不同浓度NAA对甘薯茎尖诱导植株再生的影响

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大花蕙兰原球茎的诱导、增殖及植株再生研究

大花蕙兰原球茎的诱导、增殖及植株再生研究

大花蕙兰原球茎的诱导、增殖及植株再生研究摘要:从大花蕙兰(Cymbidium hybridum)试管苗取材,诱导原球茎,建立植株再生体系,分析了不同激素及其浓度对原球茎诱导、增殖和植株生根的影响。结果表明,不定芽比叶片更容易诱导出原球茎;生长素NAA对原球茎的诱导效果好于2,4-D,最适合原球茎诱导的激素组合为1.0 mg/L BA+1.0 mg/L NAA;原球茎增殖培养基中添加1.0 mg/L BA+0.5 mg/L NAA增殖效果较好,增殖系数可达7.90;最适生根培养基为1/2 MS+0.5 mg/L NAA+30 g/L蔗糖。关键词:大花蕙兰(Cymbidium hybridum);原球茎;组织培养;植株再生Study on Protocorm Induction, Proliferation and Plantlet Formation of Cymbidium hybridumAbstract: Explants were drawing from Cymbidium hybridum plantlet for protocorm induction and plantlet regeneration. Effects of the kind and concentration of plant growth regulators on protocorms induction, proliferation and root formation were analyzed. The results showed that introducing protocorm from adventitious bud was more easily than from leaf primordial. NAA was more effective for protocorm induction than 2,4-D. The optimum hormone combination for protocorm induction was 1.0 mg/L BA+1.0 mg/L NAA. The multiplication coefficient of protocorm was the highest (7.90) in medium adding 1.0 mg/L BA+0.5 mg/L NAA. The optimal medium for root formation was 1/2 MS+0.5 mg/L NAA+ 30 g/L sucrose.Key words: Cymbidium hybridum; protocorm; tissue culture; plant regeneration大花蕙兰(Cymbidium hybridum)是兰科兰属中大花型附生种类的杂交种,具有花大色艳、花多且花期长的特点,深受大众喜爱[1]。大花蕙兰的繁殖方式主要以分株为主,由于长期无性繁殖,造成带病毒植株日益增多,使兰花的品质下降;同时新品种的培育也对繁殖方式和快繁技术提出了需求。目前,兰属植物的组织快繁主要是以原球茎(Protocorm-like body,PLB)为外植体诱导出愈伤组织或胚性愈伤组织,进而获得小植株[2-8]。国内对大花蕙兰组织培养[9-16]多数是采用茎尖、侧芽为外植体,通过诱导原球茎获得小植株。本实验以大花蕙兰试管苗的不定芽和叶片为外植体,诱导和增殖原球茎,建立大花蕙兰的快速繁殖体系,以达到加大试管苗繁殖系数、简化繁殖步骤的目的。1 材料与方法1.1 材料供试材料为华中农业大学园艺林学学院种质资源实验室的大花蕙兰试管苗。1.2 方法1.2.1 原球茎的诱导从长势良好的大花蕙兰试管苗上取大小一致、高2~3 mm的不定芽及叶片作为外植体,将叶片切割成0.5~1.0 cm2的小块。外植体接种在MS+30 g/L蔗糖+6 p 1.2.3 生根培养生根培养以1/2MS为基本培养基,附加6 g/L琼脂和质量分数0.5%的活性炭,添加不同浓度的NAA与蔗糖(表3),pH 5.5~5.8。每处理接种15个不定芽,重复3次,培养条件同1.2.1。60 d后统计外植体的苗高、根长大于1 cm的根数目、根长和生根率。1.2.4 炼苗移栽将生根培养得到的大花蕙兰试管苗炼苗移栽,以水苔为栽培基质,移栽前用无菌水将植株根部的培养基冲洗干净,再植入穴盘,移入遮阴棚中培养。每天向叶片喷水数次,每周浇施1~2次稀释的营养液。2 结果与分析2.1 原球茎的诱导将大花蕙兰叶片和不定芽接种到含不同激素配比的培养基,30 d后原球茎的诱导结果见表1。诱导30 d后,处理A1~A4的叶片有肿胀膨大的现象,但没有诱导出原球茎;而处理A5~A8的腋芽周围有绿色半透明颗粒状组织产生并逐渐长大,即诱导产生的原球茎(图1),说明不定芽较叶片易发生再分化产生原球茎。其中A6处理的原球茎诱导效果最好,诱导率达76.9%。培养基中BA浓度相同时,1.0 mg/L NAA的诱导效果要好于0.5 mg/L 2,4-D;随着BA浓度的增高,两种生长素的诱导率都有所增加。可见实验范围内原球茎诱导的最佳激素浓度组合为 1.0 mg/L BA+1.0 mg/L NAA。2.2 原球茎的增殖培养增殖培养40 d后,不定芽周边长出新的原球茎(图2),一般产生5~8个,最多达到15个(表2)。激素BA和NAA的浓度不同,增殖系数也会发生变化。B5处理,即BA 和NAA的浓度分别为1.0 mg/L和0.5 mg/L时增殖系数最高,为7.90。BA和NAA 浓度过高或过低均不利于原球茎的增殖。2.3 生根培养将增殖培养获得的大花蕙兰原球茎转移到含不同浓度NAA和蔗糖的生根培养基上,20 d后各处理陆续有根形成,并有新的叶片展开。培养60 d后各处理生根及苗生长情况见表3和图3。由表3可知,大花蕙兰原球茎的生根情况较好,除C1处理外,其他处理的生根率均达到100.0%。在相同的蔗糖浓度条件下,NAA浓度对各处理之间苗高、叶片数和根长的影响不显著。而NAA为0.5 mg/L时,较高的蔗糖浓度对植株苗高有显著的促进作用。各处理中,C4(0.5 mg/L NAA+30 g/L蔗糖)处理的幼苗生长情况最好,试管苗苗高、叶片数、根长均大于其他处理,其中苗高和根长显著大于其他处理。2.4 炼苗移栽移栽培养7 d后,幼苗未出现死亡现象,但部分移栽苗叶尖变黄,且大多发生于较小的植株,较大的植株则生长良好。说明试管苗个体越大、越健壮,移栽后的生长状况越好,移栽越易成活。一般适于移栽的植株要求苗高5 cm以上、具有展开叶3~5片,以及2条以上长度大于1 cm的根。3 讨论在以叶片为外植体诱导原球茎时,叶片虽有膨大的现象,但生长30 d左右后叶片逐渐死亡,没有原球茎产生,与Teixeira da silva等[17]的报道一致,叶片诱导原球茎不成功可能与激素的种类有关[18]。本实验发现2,4-D的诱导效果没有NAA好,与Huan等[5,6]的报道是一致的,实验浓度范围内1.0 mg/L NAA+1.0 mg/L BA对原球茎的诱导效果好,这与徐宏英等[11]的结果略有差异,可能与试管苗体内的激素浓度变化有关。传统的增殖方式主要是由原球茎直接获得生根的小植株;也有的以初次诱导的原球茎或原球茎薄层细胞为外植体诱导出愈伤组织或胚性愈伤组织,获得增殖的原球茎后再获得小植株[19,20]。本实验中以不定芽为外植体,有原球茎的形成,但未见愈伤组织形成。增殖培养40 d后增殖系数均在4.67以上,1.0 mg/L BA+0.5 mg/L NAA的增殖效果最好,增殖系数达7.90,高于以往的报道[21]。在生根实验中,较高浓度的NAA和蔗糖有利于根的生长和植株伸长,可适当缩短生根时间,对移栽后植株的生长有利。参考文献:[1] 胡松华. 热带兰花[M]. 北京:中国林业出版社,2002.[2] BEGUM A, TAMAKI M, TAHARA M, et al. Somatic embryogenesis in cymbidium through in vitro culture of inner tissue of protocorm-like bodies[J]. Journal of the Japanese Society for Horticultural Science,1994,63(2):4p [5] HUAN L V T, TAKAMURA T, TANAKA M. Callus formation and plant regeneration from callus through somatic embryo structures in Cymbidium orchid[J]. Plant Science,2004,166(6):1443-1449.[6] HUAN L V T, TANAKA M. Callus induction from protocorm-like body segments and plant regeneration in Cymbidium(Orchidaceae)[J]. Journal of Horticultural Science & Biotechnology,2004,79(3):406-410.[7] ROY J, BANERJEE N. Induction of callus and plant regeneration from shoot-tip explants of Dendrobium fimbriatum Lindl. var. oculatum Hk. f[J].Scientia Horticulturae,2003,97(3):333-340.[8] ZHAO P, WU F, FENG F S, et al. Protocorm-like body (PLB) formation and plant regeneration from the callus culture of Dendrobium candidum Wall ex Lindl.[J]. In Vitro Cellular & Developmental Biology-Plant, 2008, 44(3):178-185.[9] 刘园,王四清.大花蕙兰(Cymbidium hybridum)的研究动向[J]. 园艺学报,2005,32(4):748-752.[10] 谭文澄,戴策刚.观赏植物组织培养技术[M].北京:中国林业出版社,1991.237-278[11] 徐宏英,赵玉明,谢海军,等.大花蕙兰组培快繁影响因素分析[J]. 园艺学报,2002,29(2):183-185.[12] BEGUM A, TAKAMI M, KAKO S. Formation of protocorm-like bodies (PLB) and shoot development through in vitro culture of outer tissue of Cymbidium PLB[J]. Journal of the Japanese Society for Horticultural Science,1994,63(3):663-673.[13] CHANG C,CHANG W C. Plant regeneration from callus culture of Cymbidium ensifolium var. misericors[J]. Plant Cell Reports,1998,17(4):251-255. [14] KUSUMOTO M. Effects of coconut milk, agar and sucrose concentrations and medium pH on the proliferation of Cymbidium protocorm-like bodies cultured in vitro[J]. Journal of the Japanese Society for Horticultural Science,1980,48(4):503-509.[15] MOREL G M. Tissue culture: A new means of clonal propagation of orchids[J]. Am Orchid Soc Bull,1964,33:473-478.[16] DA SILVA J A T, YAM T, FUKAI S, et al. Establishment of optimum nutrient media for in vitro propagation of Cymbidium sw.(Orchidaceae) using protocorm-like body segments[J]. Propagation of Ornamental Plants,2005,5(3):129-136.[17] TEIXEIRA DA SILVA J A, TANAKA M. Multiple regeneration pathways via thin cell layers in hybrid Cymbidium (Orchidaceae)[J]. Journal of Plant Growth Regulation,2006,25(3):203-210.[18] GOW W P, CHEN J T, CHANG W C. Influence of growth regulators on direct embryo formation from leaf explants of Phalaenopsis orchids[J]. Acta Physiologiae Plantarum,2008, 30(4):507-512.[19] TEIXEIRA DA SILVA J A, CHAN M T, CHAI M L, et al. Priming abiotic factors for optimal hybrid Cymbidium (Orchidaceae) PLB and callus induction, plantlet formation, and their subsequent cytogenetic stability analysis[J]. ScientiaHorticulturae,2006,109(4):368-378.[20] SILV A J A T, SINGH N, TANAKA M. Priming biotic factors for optimal protocorm-like body and callus induction in hybrid Cymbidium(Orchidaceae), and assessment of cytogenetic stability in regenerated plantlets[J]. Plant Cell, Tissue and Organ Culture,2006,84(2):100119-100128.[21] 杨玉珍,孙天洲,孙廷,等. 大花蕙兰组织培养和快速繁殖技术研究[J].北京林业大学学报,2002,24(2):86-88.。

茎尖分生组织培养

茎尖分生组织培养




穗 嫁接后
植 物
的植物
指示植物法
定义:将一些对病毒敏感、症状特征显著 的植物作为指示植物 又叫鉴别寄主 ,利用 病毒在其他植物上产生的枯斑作为鉴别 病毒,仍为一种经济有
效的方法
缺点:枯斑法不能测出病毒总的核蛋白浓度,而只能
测出相对的感染力
3、电子显微镜鉴定法
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尖、芽尖及侧芽的培养,操作技术简单、易 成活、成苗时间短、繁殖速度快,
茎尖分生组织培养除可以生产脱毒苗外,还具有 方法简便,繁殖迅速,遗传性比较稳定,易保持植株的 优良性状的优点,在基础理论研究和实际应用中具有 重要价值,
2.意义: 1.形态建成研究 茎尖分生组织 不带叶原基,<250um 2.用于无病株生产 茎尖 带1-3个叶原基,100-1000um 3.进行营养繁殖 芽培养 >1mm 4.育种中的应用 与辐射育种结合
2 茎尖大小与脱毒
茎尖外植体的大小与脱毒效果成反比,茎尖分生 组织不能合成自身需要,生长素,细胞分裂素,因而 带叶原基的茎尖生长快,成苗率高,因此茎尖越大 培养成活率越高,因此对不同植物脱毒适宜的茎 尖大小不同,
2.茎尖培养脱毒的方法 1 取样与消毒 可直接选定的植株上取顶芽进行消毒接种,
采顶芽与侧芽消毒接种,
二、茎尖分生组织培养一般方法
1.材料的制备 健壮枝梢 去除叶片 分成1-2cm 自来水 冲洗 消毒 75%的酒精30秒 0.1%升汞或 20倍次氯酸钠消毒8-10min 无菌水 修剪 剥离茎尖,通常切割下顶端0.2~0.5 mm叶 原基的茎尖 无菌水 接种,

不同浓度NAA对紫皮石斛壮苗的影响

不同浓度NAA对紫皮石斛壮苗的影响

不同浓度NAA对紫皮石斛壮苗的影响作者:李云海李润菊陈丽华来源:《现代农业科技》2019年第15期摘要; ; 为了培育出健壮的紫皮石斛试管种苗,本试验以经过丛芽诱导培养的试管苗为材料,在MS培养基中添加0.4 mg/L 6-BA的情况下,设置不同浓度的NAA,以筛选出适宜壮苗的NAA浓度。

结果表明,在MS+6-BA 0.4 mg/L+NAA 2.0 mg/L培养基条件下,即NAA浓度为2.0 mg/L时,紫皮石斛试管苗的壮苗效果最佳。

关键词; ; 紫皮石斛;组织培养;壮苗;NAA浓度中图分类号; ; S567.23+9; ; ; ; 文献标识码; ; A文章编号; ;1007-5739(2019)15-0065-01紫皮石斛(Dendrobium devonianum Paxt.)是兰科石斛属中以齿瓣石斛为代表的一类植物,因其茎为紫色而得名。

紫皮石斛具有滋阴清热、益胃生津,润肺止咳和增强免疫力等功效。

石斛为常用中医药材,以铁皮石斛的药用价值最高,紫皮石斛次之[1]。

但与铁皮石斛相比,紫皮石斛更容易生长,产量较高,多糖含量高,可达到铁皮石斛的60%。

近年来,云南省保山、临沧、德宏、思茅等山区的林下人工或半人工栽培石斛已成为了当地农民脱贫致富的重要产业之一,其中所用品种多数为紫皮石斛,因而对紫皮石斛优质种苗的需求量较大[2]。

有研究报道,在石斛试管苗壮苗与生根培养试验中,培养基的激素配比必须适当,才能达到较好的壮苗效果[3]。

为了培育出紫皮石斛健壮的试管种苗以提高其移栽成活率,本试验采用经过丛芽诱导培养的试管苗为材料,在MS中添加0.4 mg/L 6-BA的前提下,设置不同浓度的NAA进行对比,拟从中筛选出适宜培育壮苗的NAA浓度,为实验室或工厂化紫皮石斛试管育苗提供参考。

1; ; 材料与方法1.1; ; 试验设计试验共设4个处理,各处理的培养基配方为MS+0.4 mg/L 6-BA+(1.0、1.5、2.0、2.5mg/L)NAA+蔗糖30 g/L+琼脂6 g/L(pH值5.8),即各处理NAA的浓度分别为1.0 mg/L、1.5 mg/L、2.0 mg/L、2.5 mg/L。

文心兰的茎尖原球茎诱导与植株再生

文心兰的茎尖原球茎诱导与植株再生

文心兰的茎尖原球茎诱导与植株再生张超;詹园凤;王广东;郭维明【期刊名称】《热带作物学报》【年(卷),期】2009(030)007【摘要】以文心兰茎尖为材料,研究生长调节剂、碳源等因子对原球茎诱导与植株再生的影响.结果表明:0.1 mg/LTDZ生长调节剂适合原球茎诱导,且无不定芽分化,诱导率高达80%;果糖为原球茎增殖最佳碳源,其浓度以10g/L效果较好,增殖系数达8.15;不同浓度的BA,TDZ和2ip比较发现,1.0mg/L 2ip对原球茎分化效果最好,平均每克原球茎分化35.7个芽;0.5 mg/L IBA与0.2 mgL NAA配合使用生根效果较好,生根率达100%.平均生根数为3.8条,根长可达23.0 mm.【总页数】6页(P979-984)【作者】张超;詹园凤;王广东;郭维明【作者单位】南京农业大学园艺学院,江苏南京,210095;浙江传化生物技术有限公司,浙江杭州,311231;南京农业大学园艺学院,江苏南京,210095;中国热带农业科学院热带作物品种资源研究所,海南儋州,571737;南京农业大学园艺学院,江苏南京,210095;南京农业大学园艺学院,江苏南京,210095【正文语种】中文【中图分类】Q943.1【相关文献】1.文心兰茎尖诱导丛生芽高频率植株再生 [J], 叶秀仙;黄敏玲;吴建设;林兵;钟淮钦;陈源泉2.文心兰茎尖诱导原球茎的影响因子研究 [J], 张超;陈立思;王广东;郭维明;曾武清;杨斌3.文心兰类原球茎的愈伤组织诱导及其植株再生 [J], 黄霞;卢禹4.古巴兰的茎段原球茎诱导与植株再生的研究 [J], 王丽丽;曹魏魏;高新龙;底廷伟;姜华;赵宇5.虾脊兰原球茎诱导及植株高效再生体系研究 [J], 陈锦;杨侃侃;官迪;吴家梅;朱菲莹;易力雄;贺爱国因版权原因,仅展示原文概要,查看原文内容请购买。

甘蔗组织培养技术研究进展

甘蔗组织培养技术研究进展

甘蔗组织培养技术研究进展目录一、内容概览 (2)二、甘蔗组织培养技术概述 (2)三、甘蔗组织培养技术的研究现状 (4)1. 国际研究现状 (5)2. 国内研究现状 (6)四、甘蔗组织培养技术的主要方法 (7)1. 外植体的选择和处理 (8)2. 培养基的制备与优化 (9)3. 培养条件及过程控制 (11)五、甘蔗组织培养技术的应用与成果展示 (12)1. 甘蔗品种改良中的应用 (13)2. 甘蔗病虫害防治中的应用 (14)3. 甘蔗基因工程中的应用及成果展示 (15)六、甘蔗组织培养技术存在的问题与挑战 (16)1. 技术难题及限制因素 (17)2. 技术推广与应用中的挑战与机遇 (19)七、甘蔗组织培养技术的发展趋势与展望 (20)1. 技术发展方向及创新点预测 (21)2. 技术推广与应用前景展望 (23)八、结论与建议 (24)1. 研究总结与主要观点 (25)2. 对未来研究的建议与展望 (26)一、内容概览甘蔗组织培养技术近年来取得了显著的研究进展,成为了植物组织培养领域的一大热点。

这项技术利用甘蔗的幼嫩组织或器官作为外植体,在无菌条件下进行培养,使其生长成完整植株或特定器官。

甘蔗组织培养技术不仅具有繁殖速度快、效率高的优点,还能有效地防止病虫害的发生,提高甘蔗的产量和品质。

在甘蔗组织培养过程中,研究者们通过优化培养基成分、改变培养条件、引入基因工程手段等策略,实现了对甘蔗基因表达的调控和改良。

这些研究成果为甘蔗的遗传改良和新品种培育提供了有力支持。

甘蔗组织培养技术还在甘蔗的病虫害防治、抗逆性评价以及品质鉴定等方面发挥着重要作用。

随着科技的不断进步,甘蔗组织培养技术将继续向更高水平发展,为甘蔗产业的可持续发展做出更大的贡献。

二、甘蔗组织培养技术概述随着生物技术的不断发展,组织培养技术在农业领域的应用越来越广泛。

甘蔗作为世界上最大的糖料作物之一,其组织培养技术的研究和应用具有重要的经济和生态价值。

花生种胚组织培养

花生种胚组织培养

花生种胚离体培养及植株再生专业:种子科学与工程年级:10-2 姓名:梁冰摘要:以花生种胚为实验材料,研究其在不同激素的培养基配方中培养的生长状况尤其是丛生芽数。

结果显示:高浓度6-BA诱导芽生成,低浓度诱导根生成;高浓度的NAA有助于芽的生成,低浓度NAA有助于根的生成。

关键词花生种胚浓度芽生成根生成T he peanut embryo as the experimental material to study its culture growth i n the culture medium of different hormones, especially the number of buds. The result: high concentrations of 6-BA induced bud generated, induced by low concentrations of rootgenerated; high concentrations of NAA to contribute to the formation of buds, and low concentrations of NAA to contribute to the formation of the root.花生是我国及世界上重要的油用兼食用作物。

通过离体培养丛生芽进行无性繁殖,对花生品种改良、良种繁育、基因工程研究和抗性筛选等都有重要意义。

关于花生外植体芽诱导再生及丛生芽培养已有许多报道。

At reya 等用花生子叶切段诱导产生小植株。

Narasimhula 等在含有BA 的培养基中使花生子叶形成花芽并开花结荚。

李爱民等(1988) 报道利用高浓度细胞分裂素的诱导分化培养基,直接诱导花生子叶再生幼芽。

瞿桢等(1994) 利用花生去子叶幼胚诱导出丛生芽。

Mckently 利用未成熟子叶在高浓度BA 条件下培养,也诱导出丛生芽。

2025版新高考新教材版选考总复习生物专题16植物生命活动的调节

2025版新高考新教材版选考总复习生物专题16植物生命活动的调节

2025版新高考新教材版选考总复习生物专题16植物生命活动的调节专题16植物生命活动的调节五年高考考点1植物生长素1.(2023全国甲,2,6分)植物激素是一类由植物体产生的,对植物的生长发育有显著影响的微量有机物,下列关于植物激素的叙述,错误的是(D)A.在植物幼嫩的芽中色氨酸可以转变成生长素B.生长素可以从产生部位运输到其他部位发挥作用C.生长素和乙烯可通过相互作用共同调节植物的生长发育D.植物体内生长素可以作为催化剂直接参与细胞代谢过程2.(2023山东,10,2分)拟南芥的向光性是由生长素分布不均引起的,以其幼苗为实验材料进行向光性实验,处理方式及处理后4组幼苗的生长、向光弯曲情况如图、表所示。

由该实验结果不能得出的是(D)分组处理生长情况弯曲情况甲不切断正常弯曲乙在①处切断慢弯曲丙在②处切断不生长不弯曲丁在③处切断不生长不弯曲A.结构Ⅰ中有产生生长素的部位B.①②之间有感受单侧光刺激的部位C.甲组的①②之间有生长素分布不均的部位D.②③之间无感受单侧光刺激的部位3.(2023重庆,15,3分)某小组以拟南芥原生质体为材料,研究了生长素(IAA)、组蛋白乙酰化及R基因对原生质体形成愈伤组织的影响。

野生型(WT)和R基因突变型(rr)的原生质体分别经表中不同条件培养相同时间后,检测培养材料中R基因表达量,并统计愈伤组织形成率,结果如图所示。

据此推断,下列叙述正确的是(A)编号原生质体培养条件①WT培养基②WT培养基+合适浓度的IAA③rr培养基④rr培养基+合适浓度的IAA⑤WT培养基+组蛋白乙酰化抑制剂A.组蛋白乙酰化有利于WT原生质体形成愈伤组织B.R基因通过促进IAA的合成提高愈伤组织形成率C.组蛋白乙酰化通过改变DNA碱基序列影响R基因表达量D.若用IAA合成抑制剂处理WT原生质体,愈伤组织形成率将升高考点2其他植物激素和植物生长调节剂的应用考向1其他植物激素4.(2024全国甲,3,6分)植物生长发育受植物激素的调控。

白羊草茎段愈伤组织诱导和植株再生

白羊草茎段愈伤组织诱导和植株再生

白羊草茎段愈伤组织诱导和植株再生于娜;董宽虎【摘要】首次采用白羊草拔节期茎段为外植体,通过对其组织培养中愈伤组织诱导和植株再生情况进行研究,从而筛选出其在组织培养过程中较合适的激素组合.结果表明,茎段作为外植体时,愈伤诱导在仅附加2,4-D 2.0 mg/L诱导培养基中的诱导率高于2,4-D和6-BA的激素组合;诱导出的愈伤组织转入MSB+6-BA 0.07 mg/L+ NAA 0.05 mg/L分化培养基中,分化率显著高于其他激素组合.%Stem segment of Bothriochloa ischaemum as explant, callus induction and planets regeneration was conducted to screen a suitable hormone combination. Results showed thai the inductivity of Bothriochloa ischaemum stem segment was higher in MSB medium added only 2.0mg/L 2,4-D than in hormone combination of 2,4-D and 6-BA. The embryo calluses obtained from induction medium could be succeeded on medium MSB + 6-BA 0.07 mg/L + NAA 0.05 mg/L, they had remarkable high differentiation frequency than in other hormone combinations.【期刊名称】《山西农业科学》【年(卷),期】2012(040)006【总页数】4页(P575-578)【关键词】白羊草;茎段;愈伤诱导;植株再生【作者】于娜;董宽虎【作者单位】山西省林业职业技术学院园林系,山西太原030009;山西农业大学动物科技学院,山西太谷030801【正文语种】中文【中图分类】S543+9白羊草(Bothriochloa ischaemum)是禾本科孔颖草属多年生草本植物,是优良的牧草和水土保持植物,具有固土保水,生活力强,高产耐牧、耐践踏,适口性强等优点,是饲用价值较高的放牧型禾草之一,广泛分布于我国暖温带落叶阔叶林地带,是控制水土流失和维持丘陵山地的原生态平衡的重要草种[1-2]。

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不同浓度NAA对甘薯茎尖诱导植株再生的影响
邱鹏飞;柳璇;商丽丽;辛国胜;韩俊杰;张磊
【摘 要】[目的]研究不同浓度NAA对甘薯茎尖诱导植株再生的影响.[方法]以甘薯
品种烟薯25号、烟薯26号和烟紫薯3号的茎尖为材料,采用不同浓度NAA处理,
对甘薯茎尖组织的诱导培养及高效植株再生进行了研究.[结果]烟薯25号较适宜的
茎尖诱导培养基为1.0 mg/L NAA+MS,植株再生率为91%;烟薯26号和烟紫薯3
号较适宜的茎尖诱导培养基为1.5 mg/L NAA+MS,植株再生率分别为88%和
80%.[结论]该研究可为今后开展规模化甘薯脱毒苗生产提供基础资
料.%[Objective]To research inducing plant regeneration from tip meristem
of sweetpotato.[Method] The tip meristems of Yanshu No. 25,Yanshu
No.26 and Yanzishu No.3 were used to study the induction and efficient
plant regeneration on the MS medium supplemented with different NAA
concentrations.[Result] It was indicated that the suitable tip meristem
induction medium for Yanshu No.25 was 1.0 mg/L NAA+MS,the plant
regeneration rate was 91%;the suitable tip meristem induction mediums
for Yanshu No.26 and Yanzishu No.3 were 1.5 mg/L NAA+MS,the plant
regeneration rates were 88% and 80%.[ Conclusion] The research can
provide basic data for carrying out large-scale virus-free sweetpotato
production in the future.

【期刊名称】《安徽农业科学》
【年(卷),期】2017(045)003
【总页数】2页(P159-160)
【关键词】甘薯;茎尖;植株再生
【作 者】邱鹏飞;柳璇;商丽丽;辛国胜;韩俊杰;张磊
【作者单位】烟台市农业科学研究院,山东烟台265500;烟台市农业科学研究院,山
东烟台265500;烟台市农业科学研究院,山东烟台265500;烟台市农业科学研究院,
山东烟台265500;烟台市农业科学研究院,山东烟台265500;烟台市农业科学研究
院,山东烟台265500

【正文语种】中 文
【中图分类】S503.5
近年来,在我国各个薯区接连发生甘薯病毒病害(SPVD),受灾面积逐年增大,有
些地方甘薯田达到绝产程度,而利用茎尖分生组织培育甘薯脱毒苗是防治甘薯病毒
病最有效的方法[1]。笔者以甘薯品种烟薯25号、烟薯26号和烟紫薯3号的茎尖
为材料,采用不同浓度NAA处理,对甘薯茎尖组织诱导培养及高效植株再生进行
研究,筛选出适合烟薯25号、烟薯26号和烟紫薯3号茎尖诱导植株再生的培养
基,以期建立一套高效的植株再生体系,为今后开展规模化甘薯脱毒苗生产提供基
础资料。
1.1 材料 甘薯品种是烟薯25号、烟薯26号和烟紫薯3号,由烟台市农业科学研
究院提供。
1.2 方法 试验于2015年4月—2016年9月在烟台市农业科学研究院组培实验室
进行。将烟薯25号、烟薯26号和烟紫薯3号进行水培。取生长旺盛、长约2
cm的茎尖,用75%乙醇表面消毒15 s[2-4],立即转入0.1%升汞溶液中杀菌10
min,用无菌水充分洗涤3次。按照刘庆昌等[5]的方法在解剖镜下剥取长约0.5
mm的茎尖分生组织,将茎尖分生组织培养在添加不同浓度NAA(表1)的MS培
养基(pH 5.8)上,28 ℃光照培养[6-7]42~70 d,使体细胞胚发育成熟并发芽。将
分化出的芽转移到MS培养基上,28 ℃光照培养,以获得完整植株(图1)。试验
设计6个处理,每个处理3次重复,每次重复10瓶,每瓶接种2个茎尖,诱导
42~56 d时[8]分别调查各处理茎尖组织的分化情况,70 d后调查植株再生率,
植株再生率=植株再生数/接种茎尖数×100%。
2.1 不同浓度NAA对茎尖分生组织培养的影响 茎尖在转入含NAA的培养基56 d
后有部分分化出芽,70 d后统计植株再生率。不同甘薯品种的茎尖组织在不同浓
度NAA培养基上获得再生植株的频率如图2所示。由图2可知,茎尖分生组织在
不同浓度NAA培养基上培养,植株再生情况有很大差异。烟薯25号在1.0 mg/L
NAA +MS培养基上植株再生率最高(91%),烟薯26号和烟紫薯3号在1.5
mg/L NAA +MS培养基上植株再生率最高,分别达88%和80%。这表明由于不
同甘薯品种茎尖分生组织的内源激素水平可能存在差异,因此不同品种分生组织在
培养时对NAA浓度的要求也就不完全一致。试验结果表明,添加0.5~1.5 mg/L
NAA,可以明显促进根系生长,发达的根系有利于试管苗吸收营养物质,使得植
株生长迅速,缩短了生长周期,提高了植株再生率。NAA浓度超过1.5 mg/L时,
会刺激愈伤组织大量生长,过度生长的愈伤组织抑制了芽的生长,因此降低了植株
再生率。
2.2 无机盐对茎尖分生组织成苗的影响 从图2可以看出,各个品种在6号培养基
上的植株再生率要高于5号培养基,这2个处理NAA浓度相同,表明大量元素和
蔗糖浓度均减半的MS培养基比MS培养基更适合甘薯胚状体正常萌发及植株再
生,可能由于高浓度的无机盐和蔗糖会造成培养基中渗透势过高,从而不利于胚状
体再生。
试验表明,不同浓度NAA对甘薯茎尖分生组织培养的影响有很大差异,添加适当
浓度的NAA,可以提前生根,且明显促进根系生长,发达的根系有利于植株吸收
营养物质,使得植株生长迅速,缩短了生长周期,提高了植株再生率。但NAA浓
度较高(超过1.5 mg/L),会刺激愈伤组织的大量生长,过度生长的愈伤组织抑制
了芽的生长,因此降低了再生率,NAA的作用可能与它调控植物内源激素的水平
有关,这与苏文瑾等[9]研究结果基本一致。不同甘薯品种茎尖分生组织培养时,
对外源激素的浓度要求不同,这可能与不同品种内源激素水平不同有关,这与闫明
明等[10]研究结果一致。
该研究建立了3个甘薯新品种的植株再生体系,其中烟薯25号、烟薯26号和烟
紫薯3号的最高植株再生率分别达91%、88%和80%。烟薯25号适宜的茎尖培
养基为1.0 mg/L NAA +MS,烟薯26号和烟紫薯3号适宜的茎尖培养基为1.5
mg/L NAA +MS。

【相关文献】
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