病理生理实验：急性右心衰
急性右心衰实验
实验局限性及未来展望
• 实验使用了小规模动物模型，尚未进行临床试验。 • 实验结果可能受其他因素影响，需要进一步验证。 • 未来，我们希望进行更大规模的研究，将实验结果应用到临床实践中。
感谢致辞
感谢大家的关注和支持。我们将继续努力，为改善急性右心衰患者的生活质 量做出更大的贡献。
急性右心衰实验
欢迎来到本次急性右心衰实验的演示。通过深入研究，我们旨在探索新的治 疗方式以改善急性右心衰患者的生活质量。
实验目的
发现新的治疗方法
通过实验，我们希望发现针对急性右心衰的新的治疗方法，以提高患者的生存率和生活质量。
确定有效的药物
我们的目标是确定针对急性右心衰最有效的药物，以便医生可以更好地为患者进行个体化的 治疗。
实验结果
1 药物A显著改善症状
通过实验，我们发现药物A对急性右心衰具有显著的疗效，能够缓解患者的症状并改善心 功能。
2 药物B无明显改善作用
相比之下，药物B在急性右心衰的治疗方面表现不佳，对症状和心功能的改善效果有限。
3 药物C潜在治疗效果
药物C在实验中显示出潜在的治疗效果，但仍需进一步研究以确定其安全性和疗效。
实验分析
药物A 药物B 药物C
显著改善，安全性高 效果一般，需副作用监测 潜在效果，需进一步验证
通过对实验结果的分析，我们可以得出药物A对急性右心衰的治疗效果最佳，药物B效果一般，而药物C存在一 定的潜在治疗效果。
实验结论
综上所述，我们的实验结果表明药物A具有显著的治疗效果，对急性右我们也需要注意实验局限性，并进一步研究和验证这些药物的安全性和长期疗效。
了解疾病机制
通过实验，我们希望深入了解急性右心衰的疾病机制，以便开发更精确的诊断方法和治疗方 案。
急性右心衰竭_实验报告
一、实验目的1. 复制动物急性右心衰竭模型，观察右心衰竭时心功能的变化。
2. 探讨急性右心衰竭的病理生理机制。
3. 分析急性右心衰竭的治疗方法及疗效。
二、实验原理急性右心衰竭是指右心室收缩或舒张功能障碍，导致心输出量不足，引起体循环淤血和脏器灌注不足的一系列临床综合征。
本实验通过快速增加右心室的前、后负荷，复制急性右心衰竭模型，观察心功能变化，分析其病理生理机制，并探讨治疗方法及疗效。
三、实验材料1. 实验动物：家兔（体重2-3kg）6只。
2. 实验仪器：电子血压计、心电监护仪、血气分析仪、超声心动图仪、手术器械、注射器、生理盐水、液体石蜡、呋塞米、毒毛花甙K、卡托普利、肼屈嗪等。
3. 实验药品：中分子右旋糖苷、呋塞米、毒毛花甙K、卡托普利、肼屈嗪等。
四、实验方法1. 实验分组：将6只家兔随机分为实验组和对照组，每组3只。
2. 模型复制：实验组通过快速输注中分子右旋糖苷（右旋70）增加右心室前负荷，缓慢静脉注射液体石蜡形成肺小动脉栓塞，增加右心室后负荷，复制急性右心衰竭模型。
3. 指标观察：在模型复制前后，观察两组动物的心率、血压、心电图、血气分析、超声心动图等指标。
4. 治疗干预：实验组给予呋塞米、毒毛花甙K、卡托普利、肼屈嗪等药物治疗，观察治疗效果。
五、实验结果1. 心率、血压：实验组动物在模型复制后心率明显加快，血压下降；治疗后，心率、血压逐渐恢复正常。
2. 心电图：实验组动物在模型复制后出现ST-T改变，治疗后逐渐恢复正常。
3. 血气分析：实验组动物在模型复制后动脉血氧分压（PaO2）降低，二氧化碳分压（PaCO2）升高；治疗后，PaO2逐渐升高，PaCO2逐渐降低。
4. 超声心动图：实验组动物在模型复制后右心室射血分数（RVEF）降低，右心室舒张末期直径（RVEDD）增大；治疗后，RVEF逐渐升高，RVEDD逐渐减小。
六、实验讨论1. 急性右心衰竭的病理生理机制：本实验通过快速增加右心室的前、后负荷，复制急性右心衰竭模型，观察到动物出现心率加快、血压下降、心电图ST-T改变、血气分析PaO2降低、PaCO2升高、超声心动图RVEF降低、RVEDD增大等表现，与临床急性右心衰竭的病理生理变化相符。
急性右心衰竭 实验报告
急性右心衰竭实验报告急性右心衰竭实验报告摘要：急性右心衰竭是一种严重的心血管疾病，其发病机制尚不完全清楚。
本实验旨在探究不同因素对急性右心衰竭的影响，并分析其可能的发病机制。
通过动物实验，我们观察了心肌缺血、心肌梗死、肺动脉高压等因素对急性右心衰竭的影响，并研究了相关的生理指标变化。
实验结果表明，心肌缺血和心肌梗死是急性右心衰竭的重要诱因，而肺动脉高压则是其常见的合并症。
这些发现有助于进一步理解急性右心衰竭的发病机制，为临床诊断和治疗提供了重要的参考依据。
引言：急性右心衰竭是一种心血管疾病，其临床表现为心脏右侧泵功能不全，导致肺循环淤血和体循环低灌注。
尽管对急性右心衰竭的研究已经取得了一定的进展，但其发病机制尚不完全清楚。
因此，本实验旨在通过动物实验，探究不同因素对急性右心衰竭的影响，并分析其可能的发病机制，以期为该疾病的临床诊断和治疗提供科学依据。
方法：本实验选取实验动物（大鼠）进行研究，将其分为对照组和实验组。
对照组不进行任何处理，实验组则分别进行心肌缺血、心肌梗死和肺动脉高压的诱导。
通过监测动物的心功能指标、肺循环指标以及血液生化指标的变化，来评估急性右心衰竭的发生程度和可能的发病机制。
结果：实验结果显示，在心肌缺血和心肌梗死诱导的实验组中，动物出现了明显的右心室功能减退，伴随着肺循环淤血和体循环低灌注的表现。
心肌缺血和心肌梗死导致了心肌细胞的坏死和纤维化，进而影响了心肌的收缩功能和泵血能力。
而在肺动脉高压诱导的实验组中，动物出现了右心室肥厚和扩张，以及肺循环高压的表现。
肺动脉高压导致了肺循环阻力的增加，进而使右心室承受更大的负荷，最终导致右心室功能减退。
讨论：通过本实验的结果可以看出，心肌缺血和心肌梗死是急性右心衰竭的重要诱因。
心肌缺血和心肌梗死导致心肌细胞的坏死和纤维化，进而影响了心肌的收缩功能和泵血能力。
这与临床上急性右心衰竭常见于冠心病等心肌缺血性疾病的观察结果相吻合。
另外，肺动脉高压也是急性右心衰竭的常见合并症。
急性右心衰竭的复制及抢救实验报告
急性右⼼衰竭的复制及抢救实验报告急性右⼼衰竭的复制与抢救⼀、实验⽬的1、通过快速增加右⼼室的前、后负荷，复制急性右⼼衰。
2、观察急性右⼼衰时⾎流动⼒学变化及组织器官机能代谢改变，在对这些⽣理指标变化分析思考的基础上，加深对⼼⼒衰竭发⽣机制及对机体影响的理解。
3、设计抢救⽅案，加深对⼼衰防治原则及所⽤药物药理作⽤的理解，培养独⽴分析问题、解决问题的能⼒。
⼆、实验原理本次实验快速输注中分⼦右旋糖苷（右旋70），右旋糖苷分⼦量较⼤，不易渗出⾎管，可提⾼⾎浆胶体渗透压，从⽽快速扩充⾎容量，导致⾎流⾼动⼒循环状态，静脉回流增加，⼼脏过度充盈，⼼输出量初期相应增加，增加右⼼室前负荷，此时右⼼室前负荷显著增加，供氧相对不⾜，能量消耗过多，⼼脏失代偿状态⼼衰将必然发⽣。
缓慢静脉注射38o C液体⽯蜡，液体⽯蜡在⾎液中分散形成的⼩脂滴导致肺⼩动脉栓塞,机体应激反射性地引起全肺⼩⾎管收缩，增加右⼼室后负荷，导致右⼼衰竭。
抢救原则：去处病因，然后通过应⽤呋塞⽶（利尿药）、毒⽑花甙K（强⼼甙类）及卡托普利（⾎管紧张素转化酶抑制药）、肼屈嗪（扩⾎管药）等药物，达到利尿、增强⼼肌收缩⼒和扩张⾎管使⼼衰得以缓解的⽬的。
三、实验对象家兔（2-3Kg）四、实验器材和药品略五、操作步骤（⼀）取兔、称重、⿇醉、固定(⼆)⼿术1、⽓管插管：颈部剪⽑，沿甲状软⾻⾄胸⾻上缘，颈部正中切⼝，切开⽪肤5-7cm，逐层钝性分离⽪下组织及肌⾁，游离出⽓管，⽓管下⽅穿⼀粗线，在⽓管软⾻环4-5环间做⼀倒“T”形切⼝，插⼊⽓管插管，并结扎固定。
2、分离左侧颈总动脉、右侧颈静脉，分别下穿两线备⽤。
3、肝素抗凝：⽿缘静脉注射1%肝素⽣理盐⽔1ml/kg4、左颈动脉插管：游离出左侧颈总动脉，并在远⼼端结扎，以动脉夹夹闭近⼼端，在颈总动脉前壁剪⼀斜⾏切⼝，将已经作好准备的动脉插管（⾎压换能器头端直⽀⼩管连接动脉插管,侧⽀⼩管连接三通管;⽤注射器将⽣理盐⽔通过侧⽀三通管缓慢注⼊传感器头和动脉插管内，将传感器头和动脉插管内的空⽓排尽。
急性右心衰竭
急性右心衰竭【目的和原理】由耳缘静脉缓慢注入栓塞剂，经静脉回流至肺脏，并栓塞在肺循环内，引起肺动脉高压，即右心室后负荷增加。
如再输入大量生理盐水，使回心血量大大增加，则在右心室后负荷增加的基础上，又增加了前负荷，右心负荷过重，导致急性右心衰竭，其症状越来越重，甚至出现腹水，直至动物死亡。
本实验要求掌握急性右心衰竭模型的制备方法。
观察复制过程中机体出现的表现，理解其发生机制。
【实验对象】兔，体重2.5kg以上。
【实验器材和药品】兔手术台、哺乳类手术器械一套、中心静脉压测定装置、呼吸描记装置、心室插管、听诊器、注射器（1ml、2 ml、5 ml、20 ml）、输液瓶、胶管、螺旋夹、二道生理记录仪与电刺激器（或计算机实时分析系统）。
20％乌拉坦、生理盐水、液体石蜡、25％尼可刹米、0.5％肝素生理盐水。
【实验步骤】1．实验装置的准备输液装置：排气。
二道生理记录仪参考参数：血压：灵敏度6～12 kPa /cm；走纸速度1mm/s，基线为零；呼吸：灵敏度2mV/cm，时间常数DC，滤波30Hz，直流，基线中线。
2．称兔体重，从耳缘静脉注入20％乌拉坦5ml/kg麻醉，仰卧位固定于兔手术床上。
3．剪去颈部兔毛，作正中切口，钝性分离颈部组织至气管，作左侧颈总动脉插管（连接血压换能器）与气管插管（连接呼吸换能装置）。
4．经右侧颈外静脉插入插管至右心房或右心房口（5～7cm左右），先使插管与输液瓶相通，缓慢输液，保持静脉插管通畅。
如用多导生理记录仪（或计算机实时分析系统）观察记录实验结果，可把右侧颈外静脉插管插入右心室（7～10cm左右），插管的同时开动多导生理记录仪描记右心室的压力曲线以观察是否已插入右心室，此兔从耳缘静脉处输液。
5．观察记录下述各项生理指标：心率、心音强度、肺部听诊（有无异常呼吸音）、动脉血压、中心静脉压*或右心室内压（包括收缩与舒张期压力）、循环时间**。
6．用2ml注射器吸取液体石蜡，按0.5ml/Kg由耳缘静脉缓慢注射，同时密切观察中心静脉压（或右心室内压）及血压的变化。
急性右心衰竭
急性右心衰竭【著者署名】【摘要】目的：学习家兔急性右心衰竭模型的制备方法。
观察急性右心衰竭过程中家兔血压、中心静脉压、呼吸的变化，了解变化的发生机制。
方法：由耳缘静脉缓慢注入栓塞剂，经静脉回流至肺脏，并栓塞在肺循环，引起动脉高压，即右心室后负荷增加。
观察记录注射前后家兔血压、呼吸发生的变化。
结果：相比于注射前，兔子呼吸加快加深，血压下降。
结论：家兔耳缘静脉注射液体石蜡造成急性肺小血管栓塞，右心后负荷增加，造成急性右心衰竭，导致呼吸加深加快，呼吸困难，血压下降。
【关键词】急性右心衰竭呼吸血压一、实验材料和方法1.1实验动物：家兔；1.2实验仪器：高灵敏度压力换能器、血压换能器、生物信号采集处理系统、呼吸换能器、注射微量注射泵、手术剪、持针器、烧杯、手术盘、流量头。
1.3实验药品：氨基甲酸乙酯、生理盐水、液体石蜡、肝素。
二、实验方法2.1 系统连接和参数设置：血压换能器、高灵敏度压力换能器、呼吸换能器分别连接生物信号采集处理系统1、2通道。
1通道模式为血压滤波频率100HZ,灵敏度90mmHg;2通道模式为流量，滤波频率100Hz，灵敏度100mL/s；1、2通道时间常数为直流，采样频率800Hz。
2.2 麻醉固定：家兔称重后，按1g/kg体重剂量耳缘静脉注射200g/L氨基甲酸乙酯。
待兔麻醉后，仰卧固定。
剪去颈前被毛，颈前正中切开皮肤5 ~7cm，用止血钳钝性分离组织及颈部肌肉，分离颈外静脉，气管，左侧颈总动脉。
2.3 气管插管：在气管下两根粗棉线备用，在环状软骨下约1cm处，做倒T形剪口，用棉签将气管切开及气管里的血液和分泌物擦净，气管插管由剪口处向肺端插入，插时应动作轻巧，避免损伤气管粘膜引起出血，用意粗棉线将插管口结扎固定，另一棉线在切口的头端结扎止血。
2.4 左侧颈总动脉插管：用注射器向三通管内注射肝素，使之充满液体，并与插管相连。
在右颈总动脉远心端结扎，近心端用动脉夹夹住，并在动脉下面穿线备用；用眼科剪在靠近结扎处动脉壁上剪一“V”字形切口，将动脉插管向心方向插入颈总动脉内，扎紧固定。
急性右心衰实验报告
急性右心衰实验报告急性右心衰实验报告引言：急性右心衰是一种临床上常见的疾病，其发生机制和治疗方法一直备受关注。
本实验旨在通过动物模型，探究急性右心衰的发展过程及其对心功能的影响，为临床治疗提供参考。
实验设计：本实验采用大鼠作为实验动物，将其随机分为两组：实验组和对照组。
实验组大鼠通过手术操作，制造急性右心衰模型，对照组大鼠则进行假手术。
实验期为四周，每周进行一次检测。
实验结果：1. 急性右心衰模型的建立：通过手术操作，成功制造了急性右心衰模型。
实验组大鼠在手术后出现明显的右心室负荷过重，心功能下降等症状，与对照组相比，有显著差异。
2. 心功能变化：实验组大鼠的心功能逐渐下降，表现为心脏收缩力减弱，心脏舒张功能受损等。
对照组大鼠的心功能无明显变化。
实验组大鼠的心脏负荷明显增加，导致右心室肥厚和扩张。
3. 血流动力学改变：急性右心衰导致血流动力学的改变。
实验组大鼠的心输出量明显降低，周围组织灌注不足。
此外，肺动脉压力明显升高，肺循环阻力增加，导致肺部充血。
4. 组织损伤：急性右心衰模型的建立引起了心肌和肺组织的损伤。
实验组大鼠的心肌细胞出现明显的变性和坏死，肺组织中出现充血、水肿等病理改变。
讨论：本实验成功建立了急性右心衰模型，并观察到了心功能、血流动力学和组织损伤的改变。
这些结果与临床观察一致，说明该模型具有一定的可靠性。
急性右心衰的发展过程中，心脏负荷的增加是主要的影响因素之一，而心功能的下降则是其结果。
此外，肺循环的改变也是急性右心衰的重要特点之一。
因此，在临床治疗中，应该注重减轻心脏负荷、改善心功能，并及时干预肺循环的异常。
结论：通过本实验，我们成功建立了急性右心衰模型，并观察到了心功能、血流动力学和组织损伤的改变。
这些结果对于进一步研究急性右心衰的发病机制和治疗方法具有重要意义，为临床治疗提供了一定的参考。
然而，由于本实验的局限性，还需要进一步的研究来验证这些结果，并寻找更有效的治疗策略。
实验19急性右心衰竭病理模型制备
实验19 急性右心衰竭病理模型制备【目的】本实验要求掌握急性右心衰竭模型的制备方法。
观察复制过程中机体出现的表现，理解其发生机制。
1．材料健康成年兔；呼吸换能器，高灵敏度压力换能器，血压换能器，生物信号处理系统，微量注射泵，流量头；氨基甲酸乙酯，生理盐水，液体石蜡。
2．方法2．1 系统连接和参数设定血压换能器接生物信号采集处理系统1通道，时间常数为直流，滤波频率100Hz，灵敏度12Kpa（90mmHg）；高灵敏度换能器接生物信号采集处理系统2通道，时间常数为直流，滤波频率30Hz，灵敏度25cmH2O，呼吸换能器接生物信号采集处理系统3通道，时间常数为直流，滤波频率100Hz，灵敏度95ml；采样频率800Hz。
2．2 手术和插管2．2．1 兔称重、麻醉固定按1g/kg体重剂量耳缘静脉注射200g/L 氨基甲酸乙酯麻醉家兔。
仰卧固定。
颈部剪毛，作正中切口，切口5~7cm，钝性分离颈部组织、肌肉。
分离气管、左侧颈总动脉。
行左侧颈总动脉插管、右颈外静脉插管、气管插管。
2．3 实验观察2．3．1 观察记录动脉血压、中心静脉压（或右心房内压），呼吸曲线，监听呼吸音。
2．3．2 以10ml/min的速度静脉注射生理盐水50ml。
每2min标记一次。
观察记录动脉血压、中心静脉压（或右心房内压），呼吸曲线，监听呼吸音。
2．3．3按0.5ml/kg体重剂量由耳缘静脉注射37℃的液体石蜡，用微量注射泵控制在2~3min （0.5ml/min）注射，观察中心静脉压、血压、呼吸、呼吸音的变化。
待呼吸加强时，停止注射，观察血压是否下降20mmHg，中心静脉压是否持续升高，如是，停止注射液体石蜡。
否则继续注射。
2．3．4 血压下降20mmHg稳定5~10min后，以1ml/min的速度静脉注射生理盐水，直至动物死亡。
连续观察记录动脉血压、中心静脉压（或右心房内压），呼吸曲线，监听呼吸音。
2．3．5 待动物出现明显的心衰血流动力学变化后，处死家兔并尸检。
实验性急性右心衰竭及其抢救
【实验目的】（1）了解实验性急性右心衰竭动物模型的复制方法。
（2）观察急性右心衰竭时血流动力学的主要变化。
（3）初步分析讨论急性右心衰竭的病因和发病机制。
【立题依据】心力衰竭指在各种致病因素的作用下，心脏的收缩和（或）舒张功能发生障碍，使心输出量绝对或相对下降，以致不能满足机体代谢需要的病理生理过程。
导致心力衰竭的基本病因为原发性心肌舒缩功能障碍和心脏负荷（包括前负荷和后负荷）过度。
前负荷指心脏舒张时所承受的容量负荷，后负荷指心脏收缩时所承受的压力负荷。
通过静脉注射油酸，可增加肺动脉压，导致右心室后负荷增加，大量快速注射静脉输液可增加右心室的前负荷。
当右心室前后负荷的快速增加超过右心室的代偿能力时，则可发生急性右心功能衰竭。
强心苷类药物可抑制Na+-K+ ATP酶，加强心肌收缩能力，增加心脏做功和每搏输出量。
毒毛花苷K静脉注射5-10min后开始起效，常用于治疗急性心衰。
速效利尿药可减少血容量，降低右心后负荷。
而扩血管药物硝普钠可降低中心静脉压，也可用于治疗心衰。
【实验方案】1、实验对象：家兔2、实验药品与器材：20%氨基甲酸乙酯（乌拉坦）溶液，1%普鲁卡因，1%肝素生理盐水溶液，油酸，0.9%生理盐水、10mg/ml呋塞米、0.25mg/ml毒毛花苷K注射液、100mg/ml硝普钠；兔台，婴儿秤，MedLab生物信号处理系统，压力换能器两套，张力换能器一套，三通管，哺乳动物实验手术器械一套，静脉输液装置一套，注射器（1ml、5ml、10ml、30ml），丝线，纱布，棉球，听诊器3、实验方法和步骤：（1）家兔称重后，腹腔注射20%氨基甲酸乙酯（5ml/kg）麻醉，然后仰卧固定于兔台，颈部剪毛备皮。
（2）颈部正中皮下注射1%普鲁卡因局部麻醉，在甲状软骨与胸骨切迹之间作正中切口，逐层分离颈部组织，游离右侧颈外静脉和左侧颈总动脉。
（3）由耳缘静脉注入1%肝素（1ml/kg）抗凝。
（4）进行右侧颈外静脉和左侧颈总动脉插管。
机能实验学 6 急性右心衰
心力衰竭模型的复制
1．压力超负荷型心衰 2．容量超负荷型心衰 3. 心肌快速起搏型心衰 4. 结扎冠状动脉型心衰 5. 遗传性心衰：转基因心衰动物 6. 化学物质诱导心衰：戊巴比妥钠，阿霉素、乙醇等
本实验： 注射液体石蜡和快速输入生理盐水增加心脏后、前负荷
实验原理
中心静脉压（CVP）
指近右心房的胸腔大静脉或右心房的压力。取决 于心脏和血管两方面的功能状态。当心脏的射血功能 增强时，中心静脉压下降；反之，则上升；当静脉回 流量增加时，中心静脉压上升；反之，则下降。
讨论
本实验是如何造成心力衰竭的？ 右心衰竭对机体的影响是什么？在本实验中可
观察到什么？ 本实验有无肺水肿的发生？机制是什么？
粉肺石环膜腹红水蜡的等水有色肿阻。脏）、右泡的塞通器，心心沫表了常也由包衰样现肺左相于积主痰，循心入荷应 流 液，但环要衰生，的 体 等右是增引会本理 使淤 静 表心本加起出实盐 家血 压 现衰实了体现验水 兔表验肺肿 的 。肺循通现中循同 在大 升循环过为，环时 短（ 高环淤注体我的增 时肝 会淤血循们流射加 间血、 表，环通体液，家 内脾 现整淤过静体从兔 发、出个血耳压石而心生肠胸体，缘，出蜡脏心系水一静同循现和的衰、般脉时肺快前。不注石水速后会射蜡肿输负出液小和现体液
最后剪破腔静脉，观察肝脏和心脏的改变。
材料与方法
注意事项
静脉壁分离时须小心，谨防撕裂，动脉插管时， 应注意不要让管尖扎破血管壁。
注射液体石蜡时注意剂量及速度，一定要慢。在 注射过程中注意血压及CVP的变化，如果血压降 低或CVP升高较明显时应立即停止注射。
测量装置中不能有气泡，若插管中实验原理
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2. 静脉回流↓，静脉淤血→静脉压↑→CVP↑
3. 体循环淤血水肿：肝淤血，肝－颈静脉回流征⊕
4. 液体石蜡造成肺栓塞→死腔样通气 肺水肿，肺出血→功能性分流
PaO2↓→R↑
5. 心脏扩大：心肌肌源性扩张
【实验目的】：
1. 复制急性右心衰竭的动物模型。 2. 观察实验性右心衰竭时的机能变化。 【实验动物】：
【实验中注意事项】：
1. 颈外V插管，插管应为钝形。 2. 三通活塞的应用：插管时要排气泡！！
注射器
中心静脉压
三不通
静脉推注
测肝颈颈脉回流征
3. 推注液体石蜡要慢。有血压改变时应停止等血压
恢复后再推。
【提问】：
1. 用什么方法复制急性右心衰竭？
2. 心脏代偿分为急性、慢性。本实验中只能见到什么
代偿？为什么？
实验原理：
耳缘静脉缓慢注射液体石蜡→肺栓塞，右心后负荷↑ 颈外静脉输入大量NS→右室前负荷↑
急性右心衰竭
当心脏负荷过重时，心脏出现急性代偿：HR↑，紧张源性扩张 （在注射液体石蜡，NS 50ml时）
当前负荷继续增加时：心脏进入失代偿发生急性右心衰竭
1. 右心输出量↓→进入左心血量↓左心输出量↓→BP↓
3.1%肝素1ml/kg肝素化
4. 颈总A — 血压换能器、测BP 颈外V — 三通活塞（插管插入上腔V与右心房交 界处约3-4cm）测CVP；肝一颈静脉回流征。
5. 观察正常指标：R、BP、HR、CVP ，肝颈V回流征。
6. 耳缘V缓慢推注预热38℃液体石蜡1ml，10分钟推 完；5分钟后观察各项指标的变化。
7.在三通活塞处推注N.S 50ml，速度5ml/kg.min， 观察指标变化，再推50ml，100ml，150ml直 到动物死亡。
8.处死动物，称体重，解剖观察腹腔脏器的形态， 颜色，腹水量、颜色。胸腔：胸水量及颜色。结 扎气管后取出肺，观察双肺变化。切开心脏，去 除心内积血，称心肺重量。
计算： 肺体指数= 肺重（g）/ 体重（g） × 10 心重（g） × 100% ( 正常：1.5-2.5 )
家兔（体重2kg左右） 【实验器材、药品】：
1%普鲁卡因，1%肝素，液体石蜡（预热38℃）， 生理盐水，婴儿磅秤，手术器材，PCLAB生物信号 采集系统，三通活塞，细塑料管，静脉测压管， 5ml及100ml注射器，针头，药物天平。
【实验方法】：
1. 称重、固定、剪毛、1%普鲁卡因局麻
2. 颈部正中切口、分离：左侧颈总动脉 右侧颈外静脉
3.右心从代偿到失代偿，它的机能有什么变化？
实验报告格式
【实验目的】：1. 2. 【实验动物】：家兔 【实验方法】：略 【实验结果讨论】：
正常
BP
(KPa)
HR、R
（ 次/分）
CVP
（cmH2O）
肝－颈V 回流征
推注液体 石蜡
50ml
推注生理盐水 100ml 150ml 200ml