2016神经生物学实验讲义
神经生物学课件chapter3
二.突触的类型
4.按突触间隙的宽窄和突触囊泡的大小
Gray I,间隙>30nm，囊泡直径30-60μm,兴奋性突触 Gray II,间隙<20nm，囊泡直径10-30μm,抑制性突触
5.按传递信息的性质 兴奋性突触，释放兴奋性递质，产生兴奋性突触后电位 抑制性突触，释放抑制性递质，产生抑制性突触后电位
cleft postsynaptic receptor
ion to flow—Natrium and
potassium-end-plate potential (EPP )
initiating the impulse
response of the muscle
contraction
EPP; mEPP(miniature); quantal release; synaptic plasticity
小结 化学性突触信息传递的过程
化学性突触处的兴奋性信息传递过程
当神经冲动传到轴突末 膜Ca2＋通道开放，膜外Ca2＋向膜内流动 突触前膜内囊泡移动、融合、破裂，囊泡中兴奋性递质释放
神经递质与突触后膜上的受体结合，受体蛋白分子构型改变
突触后膜Na＋、K＋ 离子通道开放(尤其是Na＋)通透性↑ 突触后膜去极化→兴奋性突触后电位（EPSP）
三.突触的结构
（一）化学性突触（chemical synapse） 1.中枢神经系统内的化学性突触 2. 非典型性化学性突触 3.神经肌肉接头的结构 （二）电性突触（electrical synapse） （三）混合性突触（）
四.递质和内源性活性物质
（一）关于神经递质的研究概况 （二）鉴定递质的条件 （三）各经典递质和内源活性物质的合
神经生物学实验讲义
实验一鼠脑灌注固定和取材一、原理固定是用人为的方法尽可能使组织细胞的形态结构和化学成分保持生活状态，防止组织细胞的溶解和腐败，并保持其原来的细微结构及原位保持生物活性物质的活性；能使细胞内蛋白质、脂肪、糖、等各种成分沉淀而凝固，尽量保持它原有的结构；使细胞内的成分产生不同的折射率，造成光学上的差异，使得原本在生活情况下看不清楚的结构，变得清晰可见；使得组织细胞各部经媒染作用容易染色；经过固定，使组织硬化，以利于以后切片时切薄片。
体循环：左心室→升主动脉→主动脉的各级分支→毛细血管→各级静脉→上下腔静脉→右心房，完成体循环的整个循环。
二、实验步骤1、正常Sprague-Dawley大鼠，150～250g，或昆明小鼠，20g左右，雌雄不拘；2、动物麻醉后，用左手持镊子夹起腹部皮肤，右手持剪刀自胸骨剑突下腹部剪一小口，由此沿腹中线和胸骨剑突中线向上将皮肤剪至下颌，分离皮下组织，将皮肤翻向两侧，再沿腹中线和胸骨中线向上剪开胸骨，沿膈肌向两侧剪开，并用止血钳将胸骨和胸部的皮肤钳紧，将止血钳翻向外侧以充分暴露心脏，小心用镊子将心包膜打开；3、将灌注针（大鼠12#，小鼠7#）插入左心室并送至升主动脉内，用止血钳把灌注针固定在心脏上，打开灌注泵开关，同时剪开右心耳，使血液排出。
先快速灌注0.9%NaCl（大鼠80-120ml，小鼠30ml），至肝脏逐渐变白色或右心耳流出清亮液体为止，再灌注4℃预冷的固定液（大鼠200ml，小鼠50ml，根据动物体重定量），其中前1/3量快速灌注，后2/3量慢灌注，共在30分钟内灌注完；4、固定液进入血管后，大鼠四肢和尾巴开始抽动，表明灌注液进入大鼠大脑，待抽动完全停止，全身组织器官变硬后即可停止灌注；5、断头后，剥离颅骨、剪断脑神经、离断脑于脊髓，取出整脑。
6、后固定（post-fixed）：剥出鼠脑后，切取含目的区域的脑段，放入相同固定液4～12h，4℃。
附4%多聚甲醛的配制：40g多聚甲醛用0.1mol/L PB（pH7.4）溶解后定容至1L，过滤后置于4℃保存。
发育神经生物学讲义
2、神经嵴细胞固有信息与神经嵴细 胞的分化
神经嵴细胞的分化也存在内、外因两方面 的因素。真正决定嵴细胞分化大方向的仍 然足神经嵴细胞本身所固有的信息。
神经嵴细胞固有信息的表达必然受到所迁 入的微环境的深刻影响。局部微环境在引 导、加速或者逆转，抑制嵴细胞固有特征 表达的过程中有首要作用。因而，神经脊 细胞的分化方向是嵴细胞内、外因素相互 作用的结果。
发育神经生物学讲义
2、神经脊研究历史
像胚胎学或者发生学本身的发展历史一样，对神经脊研究 的历史也可大致分为描述胚胎学、实验胚胎学与现代胚胎 学（发育生物学）3个互相重叠的时期。
第一期是从His到1900年。主要是论证神经脊的来源与基 本衍生物。
第二时期可称作实验胚胎学时期。从1900年到上世纪60 年代。此时期证实了神经脊细胞的多潜能性，它的衍生物 在所有经典的3个胚层的衍生物中均有同源物。
有特殊的功能。从较低等的哺乳动物到灵 长类，大脑皮质的结构与功能的变化趋势 是由简单到复杂。 从大脑皮质的进化过程了解到大脑皮质的 组织发生，其中的神经元数量（尤其是中 间神经元）和神经元间局部环路显著增加 以及组织结构显得高度有序和复杂。
发育神经生物学讲义
大脑皮质的神经元发生部位是在脑室的生发层 ( ventricular germinal zone)，也称脑室层 （telencephalic ventricular zone，图101A)．其中的细胞称为神经上皮细胞 (neuroepithelial cell）或称为神经祖细胞 (neurogenitor cell)。大脑皮质的组织发生是通 过神经祖细胞的分裂、增生和分化过程实现的。
发育神经生物学讲义
发育神经生物学讲义
发育神经生物学讲义
神经生物学课程课件
N型受体： （烟碱受体）
周围型
骨骼肌/电器官烟碱受体 神经节烟碱受体
受体（Receptor） 能够对特定的生物活性物质具有识别、选择15性的结合能
力的生物大分子。
激动剂：能够与受体特异性的结合并产生生物效应的化学物质称为激动剂 （agonist）。
拮抗剂：仅能与受体发生特异性的结合，但不产生生物效应的化学物质称为 拮抗剂（antagonist）.
γ –氨基丁酸转位酶
2. reuptake
location and Projection
GABA 琥珀酸半醛
Receptor
location Structure,
Agonist, Antogonist,
GABAA
GABAB GABAC
CNS
CNS
视网膜
4TM 7TM
苯二氮，安定 荷包牡丹碱 苯巴比妥 ，利眠宁
location and Projection Pons，modulla oblongata Receptor
alpha1,alpha2,,beta1.beta2
5-羟色胺能神经系统
Biosynthesis
29
tryptophan,TP
tryptophan hydroxylase, TPH (色氨酸羟化酶)
苯乙醇胺-N-甲基转位酶
(phenylethanolamine-N-methyl-transferase，
PNMT)
肾上腺素(adrenaline, AD/epinephrine, E)
多巴胺能神经系统
23
Biosynthesis
Inactivation reuptake enzyme degradation（MAO，COMT） location and Projection
神经生物学(新版)课件：第一讲 神经发生
1. 增殖（Proliferation）
在室管带（ ventricular zone）发生 增殖速率： 250000个/分钟
2. 迁移（Migration）
当细胞在室管带增殖后， 迁移就开始了； 迁移的细胞是不成熟的， 没有轴突和树突之分； 迁移的同时出现细胞分化。
迁移的神经细胞
A
B
鼠脑室管膜下带细胞： 肌动蛋白丝染绿色 微管红色
synapse formation in cat visual cortex
(Sanes, Reh, and Harris, 2006)
Number of Synapses/Cell
100 80 60 40 20 0 01234567
Days in Culture
synapse formation in primary hippocampal cells
(Fletcher et al., J. Neurosci., 1994)
Synapse Formation – Characterization and Assessment
Microscopic assessment of synapses (Use of pre and postsynaptic proteins as markers)
- 细胞分化：细胞表现出神经元特征的过程。
- 神经前体细胞（neuroblast）首先发出突起（ neurites），在 它到达最终固定位置时已经分化完成。 树突数目在后期具有 可变性，这有赖于环境的变化。
Cortical progenitor cells follow an intrinsic developmental sequence both in vivo and in vitro.
神经生物学实验
体激活后第二信使、G 蛋白、膜离子流、调控蛋白及
产生磷酸化和脱磷酸化等各种反应的酶变化；
图 2 LTP 电位示意图
⑶突触前或突触后结构的可塑性，包ห้องสมุดไป่ตู้突触前树突棘体积增大，数目增多 ，
突触界面扩大及突触后致密物质增大增厚等；
⑷非神经元修饰：如胶质细胞及胶质-神经元相互作用的变化；
⑸上述某些变化或所有变化的综合表现。
（蔡 葵）
6
实习二 大鼠海马 LTP 的实验观察
1. LTP 的基本概念
LTP(long-term potentiation, 长时程增强), 对突触前神经元进行高频强直
电刺激后导致突触后神经元产生突触传递效应增强的现象，该效应可持续一
个小时以上，其具体表现为：
①峰电位幅值增大；
②潜伏期缩短；
③兴奋性突触后电位(EPSP)幅值增大；
兔脑：兔的头部固定在脑定位仪上时，其前囟(Bregma，即冠状缝与矢 状缝的交点)比λ(人字缝与矢状缝的交点)高 1.5mm，在这种情况下，以通过 前囟的水平面作参考平面，而以在该平面下 12mm 处的水平面作为水平标准 平面(HO, 零平面)，在此平面上方为 V+，在此平面下方为 V-。经过前囟并 与矢状缝垂直又与水平面垂直的面，作为额面标准平面(APO)，在此平面之 前为 AP+，在此平面之后为 AP-。
单管玻璃微电极是一根尖端开口很细的硬质玻璃管，内充电解质溶液作 为电极。由于电解质溶液可以导电，利用单管玻璃微电极可以记录到中枢神 经系统神经元的电活动。用于细胞内记录的微电极，其尖端直径应小于 0.5mm，尖端的倾斜度应相当缓和，以免穿入细胞膜时造成大的伤害。这种 微电极适合于从细胞内引导电活动和测量膜电位。用于细胞外记录的微电 极，其尖端直径约在 1~5mm。一般认为尖端内径 1~4mm 的玻璃微电极适宜 于记录神经元胞体的电活动。微电极的长度应视需要而定，但插入脑组织内 的部分不宜太粗，以免插入时造成显著的损伤。制作玻璃微电极应选用熔点 高，化学稳定性高，电阻率高和膨胀系数低的硬质玻璃管。国外常用 Pyrex 玻璃管，国内一般采用 GG17 和 95 玻璃管。 3.3.2 多管玻璃微电极
神经生物学的常用研究方法ppt课件
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多克隆抗体 （polyclonal antibody, PcAb） 大多数天然抗原物质(如细菌或其分泌的外毒素以及各种组织成分等)往往具有多种不同的抗原决定簇，而每一决定簇都可刺激机体产生一种特异性抗体。多克隆抗体是多个抗原决定簇刺激机体后，由多个免疫淋巴细胞分泌的多种抗体的混合物。 PcAb 特异性差，易出现交叉反应。
单克隆抗体 （monoclonal antibody, McAb）
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组织（细胞）化学是介于细胞学与化学之间的一门科学。细胞化学的目的是使用细胞学和化学的方法使细胞（组织）内的某些化学成分发生反应，在局部形成有色反应物，藉此对各种活性物质在显微镜水平进行定性、定位和定量分析。 酶组织化学：利用酶对底物的催化作用，使底物发生颜色变化，其次对该酶进行定位、定量分析。
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研究方法： 20世纪从40年代，镀银染色法，根据银染溃变纤维的形态变化来判断、追踪溃变纤维的方法。 20世纪从50年代，Nauta法，一种改进的溃变镀银法，能抑制正常纤维的染色而仅染出溃变纤维。 20世纪70年代，变性束路追踪法逐渐被轴浆运输追踪法所代替。 可与逆行标记法、顺行标记法、免疫组织化学、原 blue labelling neurons
DRG
Spinal cord
20×
20×
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Fast Blue Ladelling Ganglion Cells of Retina
20×
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优点：可靠性，灵敏性， 利用其不同颜色可同时追踪和显示多重神经联系。因此可选择一种或两种以上的荧光素分别对神经元进行单标、双标或多重标记。 双重标记和多重标记可用来研究神经元轴突的分支投射。若在脑内不同核团或区域分别注射两种（或三种）不同荧光，在同一神经元胞体内能观察到两种（或三种）不同颜色的荧光，即说明该神经元的轴突分支分别投射到注射这些荧光剂的两个（或三个）脑内不同核团或区域。 需要注意的是各种荧光素逆行运输的速度不同，所以动物存活时间也有差异。双重标记是，有时需要做两次手术先注射运输慢的荧光素，过一定的时间后，再注射运输较快的荧光素。 缺 点：激发光照射下很快褪灭，因此允许观察的时间较短，保存时间也有限。 应 用：研究神经元的轴突分支至不同部位的投射。可与免疫组织化学结合，研究投射神经元的化学性质。
神经生物学实验指导
实验9-3 脊髓背根与腹根的机能【目的要求】1.学习暴露脊髓和分离脊神经背、腹根的方法。
2.了解背根和腹根的不同机能。
【基本原理】脊神经的背根是由传入神经纤维组成，具有传入机能；腹根由传出神经纤维组成，具有传出机能。
若切断背根，则相应部位的刺激不能传入中枢；若切断腹根，不能传出冲动，则其所支配的效应器也不再发生反应。
【动物与器材】蟾蜍或蛙、常用手术器械、金冠剪、弯头金冠剪、刺激器或多用仪、小型弯头露丝电极、蛙板、蛙腿夹、滴管、棉花、红色和白色细丝线、任氏液。
【方法与步骤】1.将蟾蜍或蛙毁脑后腹位固定于蛙板上。
沿背部中线剪开皮肤，向前开口至耳后腺水平，向后开口至尾杆骨中段。
用剪刀小心剪去脊椎两侧的纵行肌肉及椎间肌肉，暴露椎骨。
2.用金冠剪横向剪断环椎，然后将弯头金冠剪小心伸入椎管，自前至后逐节剪断两侧椎弓（图9-3），移去骨片，暴露全部脊髓（勿损伤脊髓）。
3.用眼科镊轻轻挑开脊髓表面的银灰色或黑色脊膜，再用任氏液冲洗马尾部，小心识别第7~10对脊神经背根和腹根（图9-4）。
用玻璃分针分离一侧第9对脊神经的背、腹根（背根近椎间孔处有淡黄色、半个小米粒大小的脊神经节），将背根穿两条白色丝线，腹根穿两条红色丝线备用。
放松两后肢即可进行实验观察。
（1）提起白丝线，轻轻用刺激电极钩起背根，打开刺激器，用较弱的单脉冲刺激背根(只引起同侧后肢抖动)，记录结果。
（2）用同样的方法刺激腹根，记录结果。
（3）将两条白线双结扎背根后从中间剪断神经，分别刺激其中枢端和外周端（刺激强度不变），记录结果。
（4）用同样的方法结扎并剪断腹根，重复刺激背根中枢端，记录结果。
（5）分别刺激腹根中枢端和外周端，记录结果。
【思考题】根据实验结果，说明背根和腹根的机能。
（赵静）生理学实验第二版P148-149实验9-4 损伤小白鼠一侧小脑的效应【目的要求】一侧小脑损伤后的动物，躯体运动表现异常，通过对异常运动的观察，了解小脑的运动机能。
【基本原理】小脑具有维持身体平衡，调节肌紧张和协调肌肉运动等机能。
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徐州医科大学神经生物学实验讲义实验一鼠脑灌注固定和取材一、原理固定是用人为的方法尽可能使组织细胞的形态结构和化学成分保持生活状态，防止组织细胞的溶解和腐败，并保持其原来的细微结构及原位保持生物活性物质的活性；能使细胞内蛋白质、脂肪、糖、等各种成分沉淀而凝固，尽量保持它原有的结构；使细胞内的成分产生不同的折射率，造成光学上的差异，使得原本在生活情况下看不清楚的结构，变得清晰可见；使得组织细胞各部经媒染作用容易染色；经过固定，使组织硬化，以利于以后切片时切薄片。
体循环：左心室→升主动脉→主动脉的各级分支→毛细血管→各级静脉→上下腔静脉→右心房，完成体循环的整个循环。
二、实验步骤1、正常Sprague-Dawley大鼠，150～250g，或昆明小鼠，20g左右，雌雄不拘；2、动物麻醉后，用左手持镊子夹起腹部皮肤，右手持剪刀自胸骨剑突下腹部剪一小口，由此沿腹中线和胸骨剑突中线向上将皮肤剪至下颌，分离皮下组织，将皮肤翻向两侧，再沿腹中线和胸骨中线向上剪开胸骨，沿膈肌向两侧剪开，并用止血钳将胸骨和胸部的皮肤钳紧，将止血钳翻向外侧以充分暴露心脏，小心用镊子将心包膜打开；3、将灌注针（大鼠12#，小鼠7#）插入左心室并送至升主动脉内，用止血钳把灌注针固定在心脏上，打开灌注泵开关，同时剪开右心耳，使血液排出。
先快速灌注0.9%NaCl（大鼠80-120ml，小鼠30ml），至肝脏逐渐变白色或右心耳流出清亮液体为止，再灌注4℃预冷的固定液（大鼠200ml，小鼠50ml，根据动物体重定量），其中前1/3量快速灌注，后2/3量慢灌注，共在30分钟内灌注完；4、固定液进入血管后，大鼠四肢和尾巴开始抽动，表明灌注液进入大鼠大脑，待抽动完全停止，全身组织器官变硬后即可停止灌注；5、断头后，剥离颅骨、剪断脑神经、离断脑于脊髓，取出整脑。
6、后固定（post-fixed）：剥出鼠脑后，切取含目的区域的脑段，放入相同固定液4～12h，4℃。
附4%多聚甲醛的配制：40g多聚甲醛用0.1mol/L PB（pH7.4）溶解后定容至1L，过滤后置于4℃保存。
实验二大鼠脑立体定位一、目的和应用脑立体定位仪是利用颅骨外面的标志或其它参考点所规定的三维坐标系统，来确定皮层下某些神经结构的位置。
它是神经解剖、神经生理、神经药理和神经外科等领域内的重要研究设备，以便在非直视暴露下对其进行定向的刺激、破坏、注射药物、引导电位等研究。
可用于帕金森氏病、癫痫、脑内肿瘤动物模型建立，还可用于学习记忆，脑内神经干细胞移植，脑缺血等研究。
二、步骤1、实验动物的选择：正常Sprague-Dawley大鼠，150～250g，雌雄不拘；2、麻醉（anesthetized）：10%水合氯醛0.35ml/100g，i.p.；3、定位：用耳棒和上颌固定器将大鼠头部固定在动物脑立体定位仪上（固定好的标准：鼻对正中，头部不动，提尾不掉），调门齿杆的高度为﹣3.3mm，固定好门齿，使前囟点（Bregma）和人字缝尖点（lambda）在同一水平面上；4、碘伏消毒颅顶皮肤，根据所选区域切开皮肤，3%双氧水擦拭骨膜，清晰暴露出前囟点；5、将微量注射器夹持在固定器上，调节三维旋钮使其针头刚好接触Bregma点，此时读出三维坐标数值并记下，此为原点数值；4、参照Paxinos and Watson（1986）的大鼠脑图谱，读出注射部位的三维坐标数值，在原点坐标三维值基础上加或减相应的数值（Bregma值为正就加，为负减；右侧加，左侧减；深度减），即得到一个最终定位的三维坐标值；5、微量注射器吸入药液，调节前后和左右的旋钮使其针头刚好接触到颅骨，并在此点做一标记，在此钻孔后，将注射器针头缓慢插入相应的深度；6、缓慢注射液体，注射速度2μl/5min，注射后留针10～15min；7、缓慢退针后，缝合皮肤，待其苏醒后放入笼中饲养；8、根据实验需要，决定动物存活时间。
9、本实验中，若需要查验注射部位是否正确，可以在退针后取下动物，将其断头后，小心地剥离出鼠脑，顺着注射点将大脑切开，观察注射部位是否正确。
实验三冰冻切片及贴片一、组织块浸糖目的：冰冻时，组织中水分易形成冰晶，对组织结构有影响，故将组织浸入20%-30%的糖液中是为了置换出组织中大部分水分，使其在切片时尽量少出现冰晶。
方法：将鼠脑从后固定液移入15%蔗糖0.1mol/L PB，4℃，过夜；再移入30%蔗糖0.1mol/L PB，4℃，至组织块沉底。
二、冰冻切片将组织块从蔗糖中取出，用滤纸吸干表面液体。
在样品台上滴上适量的包埋剂，将组织粘于其上，然后再滴适量包埋剂于组织块上，直至将整个组织块完全包裹住。
放在切片机速冻台处，按下“PE”速冻键。
调节好冻台及箱体温度；将速冻完成的样品头夹在冻台上，进行鼠脑冰冻连续冠状切片，片厚20μm。
按顺序收集切片于盛有0.01 mol/L PBS的培养皿内。
三、贴片用毛笔将脑片平整贴片于粘附载玻片上，每张载玻片贴三张脑片，自然凉干后，置于切片盒中放—20℃保存。
一张优质的切片要求组织完整，厚薄均匀，无刀痕、皱褶、气泡，染色时不脱片。
附：0.01mol/L PBS（pH 7.4）：Na2HPO4 3.75gNaH2PO40.43gNaCl 7.2g加水定容至1000ml0.1mol/L PB（pH 7.4）：Na2HPO428.7gNaH2PO4 2.96g加水定容至1000ml15%蔗糖：蔗糖15g 加0.1mol/L PB溶解定容至100ml30%蔗糖：蔗糖30g 加0.1mol/L PB溶解定容至100ml实验四尼氏（Nissl）染色一、原理尼氏体（Nissl body）：是神经细胞的一种特殊结构，具有嗜碱性的特点，易被碱性染料，如焦油紫、亚甲蓝、甲苯胺蓝及硫堇等将其染为蓝色，呈块状(形如虎斑)或粒状，又称虎斑。
尼氏体分布在神经细胞除轴突之外的细胞质中，核周围颗粒较大，近边缘处较小而细长。
尼氏体可因生理状态的改变而变化，在生理情况下尼氏体大而数量多，反映出神经细胞旺盛的功能状态；在神经元受损伤时，神经元的胞体肿胀，细胞核从中央移到胞体边缘，胞质内尼氏体明显减少甚至消失，故胞质着色浅淡。
电镜下可见尼氏体由发达的粗面内质网和游离的核糖核蛋白体构成。
二、冰冻切片尼氏染色实验步骤1、浸片：切片在PBS液中浸泡2min；2、染色：切片入0.1%焦油紫水溶液，37℃，30～60分钟；3、漂洗：蒸馏水10sec，洗去浮色，4、分色、脱水、透明：依次移入70%、80%、95%（两次），每道10sec；移入100%乙醇两次，每次1min；移入二甲苯两次，每次5-10min；5、封片：中性树胶封片。
结果：胞浆着色，高倍镜下可见尼氏小体紫红色，核仁呈深蓝色，背景无色。
三、注意事项1、在70%、80%乙醇内分色作用明显，所需时间应根据切片性质（冰冻切片或石蜡切片等）、切片厚度、染色深浅等灵活变动，必要时随时在显微镜下检测分色程度。
如分色不够，可退回70%、80%乙醇；分色过度，可退回水中再移入染液重染。
2、应用酒精分色，要迅速，防止过度分色，将组织切片上的颜色全部脱掉。
3、透明剂能使材料清净透明，增加组织折光系数，使细胞的色度与细胞的重叠不致影响镜下检查。
常用的透明剂为二甲苯，它折射率是1.494，与载玻片的折射率1.515较为匹配。
此外，它能与乙醇、石蜡以及封片用的中性树胶互溶。
但切片浸入前必须脱干净水分，否则会发生乳状混浊。
如果二甲苯溶液变得浑浊，一定要更换新液。
实验五、神经髓鞘染色一、原理髓鞘是包裹在神经轴突外面的管状鞘，由髓磷脂所构成，其主要成分是类脂质和蛋白质，类脂质含有脂肪、卵磷脂、脑苷酯及胆固醇。
在正常髓鞘中，由于磷脂极性基团和亲水基团的存在，对水具有亲和力，因此水溶性氧化剂可渗入髓鞘，有利于磷脂对染料的摄入。
髓鞘染色方法有多种，基于不同的原理，可利用媒染剂、油溶性染料或锇酸等与类脂质的特殊反应而进行。
Luxol Fast Blue（LFB，罗克沙尔坚牢蓝）属于铜-酞箐染料（copper-phthalocyanine dye），具有在乙醇溶液内能与髓鞘磷脂结合的染色特性。
LFB染色后髓鞘着色鲜明，是鉴定神经髓鞘比较好的特异性标记物。
根据正常和不同病变时期髓鞘的组织结构特点，通过髓鞘染色来观察正常和病理情况下髓鞘是否完整，有无变性、坏死及修复情况，对神经组织的病理诊断和研究有实用意义。
二、冰冻切片髓鞘染色实验步骤1、提前1h把LFB染液放在60度烘箱里预热；2、切片在PBS液中浸泡2min；3、洗好的切片依次浸入70%、80%、90%、95%乙醇，每个浓度2min；4、将切片放入预热好的LFB染液，60度烘箱中孵育1.5～2h；5、将染色缸取出冷却到室温后，切片依次浸入95%乙醇1min、双蒸水10sec，饱和Li2CO3、70%乙醇、双蒸水10sec。
（饱和Li2CO3和70%乙醇起分色作用，时间根据分化的程度而定，这两步之间可以反复，同时用显微镜观察分色情况）；6、待切片自然晾干后入100%乙醇5min，二甲苯两道，每道10min，中性树胶封片，晾干后在显微镜下观察拍照。
参考结果：(2012级神经生物郭瑞供图)实验六&七免疫荧光（双标）染色技术一、原理免疫荧光技术是最早建立的一种免疫组织化学技术。
它利用抗原抗体特异性结合的原理，先将已知抗体标上荧光素，以此作为探针检查细胞或组织内的相应抗原，在荧光显微镜下观察。
当抗原抗体复合物中的荧光素受激发光的照射后即会发出一定波长的荧光，从而可确定组织中某种抗原的定位，进而还可进行定量分析。
由于免疫荧光技术特异性强、灵敏度高、快速简便，所以在临床病理诊断、检验中应用比较广，但是标本不易保存，因为荧光素易降解。
抗体与抗原结合方式主要有两种：①直接法：用带有标记物的抗体与标本中的相应抗原直接结合，操作方法简便，特异性高，但敏感性较差，此法可用于检定未知抗原；②间接法：先用未标记的具有特异性的第一抗体与样品中的相应抗原结合，然后再以标记的第二抗体（第二抗体是用第一抗体作为抗原注入另一动物体内诱导产生的抗体，然后再结合以标记物）与特异性的第一抗体结合，通过这样的放大作用，使抗原分子上的标记物大大增多，故间接法较直接法的敏感性大为增高，约高5～10倍，故应用更为广泛。
二、冰冻切片免疫荧光双标步骤1、切片入0.01 mol/L PBS（pH 7.4）5 min，室温；2、封闭：滴加10%正常山羊血清（0.01 mol/L PBS配），室温，30 min；3、滴加混合一抗（兔抗GFAP，1：500，Sigma，小鼠源MCT1，1：200，abcam，用含0.3% TritonX-100的0.01 mol/L PBS稀释），4℃，过夜或37℃，2h；4、0.01 mol/L PBS洗切片，5 min /次×3次，室温；5、滴加混合的荧光素标记的二抗（Cy-2标记的山羊抗小鼠1：200，Sigma，Cy-3标记的山羊抗兔1：200，Sigma ，0.01 mol/L PBS配），37℃，1h或4℃过夜；6、0.01 mol/L PBS洗切片，5 min /次×3次，室温；7、DAPI复染，室温10min后0.01 mol/L PBS洗切片，5 min /次×3次；8、荧光封片剂封片后在荧光显微镜下观察拍照。