苦杏仁甙水提法最佳条件及含量测定研究

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高效液相色谱法测定山楂中的苦杏仁甙

高效液相色谱法测定山楂中的苦杏仁甙

# ! #" 山楂中苦杏仁甙提取方法的优化 ! ! 苦杏仁甙易溶 于 甲 醇, 所以选用甲醇作为提取 剂。甄攀等[ ’ ]用 甲 醇 从 郁 李 中 提 取 苦 杏 仁 甙 并 测
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第 !" 卷
定了含量, 马辰等[ # ]也 用 甲 醇 从 苦 杏 仁 中 提 取 苦 杏 仁甙并进行了含量测定。但甲醇能将一些色素和酯 类大分子同时提取出来, 在分析过程中污染色谱柱, 从而降低 柱 效, 使 苦 杏 仁 甙 难 以 和 其 他 物 质 分 离。 石油醚是一种非极 性 溶 剂, 包括色素和酯类在内的 亲脂性物质易溶于其中, 而苦杏仁甙难溶于石油醚。 所以首先用石油醚除去这些干扰成分。实验表明在 石油醚相中检测不 到 苦 杏 仁 甙, 说明苦杏仁甙几乎 未被石油醚萃取出来。 $ $ 索氏提取是中 药 有 效 成 分 提 取 的 最 常 用 方 法, 由于它的溶剂是循 环 使 用 的, 所以可以更有效地提 取中药的有效成分。选 择 %& ! 的 水 浴 条 件 是 因 为 温度太低会使溶剂 的 循 环 减 慢, 而温度太高则导致 苦杏仁甙的分解。图 " 是不同提取时间 (!, ", ’, (, ) 和 % ") 和对应的苦杏仁甙提取量 ( 提 取 的苦 杏 仁 甙 质量与原药 材 粉 末 质 量 之 比, 下文的 “苦杏仁甙的 含量” 也用此表示) 的 曲 线, 从图 " 可以看出 ( 高效液相色谱法测定山楂中的苦杏仁甙
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成分包括有机酸和 黄 酮 类 化 合 物 等, 对这些成分的
$] 研究已有不少报 道[ # , 。日本等国家已经开始对从
中国进口的山楂提 出 测 定 苦 杏 仁 甙 含 量 的 要 求, 但 是现在并未发现关于山楂中苦杏仁甙检测方法的报 道。本文的研究目的就是优化山楂中苦杏仁甙的提 取方法, 建立山 楂 中 苦 杏 仁 甙 的 !"#$ 定 量 分 析 方 法。本文用石油醚对山楂进行脱脂后用甲醇提取苦 杏仁甙, 并用 !"#$ 对 山 楂 中 的 苦 杏 仁 甙 含 量 进 行 检测。

苦杏仁苷的提取实验报告

苦杏仁苷的提取实验报告

一、实验目的1. 掌握苦杏仁苷的提取方法。

2. 了解提取过程中的影响因素。

3. 掌握实验操作技能。

二、实验原理苦杏仁苷(Amygdalin)是一种存在于苦杏仁、桃仁等植物种子中的天然糖苷化合物。

本实验采用溶剂提取法,通过溶剂对苦杏仁苷的溶解作用,将苦杏仁苷从原料中提取出来。

三、实验材料与仪器1. 实验材料:苦杏仁(干燥成熟种子)、石油醚、乙醇、蒸馏水等。

2. 实验仪器:三颈瓶、搅拌器、布氏漏斗、滤纸、分析天平、电热恒温水浴锅、旋转蒸发仪、紫外可见分光光度计等。

四、实验步骤1. 准备工作(1)称取一定量的苦杏仁,置于三颈瓶中。

(2)根据实验要求,选择合适的溶剂(石油醚或乙醇)。

2. 提取(1)将三颈瓶置于70~80℃水浴锅中,加入适量溶剂。

(2)开启搅拌器,使苦杏仁与溶剂充分接触。

(3)提取一定时间后,关闭搅拌器,取出三颈瓶。

3. 过滤(1)将三颈瓶中的混合液通过布氏漏斗和滤纸进行过滤。

(2)收集滤液。

4. 蒸发(1)将滤液置于旋转蒸发仪中,在50℃左右进行蒸发。

(2)待滤液浓缩至一定程度时,停止加热。

5. 结晶(1)将浓缩液置于冰箱中冷却,使苦杏仁苷结晶。

(2)取出结晶,用滤纸过滤,收集苦杏仁苷。

6. 测定(1)采用紫外可见分光光度计测定苦杏仁苷的吸光度。

(2)根据标准曲线计算苦杏仁苷的含量。

五、实验结果与分析1. 提取时间对苦杏仁苷提取率的影响实验结果表明,随着提取时间的延长,苦杏仁苷的提取率逐渐增加。

当提取时间为2小时时,提取率达到最大值。

此后,继续延长提取时间,提取率变化不大。

2. 溶剂种类对苦杏仁苷提取率的影响实验结果表明,石油醚和乙醇均可作为提取溶剂。

其中,石油醚的提取效果略优于乙醇。

3. 溶剂浓度对苦杏仁苷提取率的影响实验结果表明,随着溶剂浓度的增加,苦杏仁苷的提取率逐渐增加。

当溶剂浓度为60%时,提取率达到最大值。

4. 料液比对苦杏仁苷提取率的影响实验结果表明,随着料液比的增加,苦杏仁苷的提取率逐渐增加。

苦杏仁中苦杏仁苷提取工艺研究

苦杏仁中苦杏仁苷提取工艺研究

第46卷第10期2018年5月广 州 化 工Guangzhou Chemical IndustryVol.46No.10May.2018苦杏仁中苦杏仁苷提取工艺研究*范贤哲1,李广凯1,蒋艳杰1,盘 俊1,2,刘小文1,2(1湖南科技学院化学与工程学院,湖南 永州 425100;2湖南科技学院湘南优势植物资源综合利用湖南省重点实验室,湖南 永州 425100)摘 要:研究苦杏仁中苦杏仁苷的最佳提取工艺及比较不同炮制方法苦杏仁中苦杏仁苷的含量㊂采用HPLC 法测定苦杏仁中苦杏仁苷的含量,来确定不同炮制方法苦杏仁在不同溶剂,提取时间,提取次数对提取工艺的影响,确定最佳的炮制工艺㊂研究发现,燀制苦杏仁在水提条件下,提取两次,第一次5倍量沸水回流提取3h㊁第二次4倍量沸水回流提2.5h,苦杏仁苷的含量最高㊂结果表明,该提取工艺合理,稳定,可行,不同炮制方法下的苦杏仁药材中苦杏仁苷的含量存在着差异㊂关键词:苦杏仁;炮制;高效液相法;苦杏仁苷 中图分类号:R931.4 文献标志码:A文章编号:1001-9677(2018)10-0081-04*基金项目:湖南科技学院湘南优势植物资源综合利用湖南省重点实验室开放基金(项目编号:XNZW16C07);湖南科技学院科研项目(项目编号:17XKY015);湖南省高校科技创新团队支助计划(2012-318)㊂第一作者:范贤哲(1998-),男,湖南科技学院制药工程专业在校学生㊂并列通讯作者:刘小文(1983-),男,副教授,从事生物和制药教学与科研工作㊂盘俊(1990-),男,从事化学和制药教学与科研工作㊂Study on Extraction Technology of Amygdalin in Armeniacae Semen Amarum *FAN Xian -zhe 1,LI Guang -kai 1,JIANG Yan -jie 1,PAN Jun 1,2,LIU Xiao -wen 1,2(1School of Chemistry and Engineering,Hunan University of Science and Engineering,Hunan Yongzhou 425100;2Key Laboratory of Comprehensive Utilization of Advantage Plants Resources in Hunan South,HunanUniversity of Science and Technology,Hunan Yongzhou 425100,China)Abstract :The best extraction technology of amygdalin in armeniacae semen amarum was studied and different processing methods content of amygdalin in armeniacae semen amarum were compared.HPLC method was used for determination of the content of amygdalin in armeniacae semen amarum,the effects of different solvents,extraction time and extraction times on the extraction process were determined,and the best processing technology was determined.Results showed that in the extraction of armeniacae semen amarum,under the condition of water extraction,with the first time 5times boiling water reflux extracted for 3h and the second time 4times boiling water reflux extracted for 2.5h,the content of amygdalin was the highest.The extraction technology was reasonable,stable and feasible,the content of amygdalin in armeniacae semen amarum was different under different processing methods.Key words :armeniacae semen amarum;processing methods;HPLC;amygdalin本品为蔷薇科植物山杏Prun .us armemaca L.var .ansuMaxim .西伯利亚杏Prunus sibiricaL .东北杏Prunusmandshurica (Maxim.)Koehne 或杏Prunus armenz .acaL .的干燥成熟种子[1]㊂夏季采收成熟果实,除去果内和核壳,取出种子,晒干㊂主产内蒙古㊁吉林㊁辽宁㊁河北㊁山西㊁陕西㊂主治功能有降气止咳平喘,润肠通便㊂用于咳嗽气喘,胸满痰多,血虚津枯,肠燥便秘㊂现代药理作用表明,苦杏仁苷有着抗动脉粥样硬化,免疫抑制,免疫调节,抗肿瘤,抗炎,看溃疡的作用,为医药上常用的祛痰止咳剂,辅助性抗癌药[2]㊂本实验考察不同炮制工艺下的苦杏仁在不同溶剂,提取次数,提取时间下苦杏仁苷的含量,从而确定最佳的提取工艺㊂传统的提取方法只注重于提取溶剂,提取时间,提取次数等因素的研究,只注重与实验室阶段的研究,而本实验除了实验室研究之外,还考察了药材的吸水量和药材固形量等因素,为苦杏仁的工业化生产提供了一定的依据㊂1 仪器与试药1.1 仪 器Agilent1200高效液相色谱系统,美国安捷伦;Agilent ZORBAX-SB-C 18柱(4.6mm×150mm),5μm;TDD5M 型医用82 广 州 化 工2018年5月离心机,长沙平凡仪器仪表有限公司;RE-201D 型旋转蒸发仪及恒温水油浴锅,长沙太康设备有限公司;美的ST2106型电磁炉,FA2104型电子天平,上海舜宇恒平科学仪器有限公司;SHB-Ⅲ循环水式多用真空泵,郑州长盛实验仪器有限公司㊂1.2 试 药苦杏仁苷(含量测定用,批号:110820-200403),中国药品生物制品检定所;苦杏仁,长沙市药材市场,经湖南科技学院植物学博士黄光文副教授鉴定为蔷薇科植物东北杏Prunusmandshurica (Maxim.)Koehne 的干燥成熟种子;甲醇为色谱纯;水为超纯水;其他试剂为分析纯㊂2 方法与结果2.1 苦杏仁苷的测定2.1.1 色谱条件及系统适用性试验色谱柱为Agilent C 18(4.6mm×150mm,5μm);流动相为:甲醇-水(25:75);检测波长:207nm;流速:1mL /min;进样:10μL㊂取对照品溶液和供试品溶液,按此的色谱条件进样,分离度大于2,理论塔板数以苦杏仁苷峰均在3000以上,结果见图1㊂图1 苦杏仁的HPLC 色谱图Fig.1 HPLC chromatogram ofarmeniacae semen amarum2.1.2 供试品溶液的制备 取苦杏仁粗粉0.5g,置100mL 烧瓶中加60%的乙醇25mL,加热回流30min,趁热过滤,滤液冷至室温,移制100mL 量瓶中,药渣用乙醇洗涤2次,洗液并入容量瓶中,用乙醇稀释至刻度,摇匀,精密度取2mL,置5mL 容量瓶中,加甲醇稀释至刻度,即得㊂2.1.3 对照品溶液的制备精密称取苦杏仁苷对照品4.51mg 置25mL 量瓶中,用甲醇溶解并稀释至刻度,摇匀,即得0.1804mg /mL 的苦杏仁苷标准溶液㊂2.1.4 标准曲线的绘制分别精密吸取苦杏仁苷标准溶液,用甲醇稀释配制浓度分别为0.07216㊁0.10824㊁0.14432㊁0.1804㊁0.2165㊁0.2526mg/mL 的苦杏仁苷系列对照品溶液㊂精密吸取上述苦杏仁苷对照品溶液各10μL 注入液相色谱仪,按上述色谱条件依次测定,以峰面积积分制(Y)对进样量(X)进行线性回归,得回归方程Y =488.996X +11.516.r =0.9999,苦杏仁苷在0.7216~2.5253μg 间浓度与峰面积的线性关系良好㊂2.2 提取溶剂的选择取苦杏仁药材二份,每份各50g,置1000mL 烧瓶中,用沸水㊁60%乙醇作溶剂提取加热(50v),回流提取两次,第一次用5倍量提取3h,分别2h㊁2.5h㊁3h 时取样2mL 置5mL 量瓶中,加甲醇定容至刻度;第二次4倍量提取2.5h,分别于0.5h㊁1h㊁1.5h㊁2h㊁2.5h 时取样2mL 置5mL 量瓶中,加甲醇定容至刻度,溶液过滤后对苦杏仁苷进行含量测定㊂结果如表1所示,可知沸水做溶媒提取苦杏仁原药材中的苦杏仁苷的浓度明显高于60%乙醇㊂本实验还特意考察了药材的含水量和固形物含量的测定结果,见表2和表3㊂表1 苦杏仁原材料不同溶剂提取苦杏仁苷的浓度考察Table 1 The concentration of amygdalin extracted from raw materials of armeniacae semen amarum by different extractions苦杏仁苷浓度(第一次提取)/(mg㊃mL -1)时间/min溶剂沸水60%乙醇苦杏仁苷浓度(第二次提取)/(mg㊃mL -1)时间/min 溶剂沸水60%乙醇1205.932.83301.390.881506.703.44601.821.331807.163.95902.191.831202.452.231502.622.66表2 不同溶剂提取苦杏仁药材吸水量测定结果表Table 2 The water absorption of armeniacae semen amarum by different solvent extractions溶剂药材/g 提取溶剂/g药渣/g 吸水率/%离心后药渣/g离心后吸水率/%第一次提取沸水5025073.64770.84260%乙醇50250774065.731.4第二次提取沸水502007754714260%乙醇5020070406530第46卷第10期范贤哲,等:苦杏仁中苦杏仁苷提取工艺研究83 表3 不同溶剂提取苦杏仁药材固形物含量测定结果表Table 3 The crude solids content determination of armeniacae semen amarum by different solvent extractions溶剂药材/g 提取液重量/g干膏重量/g 提取液干膏率/%干膏得率/%干膏中苷纯度/%第一次提取沸水502235.072.2710.1435.3160%乙醇502232.891.305.7934.12第二次提取沸水501892.101.114.1962.5060%乙醇501901.480.782.9689.972.3 苦杏仁原药材不同沸腾程度水提苦杏仁苷的浓度考察取苦杏仁原药材二份,每份各50g,置1000mL 烧瓶中,用5倍量沸水(250g)作溶剂分别用电磁炉电压为50v㊁75v 加热,回流提取二次;第一次提取3h,分别于2h㊁2.5h㊁3h 时取样2mL 置5mL 量瓶中,加甲醇定容至刻度;第二次提取2.5h,分别于0.5h㊁1h㊁1.5h㊁2h㊁2.5h 时取样2mL 置5mL 量瓶中,加甲醇定容至刻度㊂溶液过滤后对苦杏仁苷进行含量测定,结果见表4,可知水做溶媒时沸腾程度对提取苦杏仁原药材中的苦杏仁苷的浓度影响不大,本实验还特意考察了药材的含水量和固形物含量的测定结果,见表5和表6㊂表4 苦杏仁原药材不同沸腾程度水提苦杏仁苷的浓度考察Table 4 The concentration of amygdalin water extracted from raw materials of armeniacae semen amarum by differentdegree of boiling water苦杏仁苷浓度(第一次提取)/(mg㊃mL -1)时间/min 沸腾程度微沸中沸苦杏仁苷浓度(第二次提取)/(mg㊃mL -1)时间/min 沸腾程度微沸中沸1205.936.34301.391.661506.706.42601.822.091807.167.18902.192.441202.452.821502.623.03表5 不同沸腾程度水提苦杏仁药材吸水量测定结果表Table 5 The water absorption of armeniacae semen amarum by different degree of boiling water沸腾程度药材/g 提取溶剂/g药渣/g 吸水率/%离心后药渣/g 离心后吸水率/%第一次提取微沸5025073.64770.842中沸5025077547142第二次提取微沸5020077547142中沸5020078567142表6 不同沸腾程度水提苦杏仁药材固形物含量测定结果表Table 6 The crude solids content determination of armeniacae semen amarum by different degree of boiling water沸腾程度药材/g 提取液重量/g干膏重量/g 提取液干膏率/%干膏得率/%干膏中苷纯度/%第一次提取微沸502235.072.2710.1435.31中沸502165.322.4610.6533.72第二次提取微沸501892.101.114.1962.50中沸501912.211.154.4168.832.4 不同炮制方法的选择分别各取50g 苦杏仁原药材,燀制药材,掰开药材置1000mL 烧瓶中,用沸水做溶剂加热(50v),回流提取二次,第一次用5倍量提取3h,分别于2h㊁2.5h㊁3h 时取样2mL 置5mL 量瓶中,加甲醇定容至刻度,第二次用4倍量提取2.5h,分别于0.5h㊁1h㊁1.5h㊁2h㊁2.5h 时取样2mL 置5mL 量瓶中,加甲醇定容至刻度,溶液过滤后对苦杏仁苷进行含量测定,结果见表7,可知掸制药材在此实验条件下,提取苦杏仁苷的含量最高㊂本实验也考察了药材的含水量和固形物含量的测定结果,见表8和表9㊂表7 水提不同炮制方法的苦杏仁药材中苦杏仁苷的浓度Table 7 The concentration of amygdalin water extracted from raw materials of armeniacae semen amarum by different processing methods苦杏仁苷浓度(第一次提取)/(mg㊃mL -1)时间/min 炮制方法原药材燀制药材掰开药材苦杏仁苷浓度(第二次提取)/(mg㊃mL -1)时间/min沸腾程度原药材燀制药材掰开药材1205.939.228.01301.391.501.561506.709.778.45601.821.581.631807.169.628.23902.191.681.671202.451.691.711502.621.731.7484 广 州 化 工2018年5月表8 水提不同炮制方法的苦杏仁药材吸水量测定结果表Table 8 The water absorption of armeniacae semen amarum by different processing methods炮制方法药材/g 提取溶剂/g药渣/g 吸水率/%离心后药渣/g离心后吸水率/%第一次提取原药材5025073.64770.842燀制药材5025072.4456836掰开药材5025078567142第二次提取原药材5020077547142燀制药材5020077546938掰开药材5020079587142表9 水提不同炮制方法的苦杏仁药材固形物含量测定结果表Table 9 The crude solids content determination of armeniacae semen amarum by different processing methods炮制方法药材/g 提取液重量/g干膏重量/g 提取液干膏率/%干膏得率/%干膏中苷纯度/%第一次提取原药材502235.072.2710.1435.31燀制药材502256.202.7512.4038.79掰开药材502286.732.9513.4530.59第二次提取原药材501892.101.114.1962.50燀制药材501932.031.054.0542.84掰开药材501892.001.064.0043.402.5 验证实验取50g 苦杏仁燀制药材置1000mL 烧瓶中,用沸水做溶剂加热(50v),回流提取二次,第一次用5倍量提取3h,分别于2h㊁2.5h㊁3h 时取样2mL 置5mL 量瓶中,加甲醇定容至刻度,第二次提取4倍量2.5h,分别于0.5h㊁1h㊁1.5h㊁2h㊁2.5h 时取样2mL 置5mL 量瓶中,加甲醇定容至刻度,溶液过滤后对苦杏仁苷进行含量测定,见表10,结果表明该实验在此工艺下稳定㊁合理,为以后实际生产提供依据㊂表10 苦杏仁燀制药材浓度时间考察表Table 10 The concentration time of the processed armeniacaesemen amarum时间/min 苦杏仁苷浓度(第一次提取)/(mg㊃mL -1)时间/min 苦杏仁苷浓度(第二次提取)/(mg㊃mL -1)1209.19301.491509.78601.601809.65901.671201.701501.753 结 论通过一系列的单因素实验考察,可知燀制苦杏仁比掰开苦杏仁,苦杏仁原药材,在水为溶剂,提取两次,第一次5倍量提取3h,第二次4倍量提取2.5h 的条件下苦杏仁苷含量高㊂原因可能是苦杏仁中含有苦杏仁酶,常温下水中该酶可分解苦杏仁苷,使苦杏仁苷含量降低㊂苦杏仁苷在第一次5倍量溶剂提取时,已经大部分被提取,故第二次提取时采用4倍量提取,可以更经济,合理,节能㊂燀制,掰开,原药材三种炮制方法的药材投料是模拟药厂三种投料方式考察,可以为工厂投料提供一定的依据,本实验还独特的考察了在不同因素下的药材含水量和药材固形物含量,可以为苦杏仁苷的工厂化生产提供一定的依据㊂参考文献[1] 中国药典.一部[S].2010:187.[2] 夏其乐,王涛,陆胜民,潘思轶.苦杏仁苷的分析㊁提取纯化及药理作用研究进展[J].食品科学,2013,34(21):403-407.[3] 邹小娟,谢和兵,钱芳,刘志辉.HPLC 法测定苦杏仁中苦杏仁苷的含量的方法研究[J].中国药事,2009,23(1):33-36.[4] 樊如强,傅宏征,金学晶,等.刺五加皮有效成分提取工艺考察及不同产地刺五加皮中有效成分含量的比较[J].中药学,2014,54(2):260-264.[5] Xingjun Miao,Zhong Zhao,Hailan parison of second -derivative spectrophotometry and HPLC for determination of amygdalin in wild apricot kernels[J].Science Society of Thiland,2013,39(4):444-446.[6] 房敏峰,付志玲,王启林,等.炮制对苦杏仁中苦杏仁苷在大鼠体内代谢的影响[J].中国中药杂志,2010,35(20):2684-2688.[7] 叶晶晶.HPLC 法测定不同产地桃仁中苦杏仁苷的含量[J].中华中医药学刊,2011,29(1):206-207.。

高效液相色谱法测定喘嗽宁片中苦杏仁苷含量

高效液相色谱法测定喘嗽宁片中苦杏仁苷含量

高效液相色谱法测定喘嗽宁片中苦杏仁苷含量发表时间:2016-07-27T11:15:46.430Z 来源:《医药前沿》2016年7月第19期作者:吴朦俊肖英[导读] 为确保该制剂的疗效,更好地控制其质量,本试验以高效液相色谱法(HPLC)测定苦杏仁的有效成分苦杏仁苷的含量,现报道如下。

吴朦俊肖英(贵州省毕节市食品药品检验所贵州毕节 551700)【摘要】目的:建立测定喘嗽宁片中苦杏仁苷含量的高效液相色谱法。

方法:用Diamonsil C18(5μm,200×4.6mm)色谱柱,流动相为甲醇-水(20:80),检测波长为218nm,流速1.0mL/min。

结果:苦杏仁苷进样量在0.06016~0.96256μg(r=1.0000)范围内与峰面积积分值具有良好线性关系,平均回收率为99.1%,RSD为1.2%(n=6)。

结论:该方法专属性强、灵敏、操作简便,可用于喘嗽宁片中苦杏仁苷的含量测定。

【关键词】喘嗽宁片;苦杏仁苷;高效液相色谱法;含量测定【中图分类号】R927.2 【文献标识码】A 【文章编号】2095-1752(2016)19-0377-02喘嗽宁片[1]由白果100g、苦杏仁160g、地龙160g、桑白皮160g、陈皮160g、黄芩160g、白前160g、苦参160g、甘草160g、茯苓270g等组成,具有清热平喘,止咳化痰的功效,用于支气管哮喘,喘息型支气管炎,肺气肿,肺心病早期。

原质量标准[1]中,对主药苦杏仁既无定性也无定量分析。

为确保该制剂的疗效,更好地控制其质量,本试验以高效液相色谱法(HPLC)测定苦杏仁的有效成分苦杏仁苷的含量,现报道如下。

1.仪器与试药1.1 仪器Agilent 1260型高效液相色谱仪(四元泵、柱温箱、DAD二极管阵列检测器、自动进样器)及色谱数据工作站;AY120型电子天平(SHIMADZU,感量0.1mg);MSE3.6p-0CE-DM型电子天平[赛多利斯科学仪器(北京)有限公司,感量0.001mg];洁康PS-100超声波清洗器。

苦杏仁苷的分析 提取纯化及药理作用研究进展

苦杏仁苷的分析 提取纯化及药理作用研究进展

参考内容
摘要
苦杏仁苷是一种天然化合物,主要存在于苦杏仁、桃仁等植物中,具有多种药 理作用。近年来,随着对苦杏仁苷药理作用研究的深入,其在抗炎、抗肿瘤、 镇静、催眠等方面的作用逐渐受到。本次演示将对苦杏仁苷的药理作用及其作 用机制进行详细阐述,以期为相关研究提供参考。
关键词:苦杏仁苷、药理作用、 抗炎、抗肿瘤、镇静、催眠
研究发现,苦杏仁苷的体内代谢可能受到多种因素的影响,如基因多态性、年 龄、性别、饮食等。
结论
苦杏仁苷的药理作用研究取得了显著的进展,其在抗炎、抗肿瘤、镇静、催眠 等方面的作用逐渐受到。然而,尽管取得了一些研究成果,但仍存在许多不足 和需要进一步探讨的问题。例如,苦杏仁苷的作用机制尚不完全清楚,其体内 代谢过程受到多种因素的影响,
1、提取方法
苦杏仁苷的提取方法主要包括有机溶剂萃取法、水提取法、超临界流体萃取法 等。有机溶剂萃取法虽然提取率高,但使用大量有机溶剂会对环境造成污染; 水提取法环保,但提取率较低;超临界流体萃取法具有高提取率和环保性,但 设备成本较高。
2、纯化工艺
苦杏仁苷的纯化工艺主要包括沉淀法、色谱分离法、膜分离法等。沉淀法操作 简单,但纯度较低;色谱分离法具有高分辨率、高纯度等优点,但操作较为繁 琐;膜分离法具有高效、环保等优点,但膜的制备和使用受到一定限制。
苦杏仁苷能够改善糖尿病患者的血糖水平,其作用机制包括促进胰岛素分泌、 提高胰岛素敏感性、抑制胰高血糖素分泌等。
4、保护肝脏作用
苦杏仁苷能够减轻化学性肝损伤和肝纤维化,保护肝脏功能。其作用机制包括 抑制炎症反应、抗氧化应激、抑制肝星状细胞增殖和胶原合成等。然而,苦杏 仁苷的肝脏保护作用及其机制仍需进一步研究证实。
结论
尽管对苦杏仁苷的分析、提取纯化及药理作用的研究取得了一定的进展,但仍 存在许多不足和需要进一步探讨的问题。例如,需要深入研究苦杏仁苷的生物 活性机制及其与其他药物联合使用的协同作用;同时,需要开发更加高效、环 保的苦杏仁苷提取和纯化方法,

杏仁中苦杏仁甙的水提取工艺及其含量的测定

杏仁中苦杏仁甙的水提取工艺及其含量的测定

杏仁中苦杏仁甙的水提取工艺及其含量的测定
李强;陈锦屏
【期刊名称】《食品科学》
【年(卷),期】2006(027)009
【摘要】本文用水为溶剂提取杏仁中的苦杏仁甙,采用紫外分光光度法,以甲醇为溶剂,在检测波长为219nm处测定苦杏仁甙的含量,并讨论了料液比、浸泡时间、提取时间以及提取次数对苦杏仁甙的水提取工艺的影响.结果表明:紫外分光光度法测定杏仁中苦杏仁甙在0.01~0.10mg/ml浓度范围内,线性关系良好(r=0.9996),平均回收率在99.751%~102.124%,相对标准偏差为0.9749%,可见此测定法快速、简便、稳定、准确、可靠;水提取杏仁中苦杏仁甙时,影响提取效果的主次顺序为提取时间>料液比>浸泡时间.最佳提取参数为:提取时间20min,料液比1:10,浸泡时间3min,提取2次.
【总页数】4页(P140-143)
【作者】李强;陈锦屏
【作者单位】陕西师范大学食品工程系,陕西,西安,710062;陕西师范大学食品工程系,陕西,西安,710062
【正文语种】中文
【中图分类】R248.2
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苦杏仁-苦杏仁苷的测定-高效液相色谱法

苦杏仁-苦杏仁苷的测定-高效液相色谱法

F YY YW FYD ZYC ZW 04902005苦杏仁苦杏仁苷的测定高效液相色谱法F_YY_YW_FYD_ZYC_ZW _0490_2005苦杏仁-苦杏仁苷的测定-高效液相色谱法1范围本方法采用高效液相色谱法测定杏仁中苦杏仁苷的含量。

本方法适用于蔷薇科植物杏Prunus armeniaca L.或山杏Prunus armeniaca L.var.ansu Maxim.的干燥种子。

2原理供试品于索氏提取器中,甲醇回流,取滤液,进入高效液相色谱仪进行色谱分离,紫外检测器检测苦杏仁苷的吸收值,计算出其含量。

3试剂(除特殊注明外均为分析纯试剂)3.1甲醇(色谱醇)3.2乙腈(色谱醇)3.3水为双蒸水3.4苦杏仁苷对照品(中国药品生物制品检定所)4仪器及设备4.1仪器4.1.1高效液相色谱仪4.1.2化学工作站4.1.3色谱柱:YWG-C 18(4.6mm×250mm ,10µm)4.2色谱条件4.2.1流动相:甲醇+水+乙腈=25+70+54.2.2流速:0.6mL/min 4.2.3柱温:30℃4.2.4检测波长:225nm 5试样制备5.1对照品溶液的制备精密称取苦杏仁苷对照品1.64mg ,用甲醇溶解并稀释至2.0mL ,得0.82mg/mL 的对照品溶液。

5.2供试品溶液的制备称取各种干燥的杏仁适量,精密称定,粉碎,分别用甲醇浸泡0.5h ,用索氏提取器提取2.5h ,滤过,定容至100mL ,用微孔滤膜滤过,即得供试品溶液。

6操作步骤6.1标准曲线的建立精密量取苦杏仁苷对照品溶液0.5,1,2,3,4,5,10,15µL ,依法进样测定,以峰面积Y 对进样量X 作图,得工作曲线,回归方程为Y=299.9X-50.01,在0.41~12.30μg 成良好的线性关系6.2供试品的测定 中国分析网精密吸取上述供试品溶液10µL 注入高效液相色谱仪,依法测定苦杏仁苷的响应值,计算出其含量。

苦杏仁苷 提取

苦杏仁苷 提取

苦杏仁苷提取
苦杏仁苷的提取主要采用溶剂提取法。

具体来说,有以下几种提取方式:
1. 有机溶剂提取法:根据苦杏仁苷在不同溶剂中溶解度的差异,选择适当的有机溶剂进行提取。

常用的有机溶剂有乙醇、甲醇、丙酮等,其中乙醇是最常用的溶剂,因为苦杏仁苷在乙醇中的溶解度较大。

将苦杏仁或苦杏仁粉加入乙醇中,搅拌均匀后过滤,得到提取液,进一步处理后得到苦杏仁苷。

2. 超声波辅助提取法:超声波具有空化、振动和热效应等作用,可以加速目标成分的溶解和扩散,提高提取效率。

将苦杏仁或苦杏仁粉加入溶剂中,利用超声波辅助提取,可缩短提取时间并提高提取率。

3. 微波辅助提取法:微波具有穿透性和加热作用,能够使目标成分迅速加热并渗透到组织内部,从而提高提取效率。

将苦杏仁或苦杏仁粉加入溶剂中,利用微波辅助提取,可显著缩短提取时间并提高提取率。

4. 超临界流体萃取法:超临界流体萃取是一种新型的分离技术,利用超临界流体的特殊性质进行提取和分离。

常用的超临界流体为二氧化碳,操作条件温和,不产生有害物质。

将苦杏仁或苦杏仁粉装入萃取釜中,以二氧化碳为萃取剂进行高压萃取,得到高浓度的苦杏仁苷提取液。

在完成提取后,可以通过结晶、沉淀等方法将苦杏仁苷与其他成分分离出来。

结晶法是最常用的分离方法之一,通过控制结晶条件(如温度、浓度、pH值等),使苦杏仁苷在溶剂中结晶析出,从而实现分离。

此外,还可以采用沉淀法、吸附法等方法进行分离纯化。

以上方法仅供参考,如需获取更具体的信息,建议咨询专业人士。

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西安源森生物苦杏仁甙水提法最佳条件及含量测定研究
苦杏仁甙是从中药苦杏仁中分离的具有止咳作用的一种芳香族氰甙,可释放少量氢氰酸而用于镇咳平喘,药用价值极高,且已被广泛应用于医药、保健品中。

西安源森生物实验室为充分开发苦杏仁提取物,严格控制苦杏仁甙的质量,将在本次实验中以水为提取溶剂,采用UV法分别测定不同料液比、浸泡时间及提取时间条件下提取的苦杏仁甙含量。

本次实验以纯度大于99%的苦杏仁甙为对照品,含量测定波长291nm.
一、西安源森生物苦杏仁甙水提实验材料与方法
(一)西安源森生物本次实验仪器
旋转蒸发器RSE-52 AA;
紫外分光光度计UV-3010;
SHB-111 循环水式从用真空泵。

(二)材料与试剂
新疆小白杏杏仁;
苦杏仁甙标准品(纯度大于99%);
石油醚、甲醇(均为分析纯)、去离子水。

(三)方法
1. 西安源森生物苦杏仁甙提取方法
精密称取一定量经粉碎机粉碎并过筛的苦杏仁→加入适量石油醚在室温下震荡浸提24h →过滤→滤渣用石油醚清洗后挥干→称重→得到去油杏仁粉→将杏仁粉过100 目筛后备用。

精密称取杏仁粉1.5g,放入磨口三角瓶中,用定量的水浸泡提取→过滤→收取滤液→浓缩→定容至50ml容量瓶中→摇匀得苦杏仁甙提取液。

2.分析方法
(1)苦杏仁甙的紫外吸收光谱
以甲醇为溶剂配制苦杏仁甙标准溶液(0.1mg/ml)→置1cm石英小池→放在紫外分光光度计上→选择200~300nm 波长范围测定吸收A值,并以甲醇作空白记录其紫外吸收光谱。

如图1所示:
苦杏仁甙于波长219nm处出现最大吸收峰,因此确定检测波长为219nm。

(2)标准曲线的绘制
精密称取经1 0 5 ℃干燥至恒重的苦杏仁甙标准品5mg→甲醇溶解定容至50ml→制得0.1mg/ml苦杏仁甙标准溶液。

准确移取标准溶液1 、2 、3 、4 、5 、6 、7、8、9、10ml,用甲醇分别定容至10ml,得到浓度为0.01、0.02、0.03、0.04、0.05、0.06、0.07、0.08、0.09、0.10mg/ml的系列标准
溶液。

以甲醇溶液做参比,分别放入1cm石英池内,在219波长处分别测定其吸光度,结果见表1:
以浓度C为横坐标,吸光度A为纵坐标进行线性回归,回归方程为A=505679C+0.0141,相关系数r=0.9996,见图2:
经查检验相关系数的临界值表得临界相关系数r(99.9%,n-2)=0.872<r,说明苦杏仁甙浓度在0.01~0.10mg/ml范围内。

在波长219nm处测其吸光度值与浓度呈良好的线性关系,可按标准曲线法进行定量分析。

(3)供试液制备
精密移取一定量苦杏仁甙提取液→水浴加热浓缩至干→冷却→甲醇溶解定容至10ml容量瓶中→摇匀,作为供试液,备用。

(4)供试液的测定
将供试液放入1cm石英池内,用甲醇溶液做参比,在219波长处分别测定其吸光度,重复3次,根据回归方程计算溶液浓度,进而计算出苦杏仁甙含量。

测得新疆小白杏杏仁中苦杏仁甙含量为3.084%。

(5)精密度实验
用苦杏仁甙对照品溶液(0.5mg/ml)于一日内在219nm 波长下重复测量吸光值6次,得日内精密度,RSD=0.4089%,n=6;用同一份溶液连续测量6 日,得日间精密度,RSD=0.4978%,n=6。

(6)重现性实验
精密称取经去油处理后并过100目筛的杏仁粉6份,每份1.5g,精密移取0.5ml 经提取、定容后的样品测定液,用甲醇定容至10ml 容量瓶,在219nm 波长下测量吸光度A,计算RSD=0.2940%,n=6。

(7)稳定性实验
用同一份杏仁提取液放置48h,分别于以下时间0.5、1、2、4、8、12、24、36、48h 测定其吸光度,计算RSD=0.3565%,n=9。

实验结果表明,在实验条件下,苦杏仁甙供试液的吸光度在48h内基本保持不变。

(8)回收率实验
取已知苦杏仁甙含量的样品,共6份,每份约1.5g,分别加入苦杏仁甙对照品,按样品测定液的制备项下提取、定容后,精密移取0.5ml用甲醇二次定容至10ml 容量瓶,并在219nm 波长下测定苦杏仁甙含量,计算平均回收率,结果见表2。

二、西安源森生物苦杏仁甙水提实验结果与分析
在苦杏仁甙的提取工艺中,诸多因素影响苦杏仁甙的提取得率,经初步实验选定料液比、浸泡时间、提取时间为主要因素,分别对以上因素做单因素试验。

(一)西安源森生物苦杏仁甙水提实验单因素试验结果
1. 料液比对苦杏仁甙提取得率的影响
浸泡时间为30min,提取时间为15min,料液比(g:ml)分别为1:4、1:6、1:8、1:10、1:12、1:14时,其提取效果如上图图3所示。

由图3可以看出,苦杏仁甙的提取得率与料液比有关。

当料液比为1:10时苦杏仁甙的提取得率(2.971%)要比料液比为1:4时的提取得率(2.227%)高0.744%。

这是因为随着水量增加,会降低水中苦杏仁甙的浓度,增加苦杏仁甙与水的接触面,从而使苦杏仁甙的溶解率增大,但当料液比大于1:10 时,苦杏仁甙的一次浸提率趋于稳定,即一定比例的水已将有效成分基本溶出完全。

故从节约溶剂量和降低后续工序的成本等方面综合考虑,选择料液比为1:10。

2. 浸泡时间对苦杏仁甙提取得率的影响
料液比(g:ml)为1:10,提取时间为15min,浸泡时间分别为0、10、20、30、40、50min 时,其提取效果如图4所示。

由图4可以看出,用95℃以上的沸水直接提取苦杏仁甙时的提取得率(2.577%)比用常温水浸泡10min后提取的提取得率(2.717%)要高出0.140%,这可能是因为在一定时间内沸水更容易使杏仁中的苦杏仁甙溶出,但随着浸泡时间的增加,苦杏仁甙在常温水中的溶解率逐渐增高,直至浸泡30min时,溶解率达到最高,之后溶解率趋于稳定,提取得率也不在增加。

3. 提取时间对苦杏仁甙提取得率的影响
料液比(g:ml)为1:10,浸泡时间为15min,提取时间分别为0 、10、20、30、40、50min 时,其提取效果如图5所示。

由图5可知,苦杏仁中苦杏仁甙的提取得率在5min时较低,仅为2.197%,5~20min范围内苦杏仁甙得率随提取时间的延长而明显提高,当提取时间20min 时,提取得率达到最高值(2.983%)。

当提取时间在20min 以上时,提取效果随时间的增加有所下降,这是因为在高温下提取,时间过长部分杏仁蛋白变性,使得苦杏仁甙不易溶入水中,而且长时间加热也会使部分苦杏仁甙被破坏,提取得率下降,故从效益考虑,确定浸提时间为20min最佳。

(二)西安源森生物实验室苦杏仁甙水提正交试验设计
在单因素试验的基础上,为了考察多因素的综合效应,选择料液比、浸泡时间、提取时间为考察因素,以测得的杏仁中苦杏仁甙含量为考察指标,每个因素选3个水平,选用L9(34)
正交表对芦笋中总黄酮提取工艺进行研究,以确定较佳的工艺条件。

各因素的试验安排及苦杏仁甙的提取得率结果见表3:
根据表3 中的数据进行方差分析,结果见表4。

由表4可知,因素C (提取时间)影响极显著,因素A(料液比)较显著,因素B(浸泡时间)不显著。

各因素对杏仁中苦杏仁甙水提工艺的影响大小次序为:提取时间>料液比>浸泡时间;综合各因素K值并直观比较,得出杏仁中苦杏仁甙水提工艺理论上的最佳工艺条件为A2B2C2,
即提取时间为20min,料液比为1:10,浸泡时间时间为30min。

(三)提取次数对苦杏仁甙提取得率的影响
选用正交试验所得最佳工艺条件,分别提取1、2、3、4 次,提取效果如图6所示
由图6可知,提取次数越多,提取得率越高。

但是提取2次与3次所得到的苦杏仁甙量差别不大,可见提取2次后苦杏仁中苦杏仁甙已基本被提取完全,再增加提取次数,提取率无显著增加。

三、西安源森生物苦杏仁甙水提工艺实验结论
(一)以纯度大于99% 的苦杏仁甙为标准品,采用紫外分光光度法,在波长为219nm 处测定杏仁中苦杏仁甙的含量,准确度与硝酸银滴定法基本一致。

本法不仅稳定,灵敏度高,方法简便,而且节约测定时间和试剂,为测定杏仁中苦杏仁甙的含量提供了良好的方法。

(二)从杏仁中提取苦杏仁甙时,影响提取效果的主次顺序为提取时间>料液比>浸泡时间。

苦杏仁甙提取时间和料液比对提取效果有显著影响,提取中应该严格控制。

(三)由试验可知,水提取苦杏仁中苦杏仁甙时,最佳提取参数为:提取时间20min,料液比1:10,浸泡时间30min,提取2 次。

西安源森生物本次实验表明:苦杏仁甙的水提取工艺在充分开发苦杏仁中有效成分的同时,能够节省原材,降低苦杏仁甙生产成本,可争取更大的盈利空间。

而紫外分光光度法测定苦杏仁中苦杏仁甙快速、简便、稳定、准确、可靠,具有很大的市场发展空间。

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