单增李斯特菌llsB基因克隆及序列分析
中国单增李斯特菌的基因组特征研究

2021,37(5)中国人兽共患病学报
ChineseJournalofZoonoses
DOI:10.3969/j.issn.1002-2694.2021.00.064论
著
中国单增李斯特菌的基因组特征研究
宋泽萱,纪顺师,王 艳,王怡倩,毛 盼,李玲玲,叶长芸
国家科技重大专项(No.2018ZX10713003G002)通讯作者:叶长芸,Email:yechangyun@icdc.cn;ORCID:0000G0001G5147G0019作者单位:中国疾病预防控制中心传染病预防控制所,传染病预防控制国家重点实验室,北京 102206
摘 要:目的 分析我国146株单增李斯特菌的基因组特征,了解不同家系和克隆群菌株遗传特征的差异.方法 从
NCBI数据库收集我国146株不同来源、省份和分离时间的单增李斯特菌基因组数据,利用生物信息学分析软件分别对其进
行基因组注释、系统发育树构建和遗传元件分析.结果 本研究中相同家系、血清型和克隆群的单增李斯特菌在系统发育进化树上聚在一起,这种分布与菌株的来源和分离省份无关,提示单增李斯特菌基因组结构具有一定的稳定性.单增李斯特菌均携带毒力岛LIPIG1,部分家系Ⅰ菌株(如CC3和CC87)携带毒力岛LIPIG3和LIPIG4,具有潜在的致病风险.大多数家系Ⅱ
菌株携带质粒和环境抗性基因,有助于提高对不良环境的耐受力.食品来源的菌株中inlA基因提前终止突变发生率较高,可能减弱菌株的毒力.结论 我国单增李斯特菌主要以家系Ⅰ和家系Ⅱ菌株为主,两者在毒力基因、环境抗性基因和质粒携带方面均具有差异,显示不同亚型菌株的毒力和环境适应性存在差异,为我国单增李斯特菌的监测和李斯特菌病的防控提供了参考数据.关键词:单增李斯特菌;毒力;环境抗性;质粒;InlA
中图分类号:R378.99 文献标识码:A 文章编号:1002-2694(2021)05-0379-08
GenomiccharacterizationanalysisofListeriamonocytogenesstrainsinChinaSONGZeGxuan,JIShunGshi,WANGYan,WANGYiGqian,MAOPan,LILingGling,YEChangGyun(StateKeyLaboratoryforInfectiousDiseasePreventionandControl,NationalInstituteforCommunicableDiseaseControlandPrevention,ChineseCenterforDiseaseControlandPrevention,Beijing102206,China)
产单核细胞李斯特菌溶血素基因的克隆及原核表达

产 单核细胞 李斯特 菌溶血 素基 因的克 隆及 原核表 达
张衍 海 1 , 白艳 艳 ,张彦 明 ,郑 增 忍 ,张 宝 ,童 光 志 t , 2 ,
( 中国农业科学 院 哈 尔滨兽 医研究所 ,黑龙 江 哈 尔滨 1 00 ;2 中国动物 卫生与 流行病学 中心 ,山东 青岛 26 3 1 501 . 602 3 西北农林 科技大 学 动 物医学 学院 ,陕西 杨 陵 72 0 ;4 中国农业科学 院 上 海兽 医研究所 ,上海 2 0 3 ) . 1 10 . 0 22
r me to l A t u g a p p i sa l d f m MD 1 一 hy a d co e t E 2 . h e o i a t x r si n f g n fhy wi o t in l e t ewa mp i e o p a h s d i f r 8T— t a, n l n d i o p T3 a T e r c mb n n p e so n e 口 a mi E 2 — ta s ̄a s r d t c l a d i d c d wi . ls d p T3 a hy wa n f me o E.o i n n u e t 0 1 mmo/ P G.T e e p e s n p o u t wee a ay e y o h l IT L h x r si r d c s r n lz d b o S . AGE a d W e tr lt h e u t s o d t a h s o h x r se r ti t lc lr weg t 8 u we e DS P n s n b o T e r s l h we h t t e mo t ft e e p e s d p e s h
乳粉中单核细胞增生李斯特氏菌能力验证结果与分析

乳粉中单核细胞增生李斯特氏菌能力验证结果与分析单核细胞(monocytes)是一类存在于人体血液和组织中的白细胞(leukocytes)。
它们作为免疫系统中的重要成分,具有很强的吞噬能力和免疫调节功能。
李斯特氏菌(Listeria monocytogenes)是一种革兰氏阳性杆菌,它能够引起严重的人类食物中毒,尤其是婴儿和免疫缺陷患者。
乳粉作为婴幼儿的主要食物,其安全性尤为重要。
为了对乳粉中单核细胞增生李斯特氏菌的能力进行验证,可以进行以下步骤:1.材料准备:-乳粉样品- 特定培养基(如Listeria Enrichment Broth)-李斯特氏菌(已知培养物)-离心管-培养皿2.试验步骤:a.预处理乳粉样品:-取适量的乳粉样品,加入适量的特定培养基-将混合物在摇床上以适当速度摇匀-使用离心机将样品离心,以除去悬浮的杂质b.培养李斯特氏菌:-取一定量的已知培养物,加入特定培养基中-在适当的温度和湿度下,培养李斯特氏菌至适宜的生长期c.接种乳粉样品:-取适量的乳粉样品,加入特定培养基中-添加已培养的李斯特氏菌(适量)到乳粉样品中-使混合物充分混合d.孵化和观察:-将接种混合物接种到适当的培养皿中-将培养皿置于适当的环境中(温度、湿度等)-在一定时间内观察培养皿中是否有李斯特氏菌的生长3.结果与分析:通过观察培养皿中的生长情况,可以得出以下结论和分析:-如果培养皿中出现了李斯特氏菌的生长,说明乳粉样品中存在单核细胞增生的李斯特氏菌能力。
-如果培养皿中未观察到李斯特氏菌的生长,说明乳粉样品中不存在单核细胞增生的李斯特氏菌能力。
-结果应与对照组进行比较,以确定是否存在显著差异。
需要注意的是,这是仅仅通过培养方法进行初步验证,不能判断乳粉样品的感染风险和食用安全性。
为了更准确地评估乳粉中李斯特氏菌的存在和潜在传播风险,还需要进一步的实验和分析方法,如PCR检测、测定菌群数量等。
同时还应结合临床和流行病学调查数据,做出综合评估和判断。
单核细胞增生李斯特菌InlC基因缺失株的构建及其毒力和环境耐受性的研究

单核细胞增生李斯特菌InlC基因缺失株的构建及其毒力和环境耐受性的研究单核细胞增生李斯特菌(Listeria monocytogenes)是一种广泛存在于自然环境中的细菌,可以引起人类和动物的严重感染。
在L. monocytogenes 中,InlC是一个重要的表面蛋白,与细胞内和细胞外的相互作用紧密相关。
本研究旨在构建InlC 基因缺失株,并评估其对宿主细胞的感染能力以及在环境中的耐受性。
首先,我们使用克隆技术成功地构建了 InlC 基因缺失株。
通过PCR 验证,确认了目标基因已被成功删除。
通过Western blot分析来确定 InlC 蛋白在缺失株中的表达情况。
结果显示,与野生型菌株相比,InlC 缺失株中完全没有 InlC 蛋白的表达。
这表明成功构建了 InlC 基因缺失株。
接下来,我们对 InlC 缺失株和野生型菌株进行了宿主细胞感染实验。
使用小鼠巨噬细胞系RAW264.7作为宿主模型,比较了两株菌在细胞内的定殖和复制能力。
结果显示,与野生型菌株相比,InlC缺失株对宿主细胞的入侵和复制能力显著降低。
这表明InlC对于L. monocytogenes进入和繁殖在宿主细胞中起到重要的作用。
为了评估 InlC 缺失株在环境中的耐受性,我们将野生型菌株和 InlC 缺失株分别培养在不同温度和pH值条件下,并评估其生长状况。
结果显示,在较高温度(42°C)下,InlC 缺失株的生长受到抑制,生长曲线明显下降。
然而,在正常的生理温度(37°C)下,两株菌的生长特征没有显著差异。
此外,在不同pH值条件下,两株菌的生长表现也相似。
这些结果表明,InlC 缺失株对环境因素的耐受性与野生型菌株类似。
综合以上结果,我们成功地构建了 InlC 基因缺失株,并证明了InlC 蛋白在 L. monocytogenes 对宿主细胞的感染中发挥重要作用。
此外,我们还发现 InlC 缺失株在较高温度下的生长受到明显抑制,但在正常的生理条件下,其生长特征与野生型菌株相似。
李斯特菌的检验ppt课件

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临床表现
• 感染LM的孕妇多表现有宫内感染并可发 生早产、流产、死胎,预后险恶。产下 的婴儿常在24~72h内死亡。
• 有时可侵犯上呼吸道而呈现咽峡炎的症 状,常伴有局部淋巴腺炎。
• 可引起人的心内膜炎,并可感染皮肤、 眼睛、泌尿道而引起皮肤损伤、结膜炎、 尿道炎等症状。
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李斯特菌鉴定
• 除个别菌外,触酶阳性,氧化酶阳 性,水解七叶苷,不水解尿素、明 胶和,其不它产种生类糖H2产S、酸吲。哚。发酵葡萄糖
• 属的鉴定:革兰染色,湿标本中的 翻转运动试验,触酶阳性,发酵D葡萄糖产酸,水解七叶苷,VP阳性, 甲基红阳性。
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李斯特菌鉴定
• 种的鉴定:窄的β溶血环,CAMP表 现和金黄色葡萄球菌有协同溶血作 用,不发酵木糖,微量鉴定系统 API-Listeria(法国生物梅里埃)和 Micro-IDListeria(OrganonTeknika), 菌落DNA探针杂交。
• 血清型分型确认。
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致病力检测
• 动物试验可用于分离的李斯特菌的潜在 毒力,如小鼠腹膜内接种、兔眼结膜接 种(Anton)试验、鸡胚绒毛膜尿囊接种。 但并非是常规的,因为大多数刚分离出 的单核细胞增生性李斯特菌株都有毒力。
• 已经建立了一种敏感的免疫抑制小鼠模 型,少量的有毒力菌即可导致小鼠在3d 内死亡。
• 脑脊液中及组织中单核细胞增生性李斯特菌的DNA 能以PCR方法检测。应该在专门的实验室中操作, 方法的敏感性、特异性高,当抗生素的使用影响细 菌的分离时尤其有用。
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LM的实验室检测方法
单核细胞增生李斯特菌培养方法

单核细胞增生李斯特菌培养方法前言本文档旨在介绍一种关于单核细胞增生李斯特菌(L is te ri am on oc yt o ge ne s)的培养方法。
这种培养方法可以帮助研究人员在实验室中有效地培养和研究单核细胞增生李斯特菌,提供便利的实验操作流程和相关规范。
材料和试剂-培养基:大肠杆菌肉汤培养基(LB Br ot h)。
-平板培养基:L BA ga r平板。
-培养器具:试管、枪口鳌头瓶、平板培养基瓶。
-紧缩酶(R es tr ic ti o nE nz ym es):用于D NA修饰。
步骤1.准备试管:将适量的LB Br ot h培养基加入试管中,每株文化需要一个试管。
试管要标记清楚,以便记录。
2.孵育菌种:将单核细胞增生李斯特菌取出,置于L BA ga r平板上,静置于37°C培养箱中孵育12-16小时。
3.菌种接种:从平板上挑取一小块单核细胞增生李斯特菌菌落,用枪口鳌头瓶内的紧缩酶捉摄菌落悬液,均匀地滴入LB Br oth培养基试管中。
4.培养:将接种的试管放入37°C恒温培养箱中,培养12-16小时。
在培养过程中,营养条件适宜的单核细胞增生李斯特菌会迅速繁殖生长。
5.存储:选择健康生长、菌量适宜的菌株,用含有20%甘露醇的L B Br ot h培养基制备菌液,并将其分装保存于枪口鳌头瓶中,并在-80°C低温冰箱中保存,确保菌株的长期保存。
结论本文档提供了一种针对单核细胞增生李斯特菌的培养方法。
通过遵循上述步骤,我们可以在实验室中成功培养和研究单核细胞增生李斯特菌。
这一方法的重要性在于为相关研究提供了可靠的实验操作流程,并且可以在不同实验室间进行标准化操作。
希望本文档能够对相关研究工作者提供帮助,并促进单核细胞增生李斯特菌领域的研究进展。
李斯特菌
发病机制
• 与宿主免疫状态有关 • 该菌感染早期,非免疫巨噬细胞缺乏杀灭该细胞 的活力,但可以限制它在淋巴网状系统的增生。 • 感染2~3天后,在T细胞激活下,更多的巨噬细胞 被吸引到炎症部位,导致炎症清除 • 体液免疫对该菌感染无保护作用,故在细胞免疫 低下和使用免疫抑制剂的患者中,该病的发病率 相对较高
地区分布
易感人群
宿主
产单核细胞李斯特菌为需氧或兼性厌氧,感染后患者病死率高 达30% 该 菌 对 各 种 应 激 (低温、高盐、低 pH、氧 化 应 激 等) 条 件 有 很 强 的 耐 受性,进一步增大了该菌的危害性。此菌 不产生内毒素,可 产 生 一 种 溶 血 性 外 毒 素,对 人 类 致 病 性强
食品常被此菌污染,常见的由产单核细胞增生李斯特菌引 起的食物中毒为奶及奶制品、肉制品、水产品、和水果蔬 菜等, 中毒多发生在夏秋季
在美国,李斯特菌是法定传染病!
特点
可引起食物中毒,病死率高达30%— 70% 本菌可引起婴儿及新生儿的化脓性脑膜炎或脑膜脑炎病 死率可达70% 在成年人中本病多见于老年人或有慢性基础疾病者,也可 发生于以前健康的青年人
兼性厌氧,最适在含有CO2的微需氧环境中生 长 直径约0.2~0.4 mm、半透明、边缘整齐、 微带珠光的露水样菌落,在斜射光下菌落呈 典型的蓝绿色光泽
特点
无芽胞,一般不形成荚膜,但在营养丰富的环境中可形成 荚膜,在20℃~25℃培养时能形成4根鞭毛,但在37℃培养 时无鞭毛 生长温度范围5℃~45℃ ,最适温度为30℃~37℃,能在普 通冰箱冷藏室生长,是一种典型的耐冷性细菌,同时还具有 耐盐性
临床表现
• 早发型常为早产儿,生后2 天内发病多见,脑膜炎相对较 少见,主要表现为败血症,可伴有急性呼吸窘迫及肺炎。 本型多由胎母垂直传播、宫内感染所致,气促、呻吟、青 紫等呼吸道症状常是首发症状(李斯特菌宫内感染所致肺炎,
单核细胞增生李斯特菌新疆野毒株XS5 SigmaB操纵子的克隆、序列分析及其编码蛋白结构预测
单核细胞增生李斯特菌新疆野毒株XS5 SigmaB操纵子的克隆、序列分析及其编码蛋白结构预测杨丽红;张再超;孟庆玲;乔军;才学鹏;蔡扩军;王为升;王俊伟;陈创夫【期刊名称】《中国农学通报》【年(卷),期】2012(28)32【摘要】为了解单核细胞增生李斯特茵(Listeda monocytogenes LM.)新疆野毒株XS5SigmaB操纵子的分子生物学特征。
对LM-XS5的SigmaB操纵子部分基因序列进行了克隆与序列分析,预测该操纵子各基因编码蛋白质的二三级结构及功能活性位点,分析其同源性。
结果表明:成功扩增出3000bp的SigmaB操纵子片段,序列分析显示该片段中包含Rsb认RsbW,RsbX和SigmaB4个基因,它们编码的蛋白质含有不同的功能活性位点,其中RsbV的5-102位AA为“STAS-抗-抗-SigamB因子”,咫6Ⅳ的43-157位AA间为HATPasec功能域,RsbX的32-198位AA间为PP2Cc超家族区域,SigmaB的8-264位AA为RNA聚合酶全酶中的SigmaB因子的区域。
LM-XS5与其他3种革兰氏阳性茵的SigmaB基因的同源率在50%左右,与LM参考株的同源率在92.18%-100%之间。
【总页数】6页(P72-77)【关键词】单核细胞增生李斯特菌;SigmaB操纵子;序列分析;蛋白结构预测【作者】杨丽红;张再超;孟庆玲;乔军;才学鹏;蔡扩军;王为升;王俊伟;陈创夫【作者单位】石河子大学新疆地方与民族高发病教育部重点实验室;中国农业科学院兰州兽医研究所家畜疫病病原生物学国家重点实验室【正文语种】中文【中图分类】S852.61【相关文献】1.狂犬病病毒野毒株DRV磷蛋白基因的克隆及序列分析 [J], 黄莹;赵云蛟;钱爱东2.猪瘟病毒兔化弱毒株与内蒙古分离野毒株(NMW)E2(gp55)基因的克隆与序列分析 [J], 郝永清;王潇;张爱荣;乌尼;李富强3.狂犬病鼠源野毒M株核蛋白基因的克隆及序列分析 [J], 李公美;赵云蛟;钱爱东4.汉滩病毒A9株强毒和弱毒克隆M基因片段G1糖蛋白编码区核苷酸序列的分析比较 [J], 邱建明;杭长寿;宋干;姚树元;李盈盈;鲁晓岚5.单核细胞增生李斯特菌XS5野毒株肌动蛋白actA基因克隆与序列分析 [J], 何嘉轩因版权原因,仅展示原文概要,查看原文内容请购买。
单核增生李斯特氏菌检测
在固体培养基上,菌落初始很小,透明,边缘整 齐,呈露滴状,但随着菌落的增大,变得不透明。 在5-7%的血平板上,菌落通常也不大,灰白色, 刺种血平板培养后可产生窄小的β-溶血环。 在0ቤተ መጻሕፍቲ ባይዱ6%酵母浸膏胰酪大豆琼脂(TSAYE)琼脂上, 用45°角入射光照射菌落,通过解剖镜垂直观察, 菌落呈兰色、灰色或兰灰色。
单核增生李斯特氏菌 检测概述
李斯特氏菌属
李斯特氏菌属(Listeria )普遍存在于环境中,最新的分类 学研究表明,其分为六个种: 单核增生李斯特氏菌(Listeria monocytogenes) 绵羊(伊氏)李斯特氏菌(Listeria ivanovii) 英诺克(无害)李斯特氏菌(Listeria innocua) 斯氏李斯特氏菌(Listeria seeligeri) 威氏李斯特氏菌(Listeria welshimeri) 格氏李斯特氏菌(Listeria grayi) 在李斯特氏菌属的六个种中,只有两种致病菌:单核增生 李斯特氏菌和伊氏李斯特氏菌可以引起老鼠和其他动物发 病。但是,其中通常只有单核增生李斯特氏菌和人类的李 斯特氏菌症(listeriosis)相关。因此,李斯特氏菌中最有检 测意义的是单核增生李斯特氏菌。
LB和BLB
只有选择性没有区别性
LEB是在TSB-YE的基础上加入盐酸吖啶黄、 萘啶酮酸和放线菌酮等选择性因子;加入 的丙酮酸钠,有助于受损细胞的恢复;不 含七叶灵和柠檬酸铁铵,无颜色反应 BLB是在LB基础上加入缓冲体系:磷酸二 氢钾和磷酸氢二钠
检测程序---分离
分离培养基有:OXA、PALCOM、LPM、MOX 等。分离原理主要是基于李斯特氏菌具有β-D- 葡萄糖苷酶的活性,能水解培养基中的七叶灵, 产生七叶苷,与铁离子产生颜色反应而使菌落为 棕褐色,并带有褐色晕圈,而致病性和非致病性 李斯特氏菌病都能发生这种反应
单核细胞增生李斯特菌临床感染及实验室检测
单增李斯特菌感染的流行情况
美国CDC统计的流行情况
※ 正常人群李斯特菌感染发病率:0.26/10万人 ※妊娠期李斯特菌感染发病率:12/10万人 ※新生儿李斯特菌感染发病率:8.6/10万活产
临床流行情况
1964~2010,28 省,共报告147例李斯特菌病 中枢感染31%,血流感染46%, 局灶性感染或胃肠炎23% 死亡率: 成人26%,新生儿46%
临床治疗
首选氨苄西林、青霉素或与氨基糖苷类抗生素联合应用 对青霉素过敏者可选用复方新诺明 妥布霉素与庆大霉素不易透过血脑屏障,不宜单独使用 利福平易透过血脑屏障,且对该菌作用强 单核细胞增生李斯特菌对头孢菌素天然耐药菌
病例分享
病例1、 男63岁 肝癌6年,糖尿病1年主因1个月来
无明显诱因腹胀、乏力入院
单核细胞增生李斯特菌药敏试验
根据CLSI M45-A3 不常见菌药敏实验指南
*微量肉汤稀释法,使用阳离子调节MH肉汤,补充
2.5%~5%裂解马血
*直接菌落制备0.5麦氏标准菌悬液 *空气环境下35 ℃孵育20~24h *质控菌株为肺炎链球菌ATCC49619 *首选抗菌药物为青霉素或氨苄西林、复方新诺明
2. 血液葡萄糖琼脂:圆形、 光滑、透明、露滴状菌落, 狭窄β溶血(菌落下溶血)
3. 麦康凯上不生长;
4. 4℃可生长—故称“冰箱 菌”
半固体培养基,置室温孵育可出现倒伞形 生长(动力)
选择性培养基 1. 李斯特菌选择性培养基:加入
七叶苷
Oxford:灰黑色,周围有黑色水晕 PALCAM :灰黑色菌落,周围有
Feng Y, et al. Systematic review of human listeriosis in China, 1964-2010. Trop Med Int Health. 2013 18(10):1248-56.
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单增李斯特菌llsB基因克隆及序列分析 王欣雨;尹华;任静静;李红欢;蒋建军 【摘 要】试验旨在对新疆绵羊脑炎临床分离株LM90SB2单增李斯特菌llsB基因进行克隆及生物信息学分析,以期进一步完善单增李斯特菌溶血素S的功能研究.根据GenBank中单增李斯特菌F2365基因全长序列(登录号为:AE017262)设计其特异性引物,利用PCR方法对新疆分离株LM90SB2的llsB基因进行扩增,回收目的基因与pMD19-T载体连接,采用PCR、双酶切鉴定筛选阳性菌并进行测序,对所获序列进行同源性比对及遗传变异分析.结果 显示,新疆分离株LM90SB2的llsB基因序列全长为876 bp,共编码291个氨基酸;LM90SB2分离株llsB基因核苷酸序列与10-0809、81-0592、81-0558、02-1792、NTSN、02-1289不同分离株同源性均为100%,与CIIMS-PH-1、NRRLB-57603株的同源性均为99.9%,与J1816、R2-502株的同源性为44.7%~45.0%.分子进化树显示,LM90SB2菌株llsB基因与血清型为4b的菌株亲缘关系较近,聚类为同一分支.蛋白质二级结构预测表明,LM90SB2 llsB蛋白为亲水性蛋白,无信号肽,不形成跨膜结构.本试验成功克隆了LM90SB2株llsB基因,为深入探讨该基因功能提供全面的理论依据.
【期刊名称】《中国畜牧兽医》 【年(卷),期】2019(046)007 【总页数】9页(P1890-1898) 【关键词】单增李斯特菌;llsB基因;克隆;生物信息学分析 【作 者】王欣雨;尹华;任静静;李红欢;蒋建军 【作者单位】石河子大学动物科技学院,石河子832000;石河子大学动物科技学院,石河子832000;石河子大学动物科技学院,石河子832000;石河子大学动物科技学院,石河子832000;石河子大学动物科技学院,石河子832000
【正文语种】中 文 【中图分类】S852.61
单增李斯特菌(Listeria monocytogenes,LM)是重要的食源性人畜共患传染病病原之一[1],由该菌引起的感染发病率较低,病死率达20%~30%。同时该菌对环境的抵抗能力较强,在1~45 ℃均可生长增殖,-20 ℃可部分存活,并可抵抗反复冻融[2-3]。在医学临床中免疫功能不全者、孕妇、胎儿及新生儿都是单增李斯特菌的易感群体,并可以引起人的脑膜炎、败血症、流产及发热性胃肠炎等。在兽医临床中牛、羊易感,表现为败血症、神经症状即“转圈病”、孕畜流产等[4-5]。因此,该菌在对公共卫生安全造成较大危害的同时,也严重影响着畜牧业的生产,给养殖业的发展带来了一定的经济损失。单增李斯特菌感染过程中的每一步均由特定的毒力因子调控。2008年,Cotter等[6]首次发现了溶血素S(listeriolysion S,LLS),LLS是一种与黏附侵袭相关的细菌素,仅出现在单增李斯特菌谱系Ⅰ型的一个子集中。感染小鼠口服LLS后发现,其在小鼠的肠道中高度表达,通过影响肠道内的其他微生物菌群,使其他细菌菌量减少,从而使单增李斯特菌成为优势菌群,单增李斯特菌菌量达到一定的量,从而穿越血肠屏障进入血液,在血液繁殖增长导致菌血症,同时又能够更深层次地感染其他脏器[7]。研究发现,单增李斯特菌与肠道微生物的相互作用是研究流行性单增李斯特菌病的关键一步,但其中的作用机理尚不明确[8]。本研究通过对新疆临床分离株LM90SB2的llsB基因片段进行克隆及测序,并对其进行生物信息学分析,为探讨llsB基因功能提供更全面的理论依据。 1 材料与方法 1.1 材料 1.1.1 菌株和质粒 单增李斯特菌LM90SB2是石河子大学动物科技学院从新疆某羊场发病绵羊脑组织中分离,血清型为4b;大肠杆菌(Escherichia coli)DH5α感受态细胞购自北京全式金生物技术有限公司;pMD19-T(Simple)载体购自宝生物工程(大连)有限公司。 1.1.2 主要试剂 脑心浸液(BHI)培养基、胰蛋白胨、酵母浸粉等均购自青岛高科园海博生物技术有限公司;质粒小提试剂盒、细菌基因组DNA提取试剂盒均购自天根生化科技(北京)有限公司;琼脂糖凝胶DNA回收试剂盒购自北京诺维森生物科技有限公司;Trans5000 DNA Marker、2×PCR Mix均购自北京全式金生物技术有限公司;限制性内切酶(EcoR Ⅰ和Pst Ⅰ)、T4 DNA连接酶均购自Promega公司(上海);氨苄青霉素购自Sigma公司。 1.2 方法 1.2.1 引物设计及合成 参照GenBank中公布的单增李斯特菌标准株F2365基因全长序列(登录号为:AE017262),利用Primer Premier 5.0软件设计llsB基因序列特异性引物,预期片段大小为876 bp。引物序列为:llsB-F:5′-CCGGAATTCATGATCGACTATGAGAAAAAAGGC-3′(含EcoR Ⅰ酶切位点和保护碱基);llsB-R:5′-CCCCTGCAG-TCATTCCTTTCCACAAATATTTGT-3′(含Pst Ⅰ酶切位点和保护碱基)。引物由北京华大基因公司合成。 1.2.2 菌株培养及基因组DNA提取 将LM90SB2菌株划线接种于BHI固体培养基上,37 ℃静置培养18~24 h,挑取单个菌落接种于5 mL BHI液体培养基中,37 ℃、180 r/min振荡培养12~18 h,使用细菌基因组DNA提取试剂盒提取菌体DNA,-20 ℃保存备用。 1.2.3 PCR扩增 以提取的菌体DNA为模板,用llsB-F和llsB-R为上、下游引物PCR扩增目的片段。PCR反应体系20 μL:2×PCR Mix 10 μL,上、下游引物(25 mmol/L)各1 μL,DNA模板2 μL,ddH2O 6 μL。PCR反应条件:95 ℃预变性5 min;95 ℃变性30 s,61 ℃退火45 s,72 ℃延伸1 min,共35个循环;72 ℃延伸10 min;4 ℃保存。同时设置空白对照组。取10 μL PCR产物经1.0%琼脂糖凝胶电泳进行检测,将大小正确的条带经琼脂糖凝胶DNA回收试剂盒纯化回收。 1.2.4 目的基因克隆及测序 目的基因回收产物与pMD19-T载体16 ℃过夜连接,使用冷热激法将连接产物转化大肠杆菌DH5α感受态细胞,涂布于含Ampr (100 μg/mL)的LB固体培养基上,37 ℃静置培养12~16 h。挑取单个菌落于1 mL LB液体培养基中,37 ℃、180 r/min振荡培养6~8 h,以菌液为模板进行PCR鉴定,筛选出阳性克隆菌送北京华大基因公司进行测序。 1.2.5 生物信息学分析 应用DNAStar软件将LM90SB2菌株llsB基因核苷酸序列与GenBank中单增李斯特菌不同菌株的该基因核苷酸序列(表1)进行同源性比对;应用Mega 7.0软件构建不同来源菌株llsB基因系统进化树;应用ProtParam在线软件对其基本理化性质进行分析;应用TMHMM在线软件分析蛋白质跨膜结构;应用SignalP 4.1 Server在线软件预测其蛋白质信号肽;应用TargetP 1.1 Server在线软件预测其在细胞内的定位;应用SMART和NCBI CDD软件预测其功能结构域;应用SOPMA和SWISS-MODEL软件预测蛋白质二级结构和三级结构。 表1 单增李斯特菌参考菌株信息 Table 1 Reference strains information of Listeria monocytoges 菌株StrainsGenBank登录号GenBank accession No.血清型Serotypes来源Source年份Years国家/地区Country/Region10-0809CP007167.14b粪便1981加拿大81-0592CP007526.14b新生儿血液1981加拿大81-0558CP007525.14b脑脊液1981加拿大02-1792CP007461.14b奶酪2002加拿大NTSNCP009897.14b绵羊脑2011中国江苏02-1289CP007460.14b粪便2002加拿大CIIMS-PH-1CP023321.1-李斯特菌病2016印度J1816CP006047.24b加工食品2002美国NRRLB-57603CP030101.11/2a脑脊液2002加拿大R2-502CP006594.11/2b食物1994美国 2 结 果 2.1 llsB基因的扩增及克隆 以LM90SB2菌株DNA为模板,用llsB-F、llsB-R引物对llsB基因进行PCR扩增,PCR产物经1.0%琼脂糖凝胶电泳检测得到一条单一且清晰的目的条带,大小约为876 bp(图1),与预期片段大小相符。测序结果显示,llsB基因序列长为876 bp,共编码291个氨基酸。 2.2 llsB基因核苷酸序列同源性比对 利用DNAStar软件将测序所得llsB基因核苷酸序列与GenBank中公布的10株不同来源的llsB基因序列进行同源性比对,结果显示,LM90SB2菌株llsB基因核苷酸序列与10-0809、81-0592、81-0558、02-1792、NTSN、02-1289不同分离株的同源性均为100%;与CIIMS-PH-1、NRRLB-57603菌株的同源性均为99.9%;与J1816、R2-502菌株的同源性为44.7%~45.0%(图2)。
M,DL5000 DNA Marker;1、2,llsB基因PCR扩增产物M,DL5000 DNA Marker;1 and 2,PCR amplification products of llsB gene图1 LM90SB2菌株llsB基因PCR扩增结果Fig.1 PCR amplification products of llsB gene of LM90SB2 strain
图2 分离株llsB基因核苷酸序列与参考菌株同源性比对Fig.2 Homology alignment of nucleotide sequences of llsB gene between isolated strain