M16C62P实验说明
血小板膜表面CD62P检测活化方法
血小板膜表面CD62P检测
操作步骤
1. 标本采集：
(1)采血管顺序编号。
(2)抽取静脉血，采血管中注入2ml。
(3)于10分钟之内完成血小板激活和染色步骤，操作时应注意
减少人工激活。
注意事项：1、至少要采集10ml全血
2、而且必须用粗针采血
3、如果是用注射器，则将采的血先放入才血管，最后将
剩余的几毫升弃掉或做它用。
4、如果是用采血针采血，先弃掉2ml,然后再往采血管中采
集。
2. 荧光抗体染色：
(1)取2支试管，加入待测外周血标本，两管各加5ul
(2)在对照管中加入CD62P的同型对照抗体、CD61 各20μl
(3)在试验管中加入CD62p抗体和CD61抗体各20μl。
(4)轻轻混匀，室温暗处孵育15-20分钟。
(5)孵育后，加入500ul的PBS（若血小板数目过多，可以多加一
些PBS），混匀后上机检测；若不能立即上机，加入500ul 1%的多聚甲醛溶液固定，24小时内上机分析。
注意事项：
1、在所有操作中动作应轻柔，不可力度过大，因为血小板容易活化
2、方案的建立：
两张图：（1）散点图CD61/SS，圈CD61阳性的血小板（2）直方图CD62P，分析血小板的表达情况
FS，SS均应选择Log方式检测，阈值设在FL1（CD61的荧光通道）上，值可能会比较大，可能在200、300左右。
电子比荷的测定.
实验三：电子比荷的测定一、实验目的1、观察电子束在电场作用下的偏转。
2、观察运动电荷在磁场中受洛仑兹力作用后的运动规律，加深对此的理解。
3、测定电子的比荷二、实验仪器DH4520型电子比荷测定仪包括：洛仑兹力管、亥姆霍兹线圈、供电电源和读数标尺等部分。
仪器采用一体化设计，整个安装在木制暗箱内，便于观察、测量、携带和贮存，如图一所示。
1、洛仑兹力管洛仑兹力管又称威尔尼管，是本实验仪的核心器件。
它是一个直径为153mm的大灯泡，泡内抽真空后，充入一定压强的混合惰性气体。
泡内装有一个特殊结构的电子枪，由热阴极、调制板、锥形加速阳极和一对偏转极板组成，如图二所示。
经阳极加速后的电子，经过锥形阳极前端的小孔射出，形成电子束。
具有一定能力的电子束与惰性气体分子碰撞后，使惰性气体发光，从而使电子束的运动轨迹成为可见。
2、亥姆霍兹线圈亥姆霍兹线圈是由一对绕向一致，彼此平行且共轴的圆形线圈组成。
如图三所示。
当两线圈正向串联并通以电流I，且距离a等于线圈的半径r时，可以在线圈的轴线上获得不太强的均匀磁场。
如两线圈间的距离a不等于r时，则轴线上的磁场就不均匀。
同学们可根据两个单个线圈轴线上P点磁感应强度B的叠加，求出当a=r时，亥姆霍兹线圈轴线上总的磁感应强度B=9×104 I3、供电电源供电电源的前面板如图四所示：偏转电压偏转电压开关分“上正”、“断开”、“下正”三档。
置“上正”时上偏转板接正电压，下偏转板接地。
置“下正”时则相反。
置“断开”时，上下偏转板均无电压接入。
观察与测量电子束在洛仑兹力作用下的运动轨迹时，应置“断开”位置。
偏转电压的大小，由偏转电压开关下面的电位器调节。
电压值从50~250V，连续可调，无显示。
阳极电压阳极电压接洛仑兹力管内的加速电极，用于加速电子的运动速度。
电压值由数字电压表显示，值的大小由电压表下的电位器调节。
实验时的电压范围约100~200V。
线圈电流线圈电流（励磁电流）方向开关分“顺时”、“断开”、“逆时”三档。
维生素C的测定(2,6-二氯酚靛酚滴定法
实验一维生素C的测定(2,6-二氯酚靛酚滴定法1、测定原理2,6-二氯酚靛酚滴定法用于测定还原型抗坏血酸。
抗坏血酸分子中存在烯醇式结构（HO—C═C—OH），因而具有很强的还原性，还原型抗坏血酸能还原2,6-二氯酚靛酚染料。
2,6—二氯酚靛酚染料在酸性溶液中呈红色，在中性或碱性溶液中呈蓝色。
因此，当用2,6—二氯酚靛酚染料滴定含有抗坏血酸的酸性溶液时，被还原后红色消失成为无色的衍生物，可作为维生素C含量测定的滴定剂和指示剂。
还原型抗坏血酸还原染料后，本身被氧化为脱氢抗坏血酸。
当抗坏血酸全部被氧化时，滴下的2,6—二氯酚靛酚溶液则呈红色。
在测定过程中当溶液从无色转变成微红色时，表示抗坏血酸全部被氧化，此时即为滴定终点。
根据滴定消耗染料标准溶液的体积，可以计算出被测定样品中抗坏血酸的含量。
在没有杂质干扰时，一定量的样品提取液还原标准染料液的量、与样品中所含抗坏血酸的量成正比。
反应式如下：二、实验仪器与试剂1.仪器组织捣碎机；水果刀；托盘天平；精密天平；称量纸；卷纸；台式离心机；电炉；吸耳球；玻璃棒；蒸馏水，蒸馏水洗瓶；记号笔、标签纸、定性滤纸；20cm镊子；5ml、10ml移液管、(微量)酸式滴定管、漏斗；漏斗架；50ml、250ml、 500ml 、1000ml烧杯；10ml 、500 ml、1000 ml量筒；100ml具塞量筒(或普通量筒)；100mL、250mL棕色容量瓶；50ml或100ml三角烧瓶。
2.原料及试剂本实验材料是，用水均为蒸馏水，试剂纯度均为分析纯度。
(1)2%草酸溶液：草酸20g溶于700ml蒸馏水中，稀释至1000ml。
(2)1%草酸溶液：取上述2%草酸溶液450ml，稀释至900ml。
(3)抗坏血酸标准溶液：称取抗坏血酸20mg，用适量1%草酸溶液溶解后，移入100mL棕色容量瓶中，并以1%草酸溶液定容，振摇混匀，备用。
(4)0.02% 2,6-二氯酚靛酚溶液：称取碳酸氢钠52.2mg，溶解在200mL沸水中。
pcr实验原理及注意事项
PCR疑难解答当PC R结果不®满意时，首先检査以下几方面并遵照执行＞将PCR反应得试管与反应板紧贴。
4当酶反应混合物以7（rc“热启动"开始循环时，切记在加入酶后稍微振荡一下,因为在0、2-ml得PCR 管中不能均匀传热。
A不要随意减少dN T P得用it它就是一个系统得因素，必须与其它成份保持平衡。
对于有问题得PCR反应，例如模板得量少，模板不纯与环状模板等，先尝试加Ta q酶前得体系进行预变性，后加模板进行正常PC R扩增。
4没有扩增产物：在提供MgCI2缓冲液中，以0、2 Smmol/L为梯度增加MgC 1 2浓度;无MgCI 2得缓冲液以0、5 mmol/L为梯度增加MsCI2浓度。
》泳道中出现模糊条带，如果DNA模板中存在RNA,则按上述提示浓度补加MgCI2,因为在PCR反应中可能缺少游离得Mg 2 +。
A检査退火温度与变性条件，如果有需要得话，可降低退火温度。
检査模板与引物得用量。
增加循环次数与/或模板DNA得用量。
泳道中出现模糊条带：减少循环次数或模板DNA得用虽。
提高退火温度，但不要超过689。
重新设计引物或设计更长得引物。
其她值得注意得条件4建议使用0、2-ml薄壁管。
厚壁管在9 2・C时不能有效地使模板变性。
d最佳反应体积为50nil,推荐用30ml矿物汕覆盖（对盖子加热得P CR仪可以不加）。
大多数反应中,0、75ml （0、5〜iml ）得酶量在大多数情况下可以得到满意得结果“ A 建议使用1、7 5mmo 1 /L MgCI2 : 35 0 mmol/L dN T P 或2、25mm ol/L MgCI2 : SOOmmol / L dNTP组合得混合物。
然而要得到最佳结果，优化Mg2+得浓度就是必需得。
基因组DNA模板得质量显著影响PC R反应。
因此推荐使用琼脂糖凝胶电泳来检测DNA 得长度。
DNA片段长度可以超过50kb,传统得基因组DNA能扩增片段至Wkb。
2,6-二氯酚靛酚法测定维生素C含量
2,6-二氯酚靛酚法测定维生素C 含量一、目的要求掌握法测定Vc 的方法。
二、实验原理食品中Vc 包括还原型和氧化型两种类型，当食品放置时间长时或经过烹调处理后，其中有相当一部分维生素C 转化为氧化型，食品中的Vc 氧化酶也可以使还原型Vc 转化为氧化型，氧化型Vc 仍具有部分的活性，新鲜食物中的Vc 主要以还原型的形式存在，测定还原型Vc 可粗略了解食品中Vc 的浓度。
还原型Vc 能使染料2,6-二氯酚靛酚还原，而本身被氧化，在酸性条件下2,6-二氯酚靛酚酸呈红色，因此，当碱性氧化型的蓝色染料2,6-二氯酚靛酚滴定含Vc 的酸性溶液时，刚开始滴下染料立即被样品中的还原型Vc 还原成无色，随着样品溶液中的Vc 被氧化，再滴下的染料就渐渐使溶液变为粉红色，当样品从无色变成微红色且15s 不退色，表明样品中还原型Vc 全部被氧化，即此时已达到滴定终点。
反应式见指导书。
三、试剂器材① 2% 草酸溶液 ，1% 草酸溶液② 0.05mg/ml 标准Vc 溶液③ 0.2mg/ml 2,6-二氯酚靛酚溶液（染料）四、实验步骤1、维生素C 提取液（1份/班）称取凉瓜200g ， 切碎，加入2% 草酸200ml ，匀浆机30S （分两次进行，防止过热）2、标准Vc 溶液与空白的滴定微量滴定管中装好0.2mg/ml 2,6-二氯酚靛酚溶液，准确吸取标准Vc 溶液1ml,置于三角瓶中，加入1% 草酸9ml ，滴定至微红色，15S 不退色，由所用染料体积计算1ml 染料相当于多少mg Vc3、Vc 样品提取液的滴定准确提取滤液，各取1ml ，加入1% 草酸溶液9ml ，置于三角瓶中滴定。
五、结果处理 100m m g 100/mg c 01⨯⨯⨯⨯-=D C B A V V V V V ）（样品）含量（A V :：为滴定样品所耗用染料的平均体积（ml ）；B V ：为滴定空白对照所耗用染料的平均体积（ml ）；C V ：为样品提取液的总体积（ml ）（本实验500ml ）D V ：为滴定时所取样品提取液体积（ml ）；1m ：为1ml 染料能氧化Vc 的质量（mg ）；B V V -⨯=01105.0m ,0V 为滴定标准C V 所耗用染料体积（ml)； 0m ：待测样品质量（g ）（本实验为200g ）六、实验原始数据以下数据均为所耗用染料的体积（ml ）：七、数据处理由公式100m m g 100/mg c 01⨯⨯⨯⨯-=D C B A V V V V V ）（样品）含量（，可以求得： ）（）（样品）常温（g mg V 100/5.810020014.0-2.3105.05004.03.2g 100/mg c =⨯⨯⨯⨯⨯-=同理：）（样品）冷冻（g mg V 100/9.4g 100/mg c =）（样品）加热（g mg V 100/2.6g 100/mg c =八、结论由实验数据处理结果可以得到：常温下新鲜的凉瓜维生素C 最多，而加热和冷冻都会对维生素C 有破坏作用，其中冷冻尤为严重.。
尿镉的测定方法
尿镉的测定方法WS/T 32—1996尿中镉的石墨炉原子吸收光谱测定方法1 主题内容与适用范围本标准规定了尿中镉的石墨炉原子吸收光谱测定方法。
本法最低检测浓度为0.28μg/L。
本标准适用于正常人和接触镉的工人尿中镉的测定。
2 原理尿样加基体改进剂和稀硝酸溶液稀释后，直接进样，在228.8nm 波长下，用石墨炉原子吸收光谱法测定镉的浓度。
3 仪器3.1 原子吸收分光光度计，具石墨炉和背景校正装置。
3.2 镉空心阴极灯。
3.3 微量移液管，10μL。
3.4 具塞试管，10mL。
3.5 聚乙烯塑料瓶，500mL。
3.6 尿比重计。
3.7 玻璃和塑料器皿均用20%(V/V)硝酸浸泡过夜，用去离子水冲洗干净，避尘晾干备用。
4 试剂4.1 实验用水：为去离子水或石英玻璃亚沸蒸馏水。
4.2 硝酸，ρ20＝1.42g/mL，高纯。
4.3 磷酸氢二铵，分析纯。
4.4 金属镉，光谱纯。
4.5 硝酸溶液，1%(V/V)。
4.6 基体改进剂：称取1g磷酸氢二铵，加硝酸溶液(4.5)溶解，并稀释至100mL。
4.7 空白尿样：取不接触镉的正常人尿，按体积的1%比例加入硝酸(4.2)，混匀。
4.8 镉标准溶液4.8.1 标准贮备液：称取0.5000g金属镉，加20mL硝酸(4.2)，加热溶解后，将溶液移入500mL容量瓶中，用水稀释至刻度，此溶液1mL＝1.0mg镉。
4.8.2 临用前，用硝酸溶液(4.5)稀释成0，30.0，50.0，100.0，200.0，300.0，400.0μg/L的标准应用溶液。
4.9 质控样：用标准尿样、加标的模拟尿、接触者混合尿样或加标的正常人混合尿作质控样。
5 采样、运输和保存用塑料瓶收集尿样，混匀后，尽快测量比重和体积，在尿中按1%(V/V)的比例加入硝酸(4.2)，室温下运输，于4℃下可保存两个月。
分析前要将尿样充分摇匀。
6 分析步骤6.1 仪器操作条件参照下列仪器操作条件，将原子吸收分光光度计调节到最佳测定状态。
usp62中文
<62>非无菌产品的微生物学检查：指定微生物检查导言以下描述的这些检测将使确定特定微生物不存在或数量在限度内的测定得以进行，这些微生物可以在描述的条件下进行检测。
这些测试主要设计用于测定某种物质或制备品是否符合已确立的微生物质量标准。
当用于此目的时，遵循以下所给的说明，包括待取样品的数量，并按照以下所述来解释结果。
可以使用替代的微生物规程，包括自动化方法，只要它们与药典方法的同等性得到论证。
通用规程按照在非无菌产品微生物学检查：微生物计数检查法<61>中的描述进行样品制备。
如果供试品具有抗菌活性，则按照非无菌产品微生物学检查：微生物计数检查法<61>中的描述尽可能将其去除或中和。
如果表面活性物质被用于样品制备，则必须按照在非无菌产品微生物学检查：微生物计数检查法<61>中的描述来论证其对微生物不具毒性以及其与所使用的任何灭活剂的兼容性，。
培养基的生长促进和抑菌性能以及测试的适用性在存在供试品的情况下，此项测试检测微生物的能力必须得到确立。
如果在测试性能或产品中作了变更且这些变更可能影响测试的结果，则其适用性必须得到确认。
供试菌株的制备按下面所述，使用标准化的稳定供试菌株悬浮液。
使用菌种保存技术（种子批系统），以便用于接种的可萌发微生物从最初的主种子批开始不超过5代。
好氧微生物将每个供试细菌菌株单独置于装有大豆酪蛋白消化物肉汤培养基或者大豆酪蛋白消化物琼脂培养基中容器内，在温度30o至35 o之间培养18至24小时。
将白色念珠菌的供试菌株单独置于（沙氏）葡萄糖琼脂培养基或者（沙氏）葡萄糖肉汤中，在温度20o至25 o之间培养2至3天。
金黄色葡萄球菌如ATCC 6538, NCIMB 9518, CIP 4.83,或 NBRC 13276绿脓杆菌如ATCC 9027, NCIMB 8626, CIP82.118, 或NBRC 13275Esherichia coli 大肠杆菌如ATCC 8739, NCIMB 8545, CIP53.126, 或NBRC 3972沙门氏肠道菌，肠道血清型为鼠伤寒沙门氏菌，作为替代品如ATCC 14028沙门氏肠道菌，肠道血清型为阿邦尼沙门氏菌如NBRC 100797, NCTC 6017, 或 CIP 80.39白色念珠菌如ATCC 10231, NCPF 3197, IP 48.72,或NBRC 1594使用pH值7.0的缓冲氯化钠—蛋白胨溶液或pH值7.2的磷酸盐缓冲液来制备检测供试悬浮液。
2,6-二氯酚靛酚滴定法定量测定维生素C
2,6-二氯酚靛酚滴定法定量测定维生素C文章来源：/目的和要求掌握2,6-二氯酚靛酚法测定维生素C的原理和方法。
原理维生素C (Vc)又称抗坏血酸(ascorbic acid)。
最初于1928年从牛的肾上腺皮质中提取出结晶物，证明对治疗和预防坏血病有特殊功效，因此称为抗坏血酸。
氧化型2,6-二氯酚靛酚在酸性溶液中呈粉红色，在中性或碱性溶液中呈蓝色，还原型2,6-二氯酚靛酚无色。
当用此染料滴定含有Vc的酸性溶液时，在Vc 未全部氧化前，滴下的染料立即被还原成无色；一旦溶淀中的Vc全部被氧化时，则滴下的染料立即使溶液显示粉红色，此时即为滴定终点，表示溶液中的Vc刚刚被氧化完全，从滴定时2,6一二氯酚靛酚标准液的消耗量，可以计算出被检物质中Vc的含量。
操作步骤1. 样液制备称取苹果和青椒各5g，分别加少量2%草酸(1%草酸因浓度太低而不能抑制抗坏血酸氧化酶作用)用研钵磨成浆，漏斗(+脱脂药棉)过滤，滤液转入25ml容量瓶后用2%草酸定容。
2. 标准液滴定准确吸取0.1mg/ml的标准抗坏血酸溶液各1.0ml，分置两个100ml锥形瓶中，加入1%草酸9.0ml，用微量滴定管以0.1%的2,6-二氯酚靛酚滴定至淡红色，并保持15s即为终点。
由所用染料的体积计算出T值(平均值)，即1ml染料相当于多少mg的Vc。
3. 样液滴定准确吸取已制备的样品滤液各两份，每份10.0ml分别放入两个100ml锥形瓶内，滴定方法同前注意：1. 滴定过程宜迅速，一般不超过2min，因为样品中某些杂质亦能还原二氯酚靛酚，尽管其还原能力较弱且还原速度较Vc更慢。
2. 滴定所用染料宜控制于1~4ml，如果样品含Vc含量过高/低，可酌量增/减样液)。
3. 样品提取液应避免日光直射，否则会加速Vc氧化。
计算m=VT/m0×100式中m：100g样品中含Vc的质量(mg)V：滴定时所用去染料体积(ml)T：每毫升染料能氧化Vc质量数(mg/ml)m0：10ml样液相当于含样品之质量数(g)试剂和器材试剂1. 2%草酸溶液：草酸2g溶于100ml蒸馏水中。
6 金属酞菁的合成、表征和性能测定
实验6 金属酞菁的合成、表征和性能测定（一） 金属酞菁的合成一、 实验目的1．通过合成酞菁金属配合物，掌握这类大环配合物的一般合成方法，了解金属模板反应在无机合成中的应用。
2．进一步熟练掌握合成中的常规操作方法和技能，了解酞菁纯化方法。
二、 实验原理自由酞菁（H 2Pc ）的分子结构见图6.1(a)。
它是四氮大环配体的重要种类，具有高度共轭π体系。
它能与金属离子形成金属酞菁配合物(MPc)，其分子结构式如图6.1(b)。
这类配合物具有半导体、光电导、光化学反应活性、荧光、光记忆等特性。
金属酞菁是近年来 NN N H N N N N N H图6.1(a) 自由酞菁分子结构图图6.1(b) 金属酞菁分子结构图广泛研究的经典金属大环配合物中的一类，其基本结构和天然金属卟啉相似，且具有良好的热稳定性和化学稳定性，因此金属酞菁在光电转换、催化活化小分子、信息储存、生物模拟及工业染料等方面有重要的应用。
金属酞菁的合成一般有以下两种方法：(1) 通过金属模板反应来合成，即通过简单配体单元与中心金属离子的配位作用，然后再结合形成金属大环配合物。
这里的金属离子起着一种模板作用。
（2）与配合物的经典合成方法相似，即先采用有机合成的方法制得并分离出自由的有机大环配体，然后再与金属离子配位，合成得到金属大环配合物。
其中模板反应是主要的合成方法。
金属酞菁配合物的合成主要有以下几种途径(以2价金属M 为例)：(1) 中心金属的置换：MX + LiPc MPc + 2LiX 室温（2）以邻苯二甲腈为原料：MX + 4 MPc CN CN 300 C o n（3）以邻苯二甲酸酐、尿素为原料：MX ( M ) + 4 或＋n COCO O CO(NH 2)2200~300 C o(NH 4)2MoO 4 MPc + H 2O + CO 2（4）以2—氰基苯甲酸胺为原料：M + 4 M CN CONH 2250 C o本实验按反应（3）制备金属酞菁，原料为金属盐、邻苯二甲酸酐和尿素，催化剂为钼酸铵。
[EP}EP6 2.6.1 无菌检查 中文版
2.6 生物检查2.6.1 无菌检查无菌检查法系用于检查药典要求无菌的生物制品、医疗器具、原料、辅料及其他品种是否无菌的一种方法。
若供试品符合无菌检查法的规定，仅表明了供试品在该检验条件下未发现微生物污染。
在本文的最后，有如何采用检查法检查无菌的指导。
微生物污染的预防无菌检测试验应该在无菌的环境下进行。
通过预防，我们可以避免微生物对试验的污染。
同时，这些预防也应该不会对检查的微生物有影响。
工作的环境应该定期进行检查，进行合适的对照试验（遵循比如欧共体指示中的或GMP中的要求）。
培养基及孵化温度培养基可按以下处方制备，亦可使用按该处方生产的通过生长促进试验的现成的培养基。
以下培养基适用于无菌检查。
硫乙醇酸盐流体培养基是厌氧菌检查的首选培养基，同时，它也可用于需氧菌检查。
大豆消化酪蛋白脉琼脂培养基适用于霉菌和需氧菌检查。
也可以使用。
其他通过细菌生长促进试验以及验证试验的培养基。
硫乙醇酸盐流体培养基L -胱氨酸 0.5克 颗粒琼脂（水分含量不超过百分之十五） 0.75克 氯化钠 2.5克 葡萄糖 一水/无水 5.5克/5.0克 酵母膏（水溶性） 5.0克 胰酶蛋白胨 15.0克 琉基乙酸钠 0.5克 或琉基乙酸 0.3毫升 新配制的刃天青钠溶液 1.0毫升 （1 g / L的 刃天青钠）纯水 1000毫升 灭菌后培养基的pH值应为 7.1 ± 0.2将L -胱氨酸、琼脂、氯化钠、葡萄糖、酵母膏以及胰酶蛋白脉与纯水混合，加热至完全溶解。
然后往溶液中加入琉基乙酸钠或琉基乙酸使溶解，必要时，加入1M氢氧化钠调节溶液的pH，使灭菌后的pH 值为7.1士0.2。
如需过滤，再次加热溶液不必沸腾，趁热用浸湿的滤纸过滤，加刃天青钠溶液并混和均匀，将培养基转移至适宜的可给出培养基表面深度比例的容器中，这样，在培养期结束时，显示的氧化层颜色变化不得超过培养基深度的1/2。
采用有效的方法对培养基进行灭菌。
如果贮存，应贮存在温度介于2-25℃、无菌密闭的容器中。
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嵌入式课程设计实验说明本文提到的资料均可在ftp上下载
ftp 211.69.206.158：21
用户名m16c
密码m16c
M16C/62P教学平台实验项目
基础性实验
1.LED跑马灯实验
2.按键输入实验
3.LCD显示实验
4.定时器实验
5.串口通信实验
关于这些实验的说明《实验手册》有详细的说明，该手册可以在ftp上下载：211.69.206.158：21，用户名和密码都为m16c。
通过这些实验学习M16C芯片，熟悉M16C/61P开发板的使用。
扩展性实验
1.在uCOS-II平台下的程序开发
2.嵌入式文件系统应用实验
3.嵌入式文件系统移植
4.嵌入式以太网实验
在uCOS-II平台下的程序开发
实验目的：
学习uCOS-II操作系统，并学会在uCOS-II下编程
实验内容：
学习在uCOS-II平台下的程序开发，在uCOS-II下创建任务，完成基础性实验中实现的功能。
可以在这基础上结合开发板的硬件做更综合性的开发工作。
提供移植好uCOS-II的完整的工程文件，并创建了一个简单的任务点亮LED，作为参考的实验案例。
在附录中提供了关于这个实验案例的简单说明。
嵌入式文件系统应用实验
实验目的：
学习文件系统的知识，并应用于嵌入式系统
实验内容：
学习文件系统知识，主要针对FA T（File Allocation Table）系列。
了解SD卡的结构。
采用实验套件提供的EFSL（Embedded Filesystem Library），以SD卡为存储介质，在嵌入式系统中实现文件的相关操作。
实验套件提供移植好的EFSL工程文件，在此基础上调用EFSL提供的API 接口函数实现文件操作。
关于这个工程文件在《实验手册》有相关说明，至于EFSL的API接口函数请参考《EFSL接口及编程指南》。
实验设备：
需要自己准备一张SD卡
嵌入式文件系统移植
实验目的：
学习文件系统的知识，主要针对FA T（File Allocation Table）系列；了解SD 卡结构；学习SPI通信。
实验内容：
目前有许多用于嵌入式系统的文件系统，很多是开源的，比如FatFs，可以在网上下载源码。
选择其中一款文件系统，移植到开发板上。
主要工作是编写SD卡的驱动。
实验设备：
需要自己准备一张SD卡
嵌入式以太网实验
实验目的：
学习嵌入式以太网，学会使用LwIP（Light Weight IP，一个开源的TCP/IP 堆栈）
实验内容：
实验套件提供了移植好的LwIP工程文件，调用LwIP的RAW API函数实现以太网通信。
更近一步，实现http协议，在PC机的浏览器上显示开发板输出的信息。
有关LwIP工程文件在《实验手册》有相关说明，对与LwIP的RAW API 函数请参考《LwIP接口RAW API介绍》。
实验设备：
需要自己准备一条网线，如果与PC机相连，请使用交叉网线。
附录
M16C62P教学平台ucos实验
在UCOS-II平台下编程
实验目的
1.初步了解M16C/62P实验板的基本结构
2.学习M16C/62P的I/O端口编程
3.熟悉UCOS-ii的工作原理
4.掌握UCOS-ii平台下的编程方法
实验内容
利用UCOS-II实现开发平台的程序控制，提供范例程序实现4个LED的闪烁控制。
实验设备
1.M16C/62P实验开发板
2.High-performance Embedded Workshop 集成开发环境
3.串口连接线，电源
实验原理
系统平台I/O的控制原理和方法在基本实验中的说明已经很详细，这里就不作说明。
UCOS-ii的工作原理是上课的基本内容，大家应该掌握，这里提供移植好的工程范例。
可以根据自己的兴趣实现其他I/O的控制。
编程实例
APP.c源程序代码
#include <includes.h>
static OS_STK AppTaskStartStk[APP_TASK_START_STK_SIZE]; static void AppTaskStart (void *p_arg);
void main(void)
{
MCU_Init(); //开发板的一些初始化操作，这个可以根据需要改动
OSInit(); //ucos初始化
OSTaskCreateExt(AppTaskStart, //创建开始任务
(void *)0,
(OS_STK*)&AppTaskStartStk[APP_TASK_START_STK_SIZE - 1],
APP_TASK_START_PRIO,
APP_TASK_START_PRIO,
(OS_STK *)&AppTaskStartStk[0],
APP_TASK_START_STK_SIZE,
(void *)0,
OS_TASK_OPT_STK_CHK | OS_TASK_OPT_STK_CLR);
OSStart(); //多任务开始调度
}
static void AppTaskStart (void *p_arg)
{
INT16U i = 0;
INT16U delay = 0;
(void)p_arg;
Tmr_TickInit(); //节拍初始化
while (1) {
delay++;
i = delay % 2;
LedSignalOut(LEDALL,i); //这个函数就是你们基本实验中的控制函数, //放在BSP.C中，可以添加其他控制函数提供给UCOS来调度
OSTimeDlyHMSM(0, 0, 0, 100); //100ms执行一次
}
实验过程与实验结果
实验过程
参考《程序调试过程》技术文档
1.实验板准备工作：使用串口线将COM1口和PC机连接，确认右下角的4个拨码开关已全部拨至OFF，并接上电源线。
检查无误后，拨动右上角的电源开关，此时能观察到电源指示灯亮，否则应断开电源开关并检查连线。
2.启动High-performance Embedded Workshop集成开发环境，按指定步骤创建新的工作区与工程。
这里建议使用提供的范例工程，因为有关编译器的一些设置比较复杂，很容易出错。
3.源文件都放在SOURCE文件夹下面，跟UCOS相关的代码放在SOURCE文件夹下的Ucos-II下，这里的文件不要改动。
跟M16C平台相关的代码放在BSP文件夹下面，跟自己的应用相关的程序放在APP文件夹下面。
文件夹里面的“sect30.inc”、“ncrt0.a30”和基本实验中的文件内容不一样，不要随意更换，否则UCOS跑不起来。
4.参考《程序调试过程》技术文档进行相关调试工作。
特别注意：在调试的时候全速运行GO了以后遇到OS_EXIT_CRITICAL()的时候会停下来，这个时候再按
一下go就可以看到LED的闪烁了。
实验结果
开发板上的LED1、LED2、LED3、LED4闪烁点亮。