猪口蹄疫疫苗免疫后跟踪抗体检测试验及建议
口蹄疫病毒抗体检测
2019年第7期 吉林畜牧兽医·经验交流·JingYan JiaoLiu口蹄疫病毒抗体检测白 翠，王 楠，王 晶，马晓媛，于钦磊吉林省动物疫病预防控制中心，吉林长春 130062摘 要：口蹄疫是一种急性、高度接触性、烈性的传染病，是由口蹄疫病毒引起的，常常发生在偶蹄动物，偶尔也见于人和其它动物。
世界动物卫生组织已经将该病列为法定申报传染病，我国将其列为一类动物疫病。
我国主要通过实施强制免疫来预防控制该病，疫苗免疫之后所产生的抗体水平是评价免疫效果的重要手段，也可以根据免疫后的 效果来制定合理免疫程序。
本实验室主要通过口蹄疫液相阻断和3ABC非结构蛋白抗体检测试剂盒来进行抗体检测。
关键词：口蹄疫；ELISA；抗体检测我国口蹄疫病毒流行毒株主要为A型、亚洲I型和O型，其中O型口蹄疫病毒基因型众多，流行广泛，严重危害畜牧养殖业发展[1]。
1 液相阻断ELISA方法进行抗体检测液相阻断是应用双抗体夹心法，其试验过程是抗原吸附在载体上，也就是我们常说的包被，包被后加入待测抗体，反应后加相应酶标记抗体，生成抗原抗体复合物，再与底物发生显色反应。
最后通过酶标仪的光谱吸收，测量OD值，计算抗体的量。
本实验室的试剂盒主要是使用兰州兽医研究所（兰兽研）研制开发的，该试剂盒与其它同类型试剂盒相比，许多项指标都已达到了世界口蹄疫参考实验室的同类产品水平，符合率极高。
液相阻断的难点重点在于被检血清的稀释倍数，这个在试剂盒说明书上有具体操作步骤，实验室操作人员可根据说明书进行10份或20份样品的操作。
2 3ABC非结构蛋白抗体检测经抗原纯化过的口蹄疫疫苗，去除了绝大部分3ABC非结构蛋白[2]，因此，用灭活疫苗免疫的健康动物体内正常不会有3ABC非结构蛋白抗体产生，而自然感染的动物体内由于免疫频率的增加和免疫剂量的加大，不仅产生了结构蛋白而且也产生3ABC非结构蛋白抗体。
所以，用该方法可以区分自然感染和免疫抗体。
猪O型口蹄疫疫苗免疫效果试验报告
１１ 试 验 时 间与 试 验 动 物 ．
型 口蹄疫抗体间接正 向血凝试 验试剂 盒说明书进行
记录 。结果判定： 根据 农业部 下达 的标准 ， 检测猪 口 蹄疫免疫抗体滴度 ≥５为合格 ，５为不合格 ， ＜ 并经过 重复检验 ， 确定抗体滴度 。
１５ 试 验 猪 分 组 与 试 验 方 法 ．
３３０） ６ ００
文 章 编 ￣ ：０ ２ １５ （０ ２０ — １ ３ ０ －１０ — ９ ７２ １）３ ０ １ — ２
摘 要： 随机选 择规模猪 场 ４ ２日龄左右 的仔猪 ３ ０头和散养 户的 ８ ６日龄散养猪 ６头 ， 分别进行两 次 ０型 口蹄 疫灭活疫苗 免疫 ， 间接正 向血凝检 测 口蹄疫 免疫抗体 。结果 显示 ， 用 规模猪场 的仔猪 免疫抗体检 测 ， 首免 后 ２ 均滴度超 过 ５３ 均 为合格 ； ８ｄ平 －， 二免后 ２ 均滴度 超过 ８１ 均为合 ８ｄ平 ．， 格 。散养 猪只免疫抗体检测 ， 首免后 ２ ８ｄ平均滴度 ３ ２ 为不合格 ； ．， ５ 二免后 ２ ８ｄ平均 滴度 ９１ ， ． 为 ７ 合格 。试验表 明， ０型 口蹄疫灭 活疫苗 经过 两次免疫 可获得 满意效果 。 猪 关键词 ： ０型 １蹄疫疫苗 ； ： ３ 免疫 ； 抗体
１ ． 采血 次数 与 时 间 ６
１ ． 规 模猪 场 首 免 当天 （ ．１ ６ 指未注 射 疫苗 前 当 天）首免后第 ２ 天、８ ， 免后第 ２ ， １ ２ 天 二 ８天 ， 前 腔 经 静脉或耳静脉采血 １ ， 次 分离血清 ， 于抗体检测 。 用 下简称 中牧 ０型 口蹄疫灭活疫苗） ，批 号 ０ ００ ４ ９ ２０ ，
２１ ０ ２第 ３期
养猪 Ｓ Ｎ Ｒ Ｕ Ｔ Ｏ ＷＩ Ｅ Ｐ ＯＤ Ｃ Ｉ Ｎ
动物疫病口蹄疫监测实施方案
动物疫病口蹄疫监测实施方案一、监测目的了解口蹄疫病原感染分布情况及高风险区域的发病情况，跟踪监测病毒变异特点与趋势，查找传播风险因素。
证明免疫无疫区状态。
评估畜群免疫效果，掌握群体免疫状况。
同时，开展猪塞内卡病毒A型(SenecavirusA,SVA)监测，评估危害性。
二、监测对象猪、牛、羊、鹿等偶蹄类动物。
三、监测范围全县。
猪、牛、羊、鹿等偶蹄类动物的种畜场、规模饲养场、散养户、活畜交易市场、屠宰场、无害化处理厂等。
注：散养户以一个自然村为一个监测采样的流行病学单o四、监测时间免疫抗体监测：每半年进行一次集中监测，定点监测根据实际情况安排。
病原监测：每半年进行一次集中监测，每季度进行一次定点监测。
同时，按照国家口蹄疫参考实验室具体采样时间安排，配合做好重点区域重点场所采样工作。
五、监测方式（一）被动监测任何单位和个人发现猪、牛、羊、鹿等偶蹄动物或野生动物出现水泡、跛行、烂蹄等类似口蹄疫的症状，应及时向当地兽医主管部门、动物卫生监督机构和/或动物疫病预防控制机构报告，动物疫病预防控制机构应及时采样进行监测。
（二）主动监测1.病原监测采用先抽取场群，在场群内再抽取个体的抽样方式开展监测釆样。
选择场群时要考虑猪、牛、羊、鹿等偶蹄类动物的种畜场、规模饲养场、散养户、活畜交易市场、屠宰场的比例。
2.抗体监测选择场群时要综合考虑猪、牛、羊、鹿等偶蹄类动物的种畜场、规模饲养场、散养户、活畜交易市场及屠宰场的比例。
六、监测内容和数量重点选择辖区内种畜场、奶牛场和规模养殖场开展口蹄疫病原学检测和免疫抗体检测，每次每个场至少釆集样品30份，很多于6场（村）次。
在开展上述监测外，应开展月度常规监测，监测内容和数量根据实际情况确定。
监测数据及时按程序上报监测信息系统。
七、检测方法（一）病原检测对牛羊食道-咽部分泌物（0P液）、猪颌下淋巴结或扁桃体，采用RT-PCR方法或实时RT-PCR方法检测口蹄疫病原。
（二）非结构蛋白抗体检测采用非结构蛋白（NSP）抗体ELISA方法进行检测。
试分析提高猪口蹄疫免疫抗体合格率的措施
试分析提高猪口蹄疫免疫抗体合格率的措施猪口蹄疫是一种由病毒引起的急性传染病，主要侵袭猪的口蹄部位，给猪的生产和养殖业造成了巨大的危害。
为了有效控制和预防猪口蹄疫的蔓延，提高猪的免疫抗体合格率，各级政府和养殖业者都在不断探索和实践。
本文将从疫苗接种、疫苗质量、临床防治等方面进行分析，谈论提高猪口蹄疫免疫抗体合格率的措施。
猪口蹄疫病情严重影响了猪的生产和养殖业，防控工作是非常重要的。
要提高猪口蹄疫免疫抗体合格率，首先需要做好疫苗接种工作。
疫苗接种是预防猪口蹄疫的一项重要措施，对于提高猪的免疫抗体合格率来说至关重要。
需要养殖业者和政府部门加强对疫苗接种工作的监督和指导，确保疫苗接种的规范和及时性。
要提高猪口蹄疫免疫抗体合格率，需要确保疫苗的质量。
疫苗的质量是影响疫苗接种效果的关键因素。
需要加强对疫苗生产企业的监管，严格把关疫苗的生产质量，确保疫苗符合标准和规范，提高疫苗的保护效果。
养殖业者在购买疫苗时也要选择正规的、有资质的疫苗生产企业的产品，确保疫苗的质量和效果。
还需要加强对猪口蹄疫的临床防治工作。
在疫情爆发或疫苗接种不足的情况下，需要对疫情严重的区域进行临床防治，及时控制疫情的蔓延，保护生猪的健康。
需要加强对猪口蹄疫的监测和预警工作，及时发现和报告疫情，采取有效的隔离和治疗措施，避免疫情的扩散和扩大。
提高猪口蹄疫免疫抗体合格率是一个长期而艰巨的任务，需要政府部门、养殖业者和疫苗生产企业的共同努力。
只有加强疫苗接种工作、确保疫苗质量、加强临床防治工作，才能有效提高猪口蹄疫免疫抗体合格率，保障猪的健康和养殖业的稳定发展。
希望全社会都能高度重视这一问题，共同努力，共同为猪口蹄疫的预防和控制做出贡献。
两种试剂盒分别检测猪口蹄疫O型、A型疫苗抗体的对比试验
2018 年第 8 期 兽医实验室
两种试剂盒分别检测猪口蹄疫 O 型、A 型 疫苗抗体的对比试验
杨虹 1 吴聪 2 1. 南昌市动物疫病预防控制中心 2. 江西农业大学动物科技学院
口蹄疫是由口蹄疫病毒引起偶蹄动物的一种急性、 对猪口蹄疫 O 型、A 型二价疫苗免疫抗体进行了免疫效
二、结果
1. 抗 体 检 测 合 格 率。 使 用 VP1-ELISA 诊 断 试 剂 盒 检 测 O 型、A 型 口 蹄 疫 抗 体 合 格 率 分 别 为 86.67%、 80.00%，使用 SPC-ELISA 检测试剂盒检测 O 型、A 型 口蹄疫抗体合格率分别为 90.00%、83.33%（表 1）。
最好的水平。 选择合适的接毒时间至关重要，进行 PCV2 培养时 ,
应在细胞接种或未形成单层之前接种。细胞接种后 0 h 以 MOI 为 0.05 接种 PCV2 病毒，接种病毒时间较早 , 严重影响了细胞的正常生长，病毒毒价较低 ；细胞接种 后 12 h 以 MOI 为 0.05 接种 PCV2 病毒，细胞密度有所 提高，虽然理论上细胞数越多 , 其所收获的病毒也应该 最多 , 但病毒毒价并没有细胞接种后 6 h 接种 PCV2 高。 说明细胞密度并不是决定病毒滴度的决定性因素 , 而是 细胞的生长状态。这主要是由于 PCV2 病毒在增值子代
3. 检 测 试 剂 盒。（1） 猪 口 蹄 疫 O 型 病 毒 VP1 结
2018 年以前，我国对猪一直进行 O 型口蹄疫的强 构 蛋 白 抗 体 ELISA 诊 断 试 剂 盒（VP1-ELISA）：批 号
制免疫，但根据农医发 [2018]1 号文件“农业部关于印发 20180302，购自郑州中道生物技术有限公司 ；猪口蹄疫
病毒时需要宿主细胞 DNA 复制相关的酶参与，只有细胞 处于指数生长前期时其 DNA 复制酶的活性最局，数量 最多。
简述口蹄疫免疫抗体监测的方法及意义
一、检测方法特异性抗体检测在疫病诊断、传染病流行病学调查及评价疫苗免疫效果评价具有重要的参考意义。
现阶段，抗体检测的方法较多，除传统的沉淀反应，凝集试验，补体结合试验外，标记免疫测定已成为主要的免疫抗体测定技术(如酶联免疫测定、放射免疫测定、荧光免疫测定、发光免疫测定等)，而酶联免疫测定是目前应用最为广泛的方法之一。
1.中和抗体中和抗体是当病原微生物侵入机体时产生的相应的抗体。
病原微生物入侵细胞时需要依赖病原体自身表达的特定分子与细胞上的受体结合，才能感染细胞，并进一步扩增。
中和抗体是B淋巴细胞产生的某些抗体，中和抗体的作用机制是改变病毒表面构型，阻止病毒吸附于易感细胞，使病毒不能穿入胞内进行增殖；病毒与中和抗体形成的免疫复合物，易被巨噬细胞吞噬清除；有包膜的病毒表面抗原与中和抗体结合后，激活补体，可导致病毒的溶解。
病毒中和试验是世界动物卫生组织推荐的标准方法，抗体与口蹄疫病毒特异性中和作用使病毒失丧失感染力，需要培养病毒敏感细胞；所需的病毒必须为活病毒，具有感染性。
2、结构蛋白抗体在原则上来说，只要是异己蛋白质进入机体，就会被免疫系统识别，然后产生相应抗体。
灭活疫苗的本质是一种抗原，只不过它通过改造已经没有了病毒的毒性。
当疫苗注入到机体之后，由于病毒抗原含有多种不同的蛋白，因此机体会产生不同的抗体。
然而，并非所有的结构抗体都有抗病毒的作用。
中华人民共和国农业农村部规定的口蹄疫免疫抗体评价的方法分别为液相阻断E L I S A抗体检测试验、正向间接血凝试验、V P1结构蛋白抗体检测试验。
2.1液相阻断ELISA抗体检测试验（国际贸易指定法）我国目前采取以免疫为主的综合防控措施进行口蹄疫防控，免疫抗体检测是衡量疫苗免疫效果的重要指标。
目前,国际粮农组织（FAO）和世界动物卫生组织推荐液相阻断ELISA来对口蹄疫免疫效果进行评价。
硏究表明口蹄疫液相阻断ELISA抗体检测技术具有良好的敏感性、快速诊断性和可重复性,与攻毒保护有很好的相关性,现被广泛应用于口蹄疫免疫抗体水平的监测。
生猪口蹄疫的抗体监测与免疫防制
即群体抗体保护率达不到 ７ ％，经过免疫 的生猪仍然有少数 ０
猪不能抵抗 自然感染 ， 有发病的可能 。因此 ， 要想做好 口蹄疫 的防制 ， 就必须继续坚持监测猪群的抗体水平 ， 过监测免疫 动 物 的抗体水平可以评价免疫效果 ，也有利于制定有效 的免疫
程序。 １ 口蹄 疫 的 抗体 监 测
性、 热性 、 高度接触传染性和可快速远距离传播的动物疫 病 ，
被 世界 动物 卫生 组织 （ Ｉ ＯＥ）列 为 Ａ 类 家 畜 传 染 病 之 首 。
操作 简便 、 设备 简单 、 经济 实用 ， 于大批量检测 ， 以现在 便 所
还在许多地区应用广泛 。 高得 吼等将正 向间接血凝试验进行 改进 ， 使其 比原方法减少抗原使用量 、 降低检测成本 、 提高检 测效 率 、 大检测数量 ， 扩 并应用 于 Ｆ ＭＤ的抗体检测 工作 中。 Ｉ ＨＡ简便 、 快速 、 特异性高 ， 敏感 性和稳定性 不进一步
养 猪
生猪 口蹄疫 的抗 体监测 与免 疫 防制
黄 晓 燕 ， 郭 昊 黄 世 品 ，
（ ． 东省 东莞市 动物卫 生监督 所 ，东莞 ５ ３ ０ ；２南京 农业 大学动 物 医学院 ，南京 ２ ０ ０ １广 ２ ００ ． １ ０； ０
３东莞市 动物 疫病预 防控 制 中心 ，东莞 ５ ３ ０ ． ２ ０ ０）
疫胶体金快速诊断技术不需要特殊设备和试剂 ， 结果直 我国进行 口蹄疫抗体监测 的 观， 而且具有方便快捷 、 特异敏感 、 稳定性 强等优点 ， 目前 已
１１ 口蹄 疫抗体 的监 测方法 ．
主要方法是正向间接血凝试验 、 液相阻断 Ｅ ＩＡ以及胶体 金 ＬＳ
法， 目前均有相应的商品化试剂盒供临床应用 。 正 向间接血凝试 验是利用 Ｆ Ｖ的抗 体或抗原标记 于 ＭＤ 红 细胞表面 ， 可以与相应 的抗原或抗体在适宜条件下结合并 作者简介 ： 黄晓燕（９ ０ ， １７ 一）助理兽 医师 ， 事动 物卫 生监督 从
规模场猪口蹄疫抗体效价的检测
2020年第10期猪口蹄疫是由口蹄疫病毒引起的猪的一种急性、热性、高度接触性疾病,主要侵害猪的蹄部、口部及乳房等,仔猪多伴有心肌炎。
该病不仅造成重大的经济损失,还严重制约畜牧业的健康发展,甚至威胁着国家声誉和人类食品卫生安全。
因此口蹄疫的防控对畜牧业的健康发展有着重要意义。
规模场中通过采集猪血清检测血液中口蹄疫抗体的技术手段,可以有效的预防和掌握口蹄疫的流行动态,再配合有效的猪场生物安全措施,可降低口蹄疫的感染风险。
笔者对采集的某地区规模化育肥场的猪血清进行了抗体检测和结果分析,为制定口蹄疫的防控策略提供科学依据。
1血清采集及检测秋季免疫后1个月内,选择5个免疫口蹄疫多价灭活苗的规模化育肥场,存栏4000头左右。
对每个场随机选取100头育肥猪进行血液样品采集,采血部位为前腔静脉,血量为5m L 左右,共采集500份血液样品,样品按照不同养殖场进行分类,用油性记号笔在采血器表面标记样品并编码。
将装血样的采血管斜置或平放静置30m i n ,待血清析出后,送至实验室,离心分离血清,备用。
然后使用采购自中国农业科学院兰州兽医研究所的口蹄疫O 型液相阻断ELI SA 抗体检测试剂盒检测血清中猪口蹄疫的抗体,并记录结果。
2结果与分析使用口蹄疫O 型液相阻断ELI SA 抗体检测试剂盒检测血清中猪口蹄疫抗体,结果见表1。
由表1得知,5个规模化育肥场O 型口蹄疫的抗体合格率为93%。
其中,B 育肥场O 型口蹄疫免疫合格率高达到98%,在所调查育肥场中免疫保护效果最好;D 场O 型口蹄疫免疫合格率为87%,免疫保护效果率相对较低。
剩余A 、C 、E3个规模化育肥场O 型口蹄疫免疫合格率都在90%以上,5个规模化育肥场O 型口蹄疫的免疫保护率均达标。
免疫抗体监测是对动物的健康状况进行反馈的一项重要工作,猪作为口蹄疫的放大器,对口蹄疫病毒极为敏感,对猪群血清样品的检测能反映口蹄疫在易感家畜中的感染情况。
本次随机抽检了的5个规模化育肥场,从检测结果看,检测的500份血清样品口蹄疫抗体合格率,达到了农业部免疫抗体合格率70%以上的规定。
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4 分析与讨论
4.1 试 验 使 用 的 疫 苗 由 金 宇 保 灵 生 物 有 限 公 司 生 产 ， 毒 株 为O/GX109-7 株+O/XJ/10-11株， 属口蹄疫O型灭活 苗。 我县地处秦岭腹地，路途遥远，县 动物疫控中心用冷藏车将疫苗从商洛 市动物疫控中心运回后，在冷库贮藏。
猪口蹄疫疫苗 免疫后跟踪抗体检测试验及建议
朱安民1 王国防1 姚战生1 刘卫峰2 （1.陕 西 省 洛ห้องสมุดไป่ตู้南 县 动 物 疫 病 预 防 控 制 中 心 ，陕 西 洛 南 726100；2.陕 西 省 洛 南 县 四皓镇农牧综合服务站） 中图分类号：S852.4 文献标志码：B 文章编号：1008-0414(2014)11-0005-03
对母猪按生产的胎数的不同情况 进行随机试验， 从中随机挑选出10头
70%，还应再补免 一 次 ，直 至 猪 群 抗 体 保 护 率 达 到 国 家 规 定 70%标 准 为 止 。 5.2 我 国 目 前 对 动 物 疫 病 仍 实 行 预 防为主的方针， 而疫苗接种又是制定 和控制传染病计划中的可靠手段和有 效工具， 特别是安全有效高质量的口 蹄疫疫苗是取得理想免疫预防效果的 关键。 我县位于陕西省商洛市北部，地 处秦岭南麓， 下辖19个镇，383个行政 村 ，全 县 有300多 个 防 疫 员 ，由 于 养 殖
免疫后72 h内 观 察 记 录 试 验 猪 是 否出现精神沉郁、减食、体温变化、抽 搐等免疫反应症状。
3 试验结果
3.1 免疫抗体检测 猪口蹄疫不同剂量疫苗试验：分
为两组，第一组常规量免疫注射，第二 组二倍量免疫 注 射 。 然 后 在28 d后 每 组 采 样 各 20份 ，在 实 验 室 检 测 抗 体 ， 第 一 组 合 格2份 ，合 格 率 是 10%；第 二 组 合 格3份 ，合 格 率 是 15%，并 同 时 进 行 二免。 9月11日 ，56 d后 再 每 组 采 样20 份，进行抗体检测，第一组合格4份，合 格 率 是20%，第 二 组 合 格 5份 ，合 格 率 是25%。 3.2 免疫反应
1 试验材料
1.1 试验材料 测试使用的疫苗为 “猪克鼻”(由
法 国 某 公 司 提 供)，用 于 试 验 测 试 的 小 白鼠和兔子,有关试剂和仪器（其中包 括营养肉桂粉， 选购来自杭州的有关 生物公司 ）,普通性质的琼 脂 粉 以 及 麦 康凯性琼脂粉。 （这两种试剂都是来自 同一公司）。 1.2 试验设备
猪 O型 口 蹄 疫 两 种 剂 量 免 疫 28d、56d（二 免 ）抗 体 滴 度
单位：份
分组
第一组：常规量免疫
第二组：加倍量免疫
天数 抗体滴度
28 d
56 d
28 d
56 d
25
2
2
2
3
26
0
2
0
1
27
0
0
0
0
28
0
0
1
1
合格总数
2
4
2
5
合格率
10%
20%
15%
25%
· 6 · 疫病防制
LIVESTOCK AND POULTRY INDUSTRY NO．307
口蹄疫O型间接血凝抗体检测试 剂盒 (中国农业科学院兰州兽医研究 所 生 产 ， 批 号 为 2014081804， 有 效 期 至 2014年11月17日)、 口蹄疫O型正向 间 接血凝诊断液、 口蹄疫O型血凝阳性
收 稿 日 期 ：2014－10－09
型 疫 苗 免 疫 效 果 的 对 比 试 验 . 养 猪 ,2012 (05):117-118 [2]白挨泉,邵永昌,刘为民.猪O型 口 蹄 疫 合 成肽疫苗与灭活疫苗免疫效果比较. 黑龙 江 畜 牧 兽 医 ,2011(09):131-133 [3]易 悦,王 利 娜,徐 志 文,郭 万 柱,朱 玲,韩 国 全.猪口蹄疫疫苗的研究进展及其应用.猪 业 科 学 ,2011(02):44-48
户居住分散， 每年春秋季防疫工作十 分艰巨，村防疫员工资报酬低，工作面 广量大，任务繁重。 因此，做为基层畜 牧兽医工作者， 我们呼吁农业部尽快 将 三 种 血 清 型 （O型 、A型 、亚 洲Ⅰ型 ） 口蹄疫疫苗批准为招标统购疫苗，也 盼望尽早投入使用， 以降低基层防疫 人员工作量和免疫工作成本， 只有高 效、多价且使用便捷的疫苗，才能成功 的预防和制控动物口蹄疫病。
2014 年 11 月 畜禽业总 307 期
疫病防制 · 7 ·
处理 A组 B组 对照组
处理 A组 B组 对照组
表1 在不同阶段猪的日平均增重量
保育室
小猪
中猪
311
544
635
341
582
695
293
495
601
表2 在不同阶段猪的料肉比测定
保育室 1.646 1.565 1.813
小猪 1.939 1.738 2.214
2014 年 11 月 畜禽业总 307 期
疫病防制 · 5 ·
口蹄疫是我国强制免疫的传染病 之一。 近年来，我县在春秋两季计划免 疫中的猪的免疫注射程序上， 按照商 洛市动物疫控中心安排， 先免疫猪瘟 疫 苗 ，1周 后 再 同 时 分 点 注 射 口 蹄 疫 和 蓝 耳 病 疫 苗 ，28 d再 加 强 免 疫 1次 ，间 隔1月后进行免疫抗体检测。 结果显 示，猪口蹄疫抗体合格率较低，尤其是 今年春季全县猪口蹄疫免疫抗体检测 95份 ，合 格 61份 ，合 格 率 64%，低 于 国 家规定保 护 率70%的 标 准 。 为 此 今 年 7—9月， 我们进行了猪口蹄疫疫苗两 种剂量注射免疫的跟踪抗体检测试 验，现将结果报告如下。
摘 要 应用鼻甲骨形态学测定的办法对猪萎缩性鼻炎巴氏杆菌灭火混合型 疫苗的免疫效果进行了试验。 试验采用两种对照组进行，并对两种对照组试验的结果 进行对比，从而分析出猪萎缩性鼻炎巴士灭杆菌混合型疫苗的免疫效果。
关键词 猪萎缩性鼻炎 巴氏杆菌灭活混合型疫苗 免疫效果
猪萎缩性鼻炎又被称为慢性萎缩 性鼻炎， 其主要是由产毒素多杀性巴 氏杆菌所引起的一种慢性的且具有传 染性的呼吸道疾病， 世界卫生组织规 定为B类疾病。该病发病时的症状主要 为打喷嚏、流鼻涕、颜面变形甚至是口 眼歪斜等， 并且以猪的鼻甲骨萎缩和 猪发生发育迟缓为主要发病特征。 目 前，由于疫苗的免疫效果不佳，严重影 响了养殖户的生产效益。 所以，寻找出 一种适宜的疫苗是养殖工作中的重要 问题。
中猪 2.217 2.140 2.657
g
大猪 590 630 541
g
大猪 3.734 3.500 3.906
增 重 比 对 照 组 高18、49、49、34 g。 B组 母猪在生产前6周以及生产之后的2周 内各接种1次猪萎缩性鼻炎巴氏杆菌 灭活混合疫苗， 其所产仔猪在生长期 第三周时同样注射了此疫苗。 结果显 示：试验大猪、中猪、小猪、保育室内仔 猪与对照组比较， 料肉比分别降低 0.406、0.517、0.476、0.248， 猪 平 均 增 重 分别增加了89、94、87、48 g。 试验表明 注射了猪萎缩性鼻炎巴氏杆菌灭活混 合疫苗之后， 猪的生产情况有很好改 善；如果对母猪进行了上述免疫，又对
猪 口 蹄 疫 O 型 灭 活 疫 苗 （O ∕ GX109-7 株 +O ∕ XJ ∕ 10-11 株 ） 陕 西 省商洛市动物疫病防控中心供应疫 苗 （国 家 统 供 疫 苗 ），生 产 厂 家 是 金 宇保灵生物药品有限公司, 生产批 号 ：3136079, 有 效 期 至 2014 年 12 月 14 日。 1.4 诊断液
1 试验材料
1.1 试验猪 在洛南县华源猪场试验。 该场为
育肥猪场，猪舍采用正大模式修建，全 场育肥猪存栏2 200头。 试验选择45日 龄20~24 kg的 断 奶 （28日 龄 断 奶 ）健 康 约 克 杂 交 仔 猪 4 栏 共 202头 。 1.2 器材
体温计、0.9%生理盐水、 注射器、 针 头 、药 棉 、75%酒 精 、采 血 器 、耳 标 、 耳标钳、实验室有关仪器和试剂等。 1.3 疫苗
血清、口蹄疫O型血凝阴性血清。 1.5 其它
各种记录表格和猪口蹄疫两种剂 量免疫试验方案。
2 方法
2.1 疫苗注射 试 验 分 两 组 进 行 。 2014年7月17日
第一组按常规量免疫注射， 肌注口蹄 疫 灭 活 苗 1 mL/头 , 共 注 射 51 头 ； 第 二 组加倍量免疫注射， 每头猪肌注口蹄 疫灭活苗2 mL/头，共 注 射151头 。 8月 14日，即28 d后采样 进 行 抗 体 检 测 ，并 再加强免疫一次，第一组肌注1 mL，第 二组肌注2 mL。 2.2 免疫反应观察
2 试验方法
2.1 试验设计 将该养殖场内的母猪平均分为3
组，每组60头 。 在A组 中 ，仅 对 母 猪 在 生产之前的6周以及分娩之后的2周时 进行接种猪萎缩性鼻炎巴氏杆菌灭活 混合疫苗；在B组中，母猪在产前6周以 及产后2周时注射猪萎缩性鼻炎巴氏 杆菌灭活混合疫苗，其产下的仔猪在3 周大的时候 同 样 注 射 此 疫 苗;C组 为 对 照组，均不注射该疫苗。 2.2 抽样方法
收 稿 日 期 ：2014－10－14
仪器和设备： 微量细菌的生化反 应管、电热恒温试验的培养箱、手提式 蒸汽消毒机器、 标准型的净化工作台 和单人形式的双面净化工作台等。 1.3 试验地点
试验场所: 选在了某养殖场内进 行。 据有关调查显示，该养殖场在以前 并未进行过猪萎缩性鼻炎相关疫苗的 有关接种。