家兔呼吸运动的调节.
呼吸运动调节实验报告
家兔呼吸运动的调节实验之公保含烟创作 [目的要求] 1学习记载家兔呼吸运动的办法. 2 察看并剖析肺牵张反射及分歧因素对呼吸运动的影响. [基来源根基理] 人体及初等植物的呼吸运动所以能继续地、节律性地停止，是由于体内调节机制的存在.体内、外的各种安慰，可以直接作用于中枢或分歧部位的感受器，反射性地影响呼吸运动，以适应机体代谢的需要.肺的牵张反射介入呼吸节律的调节. [植物与器材] 家兔、兔体手术台，手术器械、张力传感与滑轮或植物呼吸传感器、生物机能实验系统、20ml与50ml注射器、橡皮管、20%或25%氨基甲酸乙酯、生理盐水、0.5%KCN装有CO2的气袋、装有纳石灰的气袋. [办法与步伐] 急性植物实验时，记载呼吸运动的办法有三种，一种是通过压力传感器与气管插管衔接记载；另一种是通过系在胸（或腹）部、装有压力传感器的呼吸带记载；第三种是通过张力传感器记载隔肌运动. 先将植物麻醉、固定、停止颈部气管、动脉及神经别离术，拔出气管插管，别离出一侧颈总动脉和双侧迷走神经，穿线备用. 1、剑突软骨别离术 切开胸骨下端剑突部位的皮肤，再沿腹白线切开长约2ml的切口.细心别离概略的组织（勿伤及胸骨），流露出剑突与骨柄，用金冠剪剪去一段剑突软骨的骨柄，使剑突软骨于胸骨完全别离，但必需保管附于其下方的隔肌片，并使之完好无损.此时隔肌的运动可牵动剑突软骨. 2、将系有长线的金属钩钩住游离的剑突软骨中间部位，线的另一端通过万能滑轮系于张力传感器的应变梁上. 3、开启计算机收集系统，接通张力传感器的输入通道，调节记载系统，使呼吸曲线清楚地显示在显示器上. 4、实验察看 （1）记载呼吸运动曲线，并仔细识别吸气与呼气运动与曲线方向的关系. （2）增加无效腔对呼吸运动的影响 将长约1.5m、内径1cm的橡皮管连与气管的一个侧管上，然后用止血钳夹闭另一侧管，以增加无效腔.察看并记载呼吸运动曲线的改动.一旦出现明显变卦，则立刻翻开止血钳，去除橡皮管待呼吸正常. （3）CO2对呼吸的影响 将气管插管的一个侧管接通装有CO2的气袋，同时夹闭另一侧管，使家兔对着CO2气袋呼吸，察看并记载呼吸运动的变卦.一旦出现明显变卦，则立刻翻开止血钳，去除CO2气袋，待呼吸恢复正常. （4）缺氧对呼吸运动的影响将气管插管的一个侧管接通装有纳石灰的气袋，同时夹闭另一侧管，察看并记载呼吸运动的变卦.一旦出现明显变卦，则立刻翻开止血钳，去除气袋，待呼吸恢复正常. （5）增加气道阻力对呼吸运动的影响 待呼吸运动恢复正常后，将气管插管的两个侧管同时夹闭数秒钟，察看呼吸变卦. （6）KCN对呼吸运动的影响 由耳缘静脉注射1mlKCN溶液，察看并记载呼吸运动的变卦. （7）肺牵帐反射 待呼吸恢复正常后，在气管插管的一个侧管上连同一个20ml注射器，并吸入20ml空气.待呼吸运动平稳后，用相当正常呼吸时的三个呼吸节律的时间，徐徐向肺内注入20ml，与此同时夹闭另一侧管.注意察看呼吸节律的变卦及运动的状态.实验后立刻翻开夹闭的侧管，待呼吸恢复正常.同法，于呼气末用注射器抽取肺内气体，察看呼吸的状态有何区别（注意：注气与抽气时间仅限于三个呼吸节律的时间，然后立刻翻开夹闭的侧管）. （8）待呼吸运动恢复正常后，同时结扎双侧迷走神经（二人同时把持，第一结一定要紧、狠，务必阻断神经的传导），注意察看并记载结扎前后呼吸运动曲线的变卦. （9）重复（7）. （10）剪断双侧迷走神经，辨别安慰中枢段和外周端，察看并记载呼吸运动曲线的变卦. （11）在一侧总经动脉拔出动脉插管，迟缓放血20ml，察看呼吸运动曲线的变卦. 5、整理实验记载并完成作业. [剖析讨论] 1、CO2浓度增加使呼吸运动增强 CO2是调节呼吸运动最重要的生感性因素，它不单对呼吸有很强的安慰作用，而且是维持延髓呼吸中枢正常兴奋活动所必需的.每当动脉血中PCO2增高时呼吸加深放慢，肺通气量增年夜，并可在一分钟左右到达顶峰.由于吸入气中CO2浓度增加，血液中PCO2增加，CO2透过血脑屏障使脑脊液中CO2浓度增多， CO2十H2O→ H2CO3 → HCO3-＋ H+ CO2通过它发作的 H+安慰延髓化学感受器，直接作用于呼吸中枢，通过呼吸机的作用使呼吸运动增强，此外，当PCO2增高时，还安慰主动脉体和颈动脉体的外周化学感受器，反射性地使呼吸加深放慢. 2、吸人纯氮气使呼吸运动增加 吸人纯氮气时，因吸人气中缺O2，肺泡气PO2下降，招致动脉血中PO2下降，而PCO2却根本不变（因CO2分散速度快）随着动脉血中PO2的下降，通过安慰主动脉体和颈动脉体外周化学感受器延髓的呼吸中枢兴奋，隔肌和肋间外肌活动增强，反射性引起呼吸运动增加. 此外，缺O2对呼吸中枢的直接效应是抑制并随缺O2水平的加深而逐渐增强.所以缺O2水平分歧，其表现也纷歧样.在轻度缺O2，通过颈动脉体等的外周化学感受器的传人激动对呼吸中枢起兴奋作用年夜于缺O2对呼吸中枢的直接抑制作用而表现为呼吸增强. 3、增年夜呼吸无效腔对呼吸运动的影响 增加气道长度后家兔呼吸张力增加 ，呼吸频率增加 .增加气道长度等于增加无效腔，增加无效腔使肺泡气体更新率下降，引起血中PCO2、PO2-下降，安慰中枢和外周化学感受器引起呼吸运动会加深放慢；另外，气道加长使呼吸气道阻力增年夜，增加了肺泡通气量，反射性呼吸加深放慢；增加家兔气道长度可使家兔通气量增加，呼吸频率放慢. 4、静脉注人乳酸（血液中H+增高） 静脉注人乳酸后，呼吸运动加深放慢.因为乳酸改动了血液PH，提高了血中H+浓度.H+是化学感受器的有效安慰物H+可通过安慰外周化学感受器来调节呼吸运动，也可直接安慰中枢化学感受器，但因血中H+不容易透过血脑屏障直接作用于中枢化学感受器，因此，血中H+对中枢化学感受器的直接安慰作用不年夜，也较迟缓. 5.该实验是向肺部吹起造成的肺部牵张反射. 向肺部吹气相当于使肺部发作扩张，这种扩张安慰了气管平滑肌的牵张感受器，激动由迷走神经传入延髓，抑制吸气神经元，切断吸气，引起主动呼气. 6.该实验是从肺部抽气造成的肺部牵张反射. 从肺部抽气造成了肺部的萎缩，信号通过迷走神经传入呼吸中枢的水平削弱，关于吸气神经元的抑制水平减小，就会引起吸气神经元发作兴奋，增加呼吸的强度 7、切断一侧迷走神经后，出现慢而深的呼吸，但不是很明显. 迷走神经是肺牵张反射的传入纤维.肺牵张反射中的肺扩张反射（亦称吸气抑制反射）的生理作用，在于阻抑吸气过长过深，促使吸气及时转入呼气，从而减速了吸气和呼气活动的交替，调节呼吸的频率和深度，当切断一侧迷走神经以后，中断了该侧肺牵张反射的传入路途，肺扩张反射的生理作用就被消除，故出现慢而深的呼吸运动.由于对侧的迷走神经尚未剪断，对侧仍然存在肺牵张反射，故整体情况下，慢而深的呼吸不是很明显. 8、切断双侧迷走神经后，出现很明显的慢而深的呼吸（主要是吸气相）. 当切断双侧迷走神经以后，中断了左右两侧的肺牵张反射的传入路途，肺扩张反射的生理作用就被完全消除，故出现很明显的慢而深的呼吸运动. 实验结论：机体通过呼吸调节血液中的O2、CO2、H+水平，动脉血中O2、CO2、H+的变卦又通过化学感受器调节呼吸，维持机体内环境的相对稳定. [实验后果]
家兔呼吸运动的调节
实验二家兔呼吸运动的调节学号071231016 姓名高鑫时间2010/3/18I.实验目的A.观察血液中化学因素（P co2、P o2）的改变以及药物影响对兔呼吸运动（频率、节律、幅度）的影响，探讨其作用机制。
B.掌握气管插管术及家兔呼吸生物信号采集C.复习家兔神经血管的分离II.实验材料A.实验材料1.家兔一只，称重2.04kg2.20%乌拉坦，利多卡因，氮气，二氧化碳，50g/L盐酸哌替啶，250g/L尼可刹米B.实验仪器手术器械，Y型玻璃气管插管，呼吸流量换能器，生物信号采集处理系统III.实验方法A.实验器材准备与实验仪器调试。
B.以5ml/kg体重准备乌拉坦，耳缘静脉注射，缓慢注射，静推时观察家兔的结膜反射、瞳孔大小、呼吸心跳等生命体征。
C.待家兔完全麻醉，将其仰卧固定与手术台上，手术局部剪毛，于颈前正中切开皮肤6-8cm直至下颌角上1.5-2cm，用止血钳钝性分离软组织及颈部肌肉暴露气管。
用止血钳分离气管，在气管下穿根粗结扎线备用。
D.在环状软骨下约1cm处做一个倒T型的剪口，用棉签将气管切口及气管里的血液和分泌物擦净，气管插口由剪口处向肺端插入。
注意动作轻巧，避免损伤气管粘膜引起出血。
用粗结扎线将插管口结扎固定，用温热生理盐水纱布覆盖手术视野。
E.描计一段正常呼吸运动曲线作为对照，辨认曲线上呼气与吸气的波形方向。
F.把一只小烧杯倒置于气管插管开口上，将二氧化碳气囊的导管口平行与气管插管口，使家兔吸入二氧化碳浓度较高的空气，观察记录呼吸曲线变化。
家兔呼吸运动加强后立即夹闭二氧化碳气囊导管，待呼吸恢复做下一步实验。
G.同上法，使家兔吸入高浓度氮气的空气，观察记录呼吸曲线变化，待呼吸恢复做下一步实验。
H.在耳缘静脉缓慢注入50g/L盐酸哌替啶，注射时观察记录家兔呼吸曲线变化，一旦出现呼吸幅度下降即停止给药，随即耳缘静脉缓慢注入250g/L尼可刹米，观察记录家兔呼吸曲线变化。
I.整理实验器材，保存实验数据，关闭实验仪器。
家兔呼吸运动的调节实验报告总结
家兔呼吸运动的调节实验报告总结一、引言家兔呼吸运动的调节是生理学中一个重要且复杂的研究课题。
通过实验探究家兔呼吸运动的调节机制，不仅可以更深入地了解呼吸系统的功能，还有助于揭示人类呼吸系统的生理和病理特点。
本实验旨在通过调节不同呼吸节律和环境条件来观察家兔呼吸运动的变化，从而探索呼吸运动的调节机制。
二、实验目的1. 了解家兔呼吸运动的基本特征和调节机制。
2. 观察家兔呼吸运动在不同呼吸节律和环境条件下的变化。
3. 探究家兔呼吸运动的调节机制。
三、实验方法1. 实验动物：健康家兔。
2. 实验仪器：生物信号采集系统、呼吸运动测定仪等。
3. 实验步骤：1) 采集基础值：记录家兔在自由呼吸状态下的呼吸频率和潮气量。
2) 调节呼吸节律：通过呼吸运动测定仪调节家兔的呼吸节律，观察呼吸运动的变化。
3) 调节环境条件：改变家兔所处环境的温度、湿度等条件，观察呼吸运动的变化。
四、实验结果1. 基础值记录：家兔自由呼吸状态下，呼吸频率为25次/分，潮气量为200ml/次。
2. 调节呼吸节律：当将家兔的呼吸节律调至较快时，呼吸频率明显增加，而潮气量减少；当呼吸节律调至较慢时，呼吸频率减少，而潮气量增加。
3. 调节环境条件：在较高温度和湿度条件下，家兔呼吸频率增加，潮气量减少；在较低温度和湿度条件下，家兔呼吸频率减少，潮气量增加。
五、实验讨论1. 家兔呼吸运动的调节机制是复杂多样的，受到呼吸中枢、化学感受器和周围感受器的共同调节。
2. 调节呼吸节律和环境条件对家兔呼吸运动的影响是明显的，反映了呼吸系统对外界环境的适应性和调节性。
六、实验总结本实验通过调节家兔呼吸节律和环境条件，观察了呼吸运动的变化，并探讨了家兔呼吸运动的调节机制。
从实验结果可以看出，家兔呼吸运动受到多种因素的影响，是一个复杂的生理过程。
深入探究家兔呼吸运动的调节机制，有助于我们更好地理解呼吸系统的功能和生理特点，对于进一步研究人类呼吸系统的生理和病理特点具有重要意义。
家兔呼吸运动的调节心得体会
家兔呼吸运动的调节心得体会家人们！这次做家兔呼吸运动的调节实验，那可真是一场有趣又让人长见识的奇妙之旅啊！现在我就来跟你们唠唠我在这个实验里的心得体会。
刚开始接触这个实验的时候，我心里还挺犯嘀咕的。
看着那只乖乖的家兔，我就在想，我这是要对它做啥呀？会不会一不小心把它给折腾坏了？随着实验步骤一点点展开，我的紧张感也就慢慢消失了。
首先就是要把家兔固定好，这就像给它找了个“专属座位”，让它老老实实待着配合我们的实验。
然后就是连接那些仪器设备，这可有点像给家兔搭建一个“高科技监测站”，通过这些仪器，我们就能清楚地看到它呼吸运动的各种数据啦。
在实验过程中，最让我印象深刻的就是观察各种因素对家兔呼吸运动的影响。
比如说，当我们增加二氧化碳浓度的时候，哇塞，家兔的呼吸那叫一个急促啊！就好像它突然进入了一个“缺氧恐慌模式”，拼命地想要多吸点新鲜空气。
这让我一下子就明白了，原来二氧化碳浓度的变化对呼吸的影响这么大呀！就好比我们人在一个空气不流通的房间里待久了，也会觉得憋得慌，想要赶紧出去透口气。
还有就是注射药物的时候，那感觉就像给家兔的身体来了一场“神秘魔法”。
不同的药物下去，家兔的呼吸节奏就会发生各种各样奇妙的变化。
有时候会变得慢悠悠的，好像在说：“我这会儿有点困，想休息休息。
”有时候又会突然加快，仿佛在说：“哎呀呀，怎么回事，我得赶紧呼吸，不然要出大事啦！”通过这个实验，我不仅学到了很多关于呼吸运动调节的知识，还深刻体会到了生命的奇妙。
家兔那小小的身体里，居然藏着这么多复杂又精密的调节机制。
就像一个小小的“智能工厂”，时时刻刻都在根据外界的变化来调整自己的“生产流程”，以保证身体能够正常运转。
而且啊，这次实验也让我更加明白了团队合作的重要性。
在实验过程中，我们小组的成员分工明确，有的负责操作仪器，有的负责观察记录，有的负责照顾家兔的“情绪”，哈哈。
大家齐心协力，才能让实验顺利进行下去。
总的来说，这次家兔呼吸运动的调节实验就像是一场充满惊喜的冒险，让我对生命科学有了更深的认识和理解。
家兔呼吸运动的调节实验报告
家兔呼吸运动的调节一、实验目的1.观察血液中化学因素（PCO2、PO2、［H+］）改变对家兔呼吸频率、节律、通气量的影响及机制.观察迷走神经在家兔呼吸运动调节中的作用及机制。
2.学习气管插管术和神经血管分离术。
二、实验原理呼吸运动指在中枢神经系统控制下，通过呼吸肌节律性的运动造成胸廓节律性地扩大或缩小。
呼吸运动除了受中枢神经系统控制外，一些理化因素(包括代谢产物、药物以及肺的扩大与缩小等)可通过如化学感受性呼吸反射、肺牵张反射直接或间接作用于中枢神经系统来调节呼吸运动，表现为呼吸运动及隔肌放电的频率与幅度等改变.化学因素（包括代谢产物、药物等）可直接作用于中枢或通过化学感受器作用于中枢后，再经传出神经纤维，如膈神经、肋间神经将控制信号传至呼吸肌,引起呼吸运动发生改变。
肺牵张反射指肺扩张时引起吸气抑制的反射，其传入神经是迷走神经。
三、实验结果1.通入CO2吸入CO2后呼吸明显加深,频率明显加快.2.通入N2吸入N2后呼吸加深,频率加快，但其幅度较CO2小。
3.增大无效腔增大无效腔后呼吸显著加深,频率显著加快。
4.剪断一侧迷走神经剪断一侧迷走神经后，呼吸深度和频率均变化不明显。
5.剪断双侧迷走神经剪断双侧迷走神经后,呼吸深度基本不变，呼吸频率大幅度减慢。
四、讨论1.通入CO2CO2是调节呼吸运动最主要的体液因素。
当外周血液中CO2浓度适度增多时,呼吸表现为加深加快。
CO2是脂溶性小分子，能迅速透过血脑屏障进入脑脊液，与其中的水结合成碳酸，碳酸迅速解离出氢离子，从而以氢离子的形式刺激中枢化学感受器（分布在延髓腹外侧浅表区），兴奋呼吸。
其次，一小部分CO2也能直接刺激外周化学感受器，兴奋呼吸。
2.通入N2通入N2后，因吸入气体中缺乏O2,动脉血中PO2下降，反射性使呼吸运动加深加快，肺通气量增加。
并且轻度缺氧时，对外周化学感受器的兴奋作用强于对呼吸中枢的直接抑制作用，故表现为呼吸兴奋。
3.增大无效腔肺泡通气量=（潮气量-无效腔气量）*呼吸频率.增大无效腔时,肺泡通气量减少，故气体交换效率降低，导致血液缺氧和CO2增多,从而兴奋呼吸。
家兔呼吸运动的调节
家兔呼吸运动的调节【目的要求】1.学习测定兔呼吸运动的方法。
2.学习记录膈肌放电的方法。
3.观察并分析肺牵张反射以及影响呼吸运动的各种因素。
【实验基本原理】呼吸运动是呼吸肌的舒缩运动，是呼吸肌（胸壁上的肋间肌和隔肌）在神经系统控制下进行的有节律的收缩和舒张造成的。
膈肌的收缩活动受来自中枢的传出神经支配，传出冲动的节律与频率，影响膈肌的收缩节律、频率与强度.人体及高等动物的呼吸运动所以能持续地节律性地进行，是由于体内调节机制的存在。
体内、外的各种刺激，可以直接作用于中枢或不同的感受器，反射性地影响呼吸运动，以适应机体代谢的需要。
肺牵张反射是保证呼吸运动节律的机制之一。
血液中CO2分压的改变，通过对中枢性与外周性化学感受器的刺激及反射性调节，是保证血液中气体分压稳定的重要机制。
【实验动物与器材】实验动物：家兔实验工具：兔体手术台、常用手术器械、张力传感器、引导电极、计算机采集系统、气管插管、注射器、橡皮管实验试剂：20%氨基甲酸乙酯、生理盐水【实验方法与步骤】1. 麻醉→背位固定→剪去颈部与剑突腹面的被毛→切开颈部皮肤，分离气管并插入气管插管→分离出双侧迷走神经，穿线备用。
气管务必分离干净，插管后务必扎紧，避免漏气2. 剑突软骨分离术切开胸骨下端剑突部位的皮肤，并沿腹白线再切开长约2cm的切口。
细心分离剑突表面的组织，并暴露剑突软骨与骨柄。
提起剑突，可见剑突随膈肌的收缩而自由运动。
3. 将系有剑突的金属钩钩于剑突中间部位，线的另一端系于张力传感器的应变梁上。
4. 开启计算机采集系统，接通张力传感器的输入通道，调节记录系统，使呼吸曲线清楚地显示在显示器5. 记录膈肌放电.【实验观察项目】（1）记录正常的呼吸运动、膈肌放电曲线，注意分清呼气和吸气运动与曲线的方向。
（2）增加无效腔对呼吸运动的影响将长约0.5m、内径1cm的橡皮管连于气管插管的一个侧管上，用止血钳夹闭另一侧管，使无效腔增加，观察并记录呼吸运动的改变，一旦出现明显变化，则立即打开止血钳，去除橡皮管，待呼吸恢复正常。
家兔呼吸运动调节的实验改进
家兔呼吸运动调节的实验改进呼吸运动调节研究在生理学和医学领域具有重要意义。
其中，家兔作为常用的实验动物，其呼吸运动调节实验的准确性和可重复性对研究结果的影响至关重要。
然而，在实际操作中，家兔呼吸运动调节实验存在一些问题，如实验设备的影响、操作复杂等，这些问题制约了实验的精确性和可靠性。
因此，本文旨在改进家兔呼吸运动调节实验的方法，提高实验的准确性。
家兔呼吸运动调节主要受神经系统和体液因素的调控。
通过研究家兔在各种生理和病理条件下的呼吸运动变化，可以深入了解呼吸运动的调节机制。
实验中需注意保持家兔处于适宜的环境条件下，并排除其他因素对实验结果的干扰。
为改进家兔呼吸运动调节实验，我们采取以下措施：实验设备优化：选用新型呼吸机，以降低机械通气对家兔呼吸运动的干扰。
同时，采用高精度的气体分析仪，以准确测定家兔的呼吸气体成分和代谢率。
实验材料准备：选用健康成年家兔，并严格控制其饮食和环境，以减少外界因素对实验结果的影响。
在实验前对家兔进行适应性训练，以减少应激反应。
实验过程控制：在保持环境恒定的条件下，记录家兔在不同刺激因素下的呼吸运动变化。
刺激因素包括神经系统刺激（如神经放电）、体液因素（如激素注射）等。
通过改进实验方法和严格控制实验条件，我们获得了更为准确的家兔呼吸运动调节数据。
数据分析显示，神经系统刺激和体液因素对家兔呼吸运动的影响与既往报道一致。
我们还发现环境因素对家兔呼吸运动的影响不容忽视。
根据实验结果，我们发现先前实验中存在的问题主要是由于实验设备精度不高和实验过程控制不严格所致。
通过优化实验设备和严格控制实验条件，我们获得了更加可靠的实验结果。
在此基础上，我们对家兔呼吸运动调节的机制进行了深入探讨，并提出了自己的看法和建议。
通过本文对家兔呼吸运动调节实验的改进，我们成功提高了实验的准确性和可靠性。
这为后续研究提供了更加可靠的依据。
同时，我们也认识到，在实验过程中严格控制各种条件的重要性，这对于排除其他因素的干扰、保证实验结果的客观性具有关键作用。
家兔呼吸运动的调节实验报告结果
家兔呼吸运动的调节实验报告结果一、实验目的观察各种因素对家兔呼吸运动的影响，从而了解呼吸运动的调节机制。
二、实验原理呼吸运动是一种节律性运动，其频率和深度受到神经和体液因素的调节。
肺牵张反射、化学感受器反射等在呼吸运动的调节中起着重要作用。
三、实验材料1、实验动物：健康家兔一只，体重 20 25kg。
2、实验器材：哺乳动物手术器械一套、BL-420 生物机能实验系统、压力换能器、呼吸流量换能器、保护电极、20ml 和 5ml 注射器、50cm 长的橡皮管、装有 CO₂和 O₂的气袋、2%乳酸溶液等。
四、实验步骤1、手术准备家兔称重后，用 20%乌拉坦溶液（5ml/kg）耳缘静脉注射麻醉。
将家兔仰卧固定于手术台上，剪去颈部的毛。
沿颈部正中作一长约 5 7cm 的切口，分离皮下组织和肌肉，暴露气管。
在气管下穿两根线，一根在气管下穿一“T”形切口，插入气管插管，并用线结扎固定。
分离一侧颈总动脉，插入动脉插管，通过压力换能器与 BL-420 生物机能实验系统相连，用于记录动脉血压。
分离出颈部两侧迷走神经，穿线备用。
2、实验项目记录正常呼吸运动曲线：将呼吸流量换能器与 BL-420 生物机能实验系统相连，记录家兔的正常呼吸运动曲线。
增加无效腔：将一段 50cm 长的橡皮管连接在气管插管的一侧，增加无效腔，观察呼吸运动的变化。
缺氧：将装有 N₂的气袋通过气管插管与家兔相连，观察呼吸运动的变化。
血中 CO₂增多：通过动脉插管向家兔动脉内注入 2%乳酸溶液 2ml，观察呼吸运动的变化。
切断迷走神经：先切断一侧迷走神经，观察呼吸运动的变化；然后再切断另一侧迷走神经，观察呼吸运动的变化。
五、实验结果1、增加无效腔当家兔的呼吸通道增加了 50cm 长的无效腔后，呼吸运动明显加深加快。
呼吸频率由正常的每分钟约 50 60 次增加到每分钟约 70 80 次，呼吸幅度也显著增大。
这是因为增加无效腔使肺泡通气量减少，导致血液中氧气分压降低和二氧化碳分压升高，刺激了外周化学感受器，反射性地引起呼吸加深加快，以增加肺泡通气量，补偿氧气的不足和排出过多的二氧化碳。
生理学实验：家兔呼吸运动的调节
实验数据分析1.正常的家兔呼吸曲线由图可知，本组选取的家兔自身呼吸频率较快，幅度加大，后续增强呼吸的因素作用不是十分明显。
2.接空气气囊的家兔呼吸曲线图2.接空气气囊的家兔呼吸曲线曲线由图可知，改接空气气囊后，家兔呼吸幅度和频率均未出现太大变化。
3.接CO2气囊的家兔呼吸曲线CO2图3.接CO2气囊的家兔呼吸曲线由图可知，接CO2气囊后，家兔呼吸曲线幅度增大，频率加快。
这是因为CO2是调节呼吸运动最重要的生理性因素，不但对呼吸有很强的刺激作用，而且对维持延髓呼吸中枢正常兴奋活动是必须的。
当呼入气体中CO2浓度升高，血液中CO2浓度随之升高，CO2透过血脑屏障使脑脊液的CO2浓度也升高。
CO2与水反应生成H 2CO3，随后水解成HCO3-和H+，由H+刺激延髓化学感受器，间接作用于呼吸中枢，通过一系列调控使得呼吸作用加强。
此外，当CO2浓度增高时，还刺激主动脉体和颈动脉体的外周化学感受器，反射性地使呼吸加深加快。
4.接N2气囊的家兔呼吸曲线图4.接N2气囊的家兔呼吸曲线由图可知，接N2气囊后，家兔呼吸曲线幅度略有增大。
这是因为吸入纯N2时，因吸入气体中缺乏O2，肺泡气O2浓度下降，导致动脉血中O2浓度下降；而CO2浓度却基本不变（CO2扩散速度较快）。
随着动脉血中O2浓度下降，通过刺激主动脉体和颈动脉体外周化学感受器延髓的呼吸中枢兴奋，隔肌和肋间外肌活动加强，反射性引起呼吸运动增加。
5.增长解剖无效腔的家兔呼吸曲线图5.增长解剖无效腔的家兔呼吸曲线由图可知，增长解剖无效腔后，家兔呼吸幅度略有下降，而呼吸频率则稍稍上升，这是因为实验中通过插管的方式增大无效腔，也就是减小了进入肺泡的潮气量，即每次的有效气体更新变小。
结果促使O2分压下降，CO2分压上升，使其反射性的调节使呼吸加深加快。
所以膈肌放电的变化幅度加大，频率有微量增大。
反映到膈肌的收缩曲线，由于收缩频率的增大，为了维持正常的肺部通气量，所以收缩强度减弱。
家兔呼吸运动的调节机能
南京大学医学院机能实验报告实验二题目家兔呼吸运动的调节一、实验目的1.观察血液中化学因素（PCO2 等）的改变对家兔呼吸运动的影响，探讨其作用机制。
2.掌握气管插管术和神经血管分离术。
二、实验材料及药品材料：家兔，动物手术器械（包括手术刀、粗剪、组织剪、止血钳），Y型玻璃气管插管，呼吸流量换能器，铁支架，结扎线，注射器，烧杯，生物信号采集处理系统。
药品：生理盐水，20%乌拉坦，1%普鲁卡因，氮气，二氧化碳，2%乳酸，50g/L 哌替啶，250g/L尼可刹米。
三、实验方法及现象1.打开电脑实验软件，调节仪器参数。
2.将呼吸换能器固定于铁支架上，输出线连接生物信号采集系统。
3.从动物房取家兔一只，称重。
本实验家兔体重为1.856kg，经鉴定，为雄性。
4.用20%乌拉坦对家兔于耳缘静脉注射麻醉。
根据理论，本实验应注射9.28ml。
观察动物结膜反射、瞳孔大小、呼吸心跳等。
5.将家兔固定于手术台，用棉绳勾住门齿，固定四肢。
局部剪毛，并点状注射1%普鲁卡因。
剪毛过程观察动物呼吸、心跳、结膜反射等。
6.颈前正中切开皮肤6-8cm，直至下颌角上1.5-2cm，用止血钳钝性分离软组织及颈部肌肉，暴露气管及气管平行的左右血管神经鞘，分离颈总动脉和迷走神经、气管。
在气管下穿两根结扎线备用。
7.在环状软骨下约1cm处做倒T型剪口，用棉签将气管中分泌物擦净。
气管插管由剪口处向肺端插入。
用结扎线将插管口结扎固定，在切口的头端用结扎线结扎止血。
用温热生理盐水纱布覆盖手术野。
8.描记一段正常呼吸运动曲线作为对照，辨认曲线上吸气、呼气的波形方向9.用一只小烧杯置于气管插管开口前，将二氧化碳气囊的导管口平行于气管插口使气体冲入烧杯，给动物吸入含有较高浓度二氧化碳的空气。
观察、记录呼吸运动的变化。
10.待呼吸曲线恢复正常，按上一步方法打开氮气气囊。
待家兔呼吸运动增强后即关闭氮气气囊。
11.待呼吸曲线恢复正常，由家兔耳缘静脉注射50g/L哌替啶，根据家兔呼吸状况，一旦出现呼吸幅度下降即停止给药。