不同的抗原修复方法对肾活检标本石蜡切片免疫荧光染色的影响

不同的抗原修复方法对肾活检标本石蜡切片免疫荧光染色的

影响

简介

肾活检是诊断某些肾脏疾病的重要手段。在进行肾活检时,通常需要进行免疫

荧光染色来确定肾脏病理组织的类型和程度。在进行免疫荧光染色时,免疫抗原修复是一个关键的步骤,它可以增强抗原在组织中的表达,提高染色效果。本文将探讨不同的抗原修复方法对肾活检标本石蜡切片免疫荧光染色的影响。

抗原修复方法

在进行免疫荧光染色时,抗原修复的主要目的是恢复或增强组织中的抗原表达,使其更易于被抗体检测。目前常用的抗原修复方法包括化学方法、热处理法和酶消解法。下面分别介绍它们的原理和操作步骤。

化学方法

化学方法是一种使用化学物质对组织进行抗原修复的方法。化学物质一般都是酸、碱或其他特定化合物,它们可以通过改变组织中蛋白质的构象,使其易于与抗体结合。常用的化学物质包括醋酸、乙酸、甲酸、谷氨酰胺等。

操作步骤

1.将药液加入试管中。

2.离心石蜡切片,并将其放入药液中。

3.在适当的温度和时间下进行反应。

4.在 PBS 溶液中洗涤石蜡切片。

5.进行抗体染色。

热处理法

热处理法是将组织样本放入高温环境中,以改变蛋白质的构象。它可以使组织

中抗原更易于被抗体识别和结合。该法使用方便,但需要控制好时间和温度,过渡的热处理会导致组织破坏或失去抗原,而时间过短则容易影响染色效果。

操作步骤

1.将石蜡切片放到蛋白酶降解试剂中,进行蛋白酶降解。

2.将石蜡切片放入热处理缓冲液中。

3.用高压蒸气炉进行热处理,温度一般在 90-100°C,时间在 10-20 分

钟。

4.在 PBS 溶液中洗涤石蜡切片。

5.进行抗体染色。

酶消解法

酶消解法是将组织中的蛋白质通过裂解和水解等方式分解为更容易被抗体检测

的分子。酶消解法适用于形态不易被破坏的组织样本,如肝、肾等。

操作步骤

1.将石蜡切片放入酶消解缓冲液中进行反应,时间一般在 20-30 分钟。

2.在 PBS 溶液中洗涤石蜡切片。

3.进行抗体染色。

影响因素

抗原修复方法的选择需要考虑多个因素,如待测抗原类型、形态、表达水平、

抗体类型等。同样的抗原修复方法在不同的条件下也可能影响免疫染色结果。

温度和时间

化学方法和热处理法都需要在一定的时间和温度下进行反应。过度或不足的反

应时间会影响抗原的恢复效果。过渡的反应时间会破坏组织结构,使抗原丢失或减弱,不足的反应时间则可能导致胚胎抗原结构不稳定、不完整,影响抗体和抗原的特异性反应。一般情况下,化学方法需要 10-30 分钟,65-80°C 下的热处理法需要15-30 分钟。

pH 值

化学方法使用的酸和碱的 pH 值不同,pH 过高或过低会影响石蜡切片的结构和

染色效果。pH 过高会导致组织碎裂,pH 过低则会影响抗体和抗原的结合效果。一般情况下,pH 控制在 6.0-9.0。

缓冲液浓度

酶消解法和热处理法涉及到缓冲液,浓度的不同会影响反应结果。浓度过低会

使缓冲液的缓冲能力不够,使 pH 值变化,导致反应不成功。过高的浓度则会降低

抗原恢复效果。

结论

在进行肾活检标本石蜡切片免疫荧光染色时,抗原修复是一个至关重要的步骤。本文介绍了不同的抗原修复方法,包括化学方法、热处理法和酶消解法。不同的抗原修复方法在某些条件下的效果也各有不同。因此,在选择抗原修复方法时,需要根据实验要求和标本类型进行综合考虑。

冰冻切片和石蜡切片各自的优劣之处

创作编号: GB8878185555334563BT9125XW 创作者:凤呜大王* 冰冻切片和石蜡切片各自的优劣之处是什么 1、从一抗的选择方面来看。有的一抗既能做石蜡切片又能做冰冻切片,而有的一抗只能做冰冻切片,关键取决于所要检测的 抗原稳定性,有的抗原不稳定,经过组织固定,脱水、透明、浸蜡、包埋、脱蜡等一系列的做石蜡切片的步骤,所检测的抗原易被破坏,这时只能用冰冻切片来做,检测这类抗原的一抗只能做冰冻切片,而那些稳定的抗原,能经受住石蜡切片的的考验,一般来讲也可以用冰冻切片来做,总得来讲,对于既可以用冰冻切片也可以用石蜡切片检测的抗原,用石蜡切片检测的染色效果要比冰冻切片好一些。 2、从研究目的来看。石蜡切片对组织细胞的定位很准确,而长期冻存组织的冰冻切片可能因冰晶的形成破坏组织细胞形 态的结构,并造成抗原的弥散,从而定位不准确。 3、从抗原的保真性来看。冰冻切片对抗原的保真很好,而石蜡切片在组织固定,脱水、透明、浸蜡、包埋、脱蜡等过程 中可能会对抗原的性质造成影响。 4、从操作步骤的繁琐程度看。染色过程冰冻切片简单,而石蜡切片要求脱蜡入水、抗原修复等过程,比较繁琐。 5、总之,石蜡切片对标本的长期保存较合适,且组织细胞形态结构保持好;而冰冻切片适合对新鲜组织的制片,然后立 即固定、染色效果较好,且免疫荧光中可以相对避免石蜡自发荧光的干扰。 冰冻切片(frozen section)是一种在低温条件下使组织快速冷却到一定硬度,然后进行切片的方法。因其制作过程较石蜡切片快捷、简便,而多应用于手术中的快速病理诊断。冰冻切片的种类较多,有低温恒冷箱冰冻切片法,二氧化碳冰冻切片法,甲醇循环制冷冰冻切片法等。这些方法,随着时代的变迁,科技的发展,许多年前被认为是非常重要的技术,现在也逐步被淘汰了。当然有些技术,如低温恒冷箱冰冻切片法,正在受到青睐。 编辑本段冰冻切片的应用

免疫荧光染色

荧光免疫染色和DAPI染色实验 1.实验原理 免疫染色的实验原理类似于Western Blotting,两者都是运用抗体的特异性识别作用来显示目的蛋白,但是由于免疫染色需要在原位进行,而且蛋白没有经过富集,因此其实验难度较高。 实验的基本原理是:利用固定剂(通常是甲醛或多聚甲醛)将细胞固定,使得细胞膜的通透性大大增加,并且利用Triton-X-100使得一部分膜蛋白变性,从而使通透性进一步加强。利用正常羊血清封闭,可以令许多蛋白先与血清内的非特异性抗体结合,而特异性的抗体由于动力学的关系可以通过竞争性的反应与目的蛋白结合,这一过程可以保证抗体识别的特异性。二抗可以特异性识别一抗的Fc区域,利用二抗连接不同的荧光基团,就可以在荧光显微镜下观察到不同的荧光,从而显示目的基因的表达情况。 另外,免疫荧光实验由于其较高的敏感性可以显示出基因表达的亚细胞情况(核内,核外,膜上以及一些较大的细胞器上),所以通常被用来作为基因定位的方法。 DAPI的中文名称是4,6-联脒-2-苯基吲哚,是一种常用的荧光染料,其作用机理与溴化乙锭(EB)等染色剂的机理类似:它们与DNA双螺旋的凹槽部分可以发生相互作用,从而与DNA 的双链紧密结合。结合后产生的荧光基团的吸收峰是358nm而散射峰是461nm,正好UV (紫外光)的激发波长是356nm,使得DAPI成为了一种常用的荧光检测信号。 Jagielski M. et. Al在1976年首次运用该技术检测细胞培养中的支原体感染。后来随着技术的进步,该技术被运用于各种微生物的检测、生长监测,胚胎发育过程的检测,细胞周期的检测和各种核定位的实验。 本实验就是利用DAPI染色标记细胞核的位置。 免疫染色实验方法和步骤 免疫染色(immunol staining)包括免疫荧光(immunol fluorescence)、免疫组化(immunol histochemistry)、免疫细胞化学(immunol cytochemistry)等,可以参考如下步骤进行操作。 1. 样品准备(Sample preparation) 对于贴壁细胞: 可以直接用多孔板,例如6孔板、24孔板等,培养细胞,然后到预定时间时进行固定等后续操作。 也可以用洁净的盖玻片,70%乙醇中浸泡后,用无菌的镊子放置到6孔板内,然后用无菌的生理盐水、PBS或培养液洗去残留的乙醇。这时就可以种入细胞进行培养,待细胞贴在盖玻片上生长良好后,即可进行固定等后续操作。 对于悬浮细胞: 把细胞先在固定液中固定,然后把细胞滴加在载玻片上,干燥后细胞会紧贴在载玻片上。然后就可以进行后续操作。如果细胞的粘附能力不佳,可以在载玻片上用PDL等物质进行处理,以增强载玻片的粘附能力。 对于冷冻切片: 切片放置在载玻片上后,可以直接进行固定等后续操作。 对于石蜡切片:

不同的抗原修复方法对肾活检标本石蜡切片免疫荧光染色的影响

不同的抗原修复方法对肾活检标本石蜡切片免疫荧光染色的 影响 简介 肾活检是诊断某些肾脏疾病的重要手段。在进行肾活检时,通常需要进行免疫 荧光染色来确定肾脏病理组织的类型和程度。在进行免疫荧光染色时,免疫抗原修复是一个关键的步骤,它可以增强抗原在组织中的表达,提高染色效果。本文将探讨不同的抗原修复方法对肾活检标本石蜡切片免疫荧光染色的影响。 抗原修复方法 在进行免疫荧光染色时,抗原修复的主要目的是恢复或增强组织中的抗原表达,使其更易于被抗体检测。目前常用的抗原修复方法包括化学方法、热处理法和酶消解法。下面分别介绍它们的原理和操作步骤。 化学方法 化学方法是一种使用化学物质对组织进行抗原修复的方法。化学物质一般都是酸、碱或其他特定化合物,它们可以通过改变组织中蛋白质的构象,使其易于与抗体结合。常用的化学物质包括醋酸、乙酸、甲酸、谷氨酰胺等。 操作步骤 1.将药液加入试管中。 2.离心石蜡切片,并将其放入药液中。 3.在适当的温度和时间下进行反应。 4.在 PBS 溶液中洗涤石蜡切片。 5.进行抗体染色。 热处理法 热处理法是将组织样本放入高温环境中,以改变蛋白质的构象。它可以使组织 中抗原更易于被抗体识别和结合。该法使用方便,但需要控制好时间和温度,过渡的热处理会导致组织破坏或失去抗原,而时间过短则容易影响染色效果。 操作步骤 1.将石蜡切片放到蛋白酶降解试剂中,进行蛋白酶降解。 2.将石蜡切片放入热处理缓冲液中。 3.用高压蒸气炉进行热处理,温度一般在 90-100°C,时间在 10-20 分 钟。 4.在 PBS 溶液中洗涤石蜡切片。

5.进行抗体染色。 酶消解法 酶消解法是将组织中的蛋白质通过裂解和水解等方式分解为更容易被抗体检测 的分子。酶消解法适用于形态不易被破坏的组织样本,如肝、肾等。 操作步骤 1.将石蜡切片放入酶消解缓冲液中进行反应,时间一般在 20-30 分钟。 2.在 PBS 溶液中洗涤石蜡切片。 3.进行抗体染色。 影响因素 抗原修复方法的选择需要考虑多个因素,如待测抗原类型、形态、表达水平、 抗体类型等。同样的抗原修复方法在不同的条件下也可能影响免疫染色结果。 温度和时间 化学方法和热处理法都需要在一定的时间和温度下进行反应。过度或不足的反 应时间会影响抗原的恢复效果。过渡的反应时间会破坏组织结构,使抗原丢失或减弱,不足的反应时间则可能导致胚胎抗原结构不稳定、不完整,影响抗体和抗原的特异性反应。一般情况下,化学方法需要 10-30 分钟,65-80°C 下的热处理法需要15-30 分钟。 pH 值 化学方法使用的酸和碱的 pH 值不同,pH 过高或过低会影响石蜡切片的结构和 染色效果。pH 过高会导致组织碎裂,pH 过低则会影响抗体和抗原的结合效果。一般情况下,pH 控制在 6.0-9.0。 缓冲液浓度 酶消解法和热处理法涉及到缓冲液,浓度的不同会影响反应结果。浓度过低会 使缓冲液的缓冲能力不够,使 pH 值变化,导致反应不成功。过高的浓度则会降低 抗原恢复效果。 结论 在进行肾活检标本石蜡切片免疫荧光染色时,抗原修复是一个至关重要的步骤。本文介绍了不同的抗原修复方法,包括化学方法、热处理法和酶消解法。不同的抗原修复方法在某些条件下的效果也各有不同。因此,在选择抗原修复方法时,需要根据实验要求和标本类型进行综合考虑。

石蜡切片免疫荧光实验步骤

石蜡切片免疫荧光实验步骤 1、脱蜡至水:将组织切片室温放置10min后,依次将石蜡切片放 入二甲苯3min→无水乙醇5min—85%酒精5min—75%酒精5min—ddH2O洗5min。 2、抗原修复:组织切片置于盛满柠檬酸抗原修复液(50X稀释至 1X使用)的修复盒中于微波炉内进行抗原修复(中火8min—停火8min—中低火7min)。此过程中应防止缓冲液过度蒸发,切勿干片。自然冷却后将玻片置于PBS中在脱色摇床上晃动洗涤3次,每次5min(具体修复液和修复条件根据组织来确定)。 3、画阻水圈:切片稍甩干后用组化笔在组织周围画圈,防止液体 流失。 4、BSA封闭:在圈内滴加3%-5%浓度BSA孵育30min(或二抗 同源血清封闭)。 5、一抗孵育:轻轻甩干封闭液,在切片上滴加按一定比例配好的 一抗(溶于血清:PBS=1:19的抗体稀释液体系中),切片平放于湿盒(内加少量水防止抗体蒸发),4°C过夜。 6、二抗孵育:玻片置于PBS中在脱色摇床上晃动洗涤3次,每 次5min。切片稍甩干后在圈内滴加相应的荧光二抗,覆盖组织,避光RT孵育50min。 7、DAPI染核:玻片置于PBS中在脱色摇床上晃动洗涤3次,每 次5min。切片稍甩干后在圈内滴加DAPI染液,避光RT孵育3-5min。 8、树脂封片:玻片置于PBS中在脱色摇床上晃动洗涤3次,每 次5min。切片稍甩干后用树脂封片剂封片(其间可滴加少量抗荧光淬灭剂)。 9、镜检拍照:切片于荧光显微镜/confocal/活细胞工作站中观察并 采集图像(DAPI紫外激发波长330-380nm,发射波长420nm,发蓝光;FITC激发波长465-495nm,发射波长515-555 nm,发绿光; CY3激发波长510-560,发射波长590nm,发橙光;CY5发红光)。 10、结果判读:DAPI染出来的细胞核在紫外的激发下为蓝色,阳 性表达为相应荧光素标记的红光或者绿光,图片处理需使用Image J 软件。

冰冻切片和石蜡切片各自的优劣之处

冰冻切片和石蜡切片各自的优劣之处是什么 1、从一抗的选择方面来看。有的一抗既能做石蜡切片又能做冰冻切片,而有的一抗只能做冰冻切片,关键取决于所要检测的抗原稳定 性,有的抗原不稳定,经过组织固定,脱水、透明、浸蜡、包埋、脱蜡等一系列的做石蜡切片的步骤,所检测的抗原易被破坏,这时只能用冰冻切片来做,检测这类抗原的一抗只能做冰冻切片,而那些稳定的抗原,能经受住石蜡切片的的考验,一般来讲也可以用冰冻切片来做,总得来讲,对于既可以用冰冻切片也可以用石蜡切片检测的抗原,用石蜡切片检测的染色效果要比冰冻切片好一些。 2、2、从研究目的来看。石蜡切片对组织细胞的定位很准确,而长期冻存组织的冰冻切片可能因冰晶的形成破坏组织细胞形态的结构, 并造成抗原的弥散,从而定位不准确。 3、3、从抗原的保真性来看。冰冻切片对抗原的保真很好,而石蜡切片在组织固定,脱水、透明、浸蜡、包埋、脱蜡等过程中可能会 对抗原的性质造成影响。 4、4、从操作步骤的繁琐程度看。染色过程冰冻切片简单,而石蜡切片要求脱蜡入水、抗原修复等过程,比较繁琐。 5、5、总之,石蜡切片对标本的长期保存较合适,且组织细胞形态结构保持好;而冰冻切片适合对新鲜组织的制片,然后立即固定、 染色效果较好,且免疫荧光中可以相对避免石蜡自发荧光的干扰。 冰冻切片(frozen section)是一种在低温条件下使组织快速冷却到一定硬度,然后进行切片的方法。因其制作过程较石蜡切片快捷、简便,而多应用于手术中的快速病理诊断。冰冻切片的种类较多,有低温恒冷箱冰冻切片法,二氧化碳冰冻切片法,甲醇循环制冷冰冻切片法等。这些方法,随着时代的变迁,科技的发展,许多年前被认为是非常重要的技术,现在也逐步被淘汰了。当然有些技术,如低温恒冷箱冰冻切片法,正在受到青睐。 冰冻切片的应用 (1)在手术进行中,突然发现病人的病变与原诊断,原定手术方案不相符合,或者怀疑时,需要病理确定。 (2)了解淋巴结内是否有转移的肿瘤细胞,或者转移的程度,以利于确定是否需要彻底扫除淋巴结或者其它的治疗措施。 (3)对于已确定为恶性肿瘤的患者,则需要了解其手术范围是否足够,上下切缘是否有残存的肿瘤组织。 (4)在做剖腹探查时所发现的肿块或者异样的组织。 (5)显示组织中的脂肪和脂类物质,这常见于某些病例如脂肪瘤及肉瘤,某些科研组织等。 (6)某些酶的显示如ATP酶,琥珀酸脱氢酶等。

抗原修复技术及其在免疫组化中的应用

抗原修复技术及其在免疫组化中的应用 福尔马林固定时,组织中的许多氨基酸残基在分子内或分子间形成了醛键,使得不少抗原决定簇被封闭。同时,由于甲醛的聚合作用,使蛋白质分子间相互交联形成大分子网络,也导致了抗原决定簇被掩盖,这就使得相当部分的抗原不能与抗体很好是进行反应。因此,抗原修复也是影响免疫组化染色结果的基本因素。抗原修复(Antigen retrieval ,AR)技术,建立在Fraenkel-conrat等人[1]一系列生物化学研究,经1991年shi等人[2]发展。抗原修复是指石蜡、冰冻、火棉胶、塑料切片免疫组织化学(IHC)前用胰蛋白酶、尿素、表面活性剂、微波缓冲液和金属盐等,使被掩盖的抗原决定簇或变性的抗原重新暴露或抗原性得到一定程度的恢复过程。抗原修复能最大程度地恢复在制片等过程中损失的抗原性,使原来认为不能在石蜡切片上进行IHC的许多抗体获得了良好的染色结果,成为一种有效的补救措施。本文的目的是概述AR-HIC的发展、应用和标准化。 一、AR技术 加热AR技术 微波加热方法. 在传统标准方法,经脱蜡、脱水和用3%H2O2阻断内源性过氧(化)物酶,石蜡切片经蒸馏水冲洗,放置在塑料Coplin缸中。加入AR液,如蒸馏水、缓冲液、金属盐液、尿素等,盖上并置家用微波炉加热5或10分钟(注意防止切片干躁)。有时在加热5分钟后,间隔1分钟,再加热5分钟(在第一个5分钟后检测液体高度)。加热后,从微波炉取出塑料Coplin缸,冷却15分钟。片子经蒸馏水冲洗二次后在PBS液中浸5分钟,才进行IHC染色。为了保持一致的加热条件,必须设定靠近微波炉中心相同的位置及同一编号的Coplin缸,按照不同的抗体设定不同的加热时间,尽可能的建立标准的加热条件。 微波(MW)加热过程如下:在专用盒内放入200ml柠檬酸缓冲液(PH6.0±0.1),并盖上带有小孔的盖子,微波加热至沸腾;将脱蜡水化后的组织切片置于耐高温塑料切片架中,放入已沸腾缓冲液中,有作者提供做免疫组化时采用微波炉中等功率800W[3],微波炉选用解冻档的国产家用微波炉(根据目前的研究,建议用医用微波炉),中档继续处理10-20分钟;取出微波塑料缸冷却至室温,从缓冲液中取出玻片,片子经蒸馏水冲洗二次,之后用PBS(PH7.2-7.4)冲洗两次,每次3分钟。 尽管有少数作者[4]认为经高温后冷却这一步省略。在我们观点,15分钟的冷却必须的几点理由:1、如这一步省略,对于有些抗体而言,会降低AR-IHC染色强度。2、突然从高温到低温可导致组织片掉片。3、可能引起形态学的变化。 单纯加热方法.将切片放入盛有柠檬酸缓冲液的容器中,置电炉(600W)上加热至沸腾,并持续10min 。Shi等人[2]用单纯加热方法与微波加热方法比较IHC染色强度,显示两种方法导致相同的染色强度。 高压加热方法. Shin等人[5]发展了含水高压锅煮沸方法,来增强福尔马林固定的脑组织tau蛋白免疫反应性。将切片连同柠檬酸缓冲液放入高压锅内,加热至产生喷气,并持续2min,压力锅离开热源,加热长短的控制很重要,从组织切片放入缓冲液到高压锅到压力锅离开热源总时间在5-8分钟,时间过长可能会使染色背景加深。现试剂公司提供的大多数抗体都建议使用高压锅煮沸方法,这几年的实践表明,采取此方法可避免假阳、阴性,使IHC染色效果更佳。 非加热AR技术 非加热AR技术包括酶消化、酸水解等方法。目前,主要是酶消化,酶消化是以化学的方法来打断醛键,修复抗原。 胰蛋白酶消化法.取0.05g或0.1g胰蛋白酶加入100ml0.05%或0.1%PH7.8的无水氯化钙水溶液中,溶解即可;或由迈新提供的0.125%的液体胰酶。将切片放入湿盒内37oC温箱中消化18-20分钟。 胃蛋白酶消化法 . 用0.1mol/L HCL配制成0.4%的胃蛋白酶; 链霉蛋白酶消化法 . 将链霉蛋白酶溶于0.5mol/LpH7.4的Tris-HCL中,浓度为o.1%,消化时间

石蜡切片免疫组化及免疫荧光染色方法

石蜡切片免疫组化及免疫荧光染色方法 1、组织的采集、固定和保存: 采取组织后, 方法一:4%多聚甲醛(4%PFA)4︒C 固定1小时(根据组织大小和致密程度调整固定时间)或过夜 方法二:采用bouin’s固定RT 2h(6-8d tesis)or RT 过夜(成年 tesis) PBS缓冲液洗三次,每次5min,4︒C保存于70%乙醇中。 2、组织的包埋、切片、展片及保存:: 固定后的样品经梯度乙醇脱水、二甲苯透明,52-54︒C石蜡包埋,常规切片,切片厚4 -10μm,贴于处理过的干净载玻片上,37︒C烤片过夜,之后收集于载片盒中,RT密封保存。 石蜡包埋: 保存于4︒C 70%乙醇中的组织样品 ↓ 80%乙醇 15 min ↓ 95%乙醇 15 min ↓ 100%乙醇 15min ⨯ 2 ↓ 1/2乙醇1/2二甲苯 15 min ↓ 二甲苯透明 5-10 min ↓ 1/2二甲苯1/2石蜡 30 min ↓ 石蜡(1) 1.5hr ↓ 石蜡(2) 1.5-2.5hr ↓ 石蜡(3)包埋 ↓ RT保存 3、石蜡组织切片的免疫组化方法:

密封保存于RT的组织切片 ↓ 二甲苯(1) 20 min ↓ 二甲苯(2) 20 min ↓ 100%乙醇 20min ↓ 95%乙醇 10 min ↓ 80%乙醇 10 min ↓ 通风橱晾干,阻水笔在组织周围画圈 ↓ 切片在PBS中浸泡 5 min*2 ↓ 0.4%Tritonx RT 10 min ↓ 切片在PBS中浸泡 5 min*3 3%H2O2 RT 10min 切片在PBS中浸泡 5 min*3 0.25%胰酶RT 10min 切片在PBS中浸泡 5 min*3 Blocking buffer(3%BSA+5%NGS+0.2%Tritonx-100 in PBS) RT 60min 倾去blocking buffer,勿洗 一抗4︒C overnight in blocking buffer 取出切片复温1h,切片在PBS中浸泡 5 min*3 二抗in blocking buffer GAR1:200 (GAM1:100),RT 1h 切片在PBS中浸泡 5 min*3 DAB显色5-10min(50微升A+50微升B+900微升PBS+5微升3%H2O2)

免疫荧光和几种特殊染色在肾活检病理诊断中的应用

免疫荧光和几种特殊染色在肾活检病理诊断中的应用 罗教秀;储兵;曹晓珊;陈应智;吴师珍 【摘要】Objective:To analyze the effect of immunofluorescence and other special staining methods in the pathological diagnosis of renal biopsy.Methods: 58 patients with chronic kidney disease admitted in our hospital from September 2014 to September 2016 were included in the object of study.All patients underwent renal biopsy puncture to obtain tissue using paraffin, respectively by immunofluorescence, six staining of methanol method, Congo red staining and mucin (PAS) and three Masson dye staining, staining results in different ways.Results: The positive rates of IgA, IgM, IgG, C3 and Clq in the patients with different types of nephropathy were significantly higher than those of IgA nephropathy and membranous nephropathy in patients by immunofluorescence staining.In the comparison of different staining methods, it was found that the positive rate of IgA, IgM, IgG, C3 and Clq detected by immunofluorescence staining was significantly lower than that of other staining methods, P<0.05.There was no difference in the diagnostic rate of other staining methods, P>0.05.Conclusion:Comparing with other methods, the rate of pathological diagnosis of renal biopsy is lower than that of other methods.It is recommended to use other special staining methods to diagnose renal tissue.%目的:分析免疫荧光染色及其他几种特殊染色法在肾活检病理诊断中的应用效果.方法:临床纳入58例我院2014年9月至2016年9月期间收治的慢性肾脏疾病患者作为研究对象,所有患者均进行肾穿刺活检,穿刺取得组

石蜡切片多重免疫荧光染色优化条件探讨

石蜡切片多重免疫荧光染色优化条件探讨 范瑾瑾;骆宁;彭文兴;毛海萍 【期刊名称】《中山大学学报(医学科学版)》 【年(卷),期】2018(039)005 【摘要】[目的]探讨在石蜡切片上不同染色条件对多重荧光标记结果的影响.[方法]根据不同组织抗原选择合适的固定剂;对石蜡组织切片采用高温高压的抗原修复方式,使用柠檬酸盐缓冲液或EDTA抗原修复液进行抗原修复,并在染色操作过程中增加封闭步骤,随后进行常规组织免疫荧光染色.[结果]常规石蜡切片用40g/L多聚甲醛固定、抗原糖基含量高的石蜡切片用过碘酸盐-赖氨酸-多聚甲醛固定可以很好的保护切片中的抗原;pH 6.0的枸橼酸缓冲液及pH 8.0的EDTA-Na缓冲液分别对组织胞浆抗原及胞核抗原具有较好的抗原修复作用;多重荧光染色不同种属来源第一抗体染色间增加一次封闭步骤,可有效的改善多重荧光染色质量.[结论]选择合适的固定剂、抗原修复液及增加抗原封闭次数对石蜡组织切片上的多重荧光标记结果具有显著的影响. 【总页数】7页(P675-681) 【作者】范瑾瑾;骆宁;彭文兴;毛海萍 【作者单位】中山大学附属第一医院肾内科,广东广州510080;中山大学附属第一医院肾内科,广东广州510080;中山大学附属第一医院肾内科,广东广州510080;中山大学附属第一医院肾内科,广东广州510080 【正文语种】中文

【中图分类】R331 【相关文献】 1.肾活检标本石蜡切片免疫荧光染色方法的探讨 [J], 李兵;苗里宁;刘树军;吴曼 2.不同的抗原修复方法对肾活检标本石蜡切片免疫荧光染色的影响 [J], 谭文;贾晓敏 3.免疫组织化学和免疫荧光染色在肾活检组织石蜡切片磷脂酶A2受体检测中的应用 [J], 董鸿瑞;王艳艳;王国勤;孙丽君;程虹;谌贻璞 4.石蜡切片多重免疫荧光染色优化条件探讨 [J], 范瑾瑾; 骆宁; 彭文兴; 毛海萍 5.小鼠胰腺石蜡切片制作程序优化与免疫荧光染色探索 [J], 赵晶晶; 庄宝祥; 李如江 因版权原因,仅展示原文概要,查看原文内容请购买

免疫组化中抗原修复方法及注意事项-2022

免疫组化中抗原修复方法及注意事项 问:为什么要进行抗原修复: 答:福尔马林固定时,组织中的许多氨基酸残基在分子内或分子间形成了醛键,使得不少抗原决定簇被封闭。同时,由于甲醛的聚合作用,使蛋白质分子间相互交联形成大分子网络,也导致了抗原决定簇被掩盖,这就使得相当部分的抗原不能与抗体很好是进行反应。因此,抗原修复也是影响免疫组化染色结果的基本因素。 抗原修复中柠檬酸缓冲液的配制方法: A液:枸橼酸,C6H8O7.H2O,21.01g 加水定容至1000ml;B液:枸橼酸钠,C6H5Na3O7.2H2O, 29.41g 加水定容至1000ml;使用时:A液9 ml, B液41 ml,加水至500ml,即可配成工作液。 抗原修复(Antigen retrieval ,AR)技术,是指石蜡、冰冻、火棉胶、塑料切片免疫组织化学(IHC)前用胰蛋白酶、尿素、表面活性剂、微波缓冲液和金属盐等,使被掩盖的抗原决定簇或变性的抗原重新暴露或抗原性得到一定程度的恢复过程。抗原修复能最大程度地恢复在制片等过程中损失的抗原性,使原来认为不能在石蜡切片上进行IHC的许多抗体获得了良好的染色结果,成为一种有效的补救措施。本文的目的是概述AR-HIC的发展、应用和标准化。 一、AR技术 加热AR技术 微波加热方法. 在传统标准方法,经脱蜡、脱水和用3%H2O2阻断内源性过氧(化)物酶,石蜡切片经蒸馏水冲洗,放置在塑料Coplin缸中。加入AR液,如蒸馏水、缓冲液、金属盐液、尿素等,盖上并置家用微波炉加热5或10分钟(注意防止切片干躁)。有时在加热5分钟后,间隔1分钟,再加热5分钟(在第一个5分钟后检测液体高度)。加热后,从微波炉取出塑料Coplin缸,冷却15分钟。片子经蒸馏水冲洗二次后在PBS液中浸5分钟,才进行IHC 染色。为了保持一致的加热条件,必须设定靠近微波炉中心相同的位置及同一编号的Coplin 缸,按照不同的抗体设定不同的加热时间,尽可能的建立标准的加热条件。 微波(MW)加热过程如下:在专用盒内放入200ml柠檬酸缓冲液(PH6.0±0.1),并盖上带有小孔的盖子,微波加热至沸腾;将脱蜡水化后的组织切片置于耐高温塑料切片架中,放入已沸腾缓冲液中,有作者提供做免疫组化时采用微波炉中等功率800W,微波炉选用解冻档的国产家用微波炉(根据目前的研究,建议用医用微波炉),中档继续处理10-20分钟;取出微波塑料缸冷却至室温,从缓冲液中取出玻片,片子经蒸馏水冲洗二次,之后用PBS (PH7.2-7.4)冲洗两次,每次3分钟。

抗原修复方法及注意事项

柠檬酸缓冲液高温高压抗原修复法(强烈推荐) 1.适用范围:适合于大量中性福尔马林固定、石蜡包埋组织切片的抗原修复,其效果优于微波修复法和直接煮沸修复法,使得免疫组化结果更加可靠 2.仪器设备:市售不锈钢家用压力锅,大小尺寸可根据需要而定(内径18cm为好);1000-1500W电炉一台;不锈钢或耐高温塑料切片架。 3.所需试剂:0.01M柠檬酸型缓冲液,pH=6.0±0.1 4.操作步骤: (1)常规组织切片经二甲苯脱蜡、梯度酒精水化后,浸泡于蒸馏水中待用。 (2)取一定量pH=6.0柠檬酸盐缓冲液(800-1500ml)于压力锅中,大火加热直至沸腾;将脱蜡水化后的组织切片置于不锈钢或耐高温塑料切片架上,放入已沸腾的缓冲液中。盖上锅盖,扣上压力阀,继续加热至喷汽,从喷汽开始计时,1-2分钟后,压力锅离开热源,冷却至室温(稍冷后,可在自来水笼头下加速冷却),取出玻片,先用蒸馏水冲洗两次,之后用PBS(pH=7.2-7.4)冲洗两次,每次3分钟(2×3')。 (3)按有关试剂盒的操作步骤执行。 5.注意事项: (1)加热时间长短的控制很重要,从组织切片放入缓冲液到高压锅离开火源的总时间控制在5-8分钟为好,时间过长可能会使染色背景加深。 (2)必须使用不锈钢或耐高温塑料切片架,不能使用铜架,以防缓冲液pH值增高而导致掉片。 (3)高压锅离开火源后必须等缓冲液冷切后,才能把切片取出。 (4)为防止组织脱落,玻片必须经清洁处理后,涂覆Poly-L-Lysine( (5)缓冲液的量必须保证所有切片都能浸泡到,用过的柠檬酸缓冲液不能反复使用。 EDTA 抗原热修复法 1. 适用范围:适用于部分中性福尔马林固定、石蜡包埋组织切片的抗原修复。 2. 仪器设备:电磁炉、不锈钢锅和耐高温塑料染色架。 3. 所需试剂:EDTA抗原修复液,pH9 .0 4. 操作步骤: (1)抗原修复液的配制:根据所需工作液的量,取迈新公司产品MVS-0098适量,按1:50 的比例稀释。 (2)取500ml 抗原修复工作液于1000ml 不锈钢锅中,直接在电磁炉上加热至沸腾后,调低电磁炉功率使锅内修复液保持微沸状态。将组织切片置于耐高温染色架上,再将染色架缓慢放入不锈钢锅中(注意:若快速将染色架丢进缓冲液中,往往会导致瞬时的激烈沸腾现象而造成组织脱落),之后加盖继续加热20 分钟。再将不锈钢锅从电磁炉上移开,室温下自然冷却至室温后取出切片,蒸馏水洗1 次3 分钟,PBS 洗2 次、每次3 分钟。之后进行免疫组化染色。 5. 注意事项: (1)由于修复液蒸发量无法估计,所以修复液不能重复使用。 (2)工作液的量必须保证切片始终能浸泡在液体内。 (3)为了防止加热过程组织脱片,须采用Poly-L-Lysine处理载玻片。 (4)抗原修复后一定要等工作液冷却后,才能将切片从工作液中取出。 柠檬酸缓冲液微波抗原修复法 1.适用范围:适合于大量中性福尔马林固定、石蜡包埋组织切片的抗原修复,其效果比高温高压修复差但比直接水煮好。 2.仪器设备:微波炉(700-800w)。 3.所需试剂:0.01M柠檬酸型缓冲液,pH=6.0±0.1

石蜡切片免疫荧光染色方法

对于石蜡切片: 1、烤片:60℃ 60分钟 2、脱蜡:二甲苯中Ⅰ脱蜡15分钟→二甲苯Ⅱ脱蜡15分钟→无水乙醇Ⅰ5分钟 →无水乙醇Ⅱ5分钟→90%乙醇Ⅰ5分钟→90%乙醇Ⅱ5分钟→70%乙醇5分钟 →蒸馏水5分钟→蒸馏水5分钟. 3、抗原修复:高压修复,事先烧开锅中的水,修复盒中加入l柠檬酸钠,(柠檬酸三钠 3g,柠檬酸 0.4g加入1000ml蒸馏水中),上汽后加热10分钟,关火.修复盒取出,放入装有自来水的瓷缸中缓慢冷却至室温. 2. 去除内源性酶:玻片取出放入湿盒,加3%H 2O2 2 (2ml H 2 O2 2 加入18ml蒸馏水中, 现配现用,避光),室温孵育10分钟,PBS洗3次,每次5分钟.(也可不用去除内源性酶). 3. 封闭(Blocking) 加10%正常驴血清(原液100ul+900ulPBS,1ml够用30张片子),室温孵育封闭30 分钟.如果背景较高,可以4℃封闭过夜.不用洗,用滤纸吸干周边水分. 从封闭开始 所有的步骤,一定要注意样品的保湿,避免样品的干燥,否则极易产生较高的背景. 4. 一抗孵育(Primary antibody incubation) 参考一抗的说明书,按照适当比例用(10%山羊血清PBS或1%BSA-PBS)稀释一抗. 立即加入稀释好的一抗, 4℃过夜,第二天取出复温45分钟.PBS洗3次,每次5分钟. 5. 二抗孵育(Secondary antibody inucubation) 按照适当比例用稀释荧光标记的二抗,立即加入稀释好的二抗,室温或4℃在侧摆摇 床上缓慢摇动孵育一小时. PBS洗涤3次.每次5分钟.如果结果背景较高,可以适当延长洗涤时间并增加洗涤次数. 6. 蛋白检测(Detection of proteins) 对于免疫荧光染色,此时已经可以直接到荧光显微镜下观察. 7. 复染 用DAPI对细胞核进行染色,室温10分钟,PBS冲洗5分钟×3次,封片(封片剂或分 析纯的甘油与碳酸缓冲液1:1混合)显微镜观察,染色后为蓝色荧光.

肾活检标本制作技术试题

肾活检标本制作技术 [单项选择题] 1、肾穿刺标本应用石蜡切片进行免疫荧光染色时,以下描述不正确的是()。 A.IgM不受影响 B.纤维蛋白原不受影响 C.IgA、IgG强度减弱 D.补体不受影响 E.HBsAg不受影响 参考答案:D 参考解析:石蜡标本进行免疫荧光染色时,IgM、纤维蛋白原和HBsAg不受影响,补体往往消失,IgA、IgG强度减弱。 [单项选择题] 2、肾活检时免疫荧光制片厚度的要求是()。 A.2μm B.3~4μm C.5μm D.5~6μm E.10μm 参考答案:B [单项选择题] 3、肾活检病理光镜常规染色不包括()。 A.HE染色 B.PAS染色 C.PASM染色 D.刚果红染色 E.Masson染色 参考答案:D [单项选择题] 4、男性,35岁。双下肢水肿2周。查体:血压130/80mmHg,双下肢轻度凹陷性水肿。尿常规:蛋白(++++),红细胞(++)。Scr122μmol/L,血浆白蛋白28g/L。肾穿刺进行免疫荧光检测,()是沿基底膜呈颗粒橙红色荧光的。 A.花青 B.罗达明

C.异硫氰酸荧光素 D.得克萨斯红 E.藻红素R 参考答案:B [单项选择题] 5、为了进一步明确分型,对肾组织进行免疫组织化学染色,应选择最敏感的生物素-抗生物素方法是()。 A.SP法 B.ABC法 https://www.360docs.net/doc/4e19182960.html,B法 D.SABC法 E.Envision法 参考答案:E 参考解析:Envision法是一种高敏感性显色系统,把传统的第二抗体、第三抗体分别孵育合为一次孵育,由于不再有第二抗体与第三抗体通过生物素结合,故整个系统不受内源性生物素的干扰,避免了非特异性阳性,减低了背景,这是与SP、ABC、LSAB、SABC相比最大的优点。 [单项选择题] 6、肾活检的石蜡切片和电镜标本必须含有下列哪种结构?() A.脂肪 B.肾间质 C.肾小管 D.肾小球 E.结缔组织 参考答案:D [单项选择题] 7、男性,35岁。双下肢水肿2周。查体:血压130/80mmHg,双下肢轻度凹陷性水肿。尿常规:蛋白(++++),红细胞(++)。Scr122μmol/L,血浆白蛋白28g/L。为了进一步明确分型,对肾组织进行免疫组织化学染色,选择最敏感的生物素-抗生物素方法()。 A.SABC法 B.SP法 https://www.360docs.net/doc/4e19182960.html,B法 D.ABC法 E.Envision法 参考答案:E

2023临床病理科住院医师取材和切片制作室试卷(练习题库)

临床病理科住院医师取材和切片制作室试卷(练 习题库) 1、大体标本的收集,正确的方法是() 2、病理大体标本制作中,取出后的标本应及时固定,如果当时没有合适的固定液,可以应用的保存标本的方法是O 3、病理大体标本制作中对实质性器官的取材,下面的方法正确的是O 4、病理大体标本制作中对胃的取材,不正确的是O 5、病理大体标本制作中最常用的固定液是O 6、用甲醛溶液保存病理大体标本的缺点是O 7、甲醛溶液保存病理大体标本时,不能保留标本的原有颜色可能的原因是O 8、病理大体标本制作中,对固定标本的操作过程,下面不正确的是O 9、原色组织标本制作方法不包括O 10、苏丹11I进行脂肪染色时,正确的描述是O 11、透明大体标本的制作中,正确的血管灌注透明法是() 12、透明大体标本的制作中有关填充剂及其配制,下面的描述不妥当的是() 13、透明大体标本的制作,用以下哪种物质保存标本可以继续透明,增加标本的透明度O 14、透明大体标本的制作,标本存放的最好材料是O

15、透明大体标本的制作时,标本的装缸和封口下面的方法不正确的是O 16、配制胰蛋白酶溶液应选用O 17、培养液内一般需要加入的抗生素是() 18、百分浓度的定义是O 19、配制IoonIl的O.2mol∕L盐酸(36.46m01/L),已知市售盐酸的浓度 为37%,比重LI 20、以下关于当量的概念错误的是O 21、对缓冲溶液的定义理解错误的是O 22、缓冲溶液能够对抗外来少量强酸强碱的原因,错误的是() 23、下列关于缓冲溶液的配制方法错误的是O 24、送检标本的验收,要求做到O 25、高质量的HE切片标准应除外() 26、患者男性,42岁,胸部不适,咳嗽2个月。患者做了如下检查,哪项检 查最有意义,为医生进一步的治疗依 27、快速活检的适用范围除外() 28、下列在快速诊断中应该慎用的是O 29、快速活检不宜应用的范围应除外() 30、不适宜做快速活检的疾病是O 31、完成冷冻HE染色切片制备时间一般为O 32、以下情况不适宜做快速活检的是O

不同的抗原修复方法对肾活检标本石蜡切片免疫荧光染色的影响

不同的抗原修复方法对肾活检标本石蜡切片免疫荧光染色的影响 作者:谭文贾晓敏 来源:《中外医疗》 2014年第15期 谭文1 贾晓敏2 1.长沙市第八医院病理科,湖南长沙 410000; 2.湖南省人民医院病理科,湖南长沙410000 [摘要] 目的探讨了不同的抗原修复方法对肾活检标本石蜡切片免疫荧光染色的影响。方 法选取该院30例肾活检标本作为研究对象,随机分成对照组与研究组,对照组采用冰冻切片 方法,研究组采用石蜡切片方法,其中分成应用无抗原修复组、胰酶抗原修复组、高压加热抗 原修复组,均进行免疫荧光染色。分析和对比研究组与对照组标本的免疫荧光染色结果。结果 研究组中的胰酶抗原修复组与对照组的免疫荧光染色结果基本相同(P<0.05);研究组中高压加热抗原修复组的假阴性明显高于对照组(P<0.05),研究组中无抗原修复组的染色效果比对照组较差(P<0.05);两组所观察的有效肾小球数均≥3个,两组数据差异无统计学意义(P >0.05)。结论冰冻切片的免疫荧光染色标本无肾小球的时候,可以采用胰酶抗原修复作为补救措施。 [关键词] 抗原修复方法;肾活检;石蜡切片;免疫荧光染色 [中图分类号] R692.5 [文献标识码] A [文章编号] 1674-0742(2014)05(c)-0190-02 [作者简介] 谭文(1976.11-),男,湖南茶陵人,本科,主管病理技师,研究方向:病理技术。 [通讯作者] 贾晓敏(1976.3-),女,河北人,本科,主管病理技师,研究方向:病理技术。 免疫荧光技术又被称为荧光抗体技术,是标记免疫技术中发展最早的一种,具有特异性强、敏感性高、速度快等特点,在肾穿刺活检的病理诊断中具有很大的意义。选取该院2013年2月—2013年9月间确诊为肾小球疾病的患者为研究对象,主要探讨了不同的抗原修复方法对肾活 检标本石蜡切片免疫荧光染色的影响,现报道如下。 1 资料与方法 1.1 一般资料 该院共接收30例经确诊为肾小球疾病的患者,男性14例,女性16例,年龄在19~64周岁之间,平均年龄为(41.5±13.4)周岁。其中有9例患者属于IgA肾病,8例患者属于局灶节 段硬化性肾小球肾炎,6例患者属于轻度系膜增生性肾小球肾炎,4例患者属于膜性肾病,3例 患者属于系统性红斑狼疮。将每例患者的肾活检标本分别制成采用10%福尔马林固定的2 μm 厚石蜡切片,和2 μm厚的冰冻切片,冰冻切片为对照组,石蜡切片为研究组,并将研究组的

病理科

病理科 [单项选择题] 1、肾活检的石蜡切片和电镜标本必须含有() A.肾间质 B.肾小球 C.肾小管 D.脂肪 E.结缔组织 参考答案:B [单项选择题] 2、肾活检时可帮助确定肾病变性质和有无凝血机制的免疫荧光检查是() A.补体C3、C1q、C2、C4 B.IgA C.IgG D.抗γ和λ轻链 E.纤维蛋白原和白蛋白 参考答案:E [单项选择题] 3、肾活检标本应用石蜡切片进行免疫荧光染色时,往往消失的是() A.IgM B.纤维蛋白原 C.IgA D.IgE E.补体 参考答案:E [单项选择题] 4、对于重铬酸钾固定剂,对其描述下面错误的是() A.重铬酸钾为橙红色晶体,有毒 B.用于固定高尔基体和线粒体效果较好 C.组织穿透速度快 D.重铬酸钾固定的组织明显收缩 E.重铬酸钾固定的组织,酸性染料着色良好 参考答案:D

参考解析:重铬酸钾固定的组织几乎完全不收缩,但经乙醇脱水后明显收缩。 [单项选择题] 5、染色体的固定液多含醋酸,醋酸可清楚地显示细胞核,但醋酸固定的缺点是() A.单独应用组织收缩明显 B.不能有效地防止自溶 C.醋酸穿透力太弱 D.组织膨胀明显,尤其对于胶原纤维和纤维蛋白 E.不能有效地抑制细菌生长 参考答案:D 参考解析:5%醋酸可抑制细菌和酶活性可防自溶,穿透力强,但缺点是组织膨胀明显,尤其对于胶原纤维和纤维蛋白,所以一般很少单独使用。 [单项选择题] 6、单纯固定液即可使蛋白沉淀,同时也是一种良好的脱钙剂的是() A.锇酸 B.三氯醋酸 C.苦味酸 D.醋酸 E.乙醇 参考答案:B [单项选择题] 7、用B-5固定的组织,在染色前应该进行的处理是() A.脱钙处理 B.脱汞处理 C.水化处理 D.酸化处理 E.脱脂处理 参考答案:B [单项选择题] 8、Camoy液除了常用于糖原和尼氏体的固定外,还有下面哪项特点() A.该固定方法适用于标本的长期保存 B.对于染色体固定佳,显示DNA和RNA效果好 C.用于保存脂类 D.该固定液固定速度慢而温和 E.该固定液渗透力差 参考答案:B

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