荧光检测毛细管电泳法

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毛细管电泳-激光诱导荧光检测法分离检测谷胱甘肽及其构成氨基酸

毛细管电泳-激光诱导荧光检测法分离检测谷胱甘肽及其构成氨基酸

毛 细 管 电泳 。 激 光 诱 导 荧 光 检 测 法分 离检 测 谷 胱 甘 肽 及 其 构 成 氨 基 酸
王 宇飞 , 蔡元丽 , 林 夏 , 晏 瑾 , 李 晖 。
( 四川大学化学工程学院, 四川 成都 6 1 0 0 6 5 )
摘要 : 以4 - 氯- 7 一 硝基苯并_ 2 - 氧杂. 1 , 3 - 二唑 ( N B D ・ C 1 ) 为柱前衍 生试剂 , 建立 了一种毛细 管 电泳. 激光 诱导荧光 直接检测氧化型 和还 原型谷胱 甘肽及其构 成氨基酸 ( 谷 氨酸 、 半胱 氨酸和甘 氨酸 ) 的新方 法。经过 实验条件 的优化 , 采用 2 5 m mo l / L硼砂- 2 0 m m o l / L聚氧 乙烯 月桂醚 ( B 川- 3 5 ) - 5 %乙腈 ( p H 9 . 5 ) 的缓 冲体系 , 在柱温 为 2 5。 c 、 分 离 电压为 2 0 k V的条件下 , 压力进样 3 4 4 7 . 5 P a ( 0 . 5 p s i ) ×3 S , 五种 物质在 1 1 m i n内实 现高效基线分 离 。在该方法下 , 还原型谷胱甘肽 、 氧化 型谷 胱甘肽 、 谷氨 酸、 半胱 氨 酸和甘 氨酸 的线 性范 围分 别 为 : 1—5 O
o f o x i d a t i o n a n d r e d u c e d g l u t a t h i o n e, g l u t a mi c a c i d, c y s t e i n e nd a g l y c i n e a f t e r d e r i v a t i z a t i o n wi t h 4 - c h l o e- r 7 - n i t eb r e n z o f u r a z a n

毛细管电泳法

毛细管电泳法
原理
在毛细管中施加电场,带电粒子在电场的作用下产生迁移,由于迁移速度与粒 子所带电荷、半径、质量等因素有关,因此不同粒子在电场中产生不同的迁移 速度,从而实现分离。
发展历程
01
02
03
1980年代初期
毛细管电泳法由 Jorgenson和Lukacs首次 提出并实验验证。
1980年代中期
该技术逐渐成熟,被广泛 应用于生物、医药、环境 等领域。
饮用水安全
毛细管电泳法能够检测饮用水中 的消毒副产物、有机污染物等, 保障饮用水安全。
在食品检测领域的应用
食品添加剂分析
毛细管电泳法能够分离和检测食品中 的添加剂,如色素、防腐剂等,有助 于食品安全监管。
营养成分分析
毛细管电泳法能够快速分析食品中的 营养成分,如氨基酸、维生素等,有 助于食品质量控制和营养评价。
核酸分析
毛细管电泳法能够分离和检测核酸片段,用于基 因诊断、基因表达研究和法医学鉴定。
3
临床检验
毛细管电泳法可用于检测体液中的小分子代谢物, 如氨基酸、糖类等,辅助临床诊断。
在环境监测领域的应用
污染物分析
毛细管电泳法能够分离和检测水 体、土壤中的有害物质,如重金 属、农药残留等,有助于环境监 测和污染治理。
在化学分析领域的应用
有机物分析
毛细管电泳法能够分离和检测有机化合物,如药物、染料等 ,在药物研发、化工生产等领域有广泛应用。
金属离子分析
毛细管电泳法能够高灵敏度地检测金属离子,如铅、汞、镉 等,可用于地质、冶金和环境等领域的研究。
谢谢
THANKS
加样
将处理好的样品加入毛 细管中,注意控制加样
量。
施加电压
启动电源,施加适当的 电压,使带电粒子在电

毛细管电泳-紫外检测法测定

毛细管电泳-紫外检测法测定

用于清洗毛细管,防止 样品残留。
标记物
用于增强样品在紫外检 测器中的信号,提高检
测灵敏度。
实验设备
ቤተ መጻሕፍቲ ባይዱ
01
02
03
04
毛细管电泳仪
用于分离样品中的各组分,具 有高分辨率和高灵敏度。
紫外检测器
用于检测样品中特定组分的紫 外吸收光谱,从而确定组分的
性质和浓度。
洗脱泵
用于提供洗脱液,清洗毛细管 内的残留物。
毛细管电泳-紫外检测法的优缺点
高分离效率
毛细管电泳具有高柱效和低扩散 系数,能够实现高效分离。
微量样品需求
只需少量样品即可完成分析,适 用于珍贵样品的分析。
毛细管电泳-紫外检测法的优缺点
快速分析
分析时间短,适合高通量分析。
多种检测模式
可结合多种检测器,如紫外、荧光、质谱等,实现多组分同时检测。
毛细管电泳-紫外检测法的优缺点
图表展示
通过柱状图、折线图等形式展示实验结果,便于直观地比较不同样品之间的差异 。
结果分析
吸光度分析
根据实验数据,分析各样品在检测波长下的吸光度,探讨吸 光度与样品浓度之间的关系。
分离效果评估
对毛细管电泳分离后的各组分进行紫外检测,分析分离效果 ,包括峰形、分离度等。
结果比较与讨论
1 2 3
不同样品比较
05
结论
研究成果总结
毛细管电泳-紫外检测法是一种 高效、灵敏的分离分析方法, 适用于多种化合物的分离和检
测。
在本实验中,成功分离和检测 了多种目标化合物,包括有机 酸、氨基酸、肽类和蛋白质等

该方法具有较高的分离效率和 灵敏度,能够满足实际应用的 需求。

毛细管电泳法

毛细管电泳法
电极槽和毛细管内的溶液为缓冲液,可以加入有机溶剂作为改性剂,以及加入表面活性剂,称作运行缓冲液。 运行缓冲液使用前应脱气。电泳谱中各成分的出峰时间称迁移时间。胶束电动毛细管色谱中的胶束相当于液相色 谱的固定相,但它在毛细管内随电渗流迁移,故容量因子为无穷大的成分最终也随胶束流出。其他各种参数都与 液相色谱所用的相同。
此外,还有一类基于芯片的二维分离系统主要应用于蛋白质酶解物的分离分析。
除上述分离模式外,芯片自由流电泳也是芯片电泳分离蛋白质的重要方法。芯片自由流电泳是指在芯片中通 过外加电场使样品随缓冲液连续流动的同时沿电场方向进行电迁移,从而按照电泳淌度不同实现分离的电泳分离 模式。Raymond等采用芯片自由流电泳模式分离了人血清蛋白、缓激肽和核糖核酸酶A,其分离长度为3.1 cm,流 出时间为62 S。Kobayashi等采用自由流电泳的分离模式在一个体积为56.5 mm×35 mm×30 mm的微分离室 (60uL)中实现了持续的蛋白质分离,并用羟丙基甲基纤维素涂覆来抑制蛋白质吸附,在25 min内有效分离了细胞 色素C和肌红蛋白。最近,Kohl.heyer等H 3。制作了一种自由流等电聚焦分离蛋白质的玻璃芯片,成功地将人 血清白蛋白(pI=4.4)与等电聚焦标记物(pH 3和9)分离。
仪器要求
所用的仪器为毛细管电泳仪。正文中凡采用毛细管电泳法测定的品种,其所规定的测定参数,除分析模式、 检测方法(如紫外光吸收或荧光检测器的波长、电化学检测器的外加电位等)应按照该品种项下的规定外,其他参 数如毛细管内径、长度、缓冲液的pH值、浓度、改性剂添加量、运行电压或电流的大小、运行的时间长短、毛细 管的温度等,均可参考该品种项下规定的数据,根据所用仪器的条件和预试验的结果,进行必要的调整。
检测方法
毛细管电泳通常用到的检测方法有吸收光谱,荧光光谱,热镜,拉曼光谱,质谱和电化学方法。

毛细管电泳中常用的检测方法

毛细管电泳中常用的检测方法

毛细管电泳中常用的检测方法毛细管电泳中常用的检测方法毛细管电泳(C E ) 以其高效、快速的分离, 成为一种令人瞩目的分析手段。

为了便于热量散失和进行柱上检$lJ , 采用了极小内径的毛细管(≤50 umi.d.) , 这样允许进样量就很小(10 一9 g )。

如此小的进样量要求有高灵敏的检测方法, 才能进行定性、定量分析。

紫外吸收法:一般, 常用于C E 的检测器是市售的紫外和荧光检测器。

当采用紫外一可见吸收法时, 石英毛细管壁的内涂层常常用有机溶剂溶解或灼烧而刮去, 使出现一个“小窗口” , 作为柱上检测的流通池。

内径很小的毛细管使得流通池的长度也相应很小, 检测灵敏度相当有限, 尤其在生物样品分析中常常需要先行样品预富集然后再检测, 以提高灵敏度。

在使用长方形徽面的毛细管进行电泳分离分析时,柱上检测的光学流通池长度明显增大, 使检测灵敏度提高7 1 5 倍。

采用高能量的光源, 如氨灯、激光等, 可较大地提高检测灵敏度, 但费用较高, 又因可供选择使用的人射光波长范围较窄, 限制了它的应用。

荧光检测法:荧光检测的灵敏度比紫外吸收法高几个数量级。

对于有适当的激发荧光和发射荧光的供试品, 采用激光诱导荧光检测法和光电倍增管, 可使检测灵敏度大大提高, 而对于绝大多数无自然荧光的化合物, 则必须进行柱前或柱后衍生化, 才能进行荧光检测。

间接检测法:对供试品进行衍生化的操作繁琐, 且易引入误差, 对于被测浓度极低的生物样品更是如此。

于是, 间接检测法应运而生。

间接检测就是在电泳缓冲液中加入具有检测响应的检测剂, 如发色团、荧光物质等, 作为本底响应,以产生基线信号。

供试品进样后, 供试品离子与反电荷的检测剂离子形成离子对, 或置换了检测剂的同电荷离子, 分别产生正峰和负峰,使基线信号发生改变而被检测。

在间接荧光法中, 被分析物能吸收荧光辐射或使本底荧光淬灭, 本底信号因此降低或消失而进行检测。

这种方法要求供试品必须能吸收荧光或淬灭荧光。

B-raf基因突变检测试剂盒(PCR-毛细管电泳法)标准化操作流程

B-raf基因突变检测试剂盒(PCR-毛细管电泳法)标准化操作流程

B-raf基因突变检测试剂盒(荧光PCR-毛细管电泳法)标准化操作流程1、预期用途该产品用于定性检测确诊的结直肠癌患者石蜡包埋病理组织切片DNA的B-rafV600E 基因突变。

B-raf 基因是一种癌基因,编码一种丝/ 苏氨酸特异性激酶,是RAS/RAF/MEK/ERK/MAPK 通路重要的转导因子,参与调控细胞内多种生物学事件,如细胞生长、分化和凋亡等。

B-raf 基因位于7p34,长约190kb,转录mRNA 长2.5kb,编码783 氨基酸的蛋白,相对分子质量为94000-95000 Da。

研究表明,在多种人类恶性肿瘤中,如恶性黑色素瘤、结直肠癌、肺癌、甲状腺癌、肝癌及胰腺癌等均存在不同比例的B-raf 突变,B-raf 突变主要发生在Exon15 上的激活区的第1799 氨基酸上(T 突变为A),导致编码的氨基酸由谷氨酸变成缬氨酸(V600E),该突变能使B-raf 激酶活性提高,V600E 突变能模拟T598 和S601 两个位点磷酸化作用,使BRAF 蛋白激活。

近来研究表明,对于野生型Kras、但存在B-raf 基因V600E 突变患者,抗EGFR 单抗治疗无效。

2010 年版《NCCN 结直肠癌临床实践指南》中已明确指出“如K-ras 基因无突变时,需检测B-raf 基因突变,如果后者存在V600E突变,则不应该给予抗EGFR 单抗治疗。

”2、仪器配置要求移液器,振荡器,微型离心机,生物安全柜,高速冷冻离心机,定性PCR仪,荧光定量PCR仪(ABI7500,LightCycler® 480,MX3000P,CFX-96等),微量紫外分光光度计,基因分析仪(ABI3130,ABI3500DX)。

3、耗材要求无菌带滤芯吸头、吸水纸,离心管(1.5ml,0.5ml,0.2ml)、PCR反应管(配套荧光定量PCR仪型号)及无粉一次性乳胶手套,基因分析板。

4、责任人基因扩增实验室室长负责技术指导和质量监督。

毛细管电泳法

毛细管电泳法

毛细管电泳法简介毛细管电泳法是一种常用于分离和检测化学物质的分析技术。

它基于样品在电场作用下在毛细管中的迁移速度的差异,利用电泳现象进行分离。

该方法具有分离效果好、分析速度快、样品消耗少等优点,被广泛应用于生物、环境、食品等领域的分析研究。

原理毛细管电泳法的基本原理是利用电场作用下带电粒子在毛细管中的迁移速度差异分离物质。

当样品通过直径较小的毛细管时,由于电场的作用,带电物质会在毛细管中产生电泳迁移。

迁移速度快的物质会较早到达检测器位置,而迁移速度慢的物质则会滞留在毛细管中,从而实现了物质的分离。

毛细管电泳法主要利用了物质在电场、毛细管中的迁移速度与其电荷、粒径、溶剂性质等因素之间的关系。

其中,电荷是最重要的因素之一。

毛细管电泳法可分为两种类型:正交电泳和非正交电泳。

正交电泳主要用于带电物质的分离,而非正交电泳则用于非带电物质的分离。

操作步骤1. 准备工作在进行毛细管电泳实验之前,需要准备好以下实验器材和试剂:•毛细管电泳仪•毛细管•电解质缓冲液•样品溶液2. 设置电泳条件根据实验需要,设置好合适的电场强度、电解液pH值和缓冲液浓度等参数。

这些参数的选择对于实验结果的准确性和分离效果的好坏至关重要。

3. 毛细管填充将毛细管浸入缓冲液中,通过电力作用使缓冲液进入毛细管,直至毛细管完全填充。

4. 样品进样通过微量注射器将样品溶液缓慢注入毛细管,注意避免气泡的产生。

5. 开始电泳将毛细管两端插入正、负电极中,开启电源,开始电泳过程。

6. 结果分析根据实验需要,可以选择不同的检测方法进行结果分析,如紫外检测、荧光检测等。

应用领域毛细管电泳法广泛应用于生物、环境、食品等领域的分析研究。

具体的应用包括:1.蛋白质分析:毛细管电泳法可用于蛋白质的分离和定量分析,对于药物研发、生物学研究等具有重要意义。

2.DNA分析:毛细管电泳法可以用于DNA序列分析、基因突变检测、DNA测序等领域,对于遗传学研究、法医学等具有重要意义。

荧光检测毛细管电泳法

荧光检测毛细管电泳法

通过荧光检测毛细管电泳法快速灵敏地检测人体血浆中的亚硝酸盐的方法本文选自塔兰塔(Talanta),爱思唯尔(Elsevier)出版,纯分析化学期刊。

作者:安范舒普代尔,来自比利时鲁汶大学。

摘要:分析亚硝酸盐,NO指示剂在体内的产生,为研究NO在体内的合成提供了一个有用的工具。

通过其衍生反应和2、3二氨基萘(DAN)中一个快速、灵敏荧光-毛细管电泳法被发展来测定了人体血浆中的亚硝酸盐。

亚硝酸盐在人体血浆中很容易与DAN在酸性条件下反应得到收益率很高的荧光2,3-萘酚三唑(NAT)。

荧光检测是完成施达赛检测的最佳化方式,它允许一种等离子体样品的直接分析而不像大多数堆积样品的CE-UV方法。

乙腈可去除蛋白质。

短程注射和高压电(30千伏)可缩短分析时间。

用20mm,pH值为9.23的缓冲溶液可更好的分离。

NAT的分离在1.4分钟内完成,除蛋白等离子体样品以5s每50 mbar水动力地的速度被注射到60厘米×75微米的内部直径无涂层的玻璃毛细管里。

激发波长被选中为一个宽带滤波器(240-400nm),发射光在418nm被测量通过采用一个截止过滤器。

在2到500nm的范围内获得一个好的线性关系(R2=0.9975)。

在原始血浆样本中亚硝酸盐的检测极限是0.6nm, 比我们此前的CE-UV法低了750倍。

先进的荧光-毛细管电泳法相对于目前的荧光高效液相色谱法,具有更简单的系统和更低的成本优势,同时也很灵敏。

这个研究表明该方法测定人体血浆中亚硝酸盐在的浓度与频繁报道的一致。

1介绍研究表明,亚硝酸盐在生理和病理条件下有可能成为NO合成的一个标志,因此在实验和临床研究中可能作为一个生化参数。

但是到目前为止,还没有真正关于人体血浆中亚硝酸盐的浓度的共识。

具报告,一般水平的亚硝酸盐在人体血浆中“不能检测”的范围达到26微米。

人体血浆中亚硝酸盐的浓度最合理的范围是从100纳米到1微米,通过大多数研究者团体的测量最常报道的结果是从100纳米到200纳米。

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通过荧光检测毛细管电泳法快速灵敏地检测人体血浆中的亚硝酸盐的方法本文选自塔兰塔(Talanta),爱思唯尔(Elsevier)出版,纯分析化学期刊。

作者:安范舒普代尔,来自比利时鲁汶大学。

摘要:分析亚硝酸盐,NO指示剂在体内的产生,为研究NO在体内的合成提供了一个有用的工具。

通过其衍生反应和2、3二氨基萘(DAN)中一个快速、灵敏荧光-毛细管电泳法被发展来测定了人体血浆中的亚硝酸盐。

亚硝酸盐在人体血浆中很容易与DAN在酸性条件下反应得到收益率很高的荧光2,3-萘酚三唑(NAT)。

荧光检测是完成施达赛检测的最佳化方式,它允许一种等离子体样品的直接分析而不像大多数堆积样品的CE-UV方法。

乙腈可去除蛋白质。

短程注射和高压电(30千伏)可缩短分析时间。

用20mm,pH值为9.23的缓冲溶液可更好的分离。

NAT的分离在1.4分钟内完成,除蛋白等离子体样品以5s每50 mbar水动力地的速度被注射到60厘米×75微米的内部直径无涂层的玻璃毛细管里。

激发波长被选中为一个宽带滤波器(240-400nm),发射光在418nm被测量通过采用一个截止过滤器。

在2到500nm的范围内获得一个好的线性关系(R2=0.9975)。

在原始血浆样本中亚硝酸盐的检测极限是0.6nm, 比我们此前的CE-UV法低了750倍。

先进的荧光-毛细管电泳法相对于目前的荧光高效液相色谱法,具有更简单的系统和更低的成本优势,同时也很灵敏。

这个研究表明该方法测定人体血浆中亚硝酸盐在的浓度与频繁报道的一致。

1介绍研究表明,亚硝酸盐在生理和病理条件下有可能成为NO合成的一个标志,因此在实验和临床研究中可能作为一个生化参数。

但是到目前为止,还没有真正关于人体血浆中亚硝酸盐的浓度的共识。

具报告,一般水平的亚硝酸盐在人体血浆中“不能检测”的范围达到26微米。

人体血浆中亚硝酸盐的浓度最合理的范围是从100纳米到1微米,通过大多数研究者团体的测量最常报道的结果是从100纳米到200纳米。

因此,对于分析学科来说测定人体血浆中的亚硝酸浓度是一个挑战。

在样品配制的过程中,高灵敏度测定和一定的防范措施可以提高测量的精密度和准确度。

荧光法已广泛用于亚硝酸盐的灵敏分析。

这些方法涉及亚硝酸盐衍生化反应——由2,3-二氨基萘(DAN)合成2,3-萘酚三唑(NAT)。

有一些使用高效液相荧光检测的方法用在检测水、尿液和细胞培养液中的亚硝酸盐。

然而,大多数荧光高效液相色谱法对样品需要一个复杂的制备过程来去除一些小元件并需要一个保护柱。

这些额外的合成步骤可能会引入环境中杂质亚硝酸盐。

此外,事实上在碱性pH值为8.5~11.5的条件下NAT是稳定的且具有较高的荧光强度,与常态下稳定的反相高效液相色谱柱不兼容。

当流动相的pH值大于8时,普通的玻璃柱开始溶解且寿命缩短。

因此,在碱性条件下分析亚硝酸盐,需要特殊的色谱柱,如高聚物型色谱柱。

即便如此, 在每次使用高效液相色谱后仍需要一个严格的清洁过程。

由于其简单的样品制备及清洗过程,毛细管电泳在生化分析中独具优势。

虽然各种毛细管电泳-紫外法结合毛细管预浓缩已经达到令人满意的灵敏度,直今仍没有荧光毛细管电泳法用于分析亚硝酸盐。

此研究的目的是开发一个快速、简单和灵敏的荧光毛细管电泳法来测定人体血浆中亚硝酸盐。

2材料和方法2.1 药品所用试剂均为分析纯。

亚硝酸钠和十水四硼酸二钠购于默克公司(达姆施塔特,德国)。

氢氧化钠和乙腈购于费舍尔科技(拉夫堡大学,英国)。

二氨基萘和荧光素均购自于西格玛奥瑞奇化工(圣路易斯,密苏里州,美国)。

盐酸是购于美国VWR公司(鲁汶,比利时)。

所有的溶液均使用经过Milli-Q梯度系统(密理博,莫尔斯海姆,法国)纯净的蒸馏水配制。

用0.2微米的再生纤维素过滤器(华特门公司,达瑟尔,德国)过滤缓冲溶液。

2.2 样品制备从7名健康的男性志愿者(无饮食限制)中收集静脉血液样本,吸入离心管中分离锂-肝素和血浆,样品采集后用离心机分离血浆样品三分钟左右(3478g,10min,4℃)。

血浆被分离后立即在-80℃下冷冻直至下次分析时。

在室温下解冻后,加入100μL乙腈使100μL血浆样品脱去蛋白质,用微型高速离心机将14100g的混合物离心5分钟(艾本德,汉堡,德国)。

然后,加入5μL0.62M HCl将100μL上层清液的pH值调节到6并伴有衍生反应。

全部100μL样品由50μL反应混合液和50μL 0.1μM荧光素溶液组成且把它作为内标物,并直接用于注射。

这项研究已经通过当地的伦理委员会(鲁汶大学)的批准,项目得到批准。

2.3 含二氨基萘(DAN)的亚硝酸盐合成萘酚三唑(NAT)含DAN的亚硝酸盐的反应依据Misko等人的方法。

在酸性条件下DAN 与亚硝酸盐反应迅速,生成强荧光性的产物萘酚三唑(NAT),其在碱性溶液中是稳定的。

DAN的原液,将DNA溶于0.62 M 浓度为2mg/ml的HCl溶液并存放在-20℃的阴暗处。

DAN工作溶液(0.05mg/ml)由0.62 M的HCl 原液稀释40倍制备而成,存放在4℃下的阴暗处。

100μL亚硝酸盐标准液或者血浆样品用10μL的25℃下的DAN工作液放臵于恒温混匀仪(艾本德,汉堡,德国)中培养15min,之后加入1.4 M NaOH 溶液10μL。

2.4 仪器与毛细管电泳使用条件所有的实验均在一台HP3D毛细管电泳系统(安捷伦科技公司,布隆,德国)中进行,在-30千伏的电压下使用未涂层熔融石英毛细管(60 cm*75 μm 内径; 从荧光检测窗口有效长度43.5cm,16.5cm)来进行分离。

毛细管恒温在25℃,连接一个250B荧光检测器(光通量仪器,巴塞尔,瑞士)且作为外部探测器。

光源为氙气汞灯。

激发是使用垂直照射毛细管电泳系统中的玻璃毛细管的而产生。

发射光沿着毛细管是由于全反射,一个专利光源的聚焦,即连接到一个使用导光管的光电倍增器。

使用宽带滤波器(200-400nm)在418 nm的发射波长处激发,检测荧光强度。

在5mbar下,用水动力短程注射。

注射血浆样品之前,用0.1 M的NaOH和运行缓冲液分别冲洗毛细管(2min)。

使用万通691 pH计(万通,海利桑,瑞士)来测定硼酸盐缓冲液的pH 值。

3 结果与讨论3.1 荧光法和毛细管电泳法的发展鉴于先前的报道,荧光强度在碱性条件下增强,而在酸性条件下减弱,硼酸盐缓冲液在pH9~10的范围测试,保持荧光增益值为1100。

在增益值1100时,pH值增加对荧光强度变化没有显著增强的影响。

pH值增加也会导致电流的增加。

用于检测的硼酸盐缓冲液浓度分别为10、20和30mM。

结果,没有作pH较准的20mM硼酸盐缓冲液是对电流和离子强度的折中选择。

荧光检测器所检测的增益值从800到1100,最大获取强度设定在1100增益。

用418nm到450nm的发射波长来检测荧光强度,最大信号在418nm使用宽带(200 - 400nm)滤波器来激发。

使用250nM标准亚硝酸盐溶液和250nM加入标准亚硝酸盐的血液样品来做衍生化时间的测试,分别做1、5、10、15、20和30分钟。

反应时间保持在15分钟是因为,在这两种溶液下15分钟反应时间没有明显的产品强度增加。

短程注射相比一般注射,其分离时间几乎缩短了3倍。

短程注射和一般注射的血浆样本电泳图谱见图1。

图1:血浆样品包括137nM的亚硝酸盐以及50nM的内标物的电泳图谱。

A为短程注射,B为一般注射。

(DAN: 2,3-diaminonaphthalene; NAT: 2,3-naphthotriazole; I.S.: Internal standard).3.2 荧光毛细管电泳法的精密度与准确度,线性、检测和检量极限对三份去蛋白血浆样品中标准亚硝酸盐的加入 (0、2、20、40、200、400、500 nM)得到一个线性关系(R2=0.9975)。

用50nM的荧光素作内标物(I.S.)。

线性回归方程为 y=0.0084x+0.2031,S yx=0.01。

其中x表示加入去蛋白血浆样品中亚硝酸盐的浓度,而y表示相对峰面积(NAT的校正峰面积除以I.S.的校正峰面积),S yx代表y估算的标准偏差。

原始血浆中亚硝酸盐的检测极限和定量极限分别是0.6nM和2nM基于3和10的信噪比,在使用Argos 250 B型荧光检设臵最大的增益为1100。

用于毛细管电泳法分析亚硝酸盐较之前的荧光高效液相色谱的敏感性要好,但略逊于报道中0.01nM和0.27nM 的最低检测限。

这个方法的准确度取决于250nM的标准加入亚硝酸盐的血浆样本,表示为相对峰面积的相对标准偏差(%RSD)。

对于三天的重复注射同日间及异日间的精密度分别为0.2%和1.1%。

分析亚硝酸盐的方法是否准确,是由已知数量的亚硝酸钠评估的。

平均结果基于三个数据指向每一个被使用的浓度。

不同浓度的亚硝酸盐的回收率范围在85.3~112.3%内,表明该方法的精密度是可接受的(见表1)。

3.3 方法的应用该方法应用于检测人体血浆样本中亚硝酸盐的浓度。

七个年轻健康的男性志愿者的血浆样品被用来分析。

平均基底的亚硝酸盐浓度用这种方法测量是159.4±58.5nM,这符合常见的报道结果,即大多数研究小组用100nM 到200nM所测试的结果。

4 结论通过荧光毛细管电泳法快速灵敏的测定人体血浆中的亚硝酸盐的方法已经成功开发并得以验证。

相比现有的条件要求严格的高效液相色谱法,新的毛细管电泳法具有操作简单和低成本的优点。

该方法同时可用于检测和量化其他生物系统中的亚硝酸盐,亦可作为一个有用的工具来探索NO的合成在一般正常和病变过程中的作用。

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