血小板的优点是能够获得高质量的血小板制品,可从单个供体采集到浓度高、纯度好、体积小、无聚集的8~10个单位的血小板制品[2],但由于其设备昂贵,在基础医院目前还难以普及.近年来已采用白膜回浆法制备PC,该法的优点是简便易行,血小板获得量较多,制备过程中血小

血小板浓缩制品PRP PRF CGF 综述(仅供参照)

血小板浓缩制品 血小板作为一种多功能细胞,不仅在血栓形成和止血中发挥作用,而且在血管发生、组织修复和炎症过程中也扮演着重要的角色[1]。血小板被激活后,可释放多种生物活性物质,在促进组织愈合方面起重要作用。目前的血小板浓缩制品经过几代发展主要有以下几种:富血小板血浆(platelet rich plasma,PRP),富血小板纤维蛋白(platelet rich fibrin,PRF),浓缩生长因子(CGF,Concentrate Growth Factors)。 一发展历史 1984年,As s o i o n[2]等发现了人血浆中提取的富血小板血浆(platelet—rich plasma,PRP)中含有多种生长因子,当PRP与氯化钙以及牛凝血酶混合后,各种生长因子即从血小板中的α颗粒中释放出来。但是牛凝血酶的使用往往伴随着凝血因子Ⅴ、Ⅺ抗体的形成,并且存在着威胁生命的凝血紊乱发生的可能性[3]。作为第二代浓缩血小板,富血小板纤维蛋白(PRF)是由Choukroun。PRF是富纤维蛋白凝胶,由患者静脉中抽取的新鲜血液制作而成,属于新一代的血小板浓缩物,它制备简单无需任何生物添加剂的处理。在PRF通过离心分离的制备过程中,血小板被激活同时大量脱颗粒细胞中蕴含的重要的生长因子释放出来[4]。浓缩生长因子(CGF)是Sacco首先研发的[5],与PRF一样,CGF由静脉血分离制备而成。不过,两项技术的离心速度有所不同。与PRF不同,CGF技术采用的速度从2400到2700rpm不等,这是为了分离静脉血中的细胞,因此CGF中富含纤维蛋白凝块比PRF中的大得多,而且更粘稠,纤维蛋白的含量也更多。 二详细介绍 1 PRP 1.1 PRP 制取方法及组成结构 PRP 最早由 Assoian 于 1984 年提取制备[2],是自身静脉血经梯度离心分层后位于白细胞上方的富含血小板的血浆部分,含有全血中 70%以上的血小板,于其中加入凝结剂(常用 10%氯化钙和凝血酶)可形成胶状物,激活后血小板α颗粒释放出多种生长因子,如转化生长因子-β(TGF-β)、骨形成蛋白(BMPs)、血小板衍生生长因子(PDGF)、类胰岛素生长因子(IGF)、血管内皮生长因子(VEGF)、表皮生长因子(EGF)和成纤维细胞生长因子(FGF)等[6-8]。这些生长因子在 PRP 中浓度很高,根据不同的制作方法,约为体内正常浓度的几倍甚至几百倍[9-11]。PRP 血浆成分中的纤维素,纤连蛋白及亲玻粘连蛋白,可作为生长因子的载体,同时也是一种非常良好的细胞黏附分子。 1.2 PRP 的现状 在过去的20余年间,PRP已经逐渐被应用于临床,其中包括促进软组织愈合和促进骨组织再生方面的应用。应用较多的领域主要有整形美容和创伤外科专业等[12,13]。1998年PRP由Marx首次引入口腔医学领域中,并逐渐成为口腔医学的研究热点之一。其中PRP在口腔种植学骨增量方面相关的研究进行的较多,并且得到了多数的肯定。但是,PRP的应用一直争议不断,这些争议集中于其疗效的稳定性[14-19]和使用的安全性上。后者的矛盾最为尖锐。此矛盾的产生源于PRP在制备过程中需要加入异种凝血酶和抗凝血制品,这被认为可能导致免疫排斥反应的发生和感染性疾病的传播。 2 PRF

血小板输注指南

尽管此指南中的建议和相关信息在印刷出版时被认为是真实准确的,但是不论作者或发行机构都对任何可能的错误或遗漏没有任何法律责任或义务。 1. 方法 经使用合适的关键词在数据库中进行文献检索,并对现有的专家组出版的指南(BCSH1992;Schfffer 等,2001)包括由英国血液学标准委员会在 MedLiny(联机医学文献分析和检索系统)和其(BCSH)之前出版的血小板输注指南和标准委员会的建议(国立卫生研究院标准委员会,1987;血小板输注标准会议,1998)进行了回顾性研究后,在基于以上文献检索、回顾性研究的结果和作者多年的血小板输注经验,起草了本指南。 血小板输注指征部分系作者与 BCSH 的临床血液学特别委员会合作起草。本指南作者来自血小板输注治疗有关的各个专业,包括临床和实验血液学、儿科、外科、麻醉和危重监护以及护理。 2. 证据的分级和建议的力度 在本标准中使用的证据类型的定义和推荐的分等源于美国卫生保健政策和研究署。 3. 背景 在过去的 40 年中,血小板输注治疗取得了明显的进展,但是在某些方面仍有争议,例如对预防性血小板输注。美国(国立卫生研究院标准委员会,1987;Schfffer,2001)和英国(BCSH,1992;血小板输注标准委员会,1998)付出了许多努力以期在血小板输注治疗的各方面,包括临床指征达成一致。 尽管目前许多随机对照研究在本领域已经产生了有用的信息,但是由于缺少客观资料,基于客观证据的举荐受到了限制。 血小板的输注持续增长,和去年相比,英国 2001-02 年度医院对浓缩血小板的需求(共 215,050 成人剂量)增长了 2.3%。浓缩血小板十分昂贵,其采集、制备、贮存和使用的发展仍以提高临床效果和减少副作用为目的。 本指南的目的是对医院中负责处方、使用和提供血小板输注的医疗、护理和技术人员给予血小板输注方面的指导。献血员的选择和浓缩血小板的制备在英国输血服务机构指南(英国输血服务机构 / 国立生物标准和控制研究院,2001)中已描述,不在本文中详细说明。 4. 浓缩血小板的制备 4.1 方法 在英国,浓缩血小板根据批准的指南(英国输血服务机构 / 国立生物标准和控制研究院,2001)采用提取白膜法从全血中制备或用血小板单采术制备。必须符合献血员筛选的标准和强制性的微生物检测的要求。 白膜法制备的混合浓缩血小板来自于四个供者的全血。采血后 8 小时内重离心全血,使血小板位于红细胞和血浆交界面的白膜层上。白膜层用系统分离,使其重新悬浮在血浆或血小板悬浮介质(PSM)中。然后进行第二步轻离心,使血小板仍悬浮在液体中,其下层为红细胞和白细胞浓集。接下来的混合步骤在采血后的 24 小时内完成,去白细胞是通过符合标准的方法过滤完成。 单个献血员机采浓缩血小板可采用不同的机采系统用不同的方案收集。血小板得率可能不同,每一个制备过程或方案必须经过充分验证,用文件记载并设置相应的规范。每一个单采过程可能得到 1 到 3 个治疗剂量,并可根据血小板计数分成 2-3 袋。可能需要使用一些附加的过滤系统滤除白细胞。

【CN109876214A】一种混合浓缩血小板的制备方法【专利】

(19)中华人民共和国国家知识产权局 (12)发明专利申请 (10)申请公布号 (43)申请公布日 (21)申请号 201910262799.4 (22)申请日 2019.04.02 (71)申请人 西安市中心血站(陕西省血液中心) 地址 710000 陕西省西安市雁塔区朱雀大 街407号 (72)发明人 张雅莉  (74)专利代理机构 北京众达德权知识产权代理 有限公司 11570 代理人 刘杰 (51)Int.Cl. A61M 1/02(2006.01) A61K 35/19(2015.01) (54)发明名称一种混合浓缩血小板的制备方法(57)摘要本发明公开了一种混合浓缩血小板的制备方法,属于医学输血技术领域,通过获得采集到的第一预设容量的全血;根据第一预设条件,采用离心机对所述全血进行离心;采用血液成分分离机对离心后的所述全血中的血浆层,按照贫血小板血浆层和富血小板血浆层进行分离;采用所述血液成分分离机对离心后的所述全血中的白膜层进行分离;采用所述血液成分分离机将所述富血小板血浆转移至白膜层袋中,并获得富血小板的白膜;将所述富血小板的白膜置于预设温度下储存;重复上述步骤,获得多份同血型的所述富血小板的白膜;在第二预设条件下,离心之后,获得浓缩血小板,并同血型汇集至血小板贮存血袋中,获得混合浓缩血小板。达到了混合浓缩血小板容量低,血小板计数能满足使用要求,节约 血液资源的技术效果。权利要求书1页 说明书5页 附图1页CN 109876214 A 2019.06.14 C N 109876214 A

权 利 要 求 书1/1页CN 109876214 A 1.一种混合浓缩血小板的制备方法,其特征在于,包括: 步骤1:获得采集到的第一预设容量的全血; 步骤2:根据第一预设条件,采用离心机对所述全血进行离心,其中,离心分层后的所述全血包括血浆层、白膜层和红细胞层; 步骤3:采用血液成分分离机对离心后的所述全血中的血浆层,按照贫血小板血浆层和富血小板血浆层进行分离; 步骤4:采用所述血液成分分离机对离心后的所述全血中的白膜层进行分离; 步骤5:采用所述血液成分分离机将所述富血小板血浆转移至白膜层袋中,并获得富血小板的白膜; 步骤6:将所述富血小板的白膜置于预设温度下储存; 步骤7:重复上述步骤1-6,获得多份同血型的所述富血小板的白膜; 步骤8:在第二预设条件下,利用离心机离心之后,获得浓缩血小板,并汇集至血小板贮存血袋中,获得混合浓缩血小板。 2.如权利要求1所述的混合浓缩血小板的制备方法,其特征在于,还包括: 当所述血液成分分离机中的光感器探测到所述白膜层后,降低分离速度,将所述血浆层中的血浆继续分离第二预设容量至贫血小板血浆袋之后,关闭贫血小板血浆袋管; 将所述白膜层靠近上方位置处,第三预设容量的富含血小板的血浆导入至浓缩血小板收集袋中,并利用止流夹夹住导管。 3.如权利要求1所述的混合浓缩血小板的制备方法,其特征在于,在所述步骤4中,还包括: 将所述白膜层中的白膜及靠近白膜层位置处的红细胞导入所述白膜层袋中,并关闭红细胞导管。 4.如权利要求1所述的混合浓缩血小板的制备方法,其特征在于,所述第一预设条件为:离心力为1800-2100×g,加速档为5-8,减速档为3-5,时间为14-16min,温度为22℃±2℃。 5.如权利要求1所述的混合浓缩血小板的制备方法,其特征在于,所述预设温度的范围为20℃~24℃。 6.如权利要求1所述的混合浓缩血小板的制备方法,其特征在于,所述第二预设条件为:离心力为210-400×g,加速档5-8,减速档3-5,时间为10-15min,温度为22℃±2℃。 7.如权利要求1所述的浓缩血小板的制备方法,其特征在于,所述富血小板的白膜利用离心机进行离心之后,获得浓缩血小板之前,还包括: 血小板悬浮于所述血袋上方的血浆层中,且,白细胞和红细胞位于所述血袋底部。 8.如权利要求7所述的浓缩血小板的制备方法,其特征在于,还包括: 采用所述血液成分分离机,或,分浆夹将血小板分离至存储袋中,获得浓缩血小板。 9.如权利要求1所述的混合浓缩血小板的制备方法,其特征在于,所述获得混合浓缩血小板之后,还包括: 采用血小板计数仪获得所述混合浓缩血小板中血小板数量; 采用计数板法获得红细胞混入量的数量; 采用Nageotte板计数白细胞混入数量。 2

5.血小板的基础知识

血小板的基础知识 血小板(blood platelet)是哺乳动物血液中的有形成分之一。形状不规则,比红细胞和白细胞小得多,无细胞核,成年人血液中血小板数量为100~300×1000000000个/L,它有质膜,没有细胞核结构,一般呈圆形,体积小于红细胞和白细胞。血小板在长期内被看作是血液中的无功能的细胞碎片。血小板具有特定的形态结构和生化组成,在正常血液中有较恒定的数量(如人的血小板数为每立方毫米10~30万),在止血、伤口愈合、炎症反应、血栓形成及器官移植排斥等生理和病理过程中有重要作用。血小板只存在于哺乳动物血液中。 1.血小板增多:当血小板计数>400×10^9/L时为血小板增多,原发性血小板增多常见于骨髓增生性疾病,如慢性粒细胞白血病,真性红细胞增多症,原发性血小板增多症等;血小板增多症常见于急慢性炎症,缺铁性贫血及癌症患者,此类增多一般不超过500×10^9/L,经治疗后情况改善,血小板数目会很快下降至正常水平。脾切除术后血小板会有明显升高,常高于 600×10/L,随后会缓慢下降到正常范围。 2.血小板减少:当血小板计数<100×10^9/L即为血小板减少,常见于血小板生成障碍,如再生障碍性贫血,急性白血病,急性放射病等;血小板破坏增多,如原发性血小板减少性紫癜,脾功能亢进,消耗过度如弥漫性血管内凝血,家族性血小板减少如巨大血小板综合征等。 浓缩血小板的汇集滤白及深低温保存 血小板输注是治疗各种因血小板减少或功能障碍引起出血的有效治疗手段。目前国内血小板制备多采用机采制备,由于机采无偿献血者的招募有一定难度并且随着临床血小板用量的逐年增加,很多地方的血小板供应单独靠机采已不能满足临床需求,而现有的血液资源大量被浪费,如何利用现有的血液资源分离手工浓缩血小板供应临床,同时尽量减少手工血小板多人份输注,容易引起同种免疫导致输注无效的弊端是解决目前血小板临床供应的一个有效途径。由于血小板免疫性输注无效主要为HLA抗体引起,其次为HPA 抗体[1,2],去除手工浓缩血小板中的白细胞就可减少输血反应和最大限度地避免同种免疫的发生。本站采用血小板专用滤白滤器以每10u为一治疗量,制备新鲜汇集滤白血小板用于预防性血小板输注患者,同时制备冰冻汇集滤白血小板,用于急诊和手术止血患者,取得了较好的临床效果。现将方法报告如下。 1 材料与方法

【专家共识】浓缩血小板制品在创面修复中应用的全国专家共识(2020版)

【专家共识】浓缩血小板制品在创面修复中应用的全国 专家共识(2020版) 【摘要】以浓缩血小板衍生物为代表的创面生物治疗受到人们的关注,但由于在制备的质量控制、使用方式等方面不统一,导致有一些不一致观点。本共识编写组成员通过复习大量文献,筛选出高质量的证据文章,结合创面修复领域专家反复的研讨,形成具有指导意义的专家共识,以指导从事创面修复的医护人员科学、规范地使用浓缩血小板治疗技术。 创面愈合问题一直是组织修复领域工作的重点之一。创面愈合是由多种细胞、ECM及生长因子/细胞因子共同参与、高度协调的生物学活动,出凝血、炎症反应、增殖及重塑4个阶段渐次发生又相互重叠[1]。伴随近年来再生医学的迅猛发展,采用细胞及其衍生物行创面治疗取得令人瞩目的效果[2]。 浓缩血小板是通过离心从全血中提取出来的血小板浓缩液,含有高浓度的血小板、白细胞和纤维蛋白。目前的浓缩血小板及衍生制品在临床应用最为常见的形式为富血小板血浆(platelet-rich plasma,PRP),其他的有浓缩血小板、血小板凝胶(PG)、富血小板凝胶(platelet-rich gel,PRG)、富血小板纤维蛋白(platelet-rich fibrin,PRF)、富含生长因子血浆、浓缩生长因子以及血小板裂解液等。又可根据是否含有中性粒细胞、淋巴细胞分为几种浓缩血小板亚型,如高浓度白细胞-PRP和高浓度白细胞-PRF,低浓度白细胞-PRP和低浓度白细胞-PRF以及纯的PRP和PRF。也有人根据是否激活血小板、是否含有血小板外膜进行浓缩血小板制品分类。甚至将浓缩血小板制品制备成血小板来源的细胞外囊泡或PRP衍生的外泌体。总之,可将所有这些制品统称为浓缩血小板衍生物或浓缩血小板制品,这类制品能促进创

浓缩血小板的制备白膜法、富浆法

手工分离浓缩血小板(PC)的制备 Ⅰ.富含血小板血浆(PRP)法分离制备血小板法(富浆法)先将全血经轻离心,分离制备富含血小板血浆,之后将富含血小板血浆重离心,移去上层血浆,下层沉淀即为浓缩血小板。在第二次重离心制备浓缩血小板前,可将第一次轻离心获得的富含血小板血浆进行白细胞过滤处理。具体操作如下: 1.采血 2.轻离心成分分离制得红细胞、富含血小板血浆。 建议离心条件:温度:22℃±2℃,加速:9 r/min,减速:3 r/min,200ml袋离心力为478g,400ml袋离心力为850g,离心时间为8分钟。(贺利氏离心机) 轻离心,使红细胞(RBC)、白细胞(WBC)沉淀,上层血浆的大部分血小板(PLT)尚未沉淀,分离此血浆即为富含血小板血浆,约含全血中70%的PLT(根据调节离心机的离心力和时间有所不同)。 3.重离心富含血小板血浆。 第二次离心:温度:22℃±2℃,加速:9 r/min,减速:3 r/min,离心力2988g,离心时间为10分钟。浓缩血小板1个单位留浆20-25ml,2个单位留浆30-45ml。 4.挤去上层贫血小板血浆, 再回部分贫血小板血浆置血小板内, 形成血小板悬液,静置1.5-2h;8h内制备必须完毕。 5.血小板悬液振荡保存,等待检测报告,不合格剔除。

6.根据需求选择合格血小板悬液进行汇集过滤。 7.开放式6h内输完。 8.密闭式振荡保存(无菌接驳,血小板贮存袋,细菌监测)。 富浆法的特点:PRP-PC质量不稳定,WBC残留量高,输洼安全性差,反复输注常会诱发血小板输注无效。 Ⅱ.白膜(BC)法分离制备血小板法 全血首先经重离心后分离白膜层,将白膜层再经轻离心后,去除红细胞和白细胞,即得浓缩血小板。具体操作如下: 1.采血 2.成分分离并制备白膜得少白红细胞(白细胞去除率约85 %)、血浆、白膜。 建议离心条件:温度:22℃±2℃,400ml袋离心力转速2515转/2100g,离心时间为14分钟。 3.分离白膜层,约含全血中90%的PLT,室温静置至少4h,可保存24h。 目视挑选白膜,发生了凝聚及白膜太薄者予以淘汰,不用于制备浓缩血小板。 4.白膜置于血小板保存箱过夜但不振荡,同时等待病毒等检测结果 5.等待血小板需求,根据需求选择合格白膜进行汇集血小板的制备。将10-12单位(5-6袋)白膜混合,总重约500-580ml,充分混匀。 6.轻离心 离心条件:温度:22℃±2℃,400ml袋离心力转速800转/212g,

血小板浓缩物质在脂肪液化创面治疗中的研究进展

·综述· 96 https://www.360docs.net/doc/149183974.html, 《中国医疗美容》第9卷 第1期(总第65期)2019年1月 China Medical Cosmetology V ol.9 No.1(Total No.65)Jan2019 The “pixie” ear deformity following face lift surgery revisited[J]. Plastic and reconstructive surgery, 2005, 115(4): 1165-1171. DOI:10.1097/01.prs.0000156140.38695.5e. [42] Mowlavi A, Zakhireh M. Avoiding the“Pixie-Ear” deformity following face lift surgery by differential insetting and secondary intention healing[J]. Aesthetic Surgery Journal, 2005, 25(5):467-470. DOI:10.1016/j.asj.2005.07.010. 随着肥胖人群及糖尿病患者人数的增加,术后伤口脂肪液化在临床治疗中有明显增多趋势。据国内文献报道[1],腹部术后切口脂肪液化的发生率约 血小板浓缩物质在脂肪液化创面治疗中的研究进展 李昱昊1,周才进2,张培华* (广东医科大学,广东医科大学附属医院,广东 湛江,524000) 【摘 要】伤口脂肪液化是因伤口皮下脂肪组织血供减少或血管再生速度减慢,造成局部脂肪细胞变性坏死,引起伤口愈合延迟,甚至导致伤口感染等情况。血小板浓缩物质包括:浓缩血小板、富血小板血浆(PRP,Platelet-rich plasma)、富血小板纤维蛋白(PRF,Platelet-rich fibrin) 。血小板浓缩物质由血液提取,可释放多种生长因子,激活组织细胞再生,加速重建局部血供,可提供细胞生长支架结构且具有炎症调节作用,能有效促进脂肪液化创面加速愈合。笔者在本文中对血小板浓缩物质作用机制及其在脂肪液化创面的应用进展进行综述。 【关键词】 血小板浓缩物质;富血小板血浆;富血小板纤维蛋白;脂肪液化;创面愈合DOI:10.19593/j.issn.2095-0721.2019.01.025 Research Progress of the platelet concentrates therapy of Wound Fat Liquefaction LI Yu-hao 1, ZHOU Cai-jin 2, ZHANG Pei-hua * (Guangdong Medical University, Zhanjiang Guangdong 524000,China) [ABSTRACT] Wound fat liquefaction is caused by decreased blood supply of the wound subcutaneous adipose tissue or the vascular regeneration rate slowed down, resulting in local adipose cell degeneration and necrosis, resulting in delayed wound healing, even wound infection. Platelet concentrates material includes: Platelet concentrates, Platelet-rich plasma (PRP), Platelet-rich fibrin (PRF). Platelet concentrates is extracted from blood, which can release a variety of growth factors, activates tissue cell regeneration, accelerates the reconstruction of local blood supply, while providing cell growth scaffold structure and regulating inflammation. Platelet concentrates therapy can effectively promote fat liquefaction wound healing. In this paper, the author reviewed the basics of platelet concentrates and the clinical application of it in wound fat liquefaction. [KEY WORDS] Platelet concentrates; Platelet-rich plasma; Platelet-rich fibrin; Fat Liquefaction; Wound healing 为8.20%。脂肪液化目前已成为普外科、妇产科、骨科的常见术后并发症。吴阶平,裘法祖等在《黄家驷外科学》[2]中就指出:切口发生脂肪液化后如经久不愈则有利于细菌滋生导致感染,延长住院时间,加重患者心理及经济负担。在临床诊疗中,伤口脂肪液化应当引起医生的高度重视。然而我国对伤口脂肪液化的诊治尚无临床指南,目前常用治疗方式有:清创负压引流、光线治疗、高渗糖胰岛素治疗、湿性辅料治疗,血小板浓缩物质治疗,中药中医治疗等几大类[3]。血小浓缩物质作为新型创面 基金项目:广东省2016年科技发展专项资金(编号:2016A020214018) 第一作者:李昱昊(1990-),男,汉族,重庆市渝中区,整形外科硕士研究生; 通讯作者:张培华,男,广东省湛江市,广东医科大学,外科学教授,博士研究生导师,主要研究方向:干细胞与组织再生修复的临床转化研究;

血小板输注指南

血小板输注指南 英国血液学标准委员会(BCSH), 输血特别委员会(主席: Kelsey P) 工作组成员: Murphy MF (会议召集人), Brown M, Carryington P, Hall G,Jeffrey RR,Machin S, Taylor C&Thomas D。 特别委员会委员:Boulton F, Bruce M, Cohen H, Duguid J, Knowles SM,Murphy M F, Poole G和Williamson LM 尽管此指南中的建议和相关信息在印刷出版时被认为是真实准确的,但是不论作者或发行机构都对任何可能的错误或遗漏没有任何法律责任或义务。 1.方法 经常使用合适的关键词在数据库中进行文献检索,并对现有的专家组出版的指南(BCSH,1992;Schiffer等,2001),包括由英国血液学标准委员会在MedLine(联机医学文献分析和检索系统)和其(BCSH)之前出版的血小板输注指南和标准委员会的建议(国立卫生研究院标准委员会,1987;血小板输注标准会议,1998)进行了回顾性研究后,在基于以上文献检索、回顾性研究的结果和作者多年的血小板输注经验,起草了本指南。血小板输注指征部分系作者与BCSH的临床血液学特别委员会合作起草。本指南作者来自血小板输注治疗有关的各个专业,包括临床和实验血液学、儿科、外科、麻醉和危重监护以及护理。 2.背景 在过去的40年中,血小板输注治疗取得了明显的进展,但是在某些方面仍有争议,例如对预防性血小板输注。美国(国立卫生研究院标准委员会,1987;Schiffer,2001)和英国(BCSH,1992;血小板输注标准委员会,1998)付出了许多努力以期在血小板输注治疗的各方面,包括临床指征达成一致。尽管目前许多随机对照研究在本领域已经产生了有用的信息,但是由于缺少客观资料,基于客观证据的举荐受到了限制。 血小板的输注持续增长,和去年相比,英国2001~2002年度医院对浓缩血小板的需求(共215050成人剂量)增长了2.3%。浓缩血小板十分昂贵,其采集、制备、贮存和使用的进展仍以提高临床效果和减少副作用为目的。 本指南的目的是对医院中负责处方、使用和提供血小板输注的医疗、护理和技术人员给予血小板输注方面的指导。献血者的选择和浓缩血小板的制备在英国输血服务机构指南(英国输血服务机构/国立生物标准和控制研究院,2001)中已描述,不在本文中详细说明。

全自动血液成分分离机和传统手工法制备浓缩血小板的质量比较

■1526 ■吉林医学2018年8月第39卷第8期 ?临床经验? 全自动血液成分分离机和传统手工法制备浓缩血小板的 质量比较 安蓬蓬,李浩泷,刘春燕(天津市血液中心,天津300110) [摘要]目的:对比采用全自动血液成分分离机法和传统手工法分离得到的浓缩血小板的质量,比较两种制备 方法的优劣。方法:分别采用CompoMat G5全自动血液成分分离机(机器组)和手工法制备(手工组)浓缩血小板,各 10袋,然后检测两种浓缩血小板的容量、血小板含量和红细胞混入量等参数,并将结果进行比较与分析。结果:机器 组和手工组制备的浓缩血小板容量分别为(61. 716 7 ±5. 4〇2 0)m l和(66.02 0 ±8.26 0)m l,差异有统计学意义(尸< 0.01);血小板含量分别为(6.034 7 ±1.698 1) x l010个/袋和(5.533 6 ±1. 377 1) x l010个/袋,差异无统计学意义(尸> 0.05);红细胞混入量(x109个/袋)分别为0.851 7 ±0.336 9和1.760 0 ±0. 180 8,差异有显著统计学意义(P < 0.01)。结论:两种方法制备的浓缩血小板均符合G B18469 -2012《全血及成分血质量要求》,但通过实验结果的对比 和分析可以发现,全自动血液成分分离机制备的浓缩血小板质量和效率均优于传统手工法。 [关键词]全自动血液成分分离机;手工法;浓缩血小板 C o m p a r i s o n bet^veen the quality of platelets f r o m automatic a n d m a n u a l preparation metliods AN Peng-peng,LI Hao- long,LIU Chun-yan(Tianjin Blood Center,Tianjin300110, China) Abstract:Objective To compare the quality of the platelets respectively prepared by automatic tor and manual method so as t o compare the advantage and the disadvantages of the two methods.Metliod The platelets were prepared by automatic blood components separator and manual method,each group were 100 bags,the prepared platelets were measured on the capacity,platelets count,red blood cell count,these result obtained from different m and analyzed.Results The capacity(ml)of the platelets from the automatic group and the manual group were (61. 716 7 土 5.402 0) and (6 6. 025 0 ± 8.256 0) ,respectively(P< 0.01 );the platelets count(x1010//bag)were (6. 034 7 ± 1.698 1) and (5. 533 6 ± 1.377 1),respectively(P > 0.05 ) ;the red blood cell count(x 109//bag)were (0.851 7 ±0.336 9) and (1. 760 0 ± 0. 180 8 ), respectively(P< 0.01) .Conclusion A L L platelets in this research meet the criterion of G B 18469 - 2012. However,the quality and separation efficiency of platelets made by automatic blood component separator are obviously higher than those by manual method. K ey Wo r d s:Automatic blood components separator;Manual method;Platelets 随着血液制备自动化技术的不断发展,全自动血液分离 机已越来越多地被应用于浓缩血小板的制备过程中。我中心 于2016年12月引进了 15台CompoMat G5全自动血液成分分 离机,并于2017年4月正式投人使用。全自动血液分离机制 备浓缩血小板可以减少人为因素的影响,规范操作步骤,减轻 劳动强度,从而更好地保障血液产品的质量。我中心将C o m-poMat G5 全自动血液成分分离机与传统手工法进行分离效果 比较,现将结果报告如下。 1资料与方法 1.1血液来源:017年10月,采集本市街头无偿献血者血液 于C P D A五联袋中,共200袋,每袋容量为(400 ± 40)m l,要求 采血顺利,采血440 m l用时< 10 min,( 22 ± 2 )丈条件下保存,采后18 h内分离制备浓缩血小板。 1.2仪器与资料1. 2.1 仪器与设备:CompoMat G5全自动血液成分分离机, 费森尤斯卡比(中国)投资有限公司;X S- 800:全自动血液分 析仪,希森美康医用电子(上海)有限公司;贝克曼库尔特J6 -M I大容量冷冻离心机,美国贝克曼库尔特有限公司。 1.2.2主要耗材及试剂:一次性使用塑料血袋P-400P(四 川南格尔生物科技有限公司,批号:批170731);稀释液(希森 美康生物科技有限公司,批号:G7068);溶血剂(希森美康生物 科技有限公司,批号:A6014);全血质控物(希森美康生物科技 有限公司,批号:2680805)。 1.3制备方法及分组:将200袋全血分为两组,各100袋。机器组按照CompoMat G5全自动血液成分分离机使用说明使 用分离机制备浓缩血小板,手工组按照《血站技术操作规程》(2015版)使用传统手工法(白膜法)制备血小板。离心机程 序均为:第一次离心3 000 r/min,14 min,刹车档加速9减速 6;第二次离心800 r/min,10 min,刹车档加速9减速6;温度设

去白细胞混合浓缩血小板的制备和质量控制

去白细胞混合浓缩血小板的制备和质量控制 1 范围 本标准规定了去白细胞混合浓缩血小板的制备、质量控制、标识、标签、储存、运输要求。 本标准适用于去白细胞混合浓缩血小板的制备和质量控制。 2 规范性引用文件 下列文件对于本文件的应用是必不可少的。凡是注日期的引用文件,仅注日期的版本适用于本文件。凡是不注日期的引用文件,其最新版本(包括所有的修改单)适用于本文件。 GB 18467 献血者健康检查要求 GB 18469 全血及成分血质量要求 WS/T 203-2001 输血医学常用术语 WS 399 血液储存要求 WS/T 400 血液运输要求 WS/T 550 全血及成分血质量监测指南 3 术语和定义 WS/T 203-2001界定的以及下列术语和定义适用于本文件。 3.1 制备血小板的起始全血whole blood qualified for platelet concentrates preparation 符合制备浓缩血小板成分血质量要求的全血。 3.2 浓缩血小板 platelet concentrates 以单人份全血制备、质量达到规定要求的血小板悬液。 3.3 白膜层 buffy coat layer 全血经重离心后,自上而下分成明显可见的血浆部分和细胞部分,在上层血浆与下层红细胞之间形成的肉眼可见的灰白色细胞混合层,其主要包括比重在1.030~1.092之间的血小板、淋巴细胞、早幼粒细胞、单核细胞、网织红细胞、粒细胞、晚幼粒细胞、嗜碱性粒细胞和中性粒细胞等有形细胞成分。

3.4 白膜 buffy coat 将白膜层单独分离制备而成的成分血。 3.5 白膜法 buffy coat method 重离心全血,分离含适量血浆的白膜,再经轻离心分离出浓缩血小板的制备方法。 3.6 富血小板血浆法 platelet-rich plasma method 轻离心全血,自上而下分成富含血小板血浆和红细胞两部分,留取富含血小板血浆,重离心分出上层血浆,获得下层浓缩血小板的制备方法。 3.7 白膜汇集法 buffy coats pooling method 通过无菌接驳汇集多袋ABO同型含适量血浆的白膜或汇集多袋ABO同型白膜和其中一人份血浆,形成白膜和血浆的混合物,再经轻离心,分离出混合浓缩血小板的制备方法。3.8 单人份浓缩血小板汇集法 single-donor whole blood platelets pooling method 多袋ABO同型单人份浓缩血小板用无菌接驳的方法进行连接、汇集,制得混合浓缩血小板的制备方法。 3.9 白细胞滤除 leukocyte depletion 全血或成分血通过去白细胞滤器去除血液中白细胞的过程。 3.10 血小板成人治疗剂量 platelets adult therapy dosage 将输注至少2.5 ×1011个血小板界定为1个血小板成人治疗剂量。 3.11 去白细胞混合浓缩血小板 leukocyte-reduced pooled platelet concentrates 汇集多袋ABO及RhD同型浓缩血小板并完成白细胞滤除的血小板成分血。 4 制备 4.1 原理 利用血细胞的比重和各种血细胞的体积等因素的不同,通过离心使全血分层,将多个献血者的ABO及RhD同型的新鲜全血中大部分血小板汇集,悬浮于血浆,经白细胞滤除,制备成1个治疗剂量或0.5个治疗剂量,即为去白细胞混合浓缩血小板。 4.2 制备血小板起始全血的基本要求 4.2.1 全血应由符合GB18467的献血者捐献。

富血小板血浆

富血小板血浆(platelet-rich plasma, PRP)是通过离心的方法从自体血中提取出来的血 小板浓缩物。由于PRP可以促进骨和软组织的修复,且来源于自体,无免疫排斥,制 作简单,对机体损伤小,近十多年来,PRP已经被应用在多种学科,如骨科,口腔颌 面外科,心胸外科,神经外科,妇产科,眼科,耳鼻喉科,普通外科和整形美容科等。特别是在欧美国家,PRP应用已非常广泛。大量临床研究报道,应用PRP可以加快骨 折愈合,促进创面修复,减少术中麻醉药剂量,减少术中出血和术后伤口渗出,减轻 疼痛,减少术后并发症,缩短住院天数,促进术后功能恢复等[1-5] 。 PRP促进骨与软组织修复的主要原因在于血小板经活化后释放出的多种生长因子,目前发现的一共有30余种[6] ,如血小板源性生长因子(platelet-derived growth factor, PDGF),转化 生长因子-β(transforming growth factor-beta, TGF-β),胰岛素样生长因子(insulin-like growth factor, IGF),血管内皮生长因子(vascular endothelial growth factor, VEGF)和 表皮生长因子(epidermal growth factor, EGF)等。这些生长因子在骨与软组织的修复过程中起着重要的调控作用,经研究证实,这些生长因子可以加速基质干细胞(mesenchymal stem cell, MSC)的分化[7, 8],促进成骨细胞和成纤维细胞的增殖[9] ,加快纤维蛋白与细胞外基质的合成[10] 。除了以上的生长因子,PRP还含有高浓度 的白细胞,如中性粒细胞,单核细胞和淋巴细胞。这些白细胞在机体的炎症反应和感 染控制方面起着重要的作用。有体外研究发现,PRP可以抑制金黄色葡萄球菌(Staphylococcus aureus) 和大肠杆菌(Escherichia coli)的生长。特别是PRP对于甲氧西林敏感金黄色葡萄球菌(methicillin sensitive staphylococcus aureus,MSSA)的抑制作用,其效果与庆大霉素和苯唑西林相当[11] 。此抗菌作用与PRP中所含白细胞有一定相关性[12] 。其次,PRP的PH值为6.5-6.7,呈酸性。酸性的PRP本身对细菌生长有抑制作用。PRP还含有很多种抑菌蛋白,如血小板因子4(platelet factor 4, PF-4),活性调 节蛋白(regulated upon activation), RANTES,结缔组织活化肽3(connective tissue activating peptide 3, CTAP-3), 血小板碱性蛋白(platelet basic protein),胸腺素(thymosin beta-4, Tbeta-4),纤维蛋白肽B(fibrinopeptide B,FP-B),和纤维蛋白肽 A( fibrinopeptide A, FP-A)等[13] ,这些蛋白可以抑制细菌和真菌的生长。

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