利用小随体多重PCR和带型分析鉴别酿酒酵母菌株

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冰葡萄发酵过程中的酵母菌株的分离和鉴定

冰葡萄发酵过程中的酵母菌株的分离和鉴定

冰葡萄发酵过程中的酵母菌株的分离和鉴定
冰葡萄是一种美味的水果,也是一种常见的酿酒原料。

在酿造冰葡萄酒的过程中,酵母菌株的分离和鉴定是非常重要的。

本文将介绍冰葡萄发酵过程中的酵母菌株的分离和鉴定方法。

首先,我们需要采集冰葡萄样本。

采集样本时,需要注意避免样本受到外界污染。

一般来说,我们可以在冰葡萄表面喷洒75%的乙醇,然后用无菌钳子将表面消毒干净。

接下来,我们需要将样本处理成单个菌落。

首先将样本用无菌盐水混合均匀,然后取适量的混合液用无菌吸管吸取,滴到含有琼脂的培养基上。

将培养基倾斜放置,静置24-48小时,直到出现单个菌落。

然后,我们需要进行纯化处理。

将单个菌落用无菌吸管吸取,分别接种到含有琼脂的无菌培养基上。

将培养基倾斜放置,静置24-48小时,直到出现单个菌落。

重复以上步骤,直到得到纯化的菌株。

接下来,我们需要进行酵母菌株的鉴定。

常见的鉴定方法有生化鉴定和分子生物学鉴定。

生化鉴定是通过对酵母菌株进行生化反应测试,从而确定其特征和分类。

分子生物学鉴定则是通过对酵母菌株进行DNA序列分析,从而确定其物种和分类。

在生化鉴定中,我们可以通过对酵母菌株进行形态、生长速度、色素、氧化还原反应、碳水化合物代谢等方面的测试,来确定其特征和分类。

在分子生物学鉴定中,我们可以通过PCR扩
增和DNA测序技术来确定其物种和分类。

总之,在冰葡萄发酵过程中,酵母菌株的分离和鉴定是非常重要的。

通过以上方法,可以得到纯化的酵母菌株,并确定其特征和分类,为冰葡萄酒的制作提供了重要的支持和保障。

多重PCR技术 ppt课件

多重PCR技术 ppt课件
域 ❖ 转基因检测则选择转入的动植物基因座 ❖ 性别鉴定一般挑选X或Y性染色体上特有的基因座
课件
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❖ 第二、引物的设计(关键步骤) ❖ 1、引物位置的确定:首先需要知道所选择的基因
引物位点的详细DNA序列信息。 ❖ 引物的DNA序列应该有很强的特异性,否则引物会
结合在其他位点上发生非特异性扩增。 ❖ 2、引物序列的测定:引物的设计是多重PCR成功
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一、多重PCR技术原理
❖ PCR是什么:聚合酶链式反应。是一种体外快速扩增特定基 因或DNA片段的分子生物学技术。
❖ 其基本原理是:以一对寡核苷酸为引物,在模板DNA、
dNTP(脱氧核苷三磷酸) 、适当缓冲液Mg2+的混合体系中,
在DNA聚合酶的催化下,根据碱基互补配对原则,对引物所 界定的DNA片段进行扩增。这种扩增通过模板DNA与引物之 间的变性、退火和延伸三个步骤为一循环,每次循环产生的 DNA片段作为下次 循环的模板,所以PCR扩增产物呈指数 增加。多重PCR是在传统PCR原理的基础上进行改进,即在 同一体系中加入多对特异性引物,对多个DNA模板或同一模 板的不同区域扩增出多个目的DNA片段。
❖ 2、在使用相同的PCR程序和反应条件的单个 PCR中对每对引物的量进行优化,以达到最 大的扩增效率;
❖ 3、平衡多重PCR中每对引物的量,使之对每 个靶点都能获得足够的扩增量。
课件
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2、引物设计(关键优化)
❖ 多重PCR中的每对引物必须满足单引物PCR体系的 引物设计原则。这些原则包括:引物与模板的序列 紧密互补,长度一般为15—30bp,GC含量一般为 40—60%;引物与引物之间避免形成稳定的二聚体 或发夹结构;引物不能在模板的非目的位点引发 DNA聚合反应(即错配)。由于多重PCR体系中同时 存在多对引物,在引物设计时还应注意:各引物对 必须保持高度的特异性,避免非特异扩增;尽可能 避免所有引物间的相互作用,各引物对应保持相对 一致的扩增效率,且不同引物对扩增出来的产物能 通过电泳或其他方法区分开。

微生物工程课后复习思考题

微生物工程课后复习思考题

微生物工程课后复习思考题第一章绪论1、什么是发酵工程?定义1:发酵工程是指采用现代工程技术手段,利用微生物的某些特定功能,为人类生产有用的产品,或直接把微生物细胞作为产品的工业生产过程。

定义2 :发酵工程是指在最适发酵条件下,在发酵罐中大量培养细胞和生产代谢产物的技术。

2、讨论为什么能利用微生物进行发酵生产?a微生物繁殖速度快b代谢能力强c易培养d容易改造e代谢产物多样f 能利用廉价的有机物、无机物3、发酵工程的特点1 原料广泛2 生产安全、设备简单3 反应专一性强、副产物少4 代谢多样、应用广泛5 易受污染、无菌要求严格6 菌种的优劣影响较大第二章工业用微生物菌种1、工业用菌种的特点及要求1.具有稳定的遗传学特性2.能利用低价的原材料3. 生长条件易于满足4.对于细菌,具有抗Phage的能力5.发酵周期短,降低生产成本6.代谢产物无毒无害2、发酵工业常用微生物从遗传学特征上可以把菌种分为:野生型和改良型从微生物分类学的角度分为:1. 细菌类(Bacteria)2. 酵母菌(Yeast)3. 霉菌(Mould)4. 放线菌(Actinomyces)3、菌种选育的目的1、防止菌种退化2、提高生产能力3、简化生产工艺4、开发新产品4、菌种选育方法自然选育诱变育种杂交育种(原生质体融合)基因工程5、自然选育的目的、方法和步骤自然选育的目的:纯化菌种、复壮菌种、稳定生产、提高产量自然选育的步骤1. 通过表观形态来淘汰不良菌株(初筛)2. 通过目的代谢物产量考察(复筛)3. 菌种纯度试验(纯度验证)4. 传代稳定性试验(传代试验)6、什么是菌种的退化生产菌株遗传标记的丢失,导致生产能力下降,即负突变,称为菌种的退化7、防治菌种退化的措施1、从菌种选育方面考虑(单核菌、高剂量、加强分纯)2、创造良好培养条件(培养基、温度等)3、控制传代次数,合理传代4、采用不易衰退细胞传代5、采用有效的保藏方法8、菌种衰退时应采取的提纯复壮措施:(1)分离纯化(2)通过寄主体进行复壮(3)淘汰衰退的个体9、种子扩大培养指将保存的处休眠状态的生产菌种接入试管斜面活化后,再经过扁瓶或摇瓶及种子罐逐级扩大培养,最终获得一定数量和质量纯种的过程。

酿酒 分离

酿酒 分离

酿酒过程中的酵母分离是一个关键步骤,它确保了酿造过程中使用的是纯净且适合特定酒种的酵母菌株。

以下是一些酿酒酵母分离的基本步骤和注意事项:
1. 样品采集:酿酒酵母通常来源于发酵液、酒糟或酵母泥。

采集样品时,应确保工具的无菌操作,避免污染。

2. 分离纯化:将采集的样品进行适当的稀释,然后取一定量涂布于选择性培养基上,如YEPD培养基,这是一种常用的富集培养基。

在适当的温度(通常是28℃)下培养几天,以便酵母生长形成单菌落。

3. 单菌落挑选:在培养基上,挑选出不同的单菌落,这可以通过观察菌落的颜色、形状和质地来初步判断酵母的种类。

4. 形态鉴定:将挑选出的单菌落接种到WL鉴别培养基上,进一步观察和鉴定。

酿酒酵母在WL培养基上通常呈现为奶油色带有绿色、不透明,形状为球形、光滑、突起。

5. 生理生化测试:进行一系列的生理生化测试,以确定酵母的种属。

这些测试包括发酵能力、产生酒精的类型和数量、对不同碳源和氮源的利用等。

6. 分子生物学鉴定:为了更准确地鉴定酵母菌株,可以采用分子生物学方法,如PCR和DNA测序,分析其核糖体RNA(rRNA)或内部转录间隔区(ITS)等基因序列。

7. 保存与应用:经过鉴定和性能测试的酵母菌株可以保存于-4℃的冰箱中,用于未来的酿造。

在实际酿造过程中,根据酵母的特性选择合适的接种量和发酵条件。

在整个分离和纯化过程中,无菌操作是关键,避免任何外来的污染。

此外,记录所有的操作步骤和结果也是非常重要的,以便于后续的跟踪和分析。

在酵母的应用上,还需考虑其对酿造条件的适应性,以及是否能产生期望的风味特征。

酵母菌(啤酒酵母菌)识别鉴定

酵母菌(啤酒酵母菌)识别鉴定

微生物形态结构观察【背景资讯】酵母是发酵工业的重要微生物,很早就被应用于酿造工业、食品工业以及医药工业。

利用酵母可以用来酿酒、制作面包、生产单细胞蛋白。

从酵母菌细胞中可以提取丰富的B族维生素、核糖核酸、辅酶A、细胞色素c、麦角甾醇和凝血质等生化药物。

酵母菌的特征:①个体一般以单细胞状态存在;②多数以出芽方式繁殖,也有的可进行裂殖或产子囊孢子;③能发酵糖类而产能;④细胞壁常含甘露聚糖;⑤喜在含糖较高、酸性的水生环境中生长。

一、酵母菌的形态和大小酵母菌为单细胞真菌,形态多种多样,通常菌体呈圆形、卵圆形、椭圆形、长形、矩形、哑铃型及三角形等。

、酵母菌的大小差别很大,直径一般为2~5μm,长度5~30μm。

酵母的大小、形态与菌龄、环境有关。

二、酵母菌的细胞结构1.细胞壁酵母菌的细胞壁有三层结构组成:外层是是甘露聚糖,内层主要是葡聚糖,中间一层主要是蛋白质。

2.细胞质膜酵母菌细胞膜也是由双磷脂层构成,双层磷脂中间镶嵌着甾醇和蛋白质。

细胞膜是一个半透膜,它的主要功能:①选择性地运入营养物质,排出代谢产物,调节渗透压。

②是细胞壁等大分子成分的生物合成和装配基地。

③部分酶的合成和作用场所。

3.细胞核酵母菌的细胞核呈球型,外面包裹着核膜。

核内有染色体,不同种的酵母菌的染色体数目不同。

4.细胞器及细胞内容物线粒体、内质网、核糖体、脂肪粒、聚磷酸盐、肝糖、海藻糖等。

5.液泡(Vacuoles)大多数酵母细胞中都有一个液泡,液泡的功能是储藏营养物和水解酶类,调节细胞的渗透压。

三、酵母菌的繁殖方式和生活史酵母菌的繁殖方式有无性繁殖和有性繁殖两大类。

a1.无性繁殖(Asexual reproduction)(1)芽殖芽殖是酵母菌最常见的繁殖方式,存在于各属酵母,生产中常用的酵母以芽殖为主要繁殖方式。

(2)裂殖通过细胞横分裂进行繁殖,与细菌裂殖相似。

(3)无性孢子掷孢子等。

2.有性繁殖(Sexual reproduction)酵母菌以子囊(Ascus)和子囊孢子(Ascospore)的形式进行有性繁殖。

酵母的分子生物学鉴定

酵母的分子生物学鉴定

生物技术通报BIOTECHNOLOGYBULLETIN・技术与方法・2008年第5期收稿日期:2008-03-14基金项目:国家高技术研究发展计划(863)项目基金(2003AA214061,2006AA020203)作者简介:唐玲(1983-),女,硕士研究生,研究方向:分子生物学;E-mail:tangling101499@163.com通讯作者:闫云君(1969-),男,教授,博士生导师;E-mail:yanyunjun@tom.com;Tel:(027)87792214酵母种类繁多,不仅作为一种重要的工业微生物被广泛应用于各个领域,近年来,人们还利用酵母发酵来生产抗生素,维生素和酶等高附加值的产品,但酵母也会引发食物、制造物的腐坏变质,从而给人们带来巨大的经济损失,有的酵母还是人体和动物的致病菌(如,Candidaalbicans)。

近两个世纪以来,酵母菌分类主要依据形态学鉴定和生理生化特性。

目前,已发展起来各种用于酵母快速检测的商业化的试剂盒,可实现部分酵母(多是针对导致疾病的部分致病酵母)的鉴定,但是该类试剂盒对酵母的检测不仅费时,而且鉴定结果准确性不高。

由于受到环境因素的影响,某些酵母菌属、种在形态学及生理生化特性方面差异极不显著,在这样的背景下,以化学为基础的分类法建立起来,通过细胞壁的成份、生物合成以及同功酶电泳图谱分析来对酵母进行分类鉴定。

现在,随着分子生物学的发展,DNA-DNA杂交,染色体组型分析(electrophoretickaryotyping),染色体DNA的限制性片段长度的多态性分析(RestrictionFragmentLengthPolymorphismaofchromosomalDNA),线粒体DNA(mitochondrialDNA)及核糖体DNA序列分析(ribosomalDNAsequencing),实时PCR(real-timePCR),基因芯片(genechips)等分子生物学的方法广泛地应用于酵母的鉴定中。

浓香型白酒大曲中酵母菌的分离和鉴定


大曲是酿制传统大曲酒的糖化剂 、 发酵剂和增香剂 , 同时也是传统白酒酿造的中间原料和生产动力 , 含有多 种微生物及产生的多种酶类 , 在酿造过程中起着重要的 糖化 、 发酵和生香的作用 , 直接或间接影响白酒的产量 、 质量和风格
[1-3]
。 浓香型习酒大曲的制作工艺为自然发
试剂和设备 0.067 %孟加拉红 ,青霉素钠 (添加量为 1600 U/mL); UNIQ-10 柱式细菌基因组 DNA 抽提试剂盒 , 购自上海 生 工 生 物 工 程 技 术 服 务 有 限 公 司 ;2 ×Taq PCR MasterMix, 购自北京天根生化科技有限公司 ;PCR 扩增引物 , 1.2
23分子鉴定结果dna提取和pcr扩增以ef4和ef3为引物通过酵母菌特异性pcr反应扩增得到18srdna序列扩增产生的dna片段为单一条带大小长度约为1500bp扩增产物无明显非特异扩增现象结果见图118srdna序列相似性测定5株大曲酵母菌18srdna约1500bp的序列测得序列向日本ddbj数据库提交将测序结果在genbank核酸序列数据库中进行同源性序列搜索检索结果见表4
测序由上海生工生物工程技术服务有限公司完成 。
1.4.3.3
菌株同源性比对
用 18S rDNA 序列的测序结果在 GenBank 数据库中 进相似性 。
2 2.1
结果与讨论 大曲酵母菌纯菌株分离结果
从习酒大曲 (发酵期 )中分离到优势酵母菌 24 株 , 根
张文学 (1963- ), 教授 , 博导 , 研究方向 : 发酵工程 ,E-mail:foodbiotech@ 。 通讯作者:
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酿酒科技
· 2010 年第 5 期 ( 总第 191 期 ) LIQUOR-MAKING SCIENCE & TECHNOLOGY 2010 No.5(Tol.191)

啤酒生产酵母菌株筛选技术

啤酒生产酵母菌株筛选技术摘要: 鲜啤酒以其独特的风味、营养、时尚而流行于都市生活。

啤酒酵母菌株的特性直接决定着鲜啤酒的质量,在生产中采用不同的菌株和生产工艺,可酿造出不同类型的啤酒。

根据实际经验,提出了啤酒生产酵母菌株分离的技术要点,并依此进行了啤酒生产酵母菌株的筛选。

.关键词:啤酒酵母;筛选啤酒发酵是一个复杂的生化过程:在啤酒酵母所含酶系的作用下,原麦汁会发生变化生成酒精、二氧化碳和其它的醇、醛、酯以及硫化物,这些发酵产物使啤酒具有独特的风味,决定着鲜啤酒的泡沫、色泽和稳定性等各项指标。

啤酒生产过程中,可能存在野生酵母菌的污染及生产菌种的自然变异和衰老,从而使菌种发生退化现象[1,2]。

菌种退化后,经常表现为[1]:(1)细胞形态变化、增殖不良、初始发酵缓慢;(2)发酵过程降糖慢、发酵度低;(3)双乙酰峰值升高;(4)酵母凝聚性变差、滤酒困难。

因此,如果继续使用已退化的菌种,就会影响鲜啤酒的质量。

为了保持产品的质量,稳定鲜啤独特的风味,需要定期进行生产菌种的分离和纯化工作。

虽然有人使用活性干酵母[3],可免除啤酒生产中的分离工作。

但是要制造有自己特色的啤酒,应在生产时从自己啤酒原液中分离、纯化出的酵母进行酿制更佳。

故建立一套自己的酵母菌株筛选体系,每年进行1-2 次的生产用菌的分离、纯化。

当然,为了不影响旺季的销售,此工作最好在销售淡季时进行。

1 啤酒酵母菌株的分离与纯化1.1 啤酒酵母菌株的分离啤酒酵母菌株的选择,即分离筛选底物的选择,一般存在选择保藏菌株和生产菌株两种方法。

保藏菌株虽然能保护原有菌种的优良性能,减少污染杂菌的机会,但从中难以选育到有益的突变型菌株。

因此,积极的筛选方法应从生产中不断选育出有利于产品质量和风味的菌株。

根据经验,选用第三代酵母发酵中,发酵旺盛的高泡期发酵液,作为啤酒酵母菌株筛选样品,最为合适。

1.2 发酵液的处理在无菌条件下吸取发酵液10mL,放入无菌的100mL 麦汁中,以10 倍稀释法稀释,取后三种稀释液各1mL 分别置于无菌平皿中,每个稀释度作两个皿。

酿酒酵母标准菌株编号

酿酒酵母标准菌株编号酿酒酵母是一种非常重要的微生物,是酿造酒类饮品的主要微生物之一。

酿酒酵母可分为多种不同的菌株,不同菌株的特点各不相同,因此在酒类饮品制造中,选择合适的酿酒酵母是非常关键的一步。

然而,在挑选酿酒酵母的过程中,一项重要而具有标准化的指标便是酿酒酵母标准菌株编号。

接下来我们将分步骤地阐述酿酒酵母标准菌株编号的相关信息。

第一步:了解酿酒酵母标准菌株编号的涵义与作用酿酒酵母标准菌株编号是指对不同种类的酿酒酵母进行分类编号,以便进行标准化管理和挑选。

这些菌株编号可以通过多种渠道获取,例如专业出版物或相关行业组织。

这些编号旨在使酒类饮品工业的各个组成部分(包括生产商、供应商、第三方检测机构等)能够共同使用同样的酵母菌株,确保生产的稳定性和品质的一致性,同时也有助于进行检测和管理。

第二步:了解不同酿酒酵母标准菌株编号的含义酿酒酵母标准菌株编号通常由字母和数字组成,通常分为两部分。

字母代表酵母属,一般为“S”代表Saccharomyces(酿酒酵母的一个重要属种),数字标识具体某个菌株的编号。

例如,S. cerevisiaeBY4741就是一种常见的酿酒酵母标准菌株编号,其中“BY”是菌株的缩写,“4741”则代表了这个具体的菌株编号。

第三步:了解不同酿酒酵母标准菌株编号的用途不同的酿酒酵母标准菌株编号有着各自的用途。

例如,S. cerevisiae BY4741是广泛用于研究酿酒酵母生长和代谢方面的标准菌株,而S. cerevisiae AWRI1631则是用于生产香槟等高档酒类的酿酒酵母标准菌株。

挑选合适的酿酒酵母标准菌株,可以有助于提高酿酒酵母的生产效率和酿酒的品质和口感。

综上所述,酿酒酵母标准菌株编号是酿酒酵母管理和选择的重要指标,它可以及时明确具体的菌株信息,方便行业内各个方面的标准化管理及信息交流。

了解不同酿酒酵母标准菌株编号的含义、作用和用途,可以使我们更加快速准确地选择合适的酿酒酵母,提高酒类饮品生产的效率与品质。

酿酒酵母启动子的克隆及特性表征

酿酒酵母启动子的克隆及特性表征酿酒酵母启动子的克隆及特性表征引言酿酒酵母(Saccharomyces cerevisiae)是一种广泛应用于酿酒、面包、燕麦、鸡精等食品生产的微生物。

实现酵母菌合成特定蛋白质的高效表达,对于提高工业生产效率和经济效益具有重要意义。

而启动子是调控基因表达的核心元件之一。

因此,对酿酒酵母启动子的克隆及特性表征具有重要研究意义,有助于深入理解基因转录调控机制,为酿酒酵母基因工程的开发提供基础。

一、酿酒酵母启动子的克隆方法1.1 基于PCR的克隆方法PCR(聚合酶链式反应)是一种常用的基因克隆方法,通过引物扩增目标启动子区域,获得目标DNA片段。

通过合成适当的引物,可以选择性扩增目标基因或启动子区域。

1.2 克隆方法的优缺点基于PCR的克隆方法简单、高效,适用于小片段的启动子克隆。

然而,此方法受限于引物的选择及扩增条件的优化,可能存在特异性差、扩增效率低等问题。

二、酿酒酵母启动子特性的表征2.1 克隆启动子库的构建通过克隆酿酒酵母基因组DNA,构建启动子库。

启动子库是可以提供多种不同启动子片段的库,可用于大规模筛选启动子活性及功能。

2.2 启动子的顺式作用元件分析启动子的顺式作用元件是指影响启动子活性及调控的DNA序列。

通过序列分析及比对,可以鉴定及预测启动子中的重要顺式作用元件。

2.3 测定启动子的活性通过荧光素酶报告基因系统等方法,测定不同启动子的转录活性。

这些方法可量化及比较启动子活性的强弱,进一步研究启动子在不同条件下的调控机制。

三、酿酒酵母启动子的应用3.1 基因工程中的启动子优化启动子的选择及优化是基因工程中关键的一步。

通过酿酒酵母启动子的研究,可以提高基因表达的效率,增强目标蛋白质的产量。

3.2 模拟环境压力下的启动子调控酿酒酵母在发酵过程中会遭受多种环境压力,如温度、酸碱度等变化。

通过研究启动子在不同压力条件下的调控机制,可以深入了解酿酒酵母的应激适应及稳定性机制。

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利用小随体多重PCR和带型分析鉴别酿酒酵母菌株 第壹学习小组 段志峰朱江邢英超

刁文涛冯延宾张熠 唐亦辰黄云何骁男 利用微卫星多重PCR和带型分析鉴别酿酒酵母菌株 摘要 我们提出了壹种利用多重PCR对微卫星位点多态性分析快速鉴别酿酒酵母菌种的方法。 无需使用苯酚,简单提取DNA,利用多重PCR扩增SC8132X,YOR267C和SCPTSY7位点,用琼脂糖和聚丙烯酰胺凝胶电泳进行带型分析,这种方法可使我们区分30种商用葡萄酒酿酒菌种。该方法被成功应用于壹项在15和20摄氏度这俩个发酵温度下检验俩个菌株间的显性关系的生态学研究中。 这种方法在酿酒和酵母生产工业中常规的低成本检测酵母菌株的过程中应该有应用价值。 关键词:微卫星,PCR,酵母菌株,葡萄酒,发酵 1.前言 使用选育出的用于酒精发酵的酵母菌株酿造葡萄酒是当下普遍使用的壹种方法。酵母对葡萄酒的质量尤其是口味有很大的影响( 现代的酿酒学家发现用不同的酵母菌株发酵能够使葡萄酒产生不同的特点。这导致了具有多种特色且能够应用于不同领域的选育菌株工业生产化。当下市场上提供了几百种葡萄酒菌种,它们几乎都属于酿酒酵母菌属。 和此同时,人们对发明快速而且精确检测酵母菌株的方法也产生了兴趣。在葡萄酒酿造中,它的应用包括确定接种菌株对在未发酵葡萄汁中野生菌株的显性优势,实时记录发酵中的菌株动态过程,控制菌株生产的质量且鉴别无效菌株。酿酒时,选育出的菌株被接种于富含野生酿酒酵母和非酿酒酵母的葡萄汁中。快速鉴别酵母菌株的方法应该考虑到菌群生长动态的观察,选育菌株的显性优势和环境因素对酵母菌株的影响。在葡萄酒发酵,温度是影响酵母动力学的壹个主要因素(FleetandHeard,1993);生态研究也显示出了酿酒酵母菌株的不同行为。(Epifanioetal.,1999;Torijaetal.,2003). 事实上,酿酒商要求菌株的壹个突出特点是能够在特定的温度下进行良好的发酵反应。 很多时候,在壹个典型的发酵白葡萄,发酵温度应保持18摄氏度,但达到12-15摄氏度也不少见,从而提高调味品酯的含量且减少高酒精形成。在此温度下,经常会发生发酵停滞,因此,在这种状况下,选育菌种的低温代谢能力和对野生菌种的显性优势备受重视。 在过去的几年中,研究侧重于用分子生物学方法进行菌株分化(Behetal.,2006),如染色体分析法(CarleandOlson,1985;BlondinandVezinhet,1988)和限制性片段长度多态性(RFLP)分析mDNA(Queroletal.,1992),以及基于PCR的方法,其中包括内部转录序列(ITS)的核糖体DNA测序(Montrocheretal.,1998),δ元件插入位点的多态性(Cameronetal.,1979;Nessetal.,1993),扩增片段长度多态性(AFLP)的(DeBarrosLopesetal.,1999),随机扩增多态性DNA(RAPD)(Baleiras-Coutoetal.,1996),内含子剪接序列扩增(DeBarrosLopes etal.,1996)及PCR内含的线粒体基因(Lo′pezetal.,2003)。 这些方法在关于分辨率和处理时间方面对经典生理学实验起到了增强作用,可是其中壹些方法仍有些限制条件,因为它们几乎不能应用于日常的分析中,或者当它们容易实施时,它们且不能在菌种水平上完全区分这些菌株。此外,在壹些方法中,如δ元件分型和RAPD,其重现性取决于DNA模板的纯度和浓度。(Ferna′ndez-Espinaretal.,2001;Behetal.,2006)。这些缺点意味着花费大量时间和资金进行DNA清理步骤,在某些情况下仍需要几步反应,以评估非重复性带型发生的可能性。 基于具有长度多态性的简单序列重复基因位点分散在整个基因组中,微卫星分析已成功地被用来区分酵母菌株(FieldandWills,1998;GonzalezTecheraetal.,2001;Pe′rezetal.,2001;Hennequinetal.,2001;Malgoireetal.,2005)。最近,利用对具高度多态性的微卫星位点的多重PCR方法能够分离壹系列商用酵母菌株(Schulleretal.,2004;Bradburyetal.,2005;Legrasetal.,2005)。微卫星位点PCR高辨别能力以及其稳定性和实用性使其成为区分酵母菌种最受欢迎的方法之壹。这个方法用于常规检测的瓶颈发生在扩增子分析的步骤:利用聚丙烯酰胺凝胶及测序分析仪确定扩增子的大小较为费时费力。为了避免这个限制,有人提出利用简单的高张力琼脂糖凝胶电泳(RoutmanandCheverud,1994;Ferraroetal.,1998)。最近,Howell等人(2004)建议利用对SC8132X位点的PCR扩增和聚丙烯酰胺凝胶加EB染色电泳来进行酿酒酵母的分型。 为了建立壹种快速精确且且甚至适用于那些低预算高通量实验室的鉴别菌种的方法,我们对3个高多态性微卫星位点的多重扩增(GonzalezTecheraetal.,2001),然后用琼脂糖凝胶电泳进行带型分析。 作为第壹步,我们对壹组29种商用酵母菌株进行测试,另加壹酿酒酵母菌株作为参考,以检查该方法的鉴别能力。然后,我们在测试发酵温度对共接种的俩个选育菌株的生长速率和竞争能力的影响的实验中检查了这种方法的实际适用性。 2.材料和方法 2.1酵母菌株和培养基 酿酒酵母菌株采购于酿酒酵母生产商。酿酒酵母菌株见表1。酵母菌模式菌株(CBS1171)从CRA-IstitutoSperimentaleperl’EnologiaofAsti,Italy(ISE)的收集品中获得。 商用干菌株悬浮于无菌5%的蔗糖液体培养基中,40摄氏度下放置30分钟,稀释,然后涂布于YMA平板(10g/L葡萄糖,5g/L蛋白胨,3g/L酵母浸出物,3g/L麦芽膏和20g/L琼脂),然后在24摄氏度下培养48小时。 2.2DNA抽提 在第壹步检验这种方法的鉴别能力时,我们用Harju等人(2004)的方法抽提DNA。简单的说,将单个菌落重悬浮于200ml的lysisbuffer(2%(w/v)TritonX-100,1%(w/v)SDS,100mmolL_1NaCl,10mmolL_1Tris–HClpH8.0,1mmolL_1EDTApH8.0)中。这些试管放置于-80度冰箱中3分钟(直到完全冻住),然后在95摄氏度下于Thermomixer(EppendorfAG,Hamburg,Germany)中放置壹分钟(不要振荡)使它们快速溶化。重复上述过程,然后以最大速度旋转试管30秒。向试管中加入200ml氯仿冰浴,然后振荡试管2分钟,20,000g,5摄氏度的条件下离心5分钟。取上清液和另壹试管中加入400ml冰的纯乙醇,20摄氏度下静置沉淀10分钟,然后在20,000g,5摄氏度下离心10分钟。去上清,DNA沉淀用0.5mL70%(v/v)乙醇纯化,45摄氏度下真空干燥。得到的DNA溶于15mlTE(10mmolL_1Tris,1mmolL_1EDTA,pH8.0)。第二步检验该方法适用性的过程中,用微量加样吸头直接从单菌落中提取菌体直接悬浮于事先加好PCR混合物的0.2ml孔中。 2.3.PCR和电泳 三个微卫星位点,SC8132X,YOR267C和SCPTSY7被使用是由于他们具有高度的多态性。扩增是依赖于几对特异性的顺式和反式的引物进行的(见表二)SC8132X位点的引物和YOR267C位点的顺式引物是由Field和Wills所设计的,YOR267C位点的反式引物是由GonzalezTecheraetal制作的,而SCPTSY7位点的顺式引物是由Perezetal制作的。SCPTSY7位点的反式引物是由我们使用免费软件Primer3所设计的,目的是使其产生几个电泳带具有明显位置区别的扩增子而不和其他俩个位点重叠。 PCR扩增是进行在壹个具有20微升体积液体的BioradMyCycler热力周期仪中。20微升液体是有以下部分组成的:1微升DNA的萃取溶液(包含20-40ngDNA),3.1mmol/L浓度的MgCl2,0.4mmol/L浓度的各种dNTP,2微升去镁的PCR缓冲液,2个单位TaqDNA聚合酶,SCYOR267C位点引物各10pmol,SC8132X位点引物各15pmol以及SCPTSY7位点的引物各40pmol。PCR反应组分各成分的浓度被设计得尽量减小非特异性扩增。在发酵实验中,反应体系的体积为10微升,试剂组分和所占比例和上述反应体系相同,这样做能够节省Taq聚合酶和其他昂贵的试剂。为了优化对三个位点的多元化扩增,方案如下:94℃保持4分钟,以a.94℃保持30秒;b.56℃保持45秒;c.72℃保持30秒为壹个周期,重复28个周期,最后以72℃保持10分钟处理。 将产物在尺寸为15*10cm2浓度为2.5%(w/v)的琼脂糖凝胶上,浸于TBE缓冲液中,在100V条件下电泳80分钟,凝胶将被溴化乙錠所染色。当使用聚丙烯酰胺凝胶电泳时,应使用预制的8.6*6.8cm210%(w/v)的TBE凝胶,在100V条件下电泳60分钟。Marker应使用标记分子量为100-20bp的Sigma低阶marker。 电泳分布情况被集群分析软件处理,该软件使用壹种类似于二进制的指标,它使用UPGMA的方式创建系统树图。同表象相关性将被用于探知由Rossetti和Giraffa描述的确定的和非确定的聚类。同表项相关性的百分比在各个分支中给出。 2.4.该方法的可重复性和微卫星标记的稳定性 通过对每个菌株取五份菌落DNA萃取液进行扩增来检测可重复性,对扩增产物的分析是将其分为五个不同孔道进行琼脂糖电泳而进行的。 为了检验微卫星标记在酒精发酵中的稳定性,检验是在随意挑选的三个菌株中进行的:菌株2,菌株3和菌株5。再水化后,每个菌株被单独接种在盛有灭菌葡萄汁的500ml烧瓶中。在16℃的条件下发酵20天。 表二用于扩增的三株啤酒酵母微卫星位点引物 分析在十组随意选出的菌落中进行,这些菌落取自发酵开始时和结束时的每个菌株。 2.5.发酵 俩株酵母菌株,DSMCepageChardonnay和VitilevureDV10被选中进行发酵试验,因为他们具有相似的用途和特征(用于白葡萄发酵,醇耐受性和表型杀

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