动物试验模版
动物实验报告【范本模板】
实验动物学实验报告学院：学号：姓名时间：实验一：小鼠实验一、实验目的1、掌握小鼠抓取、固定的基本方法；2、掌握小鼠的雌雄鉴别方法；3、掌握小鼠的标记方法;4、掌握小鼠的基本采血技术；5、掌握小鼠的常用给药方法;6、掌握小鼠的解剖方法，熟悉内部脏器的自然位置;二、实验材料1、实验动物：每组两只雌鼠，两只雄鼠；2、实验器械及试剂:鼠笼;小鼠固定器和小鼠固定板;眼科剪;眼科镊；解剖刀；1ml 注射器；毛细玻璃管；灌胃针；苦味酸染料;葡萄糖液；2％水合氯醛；三、实验内容及方法1、小鼠的抓取和固定抓取时先用右手抓取鼠尾提起，置于鼠笼或实验台向后拉，在其向前爬行时,用左手拇指和食指抓住小鼠的两耳和颈部皮肤，将鼠体置于左手心中,把后肢拉直，以无名指按住鼠尾，小指按住后腿即可。
这种在手中固定方式，能进行实验动物的灌胃、皮下、肌肉和腹腔注射以及其他实验操作。
2、小鼠的雌雄鉴别雄鼠的阴囊明显，雄鼠可见阴道开口和五对乳头。
幼鼠或仔鼠则主要从外生殖器与肛门的距离判定，近者为雌,远者为雄。
另外,雌鼠肛门和生殖器之间有一无毛小沟，而雄鼠则在肛门和生殖器之间长毛。
3、小鼠的标记方法1）耳孔法用耳号钳在耳上打洞或者用剪刀在耳边缘剪缺口，左耳为十位，右耳为个位.2）剪趾法适用于出生一周以内新生仔鼠；3）染色法用毛笔将苦味酸涂在动物的不同部位,注意逆着毛发生长方向刷。
4、小鼠的基本采血1）剪尾采血当所需血量很少时采用本法.固定动物并历出鼠尾，将鼠尾在45℃温水中浸泡数分钟，也可用酒精棉球涂擦，使局新血管扩张。
将鼠尾擦干,再用刀片剪去1-2mm，让血液滴入盛器或直接用移液器吸取，同时自尾根部向尾尖按摩。
取血后，先用棉球压迫止血并立即用6％液体火棉胶涂于尾巴伤口处，使伤口外结一层火棉胶薄膜，保护伤口。
也可采用切割尾静脉的方法采血，三根尾势脉可交替切割,并自尾尖向尾根方向切割,每次可取0.2～0.3ml血，切割后用棉球压迫止血.这种采血方法在大鼠进行较好，可以较长的间隔时间连续取血,进行血常规检查.2)眼眶后静脉丛取血当需中等量的血液，而又需避免动物死亡时采用此法。
动物实验报告格式范文
一、实验名称实验名称：小鼠心肌梗死后心肌细胞凋亡检测二、实验目的1. 了解心肌梗死后心肌细胞凋亡的发生机制。
2. 掌握检测心肌细胞凋亡的方法。
3. 分析心肌梗死后心肌细胞凋亡与心肌损伤程度的关系。
三、实验时间2023年10月25日四、实验地点实验室动物中心五、实验材料1. 实验动物：雄性SD大鼠，体重200-220g，由实验室动物中心提供。
2. 试剂与仪器：- TUNEL试剂盒（Roche公司）- DAB显色试剂盒（Sigma公司）- 脱氧核糖核酸酶（DNase）处理液- 柠檬酸缓冲液- 胶体金染色液- 显微镜- 光学显微镜- 恒温培养箱- 电子天平六、实验方法1. 实验分组：- 正常组：正常SD大鼠10只。
- 模型组：SD大鼠10只，采用结扎冠状动脉左前降支的方法制作心肌梗死模型。
- 干预组：SD大鼠10只，在结扎冠状动脉左前降支的同时，给予心肌梗死后心肌保护药物。
2. 心肌细胞凋亡检测：- 取实验大鼠心肌组织，按照TUNEL试剂盒说明书进行操作。
- 采用DAB显色试剂盒进行染色。
- 光学显微镜观察心肌细胞凋亡情况。
3. 数据分析：- 计算心肌细胞凋亡指数（AI）。
- 比较各组AI差异。
七、实验结果1. 正常组心肌细胞形态正常，无凋亡细胞。
2. 模型组心肌细胞出现明显凋亡，AI显著高于正常组（P<0.01）。
3. 干预组心肌细胞凋亡情况较模型组明显减轻，AI显著低于模型组（P<0.05）。
八、实验讨论1. 心肌梗死后心肌细胞凋亡是心肌损伤的重要原因之一。
2. 心肌梗死后心肌保护药物可以减轻心肌细胞凋亡，从而减轻心肌损伤。
3. 本实验结果表明，心肌梗死后心肌细胞凋亡与心肌损伤程度密切相关。
九、实验结论1. 心肌梗死后心肌细胞凋亡是心肌损伤的重要原因。
2. 心肌梗死后心肌保护药物可以减轻心肌细胞凋亡，从而减轻心肌损伤。
十、实验注意事项1. 实验操作过程中应严格无菌操作。
2. 实验动物应定期观察，注意动物福利。
动物医学实验报告模板
动物医学实验报告模板一、实验目的本实验旨在探究某种药物对小鼠生理指标的影响，并比较不同剂量药物的作用差异。
二、实验设计2.1 实验对象实验对象为健康雄性小鼠，年龄12周。
2.2 实验组别将小鼠随机分为以下三组：•对照组：注射生理盐水；•低剂量组：注射1mg/kg的药物；•高剂量组：注射3mg/kg的药物。
2.3 实验方法将实验对象按照实验组别进行分组，每个组别的小鼠数为6只。
其中，对照组注射生理盐水，低剂量组注射1mg/kg的药物，高剂量组注射3mg/kg的药物。
注射药物前和注射后24小时，分别测量小鼠体温、血压、心率等指标，并记录每只小鼠的行为表现。
三、实验结果3.1 实验数据实验组别小鼠体温（℃）血压(mmHg) 心率（次/min）对照组37.4±0.3 120±5 426±17低剂量组37.2±0.3 115±4 422±19高剂量组37.1±0.2 110±3 416±15注射药物后24小时，对照组和低剂量组小鼠体温、血压、心率无明显变化，而高剂量组小鼠的体温、血压、心率均低于注射前水平，差异有显著性（P<0.05）。
3.2 实验行为观察注射药物后，小鼠出现以下不同程度的行为异常：•对照组小鼠活泼，毛发干净光滑；•低剂量组小鼠活泼，但毛发比对照组略有粗糙；•高剂量组小鼠活动减少，毛发凌乱。
四、实验结论本实验结果表明，该药物能够影响小鼠的生理指标，高剂量时更为明显。
同时，高剂量组小鼠出现明显的异常行为，提示该药物可能存在毒副作用。
五、实验建议在继续进行该药物的临床前期实验前，应进一步评估该药物的毒副作用风险，以确保临床研究的安全性和有效性。
动物实验计划书模板
动物实验计划书模板
一、实验目的
明确实验的目的和意义，以及对科学研究的贡献。
二、实验动物
1.物种：描述实验动物的种类和品系。
2.年龄：提供实验动物的平均年龄或范围。
3.性别：说明实验动物的性别比例。
4.健康状况：描述实验动物的健康状况和接种疫苗情况。
三、实验方法
1.实验设计和分组：描述实验设计、分组情况和样本量。
2.实验操作：详细描述实验过程中的操作步骤，包括手术、给药、处理等。
3.数据收集：明确实验过程中需要收集的数据指标和采集方式。
四、实验步骤
1.实验前准备：包括动物饲养、动物适应等。
2.实验操作过程：详细描述实验步骤，包括实验前的准备、手术操作、给药、样本采集等。
3.实验后处理：包括动物护理、观察和记录等。
五、预期结果
根据实验目的和实验方法，预测实验结果和可能的意义。
六、风险评估
1.动物风险：评估实验过程中可能对动物造成的伤害和死亡风
险。
2.人员风险：评估实验过程中可能对操作人员造成生物危害和化学危害等风险。
3.风险控制措施：提出针对上述风险的预防和控制措施。
七、伦理审查
1.伦理审查委员会：说明伦理审查委员会的组成和职责。
2.伦理审查流程：描述伦理审查的流程和要求。
3.伦理审查结果：提供伦理审查委员会对实验计划书的审查意见和批准情况。
动物实验及报告编写要求附模板
动物实验报告要求第一部分：动物实验概述应提供—个动物试验的主要内容提要，该提要应包括动物试验题目、研究小组成员、试验动物和研究产品的名称、试验用器械或药物的适应症、试验时间、试验目的、试验方法、试验研究动物、诊断及进入研究的主要标准、试验的产品信息、剂量、给药方式及批号、治疗持续时间、参考的治疗、剂量、给药方式及批号、评价标准（有效性、安全性）、统计方法、实验结论（效能结论、安全性结论、结论）及报告日期。
该提要应包括表明结果的数字资料，而不仅仅是文字和P值。
第二部分：实验内容（一）动物实验一般资料（动物类别选择实验用动物的入选标准和数量、试验用产品等）：（二）动物实验试验方法；（三）所采用的统计方法及评价方法；（四）动物实验评价标准；（五）动物实验试验结果；（六）动物实验试验中发现的副作用及其处理情况；（七）动物实验试验效果分析；（八）动物实验试验验结论；第三部分：实验（一）实验名称：要能够明确表达试验内容；（二）实验目的：要直截了当的说明为什么要进行这个试验，解决什么问题，具有什么意义；（三）试验器材：所有仪器、材料应介绍齐全；所用材料、试剂、诱导物对动物有无危害影响说明。
（四）实验动物的选取（动物种类，性别，体重，年龄，品系，级别，健康状况，动物来源及其合格证号）；（五）分析可能影响到动物试验结果准确性的因素以保证试验结果的准确性、可靠性和重复性（环境因素；理化因素；营养因素；居住因素；同种动物间因素；异种动物间因素）；（六）动物实验设计与分组（是否符合对照性、一致性、重复性三原则；该试验选取了什么设计方法，比如单组比较设计、配对比较设计等等；动物随机分组方法应具体描述，如分为两组或者三组或者每个动物一组时具体的操作方法，切忌不可简单的“随机”二字就带过）。
第三，实验基本技术的描述，包括：（一）实验动物的抓取与固定（哺乳类与非哺乳类动物的方法不同）；（二）动物的编号、标记（临时性、半永久性及永久性标记）及去毛（剪毛法、拔毛法、剃毛法、脱毛法）；（三）若该试验中动物需要麻醉，则采用了何种麻醉类型与方法（全身麻醉方法、局部麻醉方法）以及麻醉药物与麻醉剂用量（挥发性麻醉剂、非挥发性麻醉剂），若过量麻醉，复苏和抢救措施是如何实施的；（四）动物的给药途径与方法：根据不同的实验目的、动物种类、药物类型来决定动物的给药途径与方法；（五）动物血液的采集方法（不同部位）；（六）动物各种体液的采集方法（不同部位）；（七）常见观察指标的测定与检查方法（生理指标测定方法；生化指标测定方法；血液学指标测定与检查方法；免疫学指标测定方法）；（八）受试动物的动物实验检查方法（一般检查内容及方法；系统检查及方法；动物脏器组织的活检方法）。
实验报告模板兽医
一、实验名称二、实验目的三、实验原理四、实验材料1. 仪器设备：（1）显微镜（2）解剖器械（3）生理盐水（4）酒精（5）甲醛（6）剪刀（7）镊子（8）载玻片（9）盖玻片（10）显微镜支架2. 实验动物：（1）家兔（2）豚鼠（3）小白鼠3. 药品与试剂：（1）青霉素（2）链霉素（3）氨苄西林（4）生理盐水（5）抗生素药膏（6）碘酊（7）酒精（8）消毒液五、实验方法与步骤1. 实验动物的选择与准备：（1）选取健康家兔、豚鼠、小白鼠各一只。
（2）实验前禁食禁水12小时。
2. 实验操作：（1）观察动物的一般状况，如精神、活动、食欲、体重等。
（2）进行必要的生理指标检测，如体温、呼吸、心率等。
（3）进行实验室检查，如血液、尿液、粪便等。
（4）观察动物的行为变化，如步态、姿态等。
（5）对动物进行必要的手术操作，如剖腹、开颅等。
（6）进行病理切片制作，如取材、固定、脱水、透明、染色、封片等。
（7）在显微镜下观察病理切片，分析病理变化。
3. 实验结果记录：（1）记录实验动物的生理指标、实验室检查结果。
（2）记录动物的行为变化。
（3）记录病理切片的观察结果。
六、实验结果与分析1. 生理指标、实验室检查结果分析：（1）根据生理指标、实验室检查结果，判断动物的健康状况。
（2）分析生理指标、实验室检查结果与疾病的关系。
2. 行为变化分析：（1）根据动物的行为变化，判断疾病的发生。
（2）分析行为变化与疾病的关系。
3. 病理切片观察结果分析：（1）根据病理切片的观察结果，判断疾病的类型、程度。
（2）分析病理切片与疾病的关系。
七、结论根据实验结果，对动物疾病进行诊断、治疗，并提出预防措施。
八、讨论1. 实验过程中遇到的问题及解决方法。
2. 实验结果与理论知识的结合。
3. 对实验方法、实验条件的改进建议。
九、参考文献[1] 张三，李四. 兽医病理学[M]. 北京：科学出版社，2018.[2] 王五，赵六. 兽医临床诊疗技术[M]. 北京：中国农业出版社，2019.[3] 孙七，周八. 兽医解剖学[M]. 北京：中国农业出版社，2017.[4] 陈九，林十. 兽医临床病理学[M]. 北京：中国农业出版社，2016.[5] 刘十一，李十二. 兽医病理生理学[M]. 北京：科学出版社，2015.。
动物实验报告范本
一、实验名称实验动物的基本操作技术二、实验目的1. 掌握健康小鼠的外观检查方法、性别鉴定、捉拿和固定方法。
2. 熟悉小鼠灌胃给药与小鼠腹腔注射给药等技术。
3. 掌握小鼠颈椎脱臼法处死方法、小鼠脏器系数的概念及其测定方法。
4. 了解实验动物的被毛去除方法、实验动物粪、尿的收集、小鼠血液样本采集方法。
三、实验材料与器材1. 实验动物：健康小鼠若干2. 器材：鼠笼、天平、注射器、灌胃针、止血钳、手术剪、平皿、托盘、烧杯若干。
四、实验方法1. 观察指标（1）小鼠的体型、发育情况；（2）毛发是否清洁浓密有光泽，是否顺贴不蓬乱；（3）行动是否迅速，反应是否灵敏；（4）眼睛是否明亮有神，瞳孔是否清晰等圆；（5）天然孔道是否干净、有无分泌物。
2. 小鼠捉拿（1）右手提起鼠尾，放在鼠笼盖或其他粗糙面上，向后方轻拉，小白鼠则将前肢固定于粗糙面上。
（2）此时迅速用左手拇指和食指捏住小白鼠颈背部皮肤，并以小指与手掌尺侧夹持其尾根部，固定于手中。
3. 小鼠性别鉴定（1）观察肛门与生殖器之间的距离。
雄性大鼠的距离较大，雌性的距离较小。
（2）成年雄鼠尾部可见睾丸，成年雌鼠可见乳头。
4. 小鼠称重（1）打开电子天平，待读数显示稳定后，将平皿置于天平上，去皮。
（2）将小鼠置于平皿中，待读数显示稳定。
5. 灌胃给药（1）将注射器装入药物溶液，装上灌胃针。
（2）将小鼠固定在实验台上，轻轻插入灌胃针，缓慢注入药物。
6. 腹腔注射给药（1）将小鼠固定在实验台上，选择注射部位。
（2）用注射器吸取药物，插入注射部位，缓慢注入药物。
7. 小鼠颈椎脱臼法处死（1）将小鼠固定在实验台上，选择颈椎部位。
（2）用左手握住小鼠头部，右手握住小鼠颈部，迅速将颈椎脱臼。
8. 脏器系数测定（1）取出小鼠脏器，用电子天平称重。
（2）计算脏器系数：脏器重量/体重。
9. 实验动物被毛去除（1）将实验动物固定在实验台上。
（2）用脱毛剂涂抹实验动物被毛。
（3）待脱毛剂起泡后，用刷子轻轻刷去被毛。
生物行为观察报告模板
生物行为观察报告模板1. 实验目的本次实验旨在观察并记录生物（本实验以小白鼠为例）在不同条件下的行为反应，并分析行为背后的生物学意义。
2. 实验材料•小白鼠（数量：10只）•操作台•实验田地（大小：1m*1m）•灯光装置•摄像头•计时器•小白鼠饲料3. 实验步骤1.将10只小白鼠放置在同一笼子中，以保证它们的生活环境和饮食相同。
2.将小白鼠随机分为两组，每组5只。
将一组放置在实验田地中，另一组继续放置在笼子中作为控制组。
3.打开灯光装置，调整灯光亮度为500lx。
4.使用计时器记录实验时间为30分钟。
5.观察小白鼠的行为，每隔1分钟记录一次。
记录内容包括小白鼠的类别（实验组或控制组）、位置（实验田地内或笼子内）、姿态（静止/移动中/攀爬等）和卫生行为（洗脸/梳毛等）。
6.实验结束后，统计数据并对数据进行分析。
4. 数据分析针对本次实验的观察数据，我们进行了以下分析：•在实验田地中，小白鼠的移动距离更长，休息时间更短，洗脸梳毛的行为更多。
•在控制组中，小白鼠更多是静止的，且洗脸梳毛的行为明显减少。
这些数据表明，小白鼠的行为反应受环境影响较大，实验田地中的环境可以促使小白鼠的活跃和卫生行为。
这与小白鼠在野外的行为习性有很大关系，同时也对小白鼠饲养的环境提出了要求。
5. 结论本次实验观察和分析了小白鼠在不同环境下的行为反应。
实验数据表明，小白鼠在实验田地中的行为更为活跃，而控制组则相对静止。
这证明了环境对小白鼠的行为反应具有重要影响，同时也为小白鼠饲养和研究提供了一定的参考意义。
动物实验记录本模板
动物实验记录本模板
1、实验目的和要求
2、实验原理
3、实验步骤及现象，具体的操作步骤如果有现象也要写实验现象比如溶液有颜色变化有沉淀生成。
或者动物实验动物有什么表现
4、实验记录及结果，就是实验最终所得的数字或者是验证性的结果
5、讨论和分析，讨论实验过程应注意什么。
自己的结果如果有差异是怎么造成的。
实验中哪步骤做的不对应该怎么改善首先看精神状态如何，是精神良好还是沉郁，再看背毛是否光滑，然后提起尾巴看肛门周围是否有秽物。
再看看眼睛有么有分泌物增多或者眼睑下垂之类的，关键看你是做什么实验，实验比较有可能影响到哪里就重点看哪里一般看这些就行了吧饮食的话粮食你可以第一天给粮100g 以后每天称一下余粮量就可以知道每天的饮食如何了一只小鼠一个昼夜应该大概能吃5g左右的粮食.。
动物实验实验报告模板
一、实验目的（简要描述实验的目的和预期达到的效果）二、实验材料1. 实验动物：- 种类：_______- 数量：_______- 饲养条件：_______- 饲料：_______2. 实验仪器：- 天平：_______- 移液器：_______- 显微镜：_______- 离心机：_______- 其他仪器：_______3. 实验试剂：- 试剂名称：_______- 浓度：_______- 规格：_______- 供应商：_______三、实验方法1. 实验动物的处理：- 麻醉方法：_______- 处理过程：_______2. 实验操作步骤：- 第一步：_______- 第二步：_______- 第三步：_______- 以此类推...3. 数据收集方法：- 观察指标：_______- 记录方式：_______四、实验结果1. 实验数据记录：- 实验动物编号：_______- 实验指标：_______- 数据记录：_______2. 实验结果分析：- 数据处理方法：_______- 结果分析：_______五、实验讨论1. 实验结果与预期是否一致？2. 实验过程中可能存在的问题及原因分析： - 问题一：_______- 原因分析：_______- 解决方案：_______- 问题二：_______- 原因分析：_______- 解决方案：_______3. 实验结果的临床意义：- 对于疾病诊断和治疗的意义：_______- 对于药物研发的意义：_______六、实验结论（总结实验的主要发现和结论）七、参考文献[列出实验过程中参考的文献]八、附录1. 实验动物来源证明2. 实验仪器清单3. 实验试剂清单4. 实验数据原始记录九、注意事项1. 实验动物福利：确保实验动物在实验过程中受到人道对待。
2. 实验操作安全：严格按照实验操作规程进行，确保实验人员安全。
3. 数据记录准确：确保实验数据的真实性和准确性。
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一. 背景：
本次动物实验相关疾病介绍、国内外相关治疗及研究的现状及结果（含临床、基础）、相关引文摘要等。
二、实验所用器械简介：
三、实验目的
1、使用猪或其他适宜动物为实验模型, 按照临床要求对产品进行模拟
使用，对* *器械的* *性能、* *效应进行测试。
2、通过动物实验取得数据和经验, 以便为产品的临床使用撰写详尽的使
用指南。
3、确定* * 器械置入猪后的最长可回收天数, 以便为临床使用的最长
可回收时间提供参考。
4、研究* *器械置入* *天后的可回收性, 以回答以往实验中未能解决
的* * 器械在置入* * 天后是否可取出的问题。
四、实验模型和材料
1、实验模型
（1）.动物模型：猪，体重：25〜35KG
（2）.体外模型：拟采用透明塑料软管作成的20mm 25mm两
种直径的下腔静脉模型。
2、材料：
（1）* *器械采用XX公司研发生产的器械。
（2）其他手术配套器械采用临床通用器械。
3.过程要求：
本实验开始前必须取得动物道德委员会的许可（注：国外
有此要求，国内仅少数几家大医院有动物伦理委员会）
五.实验设计
动物数量及分组方法：实验动物共22头，在置入器械后分为A和B两组.A组动物采用介入方法取出滤器，B组动物采用外科方法经腹切开方法取出滤器.下腔静
脉滤器置入后饲养观察时间为7、10、12、14、16、20、30、60和90天，具体分组方法见下表。
分组（头）
时间（天）-
A B
7 1 1
10 1 1
12 3 1
14 3 1
16 1 1
20 3 1
30 0 2
60 0 1
90 0 1
六、实验方法：
1、随机选取实验动物以1:1的比例进行* *实验，并记录* *
总结出的操作要求。
7〜20天实验用以观察器械置入后的可回收期，30、60、90天实验用以观察器械置入后的长期通畅情况。
2、所有动物器械取出前应造影复查，并与器械置入时的资料进行对比，判断器
械置入后有无移位、穿孔等异常情况。
3、A 组动物均采用方法取出器械，器械回收取出时均应按无困难、轻度困难、
困难、无法取出四个级别进行回收取出难度的评价。
器械取出后即刻处死动物，取得静脉入口以下下腔静脉标本，经大体、光镜观察内膜损伤情况；
B 组动物采用外科方法经腹切开，将器械连同静脉入口以下下腔静脉一同取
出作为标本，经大体和光镜观察滤器表面内膜生长情况和内皮细胞增殖情况。
4、体外模拟：分别采用尺寸为3*3mm、3*6mm、5*5mm、5*10mm、5*30mm 的
血块50颗/组X2组，测定20mm 25mn W种直径下器械捕获血块的数量。
本项测试可使用回收取出的器械，同一个器械可重复使用。
七.数据采集：
每次手术应记录主刀医生、第一助手、第二助手、器械护士、技师及麻醉师的姓名、记录者，手术日期、手术开始时间、手术结束时间；实验动物的编号、实验动物的体重、第几次手术、实验动物器械的放置位置、实验动物的血管直径、器械的位置并保存影像学资料（电子）。
本实验共有3种实验记录表, 以记录实验过程和采集数据.
八.数据统计学分析：
九.实验组织实验小组成员：指导：十、参考文献：（略）
器械置入实验记录
主刀医生：____________________
第一助手：___________________ 第二助手： ___________________
器械护士：___________________ 技师： _______________________
麻醉师：______________________ 手术日期： __________ 年_月_日
手术开始时间：______ 时_分手术结束时间：_________ 时_____ 分
实验动物编号：_______________ 实验动物体重： _______________
麻醉方法：记录者： _________________ 器械置入途径：颈静脉口股静脉口
该动物置入器械的期限
置入器械部位的血管直径：mn滤器位置：**静脉开口以下mm
器械前跳：mm器械贴壁情况：优口良□差口
并发症情况及存在问题：
取出器械动物实验记录主刀医生：
第一助手：器械护士：第二助手：技师：
麻醉师：手术日期：年月曰
手术开始时间：时分手术结束时间：时分
实验动物编号：实验动物体重：
麻醉方法：记录者：
该动物是第次手术器械取出方法：介入口切腹口
该动物置入器械的期限
置入器械部位的血管直径：mn滤器位置：**静脉入口以下mm
器械移位mm取出难度：无困难□轻度困难0困难□无法取出□ 并发症情况及存在问题：
是否处死：是口否口
**器械体外模拟记录
日期：_____ 年_月_日实验者:
模拟模型的体位：垂直位本次实验注入的：
模拟模型的体位：水平位
本次实验注入的：
统计软件：
统计方法：不同体位模型的拦截能力比较采用卡方检验。
结果另附。