巨紫荆优良新品系组织培养快速繁殖技术
巨紫荆实生繁殖及精品栽培技术
巨紫荆实生繁殖及精品栽培技术孙辉1，王纳新2，徐红霞2（安徽省铜陵市义安区林业局244000）巨紫荆作为铜陵市义安区优质乡土园林树种，以其树体挺拔、枝条婆娑、叶形秀丽、花簇紫艳、果荚红润而极具特色，已逐渐成为园林绿化树种的新宠。
以义安区野生巨紫荆为母本，加以人工繁殖培育，分析其生物学特性和生长习性，提出巨紫荆实生繁殖及精品栽培较佳技术方案。
巨紫荆；繁殖；栽培巨紫荆享有“像法桐一样高大、似樱花一样灿烂”的美誉，适应在城市道路、河岸等环境下生长，在园林绿化中具有较高的观赏价值和广阔的应用前景。
2巨紫荆繁育2.1种子的采集处理选择生长健壮、株形丰满、无病虫害，具有优良形状的壮年巨紫荆，于当年10月下旬~11月上旬，适时采集成熟种荚，先放在通风处摊开阴干数天，再拿出晒1~2d ，荚果开始裂开，打出种子去杂，之后再阴干数日。
处理好的种子可装于透气的袋子中，置于阴凉通风处干贮或沙藏，待翌年播种。
2.2沙床催芽2.2.1构筑沙床。
选择背风向阳的平整场地，用空心砖按东西向长15~20m 、南北向宽1.2m 设置沙床，靠北床高50cm ，靠南床高30cm 、在沙床内外两侧用薄膜覆盖（床底除外），沙床底部先铺10cm 厚的瓜子片（碎石），再铺15cm 厚粗黄沙，用0.5%硫酸铜溶液对沙床进行消毒。
2.2.2种子催芽。
2月上旬，将巨紫荆种子用80℃热水浸泡20h ，捞出后冲洗干净，再用0.5%硫酸铜溶液浸泡2h ，净水冲洗阴干，均匀播于沙床上（种子不重叠），覆盖1cm 厚粗黄沙，再用75%多菌灵可湿性粉剂800倍液对沙床进行喷雾消毒。
沙床每隔50cm 插竹弓，而后用0.4mm 厚薄膜覆盖保湿。
日常注意床内湿度及温度，出苗后，拱棚气温最高不得超过28℃，否则就要遮阳或沙床两头通风降温。
巨紫荆种子长成2片真叶后，就逐渐通风炼苗7~10d 。
2.3芽苗移植2.3.1苗床整理。
选择地势平坦、向阳、排灌条件良好，土壤肥厚的沙质壤土，在当年11月底前，667m 2均匀撒施腐熟农家肥（鸡粪、鸽粪或菜籽饼）1500kg 、复合肥15kg （总养份≥48%）、硫酸亚铁30kg 、5%辛硫磷颗粒剂5kg 于地面，然后机械深耕20~30cm ，将肥料、农药翻入土中，平整土地，清除草根，石块等杂物。
新优树种巨紫荆速成培育
新优树种巨紫荆速成培育
王展;周改玲
【期刊名称】《林业实用技术》
【年(卷),期】2005(000)012
【摘要】巨紫荆（Cercis gigantea cheng et keng f.）为豆科紫荆属落叶乔木,胸径可达50 cm,高可达15 m.相对于我国广大地区习见的灌木状紫荆更具观赏价值.巨紫荆的开发和应用弥补了紫荆不能作城乡行道树、庭荫树、景园风景林的空白,丰富了我国观花观果乔木树种资源.目前该树种已引起我国大城市园林专业人士的重视和认可.业内人士预计巨紫荆将成为新兴的观花观果乔木速生乡土树种之一,有着很好的园林应用前景.
【总页数】2页(P23-24)
【作者】王展;周改玲
【作者单位】许昌市园林处,河南,许昌范军科,461000;许昌市园林处,河南,许昌范军科,461000
【正文语种】中文
【中图分类】S7
【相关文献】
1.珍稀乡土树种巨紫荆及其栽培技术 [J], 潘建利;吴银芳
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5.优美的园林观赏树种--巨紫荆 [J], 范军科;孙士杰
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‘森林火焰’加拿大紫荆组培快繁技术体系的构建
‘森林火焰’加拿大紫荆组培快繁技术体系的构建本文以‘森林火焰’加拿大紫荆(Cercis Canadensis‘Forest Pansy’)幼嫩茎段为外植体,对‘森林火焰’加拿大紫荆的组培快繁技术体系进行了系统研究。
旨在建立‘森林火焰’加拿大紫荆的离体快繁技术体系,为‘森林火焰’加拿大紫荆的工厂化育苗奠定技术基础,同时为其分子育种及其他相关研究提供技术支持。
本文对外植体的取材部位、取材时间、不同灭菌方案的灭菌效果、外植体的褐变控制方法、植物生长调节剂对外植体分化、试管苗生根的影响进行了系统研究。
筛选出了‘森林火焰’加拿大紫荆的最佳启动、增殖、生根培养基及培养条件。
主要结论如下:1.‘森林火焰’加拿大紫荆组织培养的最佳取材时间是四月下旬到六月上旬,且最佳的取材部位为中部茎段(第三、四茎节)。
2.外植体消毒的最佳灭菌方法是:‘森林火焰’加拿大紫荆茎段→用软刷刷去表面污垢后洗衣粉液浸泡10min→自来水冲洗30min→超净台上用70%酒精浸30s→0.1%升汞浸5min→无菌水冲洗5次→将茎段两端切去0.5cm→接种,成活率达93.3%。
3.最佳启动培养基是MS+6-BA 1.0mg/L+NAA 0.1mg/L+AC 0.6mg/L+Sugar20g/L+琼脂8g/L。
4.最佳增殖培养基是DKW+TDZ 0.03mg/L+NAA 0.1 mg/L+PVP 1.0mg/L+Sugar 20g/L+琼脂8g/L,增殖系数为4.27。
5.最佳壮苗培养基为MS+ 6-BA 1.0mg/L + NAA 0.1mg/L +AC 1.0g/L +Sugar 20g/L+琼脂8g/L。
6.影响加拿大紫荆生根的主要因素有:基本培养基,生长素IBA、NAA。
在试管苗生根初期采用1/2 MS+ IBA 0.5mg/L+ AC 1.0mg/L+ Sugar 20g/L+琼脂8g/L可以诱导更多的试管苗生根。
在培养后期可以用1/2 MS+ IBA 25mg/L+ AC 2.0mg/L+ Sugar 20g/L+琼脂8g/L,以促进根数和根长的增加。
红叶加拿大紫荆离体快繁技术研究
ＳＨＩ Ｘｉａｏ－ｘｉｎ。ＧＡｏ Ｙｉ，ＤＵ Ｇｕｏ－ｑｉａｎｇ，ＭＡ Ｂａｏ—ｋｕｎ，ＸＩＮＧ Ｂａｏ，ＨＥ
Ｓｈｕ—ｊ ｕａｎ
（Ｃｏｌｌｅｇｅ ｏｆ Ｈｏｒｔｉｃｕｌｔｕｒｅ。Ａｇｒｉｃｕｌｔｕｒａｌ Ｕｎｉｖｅｒｓｉｔｙ ｏｆ Ｈｅｂｅｉ，Ｂａｏｄｉｎｇ，Ｈｅｂｅｉ ０７１００１，Ｃｈｉｎａ）
Ａｂｓｔｒａｃｔ：Ｉｎ ｏｒｄｅｒ ｔｏ
Ａｃｔａ
＝＝：
西北植物学报，２００８，２８（１０）：２１３２—２１３７ Ｂｏｔ．Ｂｏｒｅａｌ．－Ｏｃｃｉｄｅｎｔ．Ｓｉｎ．
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文章编号：１０００一４０２５（２００８）１０—２１３２—０６
和０．２ ｍｇ／Ｌ）、ＩＢＡ（０．１、０．３和０．５ ｒａｇ／Ｌ）、ＩＡＡ （Ｏ．５、１．０和２．０ ｍｇ／Ｌ）配比；另选用０．１ ｍｇ／Ｌ
ＢＡ与ＮＡＡ、ＩＢＡ、ＩＡＡ配比对加拿大紫荆继代
’
ＮＡＡ分别与２．０、４．０、６．０ ｍｇ／Ｌ ＢＡ及０．５、１．０、
２．０ ｍｇ／Ｌ
增殖的影响 在ＢＡ与不同浓度ＮＡＡ、ＩＢＡ、ＩＡＡ配比的培 养基中，加拿大紫荆继代苗增殖效果不同。以附加
２．４
白砂糖浓度对加拿大紫荆继代培养的影响 在不同白砂糖浓度的培养基中接种加拿大紫荆
继代苗，结果如图２所示，白砂糖浓度对芽丛和茎段 的出芽数影响不显著，但对出苗数影响明显，以２０．０ 及５０．０ ｇ／Ｌ白砂糖水平效果较差，可能是糖作为碳 源提供的能量和营养物质不足，或过多提高了培养 基的渗透压，影响了其它营养物质的吸收，从而对嫩 梢的生长起到抑制作用；使用３０．Ｏｇ／Ｌｉ！ｔ砂糖浓度
一种紫荆的种子繁殖方法[发明专利]
![一种紫荆的种子繁殖方法[发明专利]](https://img.taocdn.com/s3/m/b20be7dc0b4c2e3f572763fb.png)
专利名称：一种紫荆的种子繁殖方法专利类型：发明专利
发明人：李维厚
申请号：CN201710327039.8
申请日：20170510
公开号：CN107188663A
公开日：
20170922
专利内容由知识产权出版社提供
摘要：本发明主要涉及种植技术领域，公开了一种紫荆的种子繁殖方法，包括：种子成熟、种子干燥、种子发酵、种子催芽、种子播种、播后管理、炼苗移植；方法简单，便于操作，使紫荆种子避免冬季沙藏，催芽时间为6~7天，播种后7~8天发芽，发芽率达到69.3%，明显提高种植效率，使经济收入提高10.7%；种子采摘时连同豆荚一起采摘，多次喷洒碳酸氢钠溶液，加快种子后熟，避免冬季沙藏，简单快速，便于大批量的种子处理；向干燥种子接入纳豆菌进行发酵，软化种皮，产生的纳豆激酶能够打破种子休眠，促进胚芽生长，加入的温水为豆腐制备时凝固产生的水，能够增加营养成分，变废为宝，节约种植成本。
申请人：蚌埠市众星蔬果科技专业合作社联合社
地址：233000 安徽省蚌埠市禹会区朝阳路3-5#区9#楼第四层
国籍：CN
代理机构：合肥广源知识产权代理事务所(普通合伙)
代理人：付涛
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紫金标的组织培养与快速繁殖
紫金标的组织培养与快速繁殖蒋瑜;张丽芳;李珂;朱维贤;施林【摘要】用不同种类浓度的植物生长调节剂对紫金标茎段进行离体培养试验,试验结果表明,诱导紫金标不定芽萌发最佳培养基为MS+6-BA 0.5 mg/L+NAA0.5mg/L,不定芽萌芽率为60％；继代培养和生根培养合为一步,以不添加任何激素的MS培养基效果较好.【期刊名称】《农业科技通讯》【年(卷),期】2013(000)007【总页数】2页(P84-85)【关键词】紫金标;组织培养;快速繁殖【作者】蒋瑜;张丽芳;李珂;朱维贤;施林【作者单位】云南省昆明市农业科学研究院昆明650213;云南省昆明市农业科学研究院昆明650213;云南省昆明市农业科学研究院昆明650213;云南省昆明市农业科学研究院昆明650213;云南省昆明市农业科学研究院昆明650213【正文语种】中文紫金标又名红花紫金标、九节莲、对节兰、蓝花岩陀、风湿草、小蓝雪、攀倒甑岩五姜、东南菊，是白花丹科蓝雪花属分布于云南、四川、贵州、西藏，生长于海拔1500～2100 m的荒地、路旁、灌木群落也有分布，为多年生草本，高0.5～1 m，基部常木质。
单叶互生，有短柄；叶片菱状卵形或卵状披针形，长1～3 cm，宽0.8～1.5 cm，先端渐尖，基部楔形，边缘有锯齿。
花期7～12月，果渐次成熟。
据《云南中草药》记载，全株入药，有通经活血、祛风除湿、散寒止痛、健脾消食之效，用以治疗跌打损伤、风湿关节炎、月经不调、消化不良等症。
紫金标含有的白花丹素具有抗菌、抗真菌、抗原虫、抗生育作用。
它还含具酚羟基的醌类物质，对兔离体肠管平滑肌有抑制作用。
紫金标具有显著的抗单纯疱疹Ⅰ型病毒(HSV-1)的作用，能抑制HSV-1对宿主细胞的吸附以及抑制HSV-1gD基因复制与转录。
通过组培可提高紫金标的繁殖率，进行有效利用。
目前紫金标的组织培养与快速繁殖研究还未见报道。
1 材料与方法1.1 试验材料选用长势好、无病虫害、健康的紫金标幼嫩茎段。
巨紫荆在徐州地区的引种栽培与繁殖试验
２０ ０ ４年春笔者从南 京林业大 学引进 １年生 巨紫荆种 苗
５０株 ， 植 在 江 苏 徐 州 地 区 ， 过 ５年 的试 验 研 究 ， 果 表 ０ 定 经 结 明 ： 紫荆 能很 好 地 适 应 徐州 地 区 的环 境条 件 ， 巨 是很 好 的 观 花 乔 木树 种 。
中 图 分类 号 ：Ｓ８ ．９ ．８ ６５ ９ ０ ３ 文 献标 志码 ： Ａ 文章 编 号 ：０ ２—１０ （０ ０ ０ ０ ５ １０ ３２ ２ １ ）３— ２０—０ ２
巨 紫荆 （ ｅ ｉｇｇ ｎｅ ｈｎ ｔ ｅｇ￡） Ｃｒｓ ｉａｔ Ｃ ｅｇｅ Ｋ ｎ ｃ ａ 开放 ， ７～１ ４朵簇生 或着生 于一极 短的总梗 上。 荚果长 ３～１ ｍ， ０ ｃ 先期 绿色 ， 变紫 红色 ， 熟后 变深 紫红 渐 成
色。果 １ ０月成 熟 。
紫荆 （ ｅ ｉ ｃｉｅｓ ｕ ｇ． 为 灌 木 或 小 乔 木 ， ２— Ｃｒ ｓ ｈｎｎｉ Ｂ ｎｅ ） ｃ ｓ 高 ４ｍ 。 徐 州 地 区 花 ４月 中 旬先 叶开 花 ， ５— 在 常 ８朵簇 生于 老
（ ． 州师范大学生命科学学 院， １徐 江苏徐州 ２ １ １ ； ． ２ １６ ２ 江苏省徐州市园林设计院， 江苏徐州 ２ １０ ） ２０ ６
摘要 ： ０４年 ３月， ２０ 从南京林业大学引进 巨紫荆 １ 年生实生苗 ５０株定植在江苏徐州地区， ０ 经过 ５年的引种栽培试 验， 对其生物学、 生态学特性、 生长 节律及繁殖技术等进行 了研究 。结果表明 ， 巨紫荆适应性强， 先叶开花 ， 花期为 ４月上
５ ０株 进 行 定 植 ， 行 距 为 １０ ｍ ×１２ｍ。 引 种 试 验 地 设 在 ０ 株 ． ．
巨紫荆优良新品系实生与嫁接快速繁殖技术
cant differences （ P ＜ 0． 01） ．
2． 2 不同处理方法对巨紫荆苗高的影响 由表 2 可知，不 （ 下转第 18674 页）
18674
安徽农业科学
2011 年
［12］陈封政，李书华，向清祥． 濒危植物桫椤不同部位化学组分的比较研 究［J］． 安徽农业科学，2006，34（ 15） ： 3710 － 3711．
处理后的种子均于 4 月 1 日播种，播种采用条播法，深 度 8 cm，行距 30 cm，种子间隔 10 cm［6］。每处理随机小区排 列，小区面积 5 m2 ，重复 4 次。
后期观测统计种子出苗率、出苗时间，并于秋末落叶后 对巨紫荆植株苗高和地径进行观测统计。
作者简介 刘念中（ 1966 － ） ，男，河南郑州人，工程师，从事园林植物方 面的研究。
收稿日期 2011-09-20
1． 2． 2 嫁接繁殖法。以当年生巨紫荆实生苗为砧木，巨紫 荆优良新品系 S-1 母树枝条为接穗，嫁接方式采用春季枝接 （ 劈接和插皮接） 和夏季生长期芽接（ “T”字形芽接、大方块 芽接和带木质芽接） ，随采随接，每种方式均嫁接 400 株，后 期统计成苗株数和成苗率。 1． 3 数据处理 利用 SAS 8． 0 对数据进行方差分析［7］。 2 结果与分析 2． 1 不同处理方法对巨紫荆种子出苗的影响 由表 1 可 知，不同处理方法对巨紫荆种子出苗率、出苗时间和出苗持 续天数影响较大。4 种处理种子的出苗率均高于对照，呈极 显著差异。其中处理②的出苗率最低，为 35． 4% ； 处理①、 ③、④的出苗率均在 76% 以上，而处理①的出苗率最高，达 83． 5% ； ①、③、④3 种处理使巨紫荆幼苗出苗时间较处理②、 ⑤提早 5 ～ 7 d。总体来看，处理①的出苗效果最好。成熟饱 满的种子发芽需要外界条件的刺激，如足量水分、合适温度、 充足氧气等。4 种处理能使种子吸收充足的水分，65 ℃ 的温 水可能提供更适宜的温度条件，使种子出苗最快，沸水温度 过高，使种子出苗率降低，而沙藏处理则提供更适宜的发芽 条件，打破种子休眠，使种子发芽加快，从而达到发芽快、出 苗壮的目的。
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巨紫荆优良新品系组织培养快速繁殖技术张林，刘念中（河南四季春园林艺术工程有限公司，河南郑州450016）摘要［目的］研究高效繁殖巨紫荆的途径。
［方法］采用组织培养对巨紫荆进行快速繁殖。
［结果］茎尖繁殖以MS +ZT 2．0mg /L 培养的组培苗中褐化率和玻璃苗发生率为0，增殖倍数为3．56倍，效果最好；健壮的继代苗可显著提高苗木的生根率和移栽成活率；0．5mg /L TA 生根效果最好，0．5mg /L IAA +0．5mg /L NAA +0．5mg /L TA 能有效诱导根的形成，移栽成活率达96．6%；S-1优树组培苗的生理状态优于实生苗。
［结论］巨紫荆组织培养是一条快速有效的繁殖途径。
关键词巨紫荆；新品系；组织培养；快速繁殖技术中图分类号S727．5文献标识码A 文章编号0517－6611（2012）02－00860－03Tissue Cuture Rapid Propagation Technology of New Superior Cercis gigantea LinesZHANG Lin et al （Henan Four Spring sSason Garden Art Engineering Co．，LTD ，Zhengzhou ，Henan 450016）Abstract ［Objective ］The way of Cercis gigantea efficient propagation was studied．［Method ］Tissue cuture was used to rapid propagate superior Cercis gigantea lines in this experiment．［Result ］The optimum medium for meristem propagation was MS +ZT 2．0mg /L ，the incidence rate of glass and browning seedlings were also zero and the Multiplication multiplies were 3．56times．Robust seedlings in the following generation could increase significantly the rate of rooting and the transplanting survival rate．The optimum rooting power was 0．5mg /L TA ，and the medium 0．5mg /L IAA +0．5mg /L NAA +0．5mg /L TA could induce effectively the formation of root．The transplanting survival rate reached 96．6%．Thephysiological state of seedlings from tissue culture was superior to seedlings from seeds of S-1superior lines．［Conclusion ］It can clearly be seen that tissue cuture of Cercis gigantea was a fast and effective propagation method．Key words Cercis gigantea ；New lines ；Tissue cuture ；Rapid propagate technology作者简介张林（1965－），男，河南淮阳人，工程师，从事园林植物研究，E-mail ：hnsjcylgs@126．com 。
收稿日期2011-10-25巨紫荆（Cercis gigantea ），为落叶大乔木或乔木，自然生长的大树胸径达60cm 、高达15m 以上，因树形巨大，又与常见的灌木状紫荆相像而得名“巨紫荆”［1］。
其冠幅大，树形美；单叶互生，叶心脏形或近圆形，全缘，叶边缘透明，表面浓绿光亮；花朵粉红色，簇生于花枝上，先叶开放；巨紫荆树体高大，花形优美，是十分优良的园林观赏树种，比目前引进的南欧紫荆更具推广应用前景［2－4］。
然而巨紫荆对大多数城市而言其应用尚属空白，一方面用于园林绿化的苗木数量不足，另一方面缺乏园林绿化应用的优良品系。
因此开展这方面的试验研究显得迫切又重要。
目前，河南四季春园林艺术有限公司已成功选育出S-1、S-4、S-5、S-9等4个优良巨紫荆新品系，为了加快新品系推广和成果转化，笔者开展了组培快繁技术研究，旨在为繁育巨紫荆探索快捷有效的途径。
1材料与方法1．1供试材料以S-1、S-4、S-5、S-9巨紫荆优良植株茎尖为外植体。
所用药品和试剂均为分析纯。
1．2培养基及培养条件培养基及激素的选择直接影响巨紫荆组培苗的生长状况。
MS 培养基能够提供植物所需要的各种元素，试验证明其较适合巨紫荆组培苗的生长。
以MS 为基本培养基，附加0．7%琼脂和3%蔗糖，依据试验目的添加不同浓度（0．5、1．0、2．0、3．0mg /L ）的6-BA 、KT 、ZT 、NAA 、IAA 、TA ；培养基pH 5．8 5．9，121ħ高压灭菌20min 。
培养条件：22 25ħ，光周期14h /d ，光强2000 3000lx 。
1．3试验方法1．3．1外植体的消毒及培养。
取巨紫荆当年生的幼嫩枝条，在自来水下冲洗，用镊子剥离茎尖约1cm ，75%酒精消毒15s ，再用1%升汞消毒5 8min ，无菌水冲洗3 5次，用无菌滤纸吸干表面水，切取茎尖约0．2 0．3mm 。
将茎尖接种到快繁培养基（表1）上，培养25d 后，观察统计巨紫荆组培苗的生长状况。
增殖倍数=分化出的苗数/接种外植体数；玻璃化苗发生率（%）=（玻璃化苗数/接种外植体数）ˑ100；褐化率（%）=（褐化苗数/接种外植体数）ˑ1001．3．2组培苗的生根及移栽。
组培苗长到3 5cm 时，将其转接到生根培养基（表2）上进行生根培养，并计算根分化率。
待组培苗新生的根长出3 5条，长3 5cm 时，即可驯化移入培养土中进行栽植［5］。
根分化率（%）=（分化出根的条数/接种的不定芽数）ˑ1002结果与分析2．1培养基对巨紫荆快繁效果的影响2．1．1激素对组培苗生长的影响。
激素能够促进植物生长、器官分化等，其在组织培养中起着至关重要的作用。
不同的细胞分裂素对巨紫荆茎尖分化影响有很大差异［6］。
随着细胞分裂素浓度的加大，增殖倍数和玻璃苗的发生率也随之增加（表1）；在含有6-BA 和KT 的培养基中，褐化苗均有一定程度的发生，且褐化比例较大，而含ZT 的培养基中均无褐化苗发生，且增殖培养效果明显，最高达4．25倍，但出现了1．03%的玻璃苗。
ZT 浓度为2．0mg /L 时，即能保障巨紫荆有效的增殖倍数，又能保障继代苗的质量。
随着继代次数的增加，组培育增殖倍数也随之增大，但责任编辑高菲责任校对李岩安徽农业科学，Journal of Anhui Agri．Sci．2012，40（2）：860－862苗较细弱［7］。
可能是继代次数越多，操作越频繁对组织的损伤也越大，或者是激素浓度达不上继代苗生长的需要。
所以在巨紫荆的组织培养中，要摸索出适合的激素及浓度，并且根据需要调换培养基配方或减少继代次数，最大可能地减少玻璃化苗和褐化苗的发生率，提高其增殖倍数。
表1不同的细胞分裂素对巨紫荆组培苗的影响序号细胞分裂素浓度mg /L 增殖倍数玻璃苗发生率∥%褐化率%16-BA 0．52．300．003．0026-BA 1．03．260．007．2036-BA 2．05．413．806．3246-BA 3．05．928．925．255KT 0．52．030．008．356KT 1．03．610．827．467KT 2．04．201．562．638KT 3．05．724．3610．259ZT 0．52．800．000．0010ZT 1．02．970．000．0011ZT 2．03．560．000．0012ZT3．04．251．030．002．1．2激素对巨紫荆生根的影响。
激素影响巨紫荆生根的快慢和数量。
单独使用IAA 、NAA 和TA 均能促进巨紫荆健壮苗生根。
IAA 和TA 促进生根的有效浓度为0 2．0mg /L ，而TA 的促进浓度范围较大。
影响巨紫荆组培苗生根率的大小顺序为TA ＞NAA ＞IAA （图1）。
图1IAA 、NAA 和TA 对健壮巨紫荆无根苗生根率的影响IAA 和NAA 配合使用时，对无根苗生根有协同效应。
低浓度IAA 和适量NAA 配合使用对巨紫荆生根有促进作用，且比单独使用时生根期提前，生根率提高；而随着IAA 浓度的加大，IAA 与NAA 配合使用对生根有抑制作用（图2）。
图2IAA 和NAA 组合对巨紫荆组培苗生根率的影响TA 、IAA 和NAA 配合使用，能有效提高巨紫荆组培苗生根率。
IAA （0．5mg /L ）+NAA （0．5mg /L ）与TA 0 2．0mg /L 配合使用时对巨紫荆组培苗生根具有协同效应。
其中以TA 0．5mg /L 效果最好，生根率达96．6%（图3）。
随着TA 浓度的加大，巨紫荆组培苗生根率降低，可能是高浓度TA 抑制IAA 和NAA 的作用。
图3不同浓度TA 与IAA +NAA 组合对巨紫荆组培苗生根率的影响（IAA 与NAA 浓度均为0．5mg /L ）IAA 、NAA 和TA 及其组合对巨紫荆组培苗发根部位、根系生长状况和移栽成活率均有影响（表2）。
TA 诱导巨紫荆生根，诱导根从皮层或愈伤组织上发出。
一般来说，TA 诱导巨紫荆发出的根与茎输导组织连接较好，移栽易成活［8］。
该试验结果也证实了这一点。
表2IAA 、NAA 和TA 及其组合对健壮巨紫荆无根苗生根的影响激素及用量mg /L 根发生部位愈伤组织平均生根数∥条根系状况移栽成活率∥%IAA 0．5愈伤组织较大而致密1．3较粗、淡黄色根尖圆纯62．5NAA 0．5愈伤组织大而密1．2较粗、淡黄色转灰黑色，根尖圆纯60．4TA 0．5基部表皮无4．6较细，白色根尖尖锐89．3IAA 0．5+NAA 0．5愈伤组织最大且致密1．3最粗，黄白色根尖圆钝57．2IAA 0．5+NAA 0．5+TA 0．5基部表皮较小而膨松4．6略粗，白色根尖尖锐96．62．2无根苗的生理状态对生根的影响相同培养条件下，不同生理状况的巨紫荆无根苗生根效果也不同。
将无根苗接种到生根培养基（1/3MS +0．5mg /L IAA +0．5mg /L NAA +0．5mg /L TA ）中，培养20d 后，壮苗的生根率为96．5%，弱苗为63．2%，黄化苗为19．5%，老化苗为9．3%，玻璃苗和幼嫩苗均不生根。