生理学实验家兔呼吸运动曲线
家兔呼吸运动实验报告
家兔呼吸运动实验报告家兔呼吸运动实验报告一、引言呼吸是生物体的基本生理活动之一，对于维持生命活动至关重要。
通过呼吸，生物体摄取氧气，排出二氧化碳，以维持细胞的正常代谢。
为了研究呼吸运动的特征和规律，本实验选择了家兔作为研究对象，通过观察和测量家兔的呼吸频率和呼吸深度，以探究家兔呼吸运动的特点。
二、实验方法1. 实验材料本实验所需材料包括：家兔、呼吸计、计时器、实验记录表。
2. 实验步骤（1）将家兔放置在安静的实验环境中，使其适应环境。
（2）使用呼吸计测量家兔的呼吸频率和呼吸深度。
将呼吸计放置在家兔鼻孔附近，记录下每分钟的呼吸次数。
（3）使用计时器记录家兔的呼吸频率和呼吸深度，每次记录持续时间为一分钟。
（4）重复实验步骤（2）和（3）三次，取平均值作为实验结果。
三、实验结果通过实验测量和记录，得到了以下结果：1. 家兔的呼吸频率平均为每分钟60次。
2. 家兔的呼吸深度平均为每次0.5毫升。
四、实验讨论1. 家兔的呼吸频率实验结果显示，家兔的呼吸频率平均为每分钟60次。
与人类相比，家兔的呼吸频率较高。
这可能是因为家兔的新陈代谢较快，需要更多的氧气供应。
此外，家兔的呼吸频率还受到环境和身体状况的影响，例如运动、温度等因素都会对呼吸频率产生影响。
2. 家兔的呼吸深度实验结果显示，家兔的呼吸深度平均为每次0.5毫升。
呼吸深度是指每次呼吸时肺部吸入或排出的气体量。
家兔的呼吸深度相对较小，这可能是因为家兔的肺容量有限，无法像人类那样进行深呼吸。
此外，家兔的呼吸深度还受到呼吸肌肉的控制和调节。
3. 家兔呼吸运动的调节机制家兔的呼吸运动是由中枢神经系统控制和调节的。
呼吸中枢位于脑干的延髓和桥脑部分，通过神经传递信号，控制呼吸肌肉的收缩和松弛，从而实现呼吸运动。
此外，呼吸运动还受到多种因素的调节，如血液中的氧气和二氧化碳浓度、酸碱平衡等。
五、实验结论通过本次实验，我们得出了以下结论：1. 家兔的呼吸频率平均为每分钟60次。
家兔肺部呼吸实验报告
一、实验目的1. 观察家兔呼吸运动的基本过程，了解呼吸运动的调节机制。
2. 研究不同因素对家兔呼吸运动的影响，如二氧化碳浓度、氧气浓度、无效腔等。
3. 掌握呼吸运动实验的基本操作技能。
二、实验原理呼吸运动是指在中枢神经系统控制下，通过呼吸肌节律性的运动使胸廓节律性地扩大或缩小，从而实现气体的交换。
呼吸运动的调节主要涉及呼吸中枢、化学感受器、肺牵张反射等因素。
三、实验材料与仪器1. 实验动物：家兔一只2. 实验仪器：手术台、常用手术器械、生理信号采集处理系统、呼吸传感器、止血钳、气管插管、20ml及1ml注射器、橡皮管、刺激电极、20%氨基甲酸乙酯、CO2、乳酸、生理盐水、棉线、纱布四、实验步骤1. 家兔的麻醉与固定：取一只家兔，称重后，用20ml注射器由耳缘静脉缓慢推注25％氨基甲酸乙酯（1g/kg体重）进行麻醉。
待兔麻醉后，仰卧位固定于兔手术台上。
2. 颈部手术：作颈正中切口，气管插管，用于观察呼吸运动。
3. 胸部手术：在兔右侧胸部测量胸内压，观察肺脏体积和呼吸运动的影响。
4. 上腹部手术：作上腹正中切口，观察膈肌及其运动情况，并透过膈肌观察肺的情况。
5. 观察正常呼吸曲线：记录家兔正常的呼吸曲线，分析呼吸频率、节律、幅度等指标。
6. 影响因素观察：a. 增加无效腔：观察增加无效腔后呼吸运动曲线的变化，分析呼吸频率、幅度等指标。
b. 改变二氧化碳浓度：观察二氧化碳浓度改变对呼吸运动的影响，分析呼吸频率、幅度等指标。
c. 改变氧气浓度：观察氧气浓度改变对呼吸运动的影响，分析呼吸频率、幅度等指标。
d. 改变乳酸浓度：观察乳酸浓度改变对呼吸运动的影响，分析呼吸频率、幅度等指标。
7. 实验结束：实验结束后，对家兔进行全身麻醉，等待其自然恢复。
五、实验结果与分析1. 正常呼吸曲线：家兔的呼吸频率约为48次/分，呼吸幅度适中。
2. 增加无效腔：增加无效腔后，家兔的呼吸频率和呼吸幅度均有所增加，表明呼吸运动对无效腔的变化具有一定的调节能力。
生理实验报告
家兔呼吸运动调节模拟实验姓名：学号：日期：同组：一、实验原理呼吸运动是一种节律性运动，是在呼吸系统参与下，通过多种传入冲动的作用，反射性调节呼吸的深度和频率，其中比较重要的调节活动有呼吸中枢的直接调节和肺牵张反射，化学感受器等的反射调节，因此机体外各种刺激可以作用于中枢或通过不同的感受器反射性地影响呼吸运动。
二、实验目的1、学习家兔呼吸运动的纪录方法2、探究不同因素对家兔呼吸运动的影响作用，加深对呼吸运动的产生于调节的理解三、实验步骤1、增加无效腔2、增加兔吸入气中氮气或二氧化碳浓度3、注射器至兔耳注射乳酸4、用手术刀在兔颈部切断双侧迷走神经四、实验结果与分析1、增加生理无效腔图一：增加生理无效腔时家兔的呼吸变化现象：增加无效腔后，发现家兔的呼吸加大加深，呼吸频率明显加快。
分析：增大无效腔加大了呼吸阻力，使家兔呼吸流量有所降低，但引起血中O2分压降低，CO2分压升高，刺激中枢和外周化学感受器使呼吸频率增大，最后其肺通气量增加。
2、增加兔吸入气体中氮气的浓度图二：增加兔吸入气体中氮气的浓度时家兔呼吸变化结果：曲线上升，周期缩短，家兔呼吸加深加快，呼吸运动增强。
分析：吸入氮气时，导致动脉血中PO2下降，而PCO2却基本不变（因CO2扩散速度快）随着动脉血中PO2的下降，通过刺激主动脉体和颈动脉体外周化学感受器延髓的呼吸中枢兴奋，隔肌和肋间外肌活动加强，反射性引起呼吸运动增加。
3、增加兔吸入气体中二氧化碳的浓度图三：增加兔吸入气体中二氧化碳的浓度时家兔呼吸变化结果：增加兔吸入气体中二氧化碳的浓度后，家兔的呼吸幅度增大，上下幅值差异显著，同时呼吸频率变快。
停止增加CO2浓度后，家兔的呼吸慢慢恢复正常水平。
分析：CO2是调节呼吸运动最重要的生理性因素，它不但对呼吸有很强的刺激作用，并且是维持延髓呼吸中枢正常兴奋活动所必须的。
每当动脉血中PCO2增高时呼吸加深加快，肺通气量增大，并可在一分钟左右达到高峰。
由于吸入气中CO2浓度增加，血液中PCO2增加，CO2透过血脑屏障使脑脊液中CO2浓度增多，通过它产生的H+刺激延髓化学感受器，间接作用于呼吸中枢，通过呼吸机的作用使呼吸运动加强，此外，当PCO2增高时，还刺激主动脉体和颈动脉体的外周化学感受器，反射性地使呼吸加深加快。
家兔呼吸运动的调节及影响因素
呼吸运动的调节一、实验目的观察体内外有关因素的改变对呼吸运动的影响。
二、实验材料1、实验动物：家兔1只。
2、器材：兔手术台、婴儿秤、动物手术器械1套、气管插管、50cm长的橡皮管1根、注射器、注射针头、纱布、棉线、气袋2个、铁支架、玻璃分针、生物信号采集处理系统。
3、药品：20%乌拉坦溶液、3%乳酸溶液、氮气、CO2气体。
三、实验方法和步骤1、麻醉和固定：家兔称重后（2.4kg），20%乌拉坦按5ml/kg 剂量（12ml）经耳缘静脉注射，仰卧位固定于兔手术台上，去颈部被毛。
2、颈部手术：从甲状软骨向下做5~7cm长的颈正中切口，分离两侧迷走神经和气管。
3、气管插管时，注意清理气管中的血块。
待气管插管成功后，接上与生物信号采集处理系统相连的三通的其中一条橡皮管。
4、记录正常呼吸的曲线中吸气、呼气的波形方向，观察记录曲线的节律、频率与幅度，作为后续曲线的正常对照。
5、增大无效腔：将一根50cm长胶管连接在气管插管的一侧开口，夹闭另一侧开口。
观察家免的呼吸运动，记录呼吸曲线的变化。
待呼吸发生明显改变后撤除胶管，使呼吸恢复正常进行下一项实验。
6、增加吸入气中CO2/N2含量：夹闭气管插管的一侧开口，将装有CO2/N2的气袋管口对准气管插管的另一侧开口(中间留有2~3cm间隙)，缓慢增加吸入气中CO2/N2含量，观察家兔的呼吸运动，记录呼吸曲线的变化。
撤除CO2/N2气袋后观察呼吸恢复正常的过程。
7、血液中酸性物质增加对呼吸运动的影响：由耳缘静脉注射3%乳酸2ml，观察家兔的呼吸运动，记录呼吸曲线的变化。
待呼吸恢复正常后进行下一项实验。
8、迷走神经在呼吸作用中的作用：剪断一侧迷走神经，观察呼吸曲线的变化；再切断另一侧迷走神经，观察家兔的呼吸作用，记录呼吸曲线的变化。
四、实验结果图1正常呼吸图2增大无效腔（家兔呼吸张力增加，呼吸频率增加，呼吸加深）图3吸入二氧化碳（反射性地使家兔呼吸运动加深加快）图4吸入氮气（家兔呼吸运动增强）图5注射乳酸（家兔呼吸运动加深加快）图6剪断一侧迷走神经（不明显的慢而深的呼吸运动）图7剪断两侧迷走神经（明显的慢而深的呼吸运动）五、实验讨论呼吸运动调节机制有哪些？答：机体正常呼吸运动的维持，是由于体内存在完善的呼吸调节机制，使得呼吸有节律的进行，以适应机体代谢的需要。
家兔呼吸运动的调节
家兔呼吸运动的调节【目的要求】1.学习测定兔呼吸运动的方法。
2.学习记录膈肌放电的方法。
3.观察并分析肺牵张反射以及影响呼吸运动的各种因素。
【实验基本原理】呼吸运动是呼吸肌的舒缩运动，是呼吸肌（胸壁上的肋间肌和隔肌）在神经系统控制下进行的有节律的收缩和舒张造成的。
膈肌的收缩活动受来自中枢的传出神经支配，传出冲动的节律与频率，影响膈肌的收缩节律、频率与强度.人体及高等动物的呼吸运动所以能持续地节律性地进行，是由于体内调节机制的存在。
体内、外的各种刺激，可以直接作用于中枢或不同的感受器，反射性地影响呼吸运动，以适应机体代谢的需要。
肺牵张反射是保证呼吸运动节律的机制之一。
血液中CO2分压的改变，通过对中枢性与外周性化学感受器的刺激及反射性调节，是保证血液中气体分压稳定的重要机制。
【实验动物与器材】实验动物：家兔实验工具：兔体手术台、常用手术器械、张力传感器、引导电极、计算机采集系统、气管插管、注射器、橡皮管实验试剂：20%氨基甲酸乙酯、生理盐水【实验方法与步骤】1. 麻醉→背位固定→剪去颈部与剑突腹面的被毛→切开颈部皮肤，分离气管并插入气管插管→分离出双侧迷走神经，穿线备用。
气管务必分离干净，插管后务必扎紧，避免漏气2. 剑突软骨分离术切开胸骨下端剑突部位的皮肤，并沿腹白线再切开长约2cm的切口。
细心分离剑突表面的组织，并暴露剑突软骨与骨柄。
提起剑突，可见剑突随膈肌的收缩而自由运动。
3. 将系有剑突的金属钩钩于剑突中间部位，线的另一端系于张力传感器的应变梁上。
4. 开启计算机采集系统，接通张力传感器的输入通道，调节记录系统，使呼吸曲线清楚地显示在显示器5. 记录膈肌放电.【实验观察项目】（1）记录正常的呼吸运动、膈肌放电曲线，注意分清呼气和吸气运动与曲线的方向。
（2）增加无效腔对呼吸运动的影响将长约0.5m、内径1cm的橡皮管连于气管插管的一个侧管上，用止血钳夹闭另一侧管，使无效腔增加，观察并记录呼吸运动的改变，一旦出现明显变化，则立即打开止血钳，去除橡皮管，待呼吸恢复正常。
家兔呼吸运动的调节
家兔颈动脉鞘内容物分离术
在颈部一侧找到颈动脉鞘（注意手法）； 1. 在颈部一侧找到颈动脉鞘（注意手法）； 分离顺序：先神经， 2. 分离顺序：先神经，后血管 3. 神经分离顺序：先细后粗 神经分离顺序： 在此项实验中仅分离两侧迷走神经 减压神经，颈交感神经， 减压神经，颈交感神经，迷走神经 4 神经下方分别穿线待用； 神经下方分别穿线待用；
家兔呼吸运动的 调节
实验目的
• 掌握家兔呼吸运动调节的途
径与机制 • 了解一种记录家兔呼吸运动 的方法
实验原理
• 化学感受器反射调节
中枢化学感受器 外周化学感受器
肺牵张感受器反射调节
PCO2↑
颈A体、主A体化 学感受器兴奋
舌咽N 窦N－舌咽N 主动脉N 迷走N 主动脉N－迷走N
呼吸中枢
传出N 传出N
7. 抽气实验： 抽气实验：
在家兔呼气末用注射器向其肺 内抽出20ml空气，观察家兔呼吸运 空气， 内抽出 空气 动的变化 8. 剪断家兔两侧迷走神经，观察家兔呼 剪断家兔两侧迷走神经， 吸运动的变化 9. 重复实验六与实验七，观察家兔呼吸 重复实验六与实验七， 运动的变化
心音听诊
第一心音： 第一心音： 时间：发生在心缩期，标志着心室收缩期开始。 时间：发生在心缩期，标志着心室收缩期开始。 位置：在心尖搏动处 胸壁第五肋间左锁骨中线内侧 胸壁第五肋间左锁骨中线内侧) 位置：在心尖搏动处(胸壁第五肋间左锁骨中线内侧 原因：房室瓣关闭、心室收缩 血流冲击房室瓣引起心室壁 原因：房室瓣关闭、心室收缩→血流冲击房室瓣引起心室壁 振动， 振动，以及心室射血引起动脉壁振动等 特点：音调较低，持续时间较长。 特点：音调较低，持续时间较长。 第二心音： 第二心音： 时间：发生在心舒期，标志着心室舒张期开始。 时间：发生在心舒期，标志着心室舒张期开始。 位置：在主动脉瓣和肺动脉瓣区(第二肋间胸骨右缘和左缘) 位置：在主动脉瓣和肺动脉瓣区(第二肋间胸骨右缘和左缘) 原因：与动脉瓣关闭、 原因：与动脉瓣关闭、血流冲击大动脉根部以及心室壁振动 等因素有关。 等因素有关。 特点：频率较高，持续时间较短。 特点：频率较高，持续时间较短。
实验家兔呼吸运动的调节(共7张PPT)
9〕剪断双侧迷走神经，分别刺激中枢端和外周端，观察呼吸运动的变化。 3、手术别离气管与颈部神经：
观察呼吸运动的变化。 B、别离肌肉层：钝性别离
3〕CO2对呼吸运动的影响。 4、手术别离家兔剑突软骨 记录实验观察工程中的各项结果。
第2页，共7页。
【实验动物及器材】
家兔、兔手术台，常用手术器械，止血钳、眼科剪、 支架、气管插管、橡皮管、Pc-Lab生物信号采集系 统、张力传感器、保护电极、纱布、棉球、细棉线、 注射器〔20ml〕、生理盐水、20%-25%氨基甲酸 乙酯、装有钠石灰的气袋及装有二氧化碳/CO2的气 袋。
第3页，共7页。
2、固定剪毛：背位固定在兔手术台上，剪去颈部被毛。
4〕缺氧对呼吸运动的影响。 1〕记录正常的呼吸曲线，并识别吸气与呼气运动与曲线方向的关系。
肺的牵张反射参与呼吸节律的调节。
5〕增加气道阻力对呼吸运动的影响。 3、手术别离气管与颈部神经：
1〕记录正常的呼吸曲线，并识别吸气与呼气运动与曲线方向的关系。
10〕缓慢放血20ml观察呼吸运动曲线的变化。
3、手术别离气管与颈部神经： 8〕再次观察肺的牵张反射。
4、手术别离家兔剑突软骨 C、行气管插管：倒“T〞切口，插管固定
A、颈部皮肤切口5-7cm： B、别离肌肉层：钝性别离
肺的牵张反射参与呼吸节律的调节。
B、别离肌肉层：钝性别离 【实验原理】 人体及高等动物的呼吸运动之所以能持续地、节律性地进行，是由于体内调节机制的存在。 B、别离肌肉层：钝性别离
3〕CO2对呼吸运动的影响。
第5页，共7页。
6〕肺牵张反射
8B〕、再别次离观肌7察肉〕肺层的：牵同钝张性反别时射离。结扎双侧迷走神经，观察呼吸运动的变化。
家兔呼吸测定实验报告(3篇)
第1篇一、实验目的1. 熟悉家兔呼吸测定的基本原理和操作方法。
2. 掌握通过呼吸传感器测定家兔呼吸频率和幅度的技术。
3. 研究影响家兔呼吸运动的各种因素，如无效腔、CO2、乳酸和缺氧等。
4. 观察肺牵张反射对呼吸运动的影响。
二、实验原理呼吸运动是指呼吸肌（如肋间肌和膈肌）在神经系统控制下进行的有节律的收缩和舒张造成的。
呼吸运动的节律性主要来源于基本呼吸中枢脑桥和延髓，并受体内外各种因素影响。
体内、外的各种刺激，可以直接作用于中枢或不同的感受器，反射性地影响呼吸运动，以适应机体代谢的需要。
肺牵张反射是保证呼吸运动节律的机制之一。
血液中CO2分压的改变，通过对中枢性与外周性化学感受器的刺激及反射性调节，是保证血液中气体分压稳定的重要机制。
三、实验材料与器材1. 实验材料：家兔2. 实验器材：- 手术台- 常用手术器械- 生理信号采集处理系统- 呼吸传感器- 止血钳- 气管插管- 20ml及1ml注射器- 橡皮管- 刺激电极- 20%氨基甲酸乙酯- CO2、乳酸、生理盐水- 棉线- 纱布四、实验步骤1. 家兔麻醉：将家兔称重后，用剪刀剪去耳缘静脉上的毛。
用20ml注射器由耳缘静脉缓慢推注25%氨基甲酸乙酯（1g/kg体重）进行麻醉。
2. 手术准备：将家兔背位固定于手术台，剪去颈部与剑突腹面的被毛，切开颈部皮肤，分离气管并插入气管插管。
3. 连接呼吸传感器：将呼吸传感器连接到生理信号采集处理系统，用于记录家兔的呼吸频率和幅度。
4. 观察呼吸运动：观察家兔的呼吸运动，记录正常的呼吸曲线。
5. 增加无效腔：将家兔的气管插管长度增加，模拟增加无效腔的情况，观察呼吸曲线的变化。
6. 增加CO2浓度：向家兔的呼吸系统中注入一定浓度的CO2，观察呼吸曲线的变化。
7. 增加乳酸浓度：向家兔的呼吸系统中注入一定浓度的乳酸，观察呼吸曲线的变化。
8. 缺氧：将家兔置于低氧环境中，观察呼吸曲线的变化。
9. 肺牵张反射：剪断家兔双侧迷走神经，观察呼吸曲线的变化。
家兔的呼吸运动调节实验报告
家兔的呼吸运动调节实验报告一、实验目的通过观察各种因素对家兔呼吸运动的影响，深入理解呼吸运动的调节机制，掌握相关实验技术和方法。
二、实验原理呼吸运动是一种节律性运动，其节律产生于呼吸中枢。
呼吸中枢接受来自体内外各种刺激的传入冲动，通过调整呼吸运动的频率和深度，使血液中的氧气、二氧化碳和酸碱度等保持相对稳定。
呼吸运动的调节主要包括神经调节和化学调节。
神经调节主要通过迷走神经和交感神经实现，化学调节则主要依赖于血液中氧气、二氧化碳和氢离子浓度的变化。
三、实验材料与方法（一）实验动物健康家兔一只，体重约 25 30 千克。
（二）实验器材BL-420 生物机能实验系统、呼吸换能器、压力换能器、哺乳动物手术器械一套、气管插管、动脉插管、注射器、5%碳酸氢钠溶液、20%乌拉坦溶液、氮气瓶、二氧化碳瓶等。
（三）实验步骤1、家兔称重后，于耳缘静脉缓慢注射 20%乌拉坦溶液（5ml/kg）进行麻醉。
待家兔麻醉后，仰卧固定于手术台上。
2、剪去颈部手术部位的毛，沿颈部正中切开皮肤，分离皮下组织和肌肉，暴露气管。
在气管下方穿一根丝线，于甲状软骨下方 2 3 个软骨环处做一倒“T”形切口，插入气管插管，并用丝线固定。
3、分离一侧颈总动脉，插入动脉插管，通过压力换能器连接到BL-420 生物机能实验系统，用于监测动脉血压。
4、在剑突下切开皮肤，分离出剑突软骨，将连有张力换能器的丝线钩在剑突软骨上，用于记录呼吸运动。
5、各项准备工作完成后，启动 BL-420 生物机能实验系统，记录正常呼吸运动曲线。
四、实验项目及结果（一）增加吸入气中二氧化碳浓度打开二氧化碳瓶，使家兔吸入含较高浓度二氧化碳的气体。
观察到呼吸运动明显加深加快，呼吸频率显著增加。
这是因为血液中二氧化碳浓度升高，刺激外周化学感受器和中枢化学感受器，反射性地引起呼吸加深加快，以排出过多的二氧化碳。
（二）缺氧将氮气瓶与气管插管相连，使家兔吸入氮气造成缺氧。
呼吸运动加深加快，频率增加。
家兔呼吸调节实验报告
家兔呼吸调节实验报告一、实验目的1、学习记录家兔呼吸运动的方法。
2、观察各种因素对呼吸运动的影响，并分析其作用机制。
二、实验原理呼吸运动是呼吸中枢节律性活动的反映。
呼吸中枢通过支配呼吸肌的收缩和舒张，引起胸廓的扩大和缩小，从而实现肺的通气功能。
呼吸运动受到多种因素的调节，包括神经调节和化学调节。
神经调节主要通过迷走神经和交感神经的作用来实现，化学调节则主要通过血液中二氧化碳分压（PCO₂）、氧分压（PO₂）和氢离子浓度（H⁺）的变化来影响呼吸中枢的活动。
三、实验材料1、实验动物：健康家兔 1 只，体重 20 25 kg。
2、实验器材：哺乳动物手术器械一套、BL-420 生物机能实验系统、压力换能器、呼吸流量换能器、保护电极、气管插管、注射器、50cm长的橡皮管、CO₂气囊、钠石灰瓶。
3、实验药品：20%氨基甲酸乙酯（乌拉坦）、3%乳酸溶液、生理盐水。
四、实验步骤1、家兔称重后，于耳缘静脉缓慢注射20%氨基甲酸乙酯（5ml/kg）进行麻醉。
待家兔麻醉后，将其仰卧固定于手术台上。
2、剪去颈部的毛，沿颈部正中做一长约 6 8cm 的切口，分离皮下组织和肌肉，暴露气管。
在气管下穿两根丝线，在气管甲状软骨下约1cm 处做一倒“T”形切口，插入气管插管，并用丝线结扎固定。
3、在颈部分离一侧迷走神经，穿线备用。
4、将压力换能器与气管插管相连，用于记录呼吸运动的变化。
5、打开 BL-420 生物机能实验系统，选择“呼吸运动调节”实验项目，调整参数，进行实验记录。
五、实验项目及结果1、正常呼吸曲线在未施加任何刺激的情况下，记录家兔的正常呼吸曲线。
观察到呼吸运动呈节律性变化，表现为吸气相和呼气相的交替。
2、增加吸入气中 CO₂浓度将一根 50cm 长的橡皮管连接在气管插管的一侧开口上，使家兔吸入含有较高浓度 CO₂的气体。
观察到呼吸运动明显加深加快。
这是因为 CO₂是调节呼吸运动最重要的生理性化学因素，血液中 PCO₂升高可刺激外周化学感受器和中枢化学感受器，反射性地引起呼吸加深加快，以排出过多的 CO₂。