微生物标本采集规范(1)
微生物标本采集规范
• 2、下呼吸道标本
（1）自然咳痰法 以晨痰为佳。用清水反复漱口， 用力咳出呼吸道深部的痰，痰液直接吐入无菌容 器中，尽快送检。否则有的细菌（如肺炎链球菌、 流感嗜血杆菌）在外界可能死亡。不能及时送检 的标本，室温保存≤2h。要求采到肺深部的痰液， 不要唾液。
• （2）诱导痰：在医护人员指导下，用3 NaCL诱导咳 出痰液，用于结核分枝杆菌和肺孢子菌检测。
临床常见微生物学检验标本通常有血液、 痰液、尿液、粪便、伤口的脓液、胸水、腹水、 脑脊液及泌尿生殖系统的分泌物等，下面分别 介绍各种标本的采集方法。
一、呼吸道标本采集规范
病原体种类繁多而复杂 使呼吸道感染病原诊断成为难题
➢细菌 ➢真菌（包括肺孢子菌） ➢病毒 ➢支原体、衣原体与立克次体 ➢原虫 ➢寄生虫
（二）采集方法
1、咽拭子及鼻拭子 采集前患者应用冷开水反复漱口， 拭子的选择：要求无菌、不含抑制剂； 预先沾湿拭子（非常重要）； 由检查者将舌向外拉，使腭垂尽可能向外牵引，将棉拭子 通过舌根到咽后壁或腭垂的后侧，涂抹数次以取得标本。 对化脓性扁桃体炎或口腔念珠菌病，直取病灶部位，拭 子要避免接触口腔及舌粘膜。减少污染。 立即送检。室温保存。 接种同痰
（一）采集指征 •凡是发热、咳嗽和咳痰，痰呈脓性、粘稠或血 性，并伴有胸痛、气急，肺部闻及湿罗音，外 周白细胞总数及中性粒细胞比例明显增高，X 线检查提示肺部有炎性浸润或胸腔积液，甚至 出现感染性休克和呼吸衰竭等患者，应采集痰 液或下呼吸道标本。
•对可疑烈性呼吸道传染病（如SARS、肺炭疽、 肺鼠疫等）患者采集检验标本时必须注意生物 安全防护。
2．耻骨弓上膀胱穿刺采集尿 使用无菌注射器直 接从耻骨上经皮肤消毒穿入膀胱吸取尿液，是评 估 膀胱内细菌感染的“金标准”方法，但患者不 易接 受，主要用于厌氧菌培养或留取标本困难的 婴儿尿 标本的采集。
临床微生物样本采集规范
临床微生物样本采集规范临床微生物样本采集规范1. 范围和目的本规范适用于临床微生物样本的采集、处理和管理，旨在保证样本采集的质量和规范性，确保临床微生物诊断结果的准确性和可靠性。
2. 术语和定义（1）微生物：指包括细菌、真菌、病毒、支原体、立克次体、螺旋体等在内的微小生物体。
（2）临床样本：指从患者体内采集的各种生物标本，如血液、口腔、鼻咽部、骨髓、尿液、痰液、脑脊液等。
（3）采集容器：指用于采集临床样本的容器，如血液采集管、尿样瓶、培养皿等。
（4）采集套装：指一次完整的样本采集过程中所需的所有采集工具和材料。
3. 采集前准备（1）确定采集部位、时间和采集方式，注意患者的生命体征和病情变化。
（2）准备好所需的采集套装和采集容器，在样本采集前做好标签，并核对患者信息。
（3）认真阅读所有相关规范和实验室要求，确保样本采集符合要求。
4. 采集操作步骤（1）根据采集部位和样本类型选择合适的采集套装。
（2）采集前应让患者了解采集的目的和过程，并获得其同意。
（3）采集前要检查采集部位，患者的身体状态和生命体征，确保采集过程安全和无痛苦。
（4）采血时应注意采血量、采血速率、采血部位、采血方式等。
（5）尿样采集时应注意尿样的采集量、采集时间、采集方式、保护好样本的完整性和纯度。
（6）痰液采集时应注意痰液的颜色、黏度、量和纯度，选择合适的采集器具和采集方式。
（7）脑脊液采集时应注意采集部位、采集方式、采集量、采血顺序和样本处理标准等。
（8）其他临床样本采集时，应根据具体要求和操作规范，选择合适的采集方法和器具。
5. 样本运输和储存（1）在采集后，立即将样本放入相应的采集容器中，尽快送至实验室进行处理。
（2）若无法立即处理样本，应按要求在采集容器中注明采集时间和采集者信息，并存储在规定温度下，以便后续处理。
（3）运输过程中应遵循规范，确保样本不泄漏、不污染，并尽快送至目的地。
（4）储存过程中应保持样本的纯度和完整性，控制储存温度，在保质期内使用。
微生物标本采集原则
微生物标本采集原则血液标本：采血时间：应在抗生素治疗前、发热初期或高峰时为好。
方法：以无菌方法从患者静脉采血，血液抽出后，立即以无菌操作注入双相培养瓶中，充分混匀后送检。
采血量：成人3-5ml；小孩1-3ml。
脑积液标本：方法：由临床医生以无菌操作作腰椎穿刺，取收集于第一支无菌试管中的脑脊液（2-3ml）立即送检。
穿刺液标本（胸水、腹水、心包积液及关节液等）：方法：用无菌方法用注射器抽取体内可疑感染部位的液体（胸水、腹水、心包积液及关节液等），立即以无菌操作注入双相培养基瓶中，充分混匀后送检。
痰标本：采集时间：一般以晨痰为好。
方法：在流取痰标本前用清水反复漱口（务必刷牙），以减少常居菌污染，后尽量咳出气管深部痰标本，吐入无菌容器内立即送检。
咽拭标本：用无菌棉拭纸搽拭患者鼻烟部黏膜，置无菌试管内送检。
尿液标本：方法：留取标本前先清洗外阴或尿道口，弃去前段尿，留取中段尿于无菌容器内送检。
标本量：5-7ml。
生殖道标本：女性：用无菌棉拭采集阴道或宫颈分泌物盖回试管内送检。
男性：务必将尿道口清洗干净，用无菌男性棉拭采集尿道分泌物。
采集前列腺液时将按摩流出的前列腺液滴于无菌男性棉拭送检。
浓液及创伤感染分泌物标本：封闭性脓肿标本：消毒局部皮肤或黏膜表面后，用注射器抽取，将注射器针头盖回立即送检。
开放性伤口分泌物：先用无菌生理盐水冲洗伤口表面，用无菌棉拭尽量取伤口深处分泌物送检。
表面皮肤刮片标本（真菌培养）：在病灶皮肤表面用玻片轻轻刮取，将皮肤表皮刮起，将无菌棉拭用无菌生理盐水弄湿涂取刮起的皮削送检。
粪便标本：自然排便后，用无菌棉拭挑取其浓血、粘液部分送检。
注：1、所有标本采集容器都应是一次性、经过灭菌及带盖的无菌容器。
2、请各位医生及护士严格按照无菌操作原则采集标本，否则将会误导临床诊断和治疗等后果。
3、标本采集时如有疑问请致电检验科质询。
微生物标本的采集
伤口微生物标本采集法（一）——表面伤口微生物标本的采集
慢创中心吴帅
在压疮的整个治疗中，创面分泌物的培养是其中不可或缺的一个环节，下面具体介绍分泌物培养的留取方法及注意事项。
采集方法：
（1）用无菌生理盐水充分冲洗，以去除表面的渗出物、坏死组织和残留的敷料纤维，确保伤口是干净的。
（2）用无菌棉拭子擦涂创面的边缘和基底，应用10点取材法沿数字走“之”字形涂抹，拭子要不停转动，并以一定压力擦拭创面，确保拭子吸收足够的伤口渗液。
（3）拭子放在运送培养基中立即送检。
注意事项：
（1）采样时为了减少定植菌的混入，建议先轻轻擦去创面处皮肤表面的脓液，擦拭时如使用棉球容易使棉絮遗留在伤口内，因此建议使用完整的无菌方纱。
（2）为了不混入消毒液影响细菌生长，应该采用无菌生理盐水充分冲洗，避免使用消毒液擦拭伤口表面。
（3）焦痂不应用于细菌培养，要去除坏死和失活的组织，再做培养，因为细菌最多在坏死和正常组织之间。
（4）采集压疮边缘的脓性分泌物，不要采集创口周围的渗液。
（5）如果渗液较多，能抽出液体来，就尽量使用穿刺的方法采集标本，棉拭子对细菌有一定的抑菌作用。
微生物检验标本采集规范
微生物检验标本采集规范
正确采集、运送、保存及处理微生物检验标本，对于保证微生物检验质量至关要，为了准确检出病原菌，避免漏检及误诊，临床医护人员及实验室工作人员应掌握微生物检验标本采集、运送、保存及处理原则。
下面是yjbys 小编为大家带来的关于微生物检验标本采集规范的知识，欢迎阅读。
标本采集的一般原则：
1、早期采集：采集时间最好是病程早期，急性期，且必须在使用抗菌药物(俗称消炎药)之前采集，确保病原菌的检出;
2、无菌操作：采集标本时应尽量减少或避免感染部位附近皮肤或黏膜常居菌群污染和防止外源性细菌污染标本，采集的标本盛于无菌容器内送检。
盛装标本的容器不能使用消毒剂处理，标本中也不得添加防腐剂，以免降低病原菌的分离率;
3、适量标本：标本量过少可能导致假阴性结果。
各种标本采集注意事项：
一、呼吸道标本采集
(1) 送检指征：凡是发热、咳嗽和咳痰，痰呈脓性，黏稠或血性，并伴有胸痛，气急，外周血白细胞总数及中性粒细胞比例明显增高，应采集痰液或下呼吸道标本。
(2) 标本采集时间：a、以晨痰为好，患者清晨用凉开水反复漱口后用力自气管咳出第一口痰，将痰采集于无菌容器中尽快送检。
b、在应用抗菌药物之前采集标本。
二、脓液及创伤感染分泌物标本采集
(1) 送检指征：红、肿、热、痛和功能障碍是化脓性感染的五个典型特征。
临床微生物标本采集规范
新生儿及对碘过敏的患者，只能用 75%酒精消毒60s，待穿刺部位酒精挥发干 燥后穿刺采血。
2.培养瓶消毒程序： （1）用75%酒精（不要用碘液消毒）消毒 血培养瓶橡皮塞，作用60秒。 （2）用无菌纱布或无菌棉签擦去橡皮塞 表面剩余的酒精，然后注入血液。
❖ 2. 有肉眼脓尿或血尿； ❖ 3. 尿常规检查白细胞或亚硝酸盐阳性； ❖ 4. 有不明原因的发热，无其他局部症状； ❖ 5. 留置导尿管的患者出现发热； ❖ 6. 膀胱排空功能受损； ❖ 7. 泌尿系统疾病手术前；
（二）尿培养标本采集方法
标本采集应在使用抗生素之前，避免消毒剂污染标本。
❖ 清洁中段尿 留取清晨清洁中段尿标本，先用肥皂 水仔细清洗会阴部，再用清水冲洗尿道口周围；将 前段尿排去，留取中段尿10ml左右于无菌容器内， 立即加盖送检，2h内接种。该方法简单、易行，是 最常用的尿标本收集方法，但是容易受到皮肤细菌 污染。
要求： ✓ 严格无菌操作，不允许在皮肤消毒后用手按
压静脉，除非带有无菌手套。 ✓ 不推荐采血和接种血培养瓶更换注射器针头，
采用真空采血装置能降低污染率。
（三）血培养标本采集和运送
1.采集时间
在使用抗菌药物之前
寒战和发烧开始出现2小时内，此时为采集血培养 标本进行病原菌培养的最佳时机。
疑似感染性心内膜炎或导管相关性感染时，患者 呈持续菌血症状态，需要在24小时内多次采集血培 养，以提高检出率
❖ 留置导尿管收集尿液：留置导尿患者应消毒导尿管上端外部 及尿管口，采取无菌操作方法，用注射器通过导尿管吸取尿 液。注意防止混入消毒剂，不能从尿液收集袋中采集尿液。 长期留置导尿管患者常规尿培养没有临床意义,应在更换新 导尿管后抽取，导尿管留置时间延长易导致定植菌大量繁殖。
临床微生物标本规范化采集和送检
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严格无菌操作
1.在抗菌药物使用前采集标本。
临床疑似感染的患者, 必须先采集微生物标本送检, 再使用抗菌药物进
行治疗。
2.无菌部位的标本更具有临床价值, 有菌部位采集的标本需要清除正常菌 群和定植细菌才有意义。
应尽量送检无菌部位的标本, 尤其是血培养。有菌部位标本应避免 “正常菌群导致标本的污染”。人体很多部位, 如下呼吸道（痰液标本）、 鼻窦、皮肤伤口等处的正常菌群极易污染标本。因此, 从这些部位采集标 本, 要尽可能降低这些部位正常菌群或定植细菌对标本污染的可能性。有 菌部位的标本不是最理想的微生物标本。
临床微生物标本规范化采集和送检
总则
疾病的正确诊治需要以正确的病原学检测作为指导, 而正确的病原学 检测其前提是采集和送检合格标本。因此, 必须规范微生物标本的采集和运 送, 避免因标本的不合格, 产生错误的病原学检测结果而误导临床治疗。
微生物标本采集 基本原则
1
在抗菌药物使用前采集标本
无菌部位的标本更具有临床价值, 有菌部位采集的标
粪便标本采集法
1.自然排便法
患者在干燥清洁便盆（避免使用坐式 或蹲式马桶）内自然排便后, 挑取有 脓血、黏液部分的粪便2-3g（液体粪 便则取絮状物1-3ml）放入无菌便盒 内送检。若无黏液、脓血, 则在粪便 上多点采集送检。此为常规方法。
2. 直肠拭子法
用肥皂水将肛门周围洗净, 将占有无 菌生理盐水的棉拭子插入肛门4-5cm （儿童为2-3cm）。棉拭子与直肠粘 膜表面接触, 轻轻旋转拭子, 可明显在 拭子上见到粪便。将带有粪便标本的 棉拭子插入运送培养基, 立即送检。 本方法仅适用于排便困难的患者或婴 幼儿, 不推荐使用拭子做常规标本。
临床微生物标本规范化采集和送检
临床微生物标本规范化采集和送检临床微生物标本规范化采集和送检是确保实验室检测结果准确性和可靠性的关键步骤。
在临床诊断和治疗过程中，微生物标本的采集和送检必须严格按照规范进行，以保证检测结果的科学性和临床应用的有效性。
本文将对临床微生物标本规范化采集和送检的相关问题进行详细讨论。
一、微生物标本的采集1. 采集工具采集微生物标本时，应使用无菌采集工具，如无菌棉签、无菌注射器、无菌拭子等。
采集工具应一次性使用，避免交叉感染。
2. 采集方法（1）棉签采集法：适用于采集分泌物、排泄物等标本。
将无菌棉签蘸取适量标本，轻轻涂抹于无菌培养基表面，注意避免棉签与培养基接触过紧，以免污染。
（2）拭子采集法：适用于采集皮肤、黏膜等表面标本。
将无菌拭子轻轻擦拭采集部位，将拭子置于无菌培养基中，轻轻按压使标本附着于培养基表面。
（3）注射器采集法：适用于采集深部组织、关节液等标本。
将无菌注射器刺入采集部位，抽取适量标本后，将注射器置于无菌培养基中，拔出活塞使标本流出。
3. 采集注意事项（1）严格遵守无菌操作原则，防止标本污染。
（2）采集标本时，应尽量减少对标本的挤压，避免细胞破裂、毒素释放等现象。
（3）采集标本后，应尽快送检，避免长时间存放导致病原体死亡或变异。
二、微生物标本的送检1. 送检时间微生物标本采集后，应尽快送检，一般不超过2小时。
如无法及时送检，应将标本置于4℃冷藏保存，并在24小时内送检。
2. 送检途径微生物标本应采用专用运送容器，避免与其他物品接触。
标本运送过程中，应注意保持容器密封，防止标本污染。
3. 标本接收实验室接收微生物标本时，应详细核对标本信息，包括患者姓名、性别、年龄、采集部位、采集时间等。
如发现标本不符合要求，应立即与临床工作人员沟通，重新采集标本。
4. 标本处理实验室接收标本后，应按照实验室规程进行对标本的处理，包括开盖、分区、接种、培养等。
在处理过程中，严格遵守无菌操作原则，防止标本污染。
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微生物常见标本的采集规范
一、血液、骨髓、胸腹水标本的采集
1、最好用药前采集，在发热高峰前1h内或发热高峰时采血最为理想。
2、采血量在5-10ml为宜，成人必须左右手各一套瓶（需氧+厌氧）、并标明左右手，儿童左右手各一瓶需氧。
3、轻轻颠倒混匀以防凝固，立即送检（2小时之内），禁止4℃冷藏保存。
4、骨髓和胸腹水标本或其他穿刺液标本，抽取后将5-10ml直接打入一套血培养瓶内（需氧+厌氧），并注明标本种类。
二、尿液标本的采集
1、清洁中段尿的采集：
通常以晨起第一次尿液、未服用抗生素前送检以提高阳性率。
留取标本后尽快送检，不得超过1小时。
女性患者应用清水和肥皂或清洁剂清洗外阴，男性应清洗龟头。
排出前段尿后，打开无菌尿杯或无菌管留取中段尿。
2、插管尿的采集:
直接插管或称临时插管尿标本采集：
用夹子钳夹插管约30 分钟，以获取足够尿液。
乙醇消毒插管的取样端口或导尿管的适当部位后，应用注射器抽吸留取尿标本，将获取的尿标本转至带盖的无菌管中。
尿路插管不做培养，拒收！
3、以下是不适于尿培养的尿标本：
1）自留置导尿管内获取的尿液标本可能有定值菌的污染。
2）集导尿袋内获取的尿液标本，可能有定值菌及环境微生物的污染。
3）导管尖因为不可避免地受到尿道菌群的影响而不适合作为尿培养标本。
三、粪标本的采集：
1、直肠拭子法：先将肛门周围洗净，用无菌拭子蘸生理盐水，放入
直肠旋动取出放入拭子转运管送检。
2、自然排便法：清洁便盘内排便，挑取脓血或粘液部分，放入无菌
粪杯送检。
四、下呼吸道标本的采集（痰、肺泡灌洗液）
1、咳痰：患者清晨清水漱口3次后，深咳自下呼吸道痰液，量≥1ml，
避免不合格的口水痰。
2、诱导性痰：清洁口腔后用水漱口，用喷雾器吸入约25ml 3%-10%生理盐水诱导痰。
3、气管抽吸痰：病区医生采样。
4、支气管肺泡灌洗液：（做支气管镜检查）采集量10ml。
五、上呼吸道标本的采集
1、鼻：用无菌拭子生理盐水湿润后，插入鼻孔2cm，用力旋转
2、鼻咽：用无菌湿润拭子经鼻腔插入鼻咽后部（约2.5cm），旋转拭子5圈或停留10秒吸收分泌物。
3、咽部；采集前清水反复漱口，将舌向外拉，将棉拭子通过舌根到咽后壁或腭垂的后侧，涂抹数次，但拭子要避免接触口腔和舌粘膜。
4、常温2小时内送检
六、伤口组织和脓液标本的采集:
1、糖尿病足标本采集：应在第一次外科清创是采集标本，采集病灶活动区域或基底部的分泌物。
2、创面分泌物：去除表面脓性分泌物以排除定值菌的污染，用拭子深入伤口，取邻近新生组织处标本，置运送培养基立刻送检。
注：创伤出血敷有药物者，应在清创2小时后采集标本。
以避免假阴性。
3、开放性脓肿：以无菌生理盐水清洁创面，尽量抽吸深部脓液送检，样本量≥1ml，不能做厌氧培养。
4、闭合性脓肿：先对患者病灶局部的皮肤或黏膜表面彻底消毒，经无菌操作抽取脓肿内容物分别送检需氧、厌氧培养。
然后切开脓肿、引流。
七、眼、耳标本的采集（医生采集）
1、内耳：先用肥皂水清洗耳道，再用注射器收集液体，对破裂的鼓室，借助耳科诊视器用无菌拭子收集液体。
2、外耳：用无菌生理盐水湿润的拭子将耳道的任何碎屑或痂皮拭去，在外耳道用力旋转拭子取样。
3、眼：用无菌生理盐水湿润的拭子，绕每一个结膜取样，涂抹在两个玻片上染色（建议床边采样、直接接种涂片）。
八、留置针、导管等标本
1、采集材料：一次性无菌容器
2、留置针：用乙醇清洗导管周围的皮肤，将导管末端及夹子5cm无
菌移入无菌容器，防干燥。
3、导管：按要求采集，导管长度不能过长，约3-5cm，无菌操作放一次性入无菌容器。