发酵工程实验报告集
生物技术大实验
实验报告集
班级生物技术1212学号 1220212206
姓名宋扬
使用时间2015.12.14至2015.12.19
组别一
苏州科技学院化学与生物工程学院
实验室学生守则
一、严格遵守实验室各项规章制度和管理措施，服从教师及实验技术人员
的指导。
二、严格按照实验要求，做好实验预习,实验之前5分钟进入实验室，及时、
准确地完成实验任务，实事求是地完成实验报告，杜绝弄虚作假。
三、严格执行操作规定，爱护仪器设备及工具。
凡不按教师的指导擅自操
作引起仪器、设备损坏者，应予赔偿。
四、爱护实验室公共财物，节约水电、材料和试剂。
未经允许不得随便挪
动非实验需用的其他仪器，不得随便拆装仪器或将仪器、工具带至室
外。
五、持实验室的严肃安静，不得大声喧哗、嘻闹，严禁在实验室内抽烟和
吃东西。
六、严防事故，确保实验室安全，发现异常情况，应及时向有关教师和管
理人员报告。
七、每次实验结束后，主动整理好仪器设备，归还所借器材，关闭电源、
水源，按指导老师的要求做好实验结束工作及室内外的清洁卫生工作，经指导老师许可后，方可离开。
苏州科技学院化学与生物工程学院
实验报告
（1）罐发酵培养
以8%（v/v）接种量接种于5L（装液3L）发酵培养基中，32℃，pH6.8±0.2，0.03Mpa，3L/min （初始）,200 r/min（初始），补料分批培养，用氨水自动调节pH，到120小时（4~5d）左右放罐。
接种后培养2-3h后，通过调节空气流量和转速，控制溶氧（DO）在50%的水平。
发酵液pH会先上升再下降，待其降至6.8，通过补加氨水，控制pH在6.8。
每4h测一次葡萄糖含量，计算补料体积，分别维持葡萄糖浓度
（A）1211班：葡萄糖浓度维持在10-15 g/L。
（B）1212班：葡萄糖浓度维持在5-10 g/L。
补料速率：根据还原糖分析结果及溶氧水平情况进行补料（30-60min补料一次）。
每班取3个摇瓶测定有关参数。
（2）参数测定及记录
在线参数每1hr记录一次；离线参数每8hr取样分析一次，包括总糖、还原糖、氨基氮、菌体浓度、pH、辅酶Q10含量等。
（3）放罐条件
待发酵后期，辅酶Q10产量下降，溶氧上升，pH上升，开始下罐。
5、离线参数测定
在发酵过程中每4小时取一次样分析以下项目：
(1) 美蓝染色，镜检观察，并记录类球红细菌细胞菌体形态。
(2) 菌体浓度测定：干重法。
（见附录1）
(3) 还原糖测定：生物传感分析仪。
（见附录2）
(4) 取发酵液离心后的上清液用甲醛滴定法测氨基氮。
（见附录3）
(5) 辅酶Q10的提取及定量测定：用酸热法提取Q10（在90℃水浴锅加热，注意不要用电炉加热），用HPLC测定辅酶Q10的含量。
（见附录4）
6、在线参数测定
在发酵罐上连续测定pH、溶氧(DO)、转速、流量、温度等。
7、记录所测参数，记入辅酶Q10发酵批报表。
三、辅酶Q10发酵过程有关离线参数的分析方法
1、菌体浓度的测定
(1)菌体浓度的测定用离心法
取5mL菌液于已称好管重（W0）的10mL离心管中（每次3个平行），4℃下离心15min，离心转速为 5000 rpm。
离心所得菌体用稀盐酸溶液(0.05M HCl:约4mL HCl加水至1L)洗涤两次，称湿重W1，。
注意：洗涤时，要充分震匀。
打开离心管盖，至80℃烘箱中烘至恒重，称干菌体与离心管重量W2。
(2)计算公式
湿重X1=(W1－W0)×20
干重X2=(W2－W0)×20
W1：湿菌体与离心管重量，g；
W2：干菌体与离心管重量，g；
W0：离心管重量，g；
单位：g/L。
2、发酵液中还原糖测定
生物传感分析仪测定发酵液中还原糖
测定操作
在“准备就绪…”状态下，按“运行”键，仪器自动清洗2次，以更新反应池和管道内的缓冲液，清洗结束后进入自动定标状态。
这时，注入25l标样，仪器自动开始测定标样并定标，测定完
成后，自动清洗一次，进入下一测定循环。
仪器根据上次定标时的测定误差，自动判断是否需要继续定标，如需要，则再次提示定标。
当完成仪器标定后，绿灯不再闪烁，仪器进入测定样品状态。
注入25l样品，根据结果确定要稀释的倍数。
初始为40倍。
3、发酵液中氨基氮的测定
（一）实验材料
(1)中性甲醛溶液
将试剂级甲醛（36-37%）调到PH7（用 PH计检查）。
或是在50ml36-37%甲醛中加入几滴0.5％酚酞乙醇水溶液，然后用0.2N氢氧化钠溶液滴定到微红。
（需临用前配制，若放置一些时间后，在使用前要重新中和。
）
(2)酚酞指示剂
0.5%酚酞的50%乙醇溶液。
(3)标准碱溶液
0.1N 氢氧化钠溶液，使用前应标定。
(4)溴酚兰指示剂
0.05%溴酚兰的20%乙醇溶液。
（二）实验方法
(1)分别吸取发酵液离心上清液2.0ml于两个磨口具塞锥形瓶中，各加蒸馏水5ml。
向另一磨口具塞锥形瓶中加入7ml蒸馏水，做空白对照。
(2)向上述三个瓶中各加中性甲醛溶液5.0ml，混匀，加溴酚兰指示剂2滴，加酚酞指示剂4滴。
(3)用标准0.100mol/LNaOH溶液滴定至红色，分别纪录消耗的NaOH毫升数。
4、菌体中辅酶Q10含量提取与测定
(1)菌体细胞的破碎
酸热法：酸热法处理菌体主要是利用盐酸对细胞中的糖及蛋白质等成分的作用,疏松细胞的结构，再经过沸水、冷冻处理，使细胞达到破碎的效果，辅酶Q10得率相对较高，操作也相对简单。
酸热法：取1ml发酵液，加入0.2mL 0.1 mol/L的盐酸，于90°C水浴锅中，水浴处理15 min。
破壁好迅速冷却，5000rpm离心10min，弃尽上清。
加入5mL提取液（乙酸乙酯：乙醇=5:3，体积比），漩涡震荡仪上混匀，置于超声波清洗仪中超声抽提15min,暗室中抽提15min,每隔5min摇匀一次。
将抽提液离心10min。
上层有机相0.46μm滤头过滤，待测。
(2)辅酶Q10含量的分析
辅酶Q10用HPLC进行分析，液相分析仪器为安捷伦，色谱柱为C18反相柱（5μm×4.6mm×150mm）。
流动相为甲醇：异丙醇=3：1，柱温箱为40℃，流速为1mL/min，检测波长是275nm。
辅酶Q10标准品梯度稀释后经HPLC分析建立。
辅酶Q10标准曲线：y=0.06729x R2=0.99996 (x为峰面积，y为辅酶Q10浓度mg/L)
菌体中辅酶Q10含量y=0.06729*5x=0.33645x (提取时，辅酶Q10稀释了5倍)
四、实验结果
菌体量随着时间增加而增长，而辅酶Q10 含量也随着菌体量的增长而变大。
后期因为菌体量的减少，Q10产量也开始降低。
下罐。
还原糖浓度（柱状图）
还原糖浓度不断下降，在24小时开始每隔一段时间补充葡萄糖，使葡萄糖含量维持在6左右。
一开始溶氧在100%，随着菌体生长发酵，开始下降，控制在30%左右，随着菌体增加，降为0，后期发酵罐变粘，影响氧气传递。
前期消耗氮源，产氨，pH上升，随着菌体生长繁殖，消耗碳源，产酸，pH下降，糖缺乏时，pH上升，补充碳源，使pH维持在6.8左右。
当pH过低时，通过补加氨水，使pH维持稳定。
实验报告
学期实验小结
转眼间，我已从懵懂的大一新生变成了大四老生，我开始渐渐觉得焦虑，以及对未来的恐惧。
不知道自己的未来会怎么样，虽然确定了一定要考研，可是也不知能不能考上理想的学院。
否则，就要踏上未知的社会，开始另一段人生必要的过程。
在本学期刚过一半时段的时候我们开始了“传说”中的大实验，毕竟我们大一到大三的实验都是比较容易的，花时间较少的，没有这么长时间的，而且要花很多精力。
更重要的是还有来自考研的压力。
虽然一度想过要放弃做这个实验，不过我还是认真的做了，虽然做的并不理想。
其实，对这个实验我还是很上心，虽然不怎么想做，想要集中精力好好考研。
这次的实验是连续发酵测定辅酶Q10，这个实验出了要求对实验的原理及方法步骤了解透彻外，还要有很强的实践动手操作能力。
还有，作为组长，与人沟通的能力，还有独立思考的能力也是必须要具备的。
清楚的弄明白实验的每一步应该做什么，并努力把每一步做好，同时学会与小组的其他成员通力合作，才能让实验去的成功。
本次实验不仅让我学到了丰富的实验知识，对这门学科（课程）的知识，丰富了实践经验，这次实验将会有利于我更好的适应将来的生活以及以后的工作，我会好好把握每一次的实验机会，争取汲取到更多的经验和知识，这样以后才不至于什么都不能独自完成和独立思索。
发酵现象实验报告3篇
发酵现象实验报告3篇发酵现象实验报告3篇在学习、工作生活中，我们都不可避免地要接触到报告，我们在写报告的时候要避免篇幅过长。
其实写报告并没有想象中那么难，下面是小编精心整理的发酵现象实验报告，仅供参考，大家一起来看看吧。
发酵现象实验报告1一、实验目的1.测定并绘制生长曲线、底物消耗曲线和产物形成曲线2.了解发酵过程中葡萄糖的利用、菌体生长和产物生成的相互关系3.初步学会菌体生长、底物消耗和产物生成有关发酵参数的求解二、实验仪器及试剂菌种：酿酒酵母仪器：锥形瓶（250ml）、移液管、pH计、生物传感仪、分析天平药品：酵母膏、胰蛋白胨、葡萄糖、磷酸氢二钠、磷酸二氢钠、苯甲酸钠、EDTA钠、氯化钠三、实验原理酵母菌是兼性厌氧型真菌，喜欢含糖的环境，有氧时将葡萄糖分解成CO和水，无氧时将葡萄糖分解成酒精和二氧化碳，同时都释放出能量生物传感器由生物识别元件和信号转换器组成，能够选择性地对样品中的待测物发出相应，通过生物识别系统和电化学或其他传感器把待测物质的浓度转为电信号，根据电信号的大小定量测出待测物质的浓度。
生物传感器是应用生物活性材料（如酶、蛋白质、DNA、抗体、抗原、生物膜等）与物理或化学换能器有机结合的一门交叉学科，是发展生物技术必不可少的一种先进的检测方法与监控方法，也是物质在分子水平的快速、微量分析方法四、实验步骤1.种子培养基（YEPD，g/L）：称取酵母膏10g、胰蛋白胨20g、葡萄糖20g，加蒸馏水溶解，调节pH 5.0左右，并定容至1000ml。
2.发酵培养基（g/L）：称取酵母膏10g，胰蛋白胨20g，葡萄糖100g加蒸馏水溶解，调节pH 至5.0左右，定容至1000ml，分装10个锥形瓶（250ml）封口121℃，30min灭菌。
3.种子培养：将活化好的种子培养液，用移液管移去10ml接种于灭菌YEPD液体培养基中，于30℃、120 r/min全温摇瓶柜中培养24 h左右，观察种子液的色泽、气味与形态等基本情况。
发酵工程实验报告集.doc
发酵工程实验报告集苏州科技大学化学与生物学院学生实验报告；生物技术大型实验；发酵工程过程控制；生物技术大型实验；生物技术类报告1212；编号1220212206；姓名；宋扬使用时间；集团2015 . 12 . 14-2015 . 12 . 19；苏州科技大学化学与生物工程学院实验学生守则一、严格遵守实验室的规章制度和管理措施，服从教师和实验室技术人员的指导。
二、严格按照实验要求，做好实验准备工作，在实验前5分钟进入实验室，及时准确地完成实验任务，实事求是地完成实验报告，杜绝弄虚作假。
三、严格执行操作规程，爱护设备和工具。
未经老师指导擅自操作造成仪器设备损坏的，应予以赔偿。
四、爱护实验室公共财产，节约水电、材料和试剂。
未经允许，您不得移动其他实验不需要的仪器、拆卸和组装仪器或将仪器和工具带到室外。
五、保持实验室的严肃和安静，不得大声喧哗、嬉闹，实验室内严禁吸烟和进食。
六、为防止事故发生，确保实验室安全，发现异常情况，应及时向相关教师和管理人员报告。
七、每次实验结束后，主动收拾好设备，归还借来的设备，关闭电源、水源，按教导员的要求做好实验结束和室内外清洁卫生工作，经教导员同意后，方可离开。
苏州科技大学化学与生物工程研究所报告了实验名称辅酶Q10发酵过程控制组9的实验结果和实验分析讨论:摘要:通过对辅酶Q10产生的真菌球形红杆菌的培养，学会了在小型发酵罐中培养该真菌的过程，包括培养基和设备的灭菌、种子培养、接种、发酵过程控制等，进一步巩固了发酵过程控制、中间补料、溶解氧控制、变温发酵、代谢调节等学习过程，学会了分析代谢曲线，掌握了辅酶Q10的相关参数和定量分析方法。
关键词:辅酶Q10，补料分批发酵，葡萄糖含量，溶氧测定辅酶Q10(辅酶Q10)，是一种位于线粒体上的脂溶性化合物，其化学名称为2，3-一、严格遵守实验室的规章制度和管理措施，服从教师和实验室技术人员的指导。
二、严格按照实验要求，做好实验准备工作，在实验前5分钟进入实验室，及时准确地完成实验任务，实事求是地完成实验报告，杜绝弄虚作假。
发酵工程实训报告
发酵工程实训报告
本次实训是在发酵工程实验室进行的。
本次实训主要是学习发酵工程的基本操作和实验，了解不同类型的发酵，掌握大型发酵罐防污染的方法等。
实验过程：
1.选择合适的发酵菌种，本次我们选择的是酵母菌。
2.添加培养基，调节pH值、温度和氧气含量。
在实验室中，我们首先将适合酵母的培养基添加到发酵罐内，然后调整pH值到适当的水平，提供适宜的温度和氧气含量。
3.添加发酵菌种。
在调节好基本环境后，我们将酵母菌均匀地撒在上面，尽量使其分散均匀，利于发酵。
在发酵过程中，我们会定期观察发酵罐内的微生物生长状态，进行必要的调整。
4.实验的待定时间。
根据不同的发酵类型，我们要设置不同的时间。
发酵时间通常较长，一般需要数天，甚至数周的时间才能见到效果。
5.采样。
重要数据的检测取决于经常对样品进行采样和测试，以便我们能够跟踪酵母的生长状态。
6.结束实验。
最后，达到我们所需要的发酵效果后，我们可以选择停止实验，或经过处理之后将样品保存与使用。
实验中我们学到了很多，包括成熟的发酵罐操作，及时的护理，以及全程的消毒等，这些都是成功的发酵过程所必须具备的技能。
总结：通过本次实验，我们更加深入地认识到发酵技术在生产中的重要性。
只有掌握了相关知识和操作方法，才能在实际工作中做到精益求精，为提高产品质量和企业效益做出贡献。
发酵工程综合实验报告(3篇)
第1篇一、实验目的1. 了解发酵工程的基本原理和操作方法；2. 掌握微生物的培养、分离、鉴定及发酵条件优化等实验技术；3. 提高实验操作能力和数据分析能力。
二、实验原理发酵工程是一门研究微生物发酵过程及其应用的科学。
通过发酵工程，可以利用微生物的代谢活动生产出各种有用的产品，如食品、医药、化工产品等。
本实验主要涉及微生物的培养、分离、鉴定及发酵条件优化等实验技术。
三、实验材料与仪器1. 材料：土壤样品、牛肉膏蛋白胨培养基、葡萄糖、酵母提取物、氯化钠、硫酸铵、磷酸二氢钾、硫酸镁、琼脂等；2. 仪器：高压蒸汽灭菌器、恒温培养箱、显微镜、电子天平、pH计、发酵罐、酒精灯、试管、培养皿等。
四、实验方法1. 微生物分离与纯化（1）土壤样品的采集与处理：在校园内采集土壤样品，将土壤样品过筛，去除杂质，备用；（2）牛肉膏蛋白胨培养基的制备：按照实验要求，称取牛肉膏、蛋白胨、葡萄糖、氯化钠、硫酸铵、磷酸二氢钾、硫酸镁等试剂，加入适量的水，搅拌均匀，煮沸10分钟，待冷却后加入琼脂，搅拌均匀，倒入培养皿中，待凝固；（3）土壤样品的接种：将处理好的土壤样品稀释，取适量涂布在牛肉膏蛋白胨培养基上，置于恒温培养箱中培养；（4）分离纯化：观察菌落特征，挑选单菌落进行纯化，重复以上步骤，直至获得纯化菌株。
2. 微生物鉴定（1）观察菌落特征：观察纯化菌株在牛肉膏蛋白胨培养基上的菌落特征，如菌落大小、形状、颜色、边缘等；（2）显微镜观察：将纯化菌株进行涂片、染色，在显微镜下观察菌体形态、染色特性等；（3）生化试验：进行糖发酵试验、氧化酶试验、淀粉酶试验等，鉴定菌株的生理生化特性。
3. 发酵条件优化（1）发酵培养基的制备：根据实验要求，称取葡萄糖、酵母提取物、氯化钠、硫酸铵、磷酸二氢钾、硫酸镁等试剂，加入适量的水，搅拌均匀，煮沸10分钟，待冷却后加入琼脂，搅拌均匀，倒入发酵罐中；（2）发酵条件优化：通过改变发酵温度、pH值、接种量、发酵时间等条件，观察发酵产物的产量和品质，确定最佳发酵条件。
发酵工程实验报告总结
发酵工程实验报告总结发酵工程实验是一项非常重要且广泛应用的实验，通过实验，我们可以了解到发酵过程中的微生物生长和代谢规律，提高发酵过程的效率和产物质量。
本次实验主要涉及到发酵过程中的控制变量，发酵过程中微生物的生长和代谢规律的研究以及发酵过程中产物的分析等内容。
通过本次实验，我了解到了发酵过程中的一些基本原理和技术，对发酵工程有了更加深入的认识。
在实验中，我们首先进行了菌种的培养和优选。
通过实验，我们了解到菌种的选择和培养过程对发酵过程中的微生物生长和产物质量具有重要的影响。
通过对不同菌种的筛选和培养条件的优化，我们可以选择到合适的菌种，并使其生长状况良好，提高发酵过程的效率。
在实验中，我们还进行了发酵过程的控制变量的研究。
通过对发酵过程中温度、pH值、氧气供应等因素的控制，我们可以调节微生物的生长速度和产物的合成效率。
实验结果表明，控制变量对发酵过程中的微生物生长和产物质量具有明显的影响。
因此，合理地控制发酵过程中的各项参数是提高发酵效率和产物质量的关键。
在实验中，我们还对发酵过程中微生物的生长和代谢规律进行了研究。
通过对微生物数量、生物量、细胞代谢产物等指标的测定和分析，我们可以了解到微生物在不同生长阶段的代谢特点和变化规律。
实验结果表明，微生物生长和代谢过程中有明显的生长阶段和代谢阶段的变化，我们可以根据这些变化规律来调节发酵过程中的控制变量，提高发酵效率。
最后，在实验中，我们还对发酵过程中产物的分析进行了研究。
通过对发酵产物的组成、含量、纯度等指标的分析和测定，我们可以评估发酵过程的效果和产物质量。
实验结果表明，发酵产物的组成和含量与微生物的生长和代谢过程密切相关，通过调节好发酵过程中的控制变量和选择合适的菌种，我们可以获得高质量的发酵产物。
综上所述，发酵工程实验是一项非常重要和有意义的实验，通过实验，我们可以了解到发酵过程中的微生物生长和代谢规律，探索调节发酵过程的控制变量以提高发酵效率和产物质量的方法。
模拟发酵试验实验报告(3篇)
第1篇一、实验目的1. 了解发酵的基本原理和过程。
2. 掌握模拟发酵试验的操作步骤。
3. 通过实验，观察并分析发酵过程中物质的变化。
二、实验原理发酵是一种生物化学过程，在无氧条件下，微生物（如酵母菌、乳酸菌等）将有机物质分解产生能量、气体、酸等代谢产物。
本实验模拟了酵母菌在无氧条件下对蔗糖的发酵过程，通过观察气泡产生、pH值变化等现象，了解发酵的基本原理。
三、实验材料与仪器1. 实验材料：- 蔗糖：50g- 温水：500ml- 干酵母：5g- pH试纸：1张- 玻璃棒：1根- 玻璃杯：1个- 药勺：1个2. 实验仪器：- 电子天平：1台- 秒表：1个- pH计：1台四、实验步骤1. 称取50g蔗糖，加入500ml温水中，用玻璃棒搅拌至完全溶解。
2. 称取5g干酵母，用药勺加入溶解好的蔗糖溶液中，继续搅拌。
3. 用pH试纸检测溶液的pH值，记录初始pH值。
4. 将搅拌好的蔗糖酵母溶液倒入玻璃杯中，用玻璃棒蘸取少量溶液滴在pH试纸上，观察pH值变化。
5. 记录实验开始时间，每隔10分钟观察并记录溶液的气泡产生情况、pH值变化。
6. 实验进行60分钟，记录实验结束时间。
五、实验结果与分析1. 实验过程中，溶液中开始出现少量气泡，随着时间的推移，气泡数量逐渐增多，表明酵母菌开始进行发酵作用。
2. 实验开始时，溶液的pH值为6.5，随着发酵过程的进行，pH值逐渐下降，说明发酵过程中产生了酸性物质。
3. 实验结束时，溶液的pH值下降至5.0，说明发酵产生的酸性物质使溶液的酸性增强。
六、结论1. 通过本实验，我们成功模拟了酵母菌在无氧条件下对蔗糖的发酵过程。
2. 发酵过程中，酵母菌将蔗糖分解为酒精和二氧化碳，同时产生酸性物质，使溶液的pH值下降。
3. 本实验为后续发酵实验提供了基础，有助于我们深入了解发酵的原理和应用。
七、实验反思1. 在实验过程中，应注意控制实验条件，如温度、pH值等，以确保实验结果的准确性。
发酵工程综合实验报告 (1)
《发酵工程综合实验》实验报告实验题目：蛋白酶产生菌的分离筛选与培养优化姓名学号院系专业生物技术年级 13级任课教师2015年 12 月 25 日1 实验目的1、学习从土壤样品中分离筛选蛋白酶产生菌的基本技术及测定蛋白酶活力的方法。
2、掌握富集、平板稀释涂布法、平板划线培养法分离筛选蛋白酶产生菌的基本原理。
3、掌握蛋白酶产生菌培养优化的原理与方法。
4、熟悉用正交实验优化发酵培养基的方法。
5、了解蛋白酶产生菌生产的实际意义。
2 实验原理蛋白酶产生菌的分离筛选：在土壤中有许多细菌和霉菌能产生蛋白酶，本实验将土壤样品悬液稀释进行划线分离得到可能含有目的菌株的菌落，将其接种到酪蛋白平板上进行培养，根据酪蛋白平板的水解圈作初筛。
将初筛的蛋白酶产生菌接入产酶培养基进行培养，测定蛋白酶的活力，最终筛选到产蛋白酶的目的菌。
蛋白酶活力测定原理：蛋白质或多肽在275nm波段处具有最大吸收值，利用蛋白酶同酪蛋白底物反应前后在三氯乙酸中可溶物的紫外吸收增值，可表示蛋白酶活力高低。
蛋白酶产生菌的培养优化：本实验采用正交实验进行目的菌株的培养优化方案。
正交实验是利用已经设计好的表格“正交表”来安排、实验并进行数据分析的一种方法。
数据处理可采用直观分析法（极差分析法），通过对每一因素的平均极差来分析问题。
3 实验材料3.1 实验试剂葡萄糖、乳糖、蔗糖、蛋白胨、尿素、酪氨酸、酵母膏、碳酸钠、琼脂粉、牛肉膏、硫酸铵、硫氨酸、三氯乙酸、氯化钙、氯化钠、MgSO4、KH2PO4、K2HPO4、3.2 实验设备250ml三角瓶、150ml三角瓶、10ml移液管、1ml吸头、酒精灯、大烧杯、试管、量筒、高压蒸汽灭菌锅、超净工作台、恒温培养箱、恒温振荡培养箱、分光光度计、电炉、水浴锅、离心机、漏斗、滤纸、培养皿。
4 实验步骤（一）配制所需培养基及灭菌1、按照以下配方配制所需的培养基（1）、牛肉膏蛋白胨培养基（分离培养基）200mL：牛肉膏 0.5g、蛋白胨 1g、NaCl 0.5g、琼脂 1.5g、水 100ml、pH 7.2。
发酵工程实验报告集
生物技术大实验实验报告集班级生物技术1212学号 1220212206姓名宋扬使用时间2015.12.14至2015.12.19组别一苏州科技学院化学与生物工程学院实验室学生守则一、严格遵守实验室各项规章制度和管理措施，服从教师及实验技术人员的指导。
二、严格按照实验要求，做好实验预习,实验之前5分钟进入实验室，及时、准确地完成实验任务，实事求是地完成实验报告，杜绝弄虚作假。
三、严格执行操作规定，爱护仪器设备及工具。
凡不按教师的指导擅自操作引起仪器、设备损坏者，应予赔偿。
四、爱护实验室公共财物，节约水电、材料和试剂。
未经允许不得随便挪动非实验需用的其他仪器，不得随便拆装仪器或将仪器、工具带至室外。
五、持实验室的严肃安静，不得大声喧哗、嘻闹，严禁在实验室内抽烟和吃东西。
六、严防事故，确保实验室安全，发现异常情况，应及时向有关教师和管理人员报告。
七、每次实验结束后，主动整理好仪器设备，归还所借器材，关闭电源、水源，按指导老师的要求做好实验结束工作及室内外的清洁卫生工作，经指导老师许可后，方可离开。
苏州科技学院化学与生物工程学院实验报告（1）罐发酵培养以8%（v/v）接种量接种于5L（装液3L）发酵培养基中，32℃，pH6.8±0.2，0.03Mpa，3L/min （初始）,200 r/min（初始），补料分批培养，用氨水自动调节pH，到120小时（4~5d）左右放罐。
接种后培养2-3h后，通过调节空气流量和转速，控制溶氧（DO）在50%的水平。
发酵液pH会先上升再下降，待其降至6.8，通过补加氨水，控制pH在6.8。
每4h测一次葡萄糖含量，计算补料体积，分别维持葡萄糖浓度（A）1211班：葡萄糖浓度维持在10-15 g/L。
（B）1212班：葡萄糖浓度维持在5-10 g/L。
补料速率：根据还原糖分析结果及溶氧水平情况进行补料（30-60min补料一次）。
每班取3个摇瓶测定有关参数。
（2）参数测定及记录在线参数每1hr记录一次；离线参数每8hr取样分析一次，包括总糖、还原糖、氨基氮、菌体浓度、pH、辅酶Q10含量等。
发酵工程实验报告一
操作步骤
空白管
样品管A
样品管B
步骤1
吸取1.8mL淀粉底物溶液
吸取1.8mL淀粉底物溶液
吸取1.8mL淀粉底物溶液
步骤2
50℃保温5分钟
50℃保温5分钟
50℃保温5分钟
步骤3
步骤4
50℃精确保温10min
50℃精确保温10min
六、实验总结
通过本次实验，我掌握固体发酵的基本操作步骤；学会了霉曲制作工艺和基本原理；学会计算DE值。在本次试验中有小成，也有不足，比如说在精确计时时记录的不是很精确，小组的分工上也不是很合理，还有做实验时有点小粗心，会在今后的实验中改正。
七、教师评语及评分：
签名：年月日
根据表格的数据得到下图
（二）DE值的计算
经过紫外分光光度法的测量得到A、B的OD540值为
A：1.061 B：1.144 取平均值得：(A+B)/2=(1.061+1.144)/2=1.1025
根据公式
E酶活力单位（U/ml）= {K[ (ODA+ ODB) /2] + b}×5×10×1000/10/0.2/1/180
发酵工程学实验
姓名：刘云谣学号：*********
学院：生命科学学院专业、班级：12生物技术
实验课程名称＿发酵工程实验
指导教师及职称唐湘华
开课学期2014至2015学年下学期
云南师范大学教务处编印
实验名称：实验一、根霉曲的制备、实验二、根霉曲糖化能力的测定
实验时间
第三四周
实验室
睿智3-121
小组合组
以A为横坐标，浓度c为纵坐标，则得到一条拟合度较好的直线，称为标准曲线。
发酵工程制药实验报告(3篇)
第1篇一、实验目的1. 了解发酵工程制药的基本原理和过程；2. 掌握微生物发酵生产药物的方法；3. 熟悉发酵过程中主要参数的检测和控制；4. 提高实验操作技能和数据分析能力。
二、实验原理发酵工程制药是指利用微生物的代谢能力，通过发酵过程生产具有药用价值的生物活性物质。
发酵过程包括菌种选育、培养基配制、种子扩大培养、发酵过程、分离纯化等环节。
三、实验材料与仪器1. 材料与试剂：葡萄糖、酵母提取物、蛋白胨、琼脂、硫酸铵、磷酸二氢钾、氢氧化钠、盐酸、氯化钠等；2. 仪器与设备：发酵罐、摇床、超净工作台、高压灭菌锅、电子天平、pH计、分光光度计、离心机、无菌操作工具等。
四、实验步骤1. 菌种选育：从土壤样品中分离筛选得到一株能够产生抗生素的微生物，经过纯化、鉴定和保存；2. 培养基配制：根据微生物生长需求，配制适宜的培养基；3. 种子扩大培养：将纯化后的菌种接种到试管斜面培养基上，置于恒温培养箱中培养；4. 发酵过程：将活化后的种子液接种到发酵罐中，控制发酵温度、pH值、溶氧量等参数，进行发酵；5. 发酵过程监测：定期检测发酵液的pH值、溶氧量、菌体浓度等参数，确保发酵过程顺利进行；6. 分离纯化：发酵结束后，对发酵液进行分离纯化，得到目标产物；7. 数据分析：对实验数据进行统计分析，得出实验结果。
五、实验结果与分析1. 菌种选育：成功分离筛选得到一株能够产生抗生素的微生物，经过鉴定为链霉菌属；2. 培养基配制：根据微生物生长需求，配制了适宜的培养基；3. 种子扩大培养：菌种在试管斜面培养基上生长良好，菌落形态典型；4. 发酵过程：发酵过程中，发酵液的pH值、溶氧量、菌体浓度等参数均在适宜范围内，发酵过程顺利进行；5. 分离纯化：发酵液经过分离纯化，得到目标产物；6. 数据分析：通过实验数据统计分析，得出以下结论：（1）该菌株在发酵过程中，发酵液的pH值、溶氧量、菌体浓度等参数均在适宜范围内；（2）发酵液中的目标产物含量达到预期水平；（3）分离纯化过程中，目标产物纯度较高。