毛细管电泳中常用的检测方法
毛细管电泳中常用的检测方法
毛细管电泳(C E ) 以其高效、快速的分离, 成为一种令人瞩目的分析手段。为了便于热量散失和进行柱上检$lJ , 采用了极小内径的毛细管(≤50 umi.d.) , 这样允许进样量就很小(10 一9 g )。如此小的进样量要求有高灵敏的检测方法, 才能进行定性、定量分析。
紫外吸收法：
一般, 常用于C E 的检测器是市售的紫外 和荧光检测器。当采用紫外一可见吸收法时, 石英毛细管壁的内涂层常常用有机溶剂溶解或灼烧而刮去, 使出现一个“小窗口” , 作为柱上检测的流通池。内径很小的毛细管使得流通池的长度也相应很小, 检测灵敏度相当有限, 尤其在生物样品分析中常常需要先行样品预富集然后再检测, 以提高灵敏度。在使用长方形徽面的毛细管进行电泳分离分析时,柱上检测的光学流通池长度明显增大, 使检测灵敏度提高7 1 5 倍。采用高能量的光源, 如氨灯、激光等, 可较大地提高检测灵敏度, 但费用较高, 又因可供选择使用的人射光波长范围较窄, 限制了它的应用。
荧光检测法：
荧光检测的灵敏度比紫外吸收法高几个数量级。对于有适当的激发荧光和发射荧光的供试品, 采用激光诱导荧光检测法和光电倍增管, 可使检测灵敏度大大提高, 而对于绝大多数无自然荧光的化合物, 则必须进行柱前或柱后衍生化, 才能进行荧光检测。
间接检测法：
对供试品进行衍生化的操作繁琐, 且易引入误差, 对于被测浓度极低的生物样品更是如此。于是, 间接检测法应运而生。间接检测就是在电泳缓冲液中加入具有检测响应的检测剂, 如发色团、荧光物质等, 作为本底响应,以产生基线信号。供试品进样后, 供试品离子与反电荷的检测剂离子形成离子对, 或置换了检测剂的同电荷离子, 分别产生正峰和负峰,使基线信号发生改变而被检测。在间接荧光法中, 被分析物能吸收荧光辐射或使本底荧光淬灭, 本底信号因此降低或消失而进行检测。这种方法要求供试品必须能吸收荧光或淬灭荧光。
在间接检测法中, 即或存在着相对大量的本底检测剂, 痕量的供试物也能与之从容地充分反应, 产生检测信号, 从而获得较为理想的灵敏度。应该指出的是,
毛细管直径、光源、检测剂的固有性质等, 都将对间接检测结果产生影响
电化学检测法：
电化学检测器的灵敏度高、选择性好, 但由于超微电极的制做和柱后检测单元的设计较困难, 使其应用受到了限制。W al lin g fo rd 等巧妙地设计了一个毛细管区带电泳(c a p illar yZ o n e ele c tr o ph o r e sis , C z E ) 的在线电化学检测系统, 把C Z E 的高效分离和电化学检测的高灵敏度结合起来, 实现了在单个神经细胞水平上的测定。
化学发光法：
C as p e rs o n 用化学发光法检测电泳凝胶中的D N A 段, 检测量可低至1.1
x 10-12 g。以结合了辣根过氧化酶的亲合素对生物素化的D N A 进行亲合性标记,
当此D N A 通过浸泡在过氧化氢和苯巴比妥混合溶液中的电泳凝胶时, 辣根过氧化酶催化过氧化氢还原成水, 释放出的能量转移给化学发光剂苯巴比妥, 激发态的苯巴比妥返回基态时发射出的光信号可被照相底片所记录, 进行检测。化学发光法具有灵敏度高、线性范围宽、反应速度快、选择性好等特点, 因检测器不需光源和单色器,消除了光源不稳定和杂散光的影响, 因此灵敏度比荧光检测法还要高。
由于采用了内径极小的毛细管, 相应地也给化合物定性鉴别带来了困难, 要使极小的样品量足够于进行定性鉴定, 可以用高灵敏的光二极管阵列检测器获得供试品的吸收光谱。
C E 与M S 联用法：
将C E 与高灵敏度、高专属性的M S 联用是一种强有力的分离检测手段。目前主要有两种接口: 电喷雾离子化( electrosprayionizatio n , ESI) 接口和同轴连续流动(coaxial continuous 一flow , CCE ) 接口, 已应用于小分子或大分子复杂供试品的分离分析。Reinhoud 运用静止和扫描的阵列检测的M S 法, 检测了β一内啡呔的碎片, 最低检测限可达2 一5fmol。Moseley 采用同轴连续流动快原子轰击接口, 以CZE 一MS 联用, 获得了样品单分子离子的质谱图。六种肽的碎片的检测限可达14 一1 5 0 fm o l。有人报道C E 与快原子轰击质谱联用时, 阵列质量检测系统与常规的电子放大器检测系统相比,可使灵敏度提高10 一10 0 倍,
如将C E 与M S一M S 串联使用, 则可获得更为准确和详尽的供试品质量和结构信息。
综上所述, 许多检测方法均可用于C E,由于C E 检测要求极高的灵敏度, 灵敏度较高的检测法, 如激光诱导荧光检测法、电化学检测法、化学发光法、M S 法等有较大的发展前景。同时, 有些检测法的应用较为成熟, 如紫外吸收法等, 应扬长补短, 充分发挥各自的作川。此外, 应重视操作简单、灵敏度好的间接检测法。
毛细管技术
基础理论
双电层
双电层是指两相之间的分离表面由相对固定和游离的两部分离子组成的。
双电层是与表面异号的离子层，凡是浸没在液体中的界面都会产生双电层。在毛细管电泳中，无论是带电粒子的表面还是毛细管管壁的表面都有双电层。
Zeta 电势
电介质溶液中，任何带电粒子都可被看成是一个双电层系统的一部分，离子自身的电荷被异号的带电离子中和，这些异号离子中有一些被不可逆的吸附到离子上，而另一些则游离在附近，并扩散到电介质中进行离子交换。“固定”离子有一个切平面，它和离得最近的离子之间的电势则被称之为离子的Zeta 电势。
石英材质的毛细管是毛细管电泳中最常使用的毛细管，管子内表面在pH>3 情况下带负电，管子与溶液的界面上形成大小相等符号相反的电荷层，即为双电层。当管子内表面与溶液接触时，会形成紧贴内表面的和游离的两部分离子，其中第一部分又称之为Stern 层，第二层为扩散层。扩散层中游离离子的电荷密度随着和表面距离的增大而急剧减小。在Stern
层和扩散层起点的边界层之间的电势称之为管壁的Zeta 电势。典型值大体在0-100 mV 之间，Zeta 电势的值随距离增大按指数衰减，使其衰减一个指数单位所需的距离称之为双电层的厚度（δ）。熔硅表面的Zeta 电势与它表面上的电荷数及双电层厚度有关，而这些又受到离子的性质、缓冲溶液pH 值、缓冲溶液中阳离子和熔硅表面间的平衡等因素的影响。
淌度、绝对淌度和有效淌度
带电粒子在直流电场作用下于一定介质（溶剂）中所发生的定向运动称为电泳。单位电场下的电泳速度称为淌度。在无限稀释溶液中（稀溶液数据外推）测得的淌度称为绝对淌度。
电场中带电离子运动除了受到电场力的作用外，还会受到溶剂阻力的作用。一定时间后，两种力的作用就会达到平衡，此时离子作匀速运动，电泳进入稳态。实际溶液的活度不同，特别是酸碱度的不同，所以样品分子的离解度不同，电荷也将发生变化，这时的淌度可称为有效电泳淌度。一般来说，离子所带电荷越多、离解度越大、体积越小， 电泳速度就越快。 电渗、电渗流和表观淌度 电渗是推动样品迁移的另一种重要动力。所谓电渗是指毛细管中的溶剂因轴向直流电场作用而发生的定向流动。电渗是由定域电荷引起。定域电荷是指牢固结合在管壁上、在电场作用下不能迁移的离子或带电基团。在定域电荷吸引溶液中的反号离子并与其构成的双电层，致使溶剂在电场作用（以及碰撞作用）下整体定向移动而形成电渗流（毛细管中的电渗流为平头塞状）。
氯化胆碱含量的检测方法
氯化胆碱含量的检测方法
氯化胆碱含量的检测方法可以通过以下几种常用方法进行：
1. 高效液相色谱法（HPLC）：使用高效液相色谱仪进行分析，常用色谱柱为反相C18柱，流动相为甲醇和水的混合物，检测波长为230-270nm。
2. 毛细管电泳法（CE）：利用毛细管电泳仪进行分析，使用芳香醇作为外标物，运行缓冲液为硼酸-牛磺酸缓冲液，检测波长为甲氧基化氯化胆碱的220nm。
3. 气相色谱法（GC）：氯化胆碱经酯化后，使用气相色谱仪进行分析，常用色谱柱为聚硅氧烷柱，检测器为火焰离子化检测器。
4. 质谱法（MS）：将氯化胆碱溶液进行电喷雾或化学电离后，通过质谱仪对其荧光进行检测和分析。
以上方法可以根据实验室设备和分析要求选择合适的方法进行氯化胆碱含量的测定。
CESDS检测方法
CESDS检测方法
附录XX 单抗纯度测定方法-CE-SDS毛细管电泳（还原和非还原）
本法系采用十二烷基硫酸钠毛细管电泳（CE-SDS）紫外检测方法，在还原和非还原条件下，依据分子量大小，定量测定重组单抗产品的纯度。
参照毛细管电泳法（附录V G）测定。
1. 毛细管电泳系统
（1）检测器：紫外检测器，波长：214 nm。
（2）毛细管：非涂层-熔融石英毛细管（内径50μm），切割至总长为31 cm、有效长度为21 cm。
（3）孔塞大小: 8 (100×800 μm)
2. 试剂
（1）SDS样品缓冲液：含1% SDS的0.1M Tris-HCl溶液, pH
9.0。
（2）SDS 凝胶分离缓冲液：含0.2% SDS的缓冲液（pH8.0），含有适当的亲水性聚合物作为分子筛。
（3）0.1 N盐酸溶液
（4）0.1 N氢氧化钠溶液
（5）纯的2-巯基乙醇
（6）烷基化溶液：0.8 M的碘乙酰胺水溶液, 如称取约74 mg 碘乙酰胺，加入500μL超纯水溶解，新鲜制备，避免光照。
（7）参比品溶液：终浓度1 mg/mL。
3. 供试品处理：
（1）供试品溶液制备：用SDS样品缓冲液将供试品稀释至1mg/mL。样品缓冲液以相同稀释倍数稀释，为空白对照。
（2）非还原供试品溶液制备：取供试品溶液（1mg/ml）95μL，加入0.8 M 碘乙酰胺水溶液5 μL ，涡旋混匀。取空白对照95μL，加入0.8 M碘乙酰胺水溶液5 μL，涡旋混匀，为非还原空白对照。
（3）还原供试品溶液制备：取供试品溶液（1mg/ml）95μL，加入2-巯基乙醇溶液5 μL ，涡旋混匀。取空白试剂95μL，加入2-巯基乙醇溶液5 μL ，涡旋混匀，为还原空白对照。
将供试品溶液和空白对照在68?C -7 2?C孵育，非还原供试品溶液孵育5min，
还原供试品溶液孵育15min 。冷却到室温后6,000 转/分离心1分钟。从样品管中分别取出75μL至样品瓶中，立即进行分析。
毛细管电泳及其应用
现代实验技术讲义 基础医学99 丁威
- 1 - Ⅰ、毛细管电泳及其应用
The Application of Capillary Electrophoresis （CE）
一、毛细管电泳的概述：毛细管电泳又称高效毛细管电泳，它是在熔融的石英毛细管（内径为25~100m）中进行
电泳，其管内填充缓冲液或凝胶，是近年来进展最快的分析方法之一。毛细管电泳是电泳技术和现代微柱分离
相结合的产物，它具有效率更高、速度更快、样品和试剂消耗量特少的特性。
毛细管电泳仪的基本结构：
1、 高压电极槽与进样机构 2、填灌清洗机构 3、毛细管 4、检测器
5、铂丝电极 6、低压电极槽 7、恒温机构 8、记录/数据处理
毛细管的结构：毛细管电泳通常使用内径为25~100μm的弹性（聚酰亚胺）涂层熔融石英管。
毛细管的特点是：容积小；侧面/截面积大而散热快、可承受高电场；可使用自由溶液、凝胶等为支持介质；在
溶液介质下能产生平面形状的电渗流。
二、毛细管电泳的基本原理：
毛细管电泳是以高压电场（30kV）为驱动力，以毛细管为分离通道。其管内填充了缓冲液或凝胶，根据样
品中各组分之间淌度和分配的差异而实现分离的一类液相分离技术。
在电泳过程中，毛细管两端插入电极液，此电极液通常与管中的缓冲液一致。正负电极连接至高电压装置，
进样时样品盘移动，使毛细管的进样端及此端的电极准确插入样品管中，给予一定电场或压力后，样品被吸入
毛细管内，然后再将毛细管移至电极液中开始电泳。
在毛细管电泳中，为了维持电荷平衡，溶液中的正离子吸附至石英表面形成双电子层，当在毛细管两端施
加电压后，这层正离子趋向负极移动，并带动毛细管中的溶液以液流形式移向负极（电渗） 。
由于毛细管的表面积与体积比大，加上电泳时使用了高压，电渗在毛细管电泳中具有两大特点：液体沿着
毛细管壁均匀流动，其前沿是平的；携带不同电荷的分子朝一个方向移动，中性分子也能随着电渗一起移动而
毛细管电泳的基本原理及应用
毛细管电泳的基本原理及应用
摘要：毛细管电泳法是以弹性石英毛细管为分离通道，以高压直流电场为驱动力，依据样品中各组分之间淌度和分配行为上的差异而实现分离的电泳分离分析方法。该技术可分析的成分小至有机离子、大至生物大分子如蛋白质、核酸等。可用于分析多种体液样本如血清或血浆、尿、脑脊液及唾液等，比HPLC分析高效、快速、微量。
关键词：毛细管电泳 原理 分离模式 应用
1概述
毛细管电泳 (Caillary Electrophoresis)简称 CE，是一类以毛细管为分离通道，以高压直流场为驱动力的新型液相分离分析技术。CE的历史可以追溯到
1967年瑞典Hjerten最先提出在直径为3mm的毛细管中做自由溶液的区带电泳(Capillary Zone Electro-phoresis，CZE)。但他没有完全克服传统电泳的弊端[1]。现在所说的毛细管电泳(CE)是由Jorgenson和Lukacs在1981年首先提出，他们使用了75mm的毛细管柱，用荧光检测器对多种组分实现了分离。1984年Terabe将胶束引入毛细管电泳，开创了毛细管电泳的重要分支: 胶束电动毛细管色谱(MEKC)。1987年Hjerten等把传统的等电聚焦过程转移到毛细管内进行。同年，Cohen 发表了毛细管凝胶电泳的工作。近年来，将液相色谱的固定相引入毛细管电泳中，又发展了电色谱，扩大了电泳的应用范围。
毛细管电泳和高效液相色谱（HPLC）一样，同是液相分离技术，因此在很大程度上HPCE与HPLC可以互为补充，但是无论从效率、速度、样品用量和成本来说，毛细管电泳都显示了一定的优势毛细管电泳（C E） 除了比其它色谱分离分析方法具有效率更高、速度更快、样品和试剂耗量更少、应用面同样广泛等优点外，其仪器结构也比高效液相色谱（HPLC）简单。 C E只需高压直流电源、 进样装置、 毛细管和检测器。
毛细管电泳具有分析速度快、分离效率高、试验成本低、消耗少、操作简便等特点，因此广泛应用于分子生物学、医学、药学、材料学以及与化学有关的化工、环保、食品、饮料等各个领域[2]。
检测酶的活性的方法
检测酶的活性的方法
酶活性是指酶分子在特定条件下催化底物转化的速率。酶活性的研究对于深入理解生化过程、疾病发生机制以及药物开发具有重要意义。本文将介绍酶活性检测的一些常用方法。
1. p-Nitrophenyl Phosphate（pNPP）法：
pNPP法是一种常用的颜色反应法，适用于检测酸性和碱性磷酸酶以及碱性酮糖酸酶的活性。该方法的原理是将酶催化底物pNPP水解为p-nitrophenol（黄色）和磷酸，利用p-nitrophenol的比色特性（pH 10时吸光度λ=405 nm），通过检测吸光度的变化来间接测定酶活性。
2. 毛细管电泳法：
毛细管电泳法（Capillary Electrophoresis, CE）是利用酶对底物的催化作用导致电泳迁移率发生变化的原理来检测酶活性。该方法具有高灵敏度、高分辨率、快速分析等优点。一般通过分离、富集和检测等步骤来实现。
3. 酶标记法（Enzyme-Linked Immunosorbent Assay, ELISA）：
ELISA是一种常用的酶标记技术，适用于定量检测酶活性。该方法的原理是利用酶标记的抗体与底物结合后，通过酶对底物的催化作用产生信号。常用的酶标记有辣根过氧化物酶（Horseradish Peroxidase, HRP）和碱性磷酸酶等。
4. 荧光检测法： 荧光检测法是利用酶对底物的催化作用改变溶液中荧光分子的性质来实现酶活性的检测。其中，常用的荧光标记物有荧光素（Fluorescein）、羧酮荧光素（Tetramethylrhodamine, TAMRA）等。通过测量荧光的强度和寿命来反映酶活性。
5. 放射性同位素法：
放射性同位素法是一种高灵敏度的检测方法，利用酶对标记同位素底物的催化作用来测定酶活性。常用的标记同位素有^14C、^32P、^3H等。通过测定样品中放射性荧光的强度来反映酶活性。
以上仅介绍了一小部分常用的酶活性检测方法，每种方法都有其特点和适用范围。在具体实验中，应结合所研究的酶的特性以及实验条件的要求选择合适的方法。此外，需要注意的是，不同的酶对底物的催化作用可能存在差异性，因此在选择检测方法时要结合酶的特性进行调整和优化。
分析化学毛细管电泳法
分析化学毛细管电泳法
第二十章毛细管电泳法
电泳(Capillary Electrophoresis，CE)是电介质中带电粒子在电场作用下以不同的速度向电荷相反方向迁移的现象，利用这种现象对化学组分进行分离分析的技术称为电泳技术。电泳作为一种技术出现，已有近百年的历史，但真正被视为一种在生物化学中有重要意义的技术，是由1937年A.Tiselius首先提出，他利用电泳技术第一次从人的血清中分离出白蛋白、a球蛋白、b球蛋白和g球蛋白。A.Tiselius对电泳技术的贡献，使他获得了1948年诺贝尔奖。
传统电泳最大的局限是难以克服由高电压引起的焦耳热，1967年
Hjerten最先提出在直径为3mm的毛细管中做自由溶液的区带电泳(Capillary Zone Electro-phoresis，CZE)。但他没有完全克服传统电泳的弊端。现在所说的毛细管电泳(CE)是由Jorgenson和Lukacs在1981年首先提出，他们使用了75mm的毛细管柱，用荧光检测器对多种组分实现了分离。1984年Terabe将胶束引入毛细管电泳，开创了毛细管电泳的重要分支: 胶束电动毛细管色谱(MEKC)。1987年Hjerten等把传统的等电聚焦过程转移到毛细管内进行。同年，Cohen 发表了毛细管凝胶电泳的工作。近年来，将液相色谱的固定相引入毛细管电泳中，又发展了电色谱，扩大了电泳的应用范围。
毛细管电泳在技术上采取了两项重要改进：
1、采用了几十微米小内径的毛细管；
2、采用了高达数千伏的电压。
由于毛细管内径小，表面积和体积的比值大，易于散热，因此可减少焦耳热的产生，可采用电压电场，电压升高，电场推动力大，可进一步使柱径变小，柱长增加，柱效增加，理论塔板数高达几十万块/米。
第一节毛细管电泳基础理论
一、电渗和电渗流
毛细管电泳所用的石英毛细管柱，在pH>3的情况下，其内表面带负电，和缓冲液接触时形成双电层，在高压电场的作用下，形成双电层一侧的缓冲液由于带正电荷而向负极方向移动形成电渗流。同时，在缓冲液中，带电粒子在电场的作用下，以不同的速度向其所带电荷极性相反方向移动，形成电泳，电泳流速度即电泳淌度。带电粒子在毛细管缓冲液中的迁移速度等于电泳淌度和电渗流的矢量和。各种粒子由于所带电荷多少、质量、体积以及形状
毛细管电泳—电化学发光技术
毛细管电泳—电化学发光技术
毛细管电泳—电化学发光技术综合了毛细管电泳（CE）和电化学发光（ECL）两方面优点，
利用不同粒子在毛细管中迁移速率不同，到达电化学发光检测器的时间不同，光谱峰出现的
时间也不同而使各组分得以分离。目前CE-ECL广泛应用于各领域，在分析科学领域的地位
日趋上升。 1在生命科学领域的应用
在DNA分析方面:CZE和MECC用来分离碱基核苷酸等。CE也可用于点突变测定用单链构
象多态性分析（SSCP）和限制片段长度多态性分析（RFLP）等。如，Kyupers等用毛细管电
泳法对14号和8号染色体进行RFLP分析，检测出基因的突变（二染色体基因的交换）并用
于诊断淋巴瘤。而Motmas等却利用ECL和PCR技术相结合对人T细胞中肿瘤坏死因子（TNF-
α），干扰素-γ(IFN-γ)和白细胞介素-2(IL-2)的水平进行了定量。
在免疫分析方面:TAO.L用CE技术在PH=8.0的缓冲溶液中用5µmd×8cm的毛细管在
4000V/cm的高压下对胰岛素进行了分析，时间不到一秒。盂凡华等用ECL免疫法测定甲胎
蛋白，最低检测浓度为0.8g/L,准确度和精密度均优于传统的酶联免疫法。Forest用IECL
法测定了癌胚抗原CEA和PAS等。
分别用CE、ECL法对生命科学领域中DNA、免疫系统、核酸成分及蛋白质的分析报道甚
多，同一种物质的分析也有分别用两种方法进行的，而综合用CE-ECL法的却很少。但是，
Mei-Tsu chiang已经用CE-ECL检测了叔胺和氨基酸，其中包括TPrA,TEA,脯氨酸,组氨酸,
羟基脯氨酸和色胺基酸.这说明CE-ECL将是生命科学领域的一大应用趋势。 2在药物分析和临床医学方面的应用
目前, CE-ECL在医药领域趋于成熟,已经分别用于几百种药物及各种剂型中主要成分分
析,相关杂质检测、纯度检测及定性鉴别等.
Peter Mikus等对肝磷脂的特性分析表明CZE对原料中肝磷脂的定性、定量是很可靠的
CE-SDS检测方法
附录XX 单抗纯度测定方法-CE-SDS毛细管电泳（还原和非还原） 本法系采用十二烷基硫酸钠毛细管电泳（CE-SDS）紫外检测方法，在还原和非还原条件下，依据分子量大小，定量测定重组单抗产品的纯度。 参照毛细管电泳法（附录V G）测定。 1. 毛细管电泳系统 （1）检测器：紫外检测器，波长：214 nm。 （2）毛细管：非涂层-熔融石英毛细管（内径50μm），切割至总长为31 cm、有效长度为21 cm。 （3）孔塞大小: 8 (100×800 m) 2. 试剂 （1）SDS样品缓冲液：含1% SDS的0.1M Tris-HCl溶液, pH 9.0。 （2）SDS 凝胶分离缓冲液：含0.2% SDS的缓冲液（pH8.0），含有适当的亲水性聚合物作为分子筛。 （3）0.1 N盐酸溶液 （4）0.1 N氢氧化钠溶液 （5）纯的2-巯基乙醇 （6）烷基化溶液：0.8 M的碘乙酰胺水溶液, 如称取约74 mg 碘乙酰胺，加入500µL超纯水溶解，新鲜制备，避免光照。 （7）参比品溶液：终浓度1 mg/mL。 3. 供试品处理： （1）供试品溶液制备：用SDS样品缓冲液将供试品稀释至1mg/mL。样品缓冲液以相同稀释倍数稀释，为空白对照。 （2）非还原供试品溶液制备：取供试品溶液（1mg/ml）95µL，加入0.8 M碘乙酰胺水溶液5 µL ，涡旋混匀。取空白对照95µL，加入0.8 M碘乙酰胺水溶液5 µL，涡旋混匀，为非还原空白对照。 （3）还原供试品溶液制备：取供试品溶液（1mg/ml）95µL，加入2-巯基乙醇溶液5 µL ，涡旋混匀。取空白试剂95µL，加入2-巯基乙醇溶液5 µL ，涡旋混匀，为还原空白对照。 将供试品溶液和空白对照在68C -7 2C孵育，非还原供试品溶液孵育5min，
还原供试品溶液孵育15min 。冷却到室温后6,000 转/分离心1分钟。 从样品管中分别取出75µL至样品瓶中，立即进行分析。 4. 样品分析 毛细管的预处理: 0.1 N氢氧化钠溶液在60 psi压力下冲洗3分钟，然后用0.1 N 盐酸溶液在60 psi压力下冲洗2分钟，最后用纯水在70 psi压力下冲洗1分钟。每次运行前应进行。 毛细管的预填充：SDS 凝胶分离缓冲液在50 psi压力下冲洗15分钟。每次运行前应进行。 样品进样：10kV反相极性电动进样。还原样品进样30 秒；非还原样品进样40秒。 分离：15 kV 下运行40分钟，反相极性。 样品室温度：18C -22C 毛细管温度：18C -22C 进样顺序：参比品、样品、参比品、空白。 5. 系统适应性 （1）还原条件的系统适应性要求： 电泳图谱：参比品溶液的电泳图谱应与提供的典型电泳图谱相一致。 分离度：糖基化重链和非糖基化重链能够明显的分辨（分离度根据实际测定数据设定）。 参比品非糖基化重链占总重链的百分比：以非糖基化重链的修正峰面积占总重链的修正峰面积的百分比计算。参比品溶液中非糖基化重链占总重链的百分比应在指定范围内（根据实际测定数据设定）。 迁移时间：两针参比品重链迁移时间差 1.0分。 空白：空白溶液中应无干扰峰。 （2）非还原条件的系统适应性要求： 电泳图谱：参比品溶液的电泳图谱应与提供的典型电泳图谱相一致。 分离度： IgG主峰与片段的分离度根据实际测定数据设定。 参比品主峰百分比：以主峰的修正峰面积占总修正峰面积的百分比计算。系统适应性溶液主峰的相对百分含量应在指定范围内。
蛋白质等电点测定 毛细管电泳
百泰派克生物科技
蛋白质等电点测定 毛细管电泳
蛋白质表面存在一些侧链离子基团，如氨基、羧基、酚基、巯基等酸碱性基团，因此蛋白质和氨基酸一样本身带有净电荷。在不同pH的溶液中解离所带的正负电荷不同，当蛋白质解离的正负电荷相等时，这时的pH值就称为蛋白的等电点（isoelectric point，pI）。蛋白质的等电点与其空间结构有关，因此对于某一特定蛋白质来说其等电点也是固定的。
当蛋白质处于与其等电点相同pH的溶液中时，在该溶液中的溶解度最小，可以从溶液中沉淀出来，故蛋白质等电点常用于蛋白质的分离和提纯。常用的蛋白质等电点测定方法主要有传统的沉淀法、分光光度法和等电聚焦法等，基于毛细管电泳的等电聚焦法凭借其耗时短、精确度高以及样本用量少等优点已成为等电点测定的强有力工具。毛细管等电聚焦法利用蛋白质在等电点时净电荷为零的原理将待测蛋白质在特殊的缓冲液中进行聚丙烯凝胶电泳，这种特殊的缓冲液为两性电解质，可以在凝胶内形成连续的pH梯度，当电泳完毕时，蛋白质迁移到的位置对应的pH就是该蛋白质的等电点。
百泰派克生物科技基于毛细导管等电聚焦（cIEF）提供蛋白等电点的测定服务技术包裹，可对多种氨基酸、多肽、重组蛋白、酶类、单克隆抗体等样品的等电点进行精确测定，欢迎免费咨询。