多肉植物玉露的组培快繁技术研究
多肉玉露的养殖方法
多肉玉露的养殖方法
多肉玉露是一种常见的多肉植物，它有浓密的叶片和独特的颜色，非常受到花友们的喜爱。
下面，我将为您介绍多肉玉露的养殖方法。
1.环境条件
多肉玉露喜欢温暖、干燥、光照充足的环境。
它适合生长在室内或者户外，但要避免过于寒冷或过于潮湿的环境。
在室内种植时，选择靠近窗户的阳光充足的位置。
2.选择合适的基质
多肉玉露生长在小石子和珍珠石的过滤排水土壤中。
在种植前，可以在底部放一层砾石以保持排水性能，并在上面铺上排水土壤来种植植物。
3.浇水与干燥
多肉玉露是耐干燥的多肉植物，喜欢通风良好、排水性好的土壤。
浇水时，应以稀释的、淋水式的方式进行，避免泡土。
每次浇水后要等到土壤彻底干燥后再进行下一次浇水。
4.日光照射
多肉玉露需要充足的日照以保持鲜艳的颜色和紧凑的生长。
在室内种植时，选择阳光充足的位置，确保每天至少有6-8小时的阳光照射。
在户外种植时，选择半阴或阳光充足的位置。
5.施肥
6.剪枝与繁殖
7.病虫害防治
多肉玉露比较抗病虫害，但仍然需要定期巡查与防治。
常见的病虫害有蚜虫、蜘蛛螨等。
可以使用肥皂水或专用的杀虫剂进行喷洒，定期清洗叶片，确保植物的健康。
8.适时修剪
多肉玉露生长迅速，需要适时修剪来维持植株的紧凑和美观。
可以修剪过长的枝条和旺盛的新生枝叶，保持植株的形态。
总结：
养殖多肉玉露需要注意光照、浇水、肥料和修剪等方面。
只要提供适宜的生长环境，多肉玉露就可以健康生长。
希望以上的养殖方法能对您养殖多肉玉露有所帮助。
冰灯玉露的组织培养与快速繁殖技术研究
的材 料切 成 带顶芽 或 者腋芽 的小 段 ， 分别 接 到培养 基 上Ｉ １ ｉ 。
把 ２ ｅ ｍ 以上芽苗转入生根培 养基 ， １ ５ ｄ后 统 计 生 根
１ ． ２ ． ２ 培养基 的筛选 。 ① 初代培养 阶段选 用 Ｍ Ｓ ＋ ６ 一 Ｂ Ａ １
ｍｇ ／ Ｌ＋ ＮＡＡ ０ ． ２ ｍｇ ／ Ｌ； ＭＳ＋ ６ － ＢＡ ３ ｍｇ ／ Ｌ＋ ＮＡＡ ０ ． ２ ｍｇ ／ Ｌ； ＭＳ ＋
Ｂ Ａ ３ ｍ ￣ Ｌ ＋ Ｎ Ａ Ａ ０ ． ２ ｍ ＃ Ｌ最 佳 。
２ ． ２ 快速 繁殖 把诱 导出 的芽接到 增殖培 养基 上培养 。 接 种培 养物 ２ ０ ｄ 后， 统 计 每 一接 种 物 的 增 殖 芽数 以 及 ２ ｅ ｍ 以上 芽 苗 数 。 结
获最大 增殖 率 。 ２ ． ３ 生 根 培 养
１ ． ２ ． １ 材 料 选 择 与灭 菌 。 选 择健 壮 的花 茎 ， 去 除 外层 老 叶 ， 在 自来水 下冲 洗 ２ ｈ ， 在 无 菌室 内用 ７ ５ ％酒精 消毒 １ ０ Ｓ ， 再用
０ ． １ 疡升 汞消 毒 ７ ｍｉ ｎ ， 无菌 水 反 复冲 洗 ５ － ６次 。 将 已消 毒 好
打 开瓶 盖炼 苗 ４ — ５ ｄ后 。 取 出洗净 根部 琼脂 并适 当风干 后， 栽入 灭 菌好 的基 质 （ 草 炭： 粗沙： 蛭 石＝ ６ ： ２ ： ２ ） ， 覆盖 塑 料薄
数， 并 据 此 计 算 生根 率 。 结果表明 ： １ ／ ２ ＭＳ ＋ ６ 一 Ｂ Ａ ０ ． １ ａｇ ｒ ／ Ｌ ＋ Ｉ Ｂ Ａ２ ｍｇ ／ Ｌ更 有利 于 生根 培 养 ， 生 根 率达 ７ ５ ％以 上 ， 每 株 有
根 ３ ￣ ４条［ ２ － ３ １ 。
姬玉露的组织培养与快速繁育技术研究
叶片 ，用 自来水冲洗 ２～３ ｈ，置于超净工作台下用 培 养基 。在前 期 筛选 好 的诱 导 分化 培 养基基 础 上 添
７５％的无 水 乙醇 消 毒 １０ ｒａｉｎ，然 后用 ０．１％的升 汞 浸 加 不 同浓 度 的 ＩＢＡ筛选 生根 培养 基 。生根 培养 基 共
泡 消 毒 ７～８ ｍｉｎ，滤 掉 升 汞 ，再 用 无 菌 水 清洗 ５次 ， 设 ４个处 理 ，ＩＢＡ浓度 分别 为 ０ ｍｇ／Ｌ、１ ｍｇ／Ｌ、２ ｍｇｎ 、
姬 玉露 幼嫩 的新 生 叶片 。
并 统计 愈 伤组 织诱 导 情况 ，４周 后 结 束统 计 ，并 进 行
１．２试 验 方 法
数 据处 理 和分析 。
１．２．１ 材料 的选择 与准备 选 择幼 嫩 的姬 玉露 新 生 １．２．４ 生根 培 养基 的 筛选 生 根培 养基 使 用 Ｉ／２ＭＳ
园ｖ
林 园 艺
ａ
姬玉露 的组织培 养与快 速繁育技术研 究
王 婷 ，马彦军
（甘 肃农业 大学林 学院 ，甘肃 兰州 ７３００７０）
摘 要 ：在 ＭＳ培养基 基 础上 ，以 ６－ＢＡ 和 ＮＡＡ 两种 激 素 的不 同浓度 配 比为 水平 ，设 计 正 交试验 。结果
表 明：ＭＳ培 养基中添加 ３．０ ｍｇ／Ｌ的 ６－ＢＡ和 ０．１ ｍｇ／Ｌ的 ＮＡＡ，最有利 于姬 玉露愈伤组织分化 ；１／２ＭＳ的
体数 最多 ，达 ３３个 。当 ６－ＢＡ浓度 为 ４ ｍｇ／Ｌ时 ，姬 玉 各 指标性 状最 差 ；但 随着 ＮＡＡ浓度 的不 断增 大 ，不
露 愈 伤 组 织 分 化 的 外 植 体 数 量 明显 减 少 ，但 随 着 定 芽 的平 均 长度逐 渐增 长 ，外植体 的不 定芽 数也 逐
玉露繁殖的方法与技巧
玉露繁殖的方法与技巧
玉露繁殖的方法与技巧主要有以下几种：
1. 分株繁殖：将成熟的玉露植株拔出，用锋利的工具将根部分离成多个小苗，然后将小苗重新种植到花盆或园地中。
2. 茶条繁殖：选择健康的玉露植株，将嫩茶条从主茶株上剪下，切成等长的茶条，然后插入湿润的砂质土壤中，保持适当湿润，约两个月后可生根成苗。
3. 叶片繁殖：选择健康的玉露植株，将嫩叶或嫩枝从主茶株上剪下，插入湿润的砂质土壤中，保持适当湿润，约两个月后可生根成苗。
4. 种子繁殖：将玉露的成熟种子取出后，清洗干净，然后放在湿润的纸巾上保存两天后进行播种。
播种前需选择适宜的种植介质，如珍珠岩、蛭石、菜心等，对土壤进行消毒处理，再将种子均匀地撒在种植介质上，轻轻覆盖一层薄土，保持适当湿润，约十天后种子可以发芽。
技巧：
1. 选择健康的植株进行繁殖，确保父本植株无病虫害。
2. 繁殖时需注意保持适宜的湿度和温度，保持土壤湿润但不过多浇水，避免水分积聚导致根失活。
3. 在繁殖过程中，注意了解玉露植株生长的适宜条件，如光照、温度、肥料等，
为根苗提供适宜的环境。
4. 繁殖后的玉露苗需注意及时灌溉、施肥和防虫害，帮助其健康地生长。
值得注意的是，玉露繁殖需要耐心和细心，同时根据实际情况选择适合的繁殖方式。
多肉植物玉露怎么养
多肉植物玉露怎么养多肉植物玉露怎么养玉露是百合科十二卷属多肉植物、也称多浆植物中的“软叶系”品种。
玉露植株玲珑小巧，种类丰富，叶色晶莹剔透，富于变化，不过玉露要怎么养才饱满呢?以下就是店铺给你做的整理，希望对你有用。
玉露的养殖技术：一、光照对光照较为敏感，若光照过强，叶片生长不良，呈浅红褐色，有时强烈的直射光还会灼伤叶片，留下难看的斑痕。
而栽培场所过于阴蔽，又会造成株型松散，不紧凑，叶片瘦长，“窗”的透明度差，这样的植株很难恢复原来的品相，只能等这批徒长的叶片慢慢脱落，再长出健壮的新叶。
而在半阴处生长的植株，叶片肥厚饱满，透明度高，因此，5～9月可加一层遮阳网，10月至翌年4月要去掉遮阳网，给予全光照。
二、土壤玉露适宜在疏松肥沃，排水透气性良好，含有石灰质，并有较粗颗粒度的沙质土壤中生长。
常用腐叶土2份、粗沙或蛭石3份的混合土栽种，并掺入少量骨粉等。
‘玉露寿锦’、‘毛玉露’等高档品种，还可用赤玉土、兰石、植金石等人工合成材料栽种，但要加入适量的泥炭土，以增加土壤的有机质含量。
三、浇水生长期浇水掌握不干不浇，浇则浇透的原则，避免积水，更不能雨淋，尤其是不能长期雨淋，以避免烂根。
但也不宜长期干旱，否则植株虽然不会死亡，但叶片干瘪，叶色黯淡。
空气干燥时可经常向植株及周围环境喷水，在生长季节可用剪去上半部的透明无色饮料瓶将植株罩起来养护，使其在空气湿润的小环境中生长，可使叶片饱满，“窗”的透明度更高。
但夏季高温季节一定要把饮料瓶去掉，以免因闷热潮湿导致植株死亡。
四、施肥在生长期对于长势旺盛的植株可每月施一次腐熟的稀薄液肥或低氮高磷钾的.复合肥，新上盆的植株或长势较弱的植株则不必施肥。
夏季高温或者冬季温度较低时的休眠期也不必施肥。
施肥时间宜选择天气晴朗的上午或傍晚。
五、翻盆由于玉露的根系会分泌酸性物质，造成土壤酸化，使根部老化中空，可每年春季或秋季换盆一次。
生长期如果发现植株生长停滞，叶片干瘪，很可能是根系损坏，应及时翻盆整理根系。
多肉植物原始玉露品种改良方法的研究
多肉植物原始玉露品种改良方法的研究陈梅香ꎬ宋正达(江苏省中国科学院植物研究所南京中山植物园ꎬ江苏南京㊀２１００１４)㊀收稿日期:２０１９￣１０￣１０㊀㊀修回日期:２０１９￣１１￣０５㊀第一作者简介:陈梅香(１９８１￣)ꎬ女ꎬ福建莆田人ꎬ硕士ꎬ主要从事从肉植物研究和繁殖工作ꎮ㊀通信作者:宋正达(１９６２￣)ꎬ男ꎬ江苏张家港人ꎬ高级实验师ꎬ主要从事多肉植物研究和繁殖工作ꎮ摘㊀要:提出原始玉露的育种新的方法:采用紫外线照射ꎬ解决了从种苗㊁紫外线灯的选择㊁紫外线照射室的制作㊁紫外线照射时环境条件的选择㊁紫外线灯对原始玉露照射的方法㊁时间㊁紫外线照射后原始玉露管理㊁玉露新品种的筛选等流程的关键技术ꎬ是原始玉露品种改良的一种新的快速方法ꎮ关键词:原始玉露ꎻ多肉植物ꎻ紫外线ꎻ品种改良ꎻ照射时间㊀㊀原始玉露(Ｈａｗｏｒｔｈｉａｃｏｏｐｅｒｉｖａｒ.ｇｏｒｄｏｎｉａｎａ)为十二卷属(Ｈａｗｏｒｔｈｉａ)著名多肉盆栽观赏植物ꎬ原产于南非ꎬ玉露植株玲珑小巧ꎬ种类丰富ꎬ叶色晶莹剔透ꎬ富于变化ꎬ如同有生命的工艺品ꎬ十分可爱ꎮ二十世纪末ꎬ一些多肉爱好者开始引进玉露作为盆栽观赏ꎬ笔者从２００５年开始从南非引进原始玉露种苗进行盆栽引种驯化试验ꎬ并进行原始玉露的育种工作ꎮ玉露的育种目前有二种常规方法:杂交育种和自然变异ꎮ笔者寻找原始玉露的新的育种方法来进行原始玉露品种改良ꎮ笔者采用紫外线灯连续照射和非连续照射ꎬ从种苗㊁紫外线灯的选择㊁紫外线照射室的制作㊁环境条件㊁原始玉露照射后养护管理㊁玉露新品种的筛选等关键流程的试验ꎬ取得了成功ꎮ１㊀材料与方法１.１㊀材料种苗:选取苗龄３~５年生原始玉露苗ꎬ要求生长健壮ꎬ无病虫害ꎮ紫外线灯:选用双管紫外线灯(每管３６Ｗ)ꎬ总功率７２Ｗꎮ紫外线照射室的制作:采用０.５ｃｍ玻璃制作１５０ｃｍ(长)ˑ８０ｃｍ(宽)ˑ７０ｃｍ(高)照射室ꎬ将１２０ｃｍ(长)ˑ９ｃｍ(宽)双管紫外线灯固定在照射箱顶部正中央ꎮ１.２㊀方法每次试验２００盆(７ｃｍˑ７ｃｍˑ７.５ｃｍ)ꎮ紫外线照射时环境条件:在阳光板配备温室内ꎬ最低温度８ħꎬ最高温度２５ħꎬ全光照ꎮ照射方法:连续照射与非连续照射ꎬ连续照射时间:２４ｈ㊁４８ｈ㊁７２ｈ㊁８６ｈ㊁９６ｈꎮ非连续照射时间１２ｈ＋７ｄ太阳光照射＋１２ｈ㊁２４ｈ＋７ｄ太阳光照射＋２４ｈ㊁３６ｈ＋７ｄ太阳光照射＋３６ｈ㊁４３ｈ＋７ｄ太阳光照射＋４３ｈ㊁４８ｈ＋７ｄ太阳光照射＋４８ｈꎮ２㊀结果与分析２０１６年１２月１日下午４:００ꎬ在江苏省中国科学院植物研究所(南京中山植物)阳光板配备温室内选取生长健壮ꎬ无病虫害苗龄３~５年生原始玉露苗２０００盆ꎬ平均放到装有双管紫外线灯(总功率７２Ｗ)１０个照射室内ꎬ紫外线灯至原始玉露垂直距离为５０ｃｍꎬ打开紫外线灯ꎬ按连续照射时间:２４ｈ㊁４８ｈ㊁７２ｈ㊁８６ｈ㊁９６ｈ和非连续照射时间:１２ｈ＋７ｄ太阳光照射＋１２ｈ㊁２４ｈ＋７ｄ太阳光照射＋２４ｈ㊁３６ｈ＋７ｄ太阳光照射＋３６ｈ㊁４３ｈ＋７ｄ太阳光照射＋４３ｈ㊁４８ｈ＋７ｄ太阳光照射＋４８ｈꎬ进行试验ꎬ到时后ꎬ关上紫外线灯ꎬ将原始玉露取出放在阳光板配备温室内ꎮ原始玉露照射后２０ｄ内不能浇水ꎬ２０ｄ后１５ｄ浇一次水ꎬ温度控制在８~３０ħ之间ꎬ４月初不断有新叶长出ꎬ老叶叶尖开始变焦ꎬ部分玉露新叶产生了变异ꎮ４月以后１０ｄ浇一次水ꎬ夏季７ｄ浇一次水ꎬ上午９:００至下午４:００用具６０％遮阳网遮阳ꎮ梅雨季节停止浇水ꎮ８个月后ꎬ对十个试验原始玉露的生长和变异情况进行统计(见表１ꎬ表２)ꎬ正常原玉露叶尖有顶毛ꎬ叶片尖ꎬ窗体小ꎬ窗体线条多ꎬ不透明ꎬ通过紫外线灯连续照射试验(表１)ꎬ原始玉露在８６ｈ紫外线灯照射下ꎬ３０％玉露叶片圆头㊁窗体大㊁透明㊁窗体线条变少㊁清晰ꎬ产生有益的变异ꎬ从中筛选性状比较稳定成为新品种的摇篮ꎻ通过紫外线灯非连续照射试验(表２)ꎬ原始玉露在４３ｈ＋７ｄ太阳光照射＋４３ｈ下ꎬ２０％玉露叶片圆５１ 陕西农业科学２０２０ꎬ６６(０１):１５－１６㊀㊀㊀㊀㊀㊀㊀㊀㊀㊀㊀㊀㊀㊀㊀㊀㊀㊀ＳｈａａｎｘｉＪｏｕｒｎａｌｏｆＡｇｒｉｃｕｌｔｕｒａｌＳｃｉｅｎｃｅｓ头㊁窗体大㊁透明㊁窗体线条变少㊁清晰ꎬ原始玉露在４８ｈ＋７ｄ太阳光照射＋４８ｈ下ꎬ５０％玉露叶片圆头㊁窗体大㊁透明㊁窗体线条变少㊁清晰ꎬ产生新的变异ꎮ表１㊀紫外线灯连续照射试验原始玉露的生长和变异情况紫外线灯照射时间/ｈ试验结束１ｄ生长和变异情况试验结束７ｄ生长和变异情况试验结束３０ｄ生长和变异情况试验结束２４０ｄ生长和变异情况２４正常正常正常正常４８正常正常正常正常７２正常正常正常正常８６正常叶尖变焦叶尖变焦面积变大ꎬ心叶开始长出ꎮ２０％玉露死亡ꎮ３０％玉露叶片圆头㊁窗体大㊁透明㊁窗体线条变少㊁清晰ꎬ５０％玉露有变化ꎮ９６死亡死亡死亡死亡表２㊀紫外线灯非连续照射试验原始玉露的生长和变异情况紫外线灯照射时间/(ｈ)＋太阳光照射/(ｈ)＋紫外线灯照射时间/ｈ试验结束１ｄ生长和变异情况试验结束７ｄ生长和变异情况试验结束３０ｄ生长和变异情况试验结束２４０ｄ生长和变异情况１２＋１６８＋１２正常正常正常正常２４＋１６８＋２４正常正常正常正常３６＋１６８＋３６正常正常正常正常４３＋１６８＋４３正常正常叶尖变焦ꎬ心叶开始长出ꎮ２０％玉露叶片圆头㊁窗体大㊁透明㊁窗体线条变少㊁清晰ꎬ３０％玉露有变化ꎮ５０％玉露无变化４８＋１６８＋４８叶尖变焦叶上部１/３变焦叶变焦面积继续变大ꎬ心叶开始长出ꎮ１０％玉露死亡ꎮ５０％玉露叶片圆头㊁窗体大㊁透明㊁窗体线条变少㊁清晰ꎬ４０％玉露叶形有变化ꎮ㊀㊀紫外线灯非连续照射试验能有效增加原始玉露的数量ꎬ从试验可知４８ｈ＋７ｄ太阳光照射＋４８ｈ非连续照射试验原始玉露的产生变异明显高于８６ｈ连续照射试验ꎮ３㊀结论(１)紫外线照射是原始玉露的育种新的方法ꎬ不仅能大大缩短玉露的育种周期ꎬ而且产生很多有益的变异ꎬ有好的经济和社会效益ꎮ玉露的育种目前有二种常规方法:杂交育种和自然变异ꎬ该试验用紫外线灯照射原始玉露成功为人们提供了一种快速育种新方法ꎮ(２)采用合适的紫外线照射强度和时间是原始玉露品种改良成功的关键ꎮ从上面试验可知:原始玉露致死之前照射强度和时间的组合是原始玉露品种变异的最佳点ꎬ掌握和设计好这个尺度就能达到预期的目标ꎮ(３)紫外线灯连续照射与紫外线灯非连续照射:从表１㊁表２可以看出非连续照射产生有益变异多于连续照射ꎬ非连续照射是紫外线灯照射人工诱变和太阳光照射的自然变异组合ꎬ它能有功效地缓解紫外线对植物杀伤作用ꎬ增加变异频率ꎮ(４)原始玉露紫外线灯照射时的环境㊁照射后的养护管理及品种的筛选也很重要:１２月初ꎬ南京正值冬季ꎬ由于在温控阳光板温室内进行(８~２５ħ)ꎬ大的温差试验的进行ꎬ严格地按上面条件养护能快的恢复伤害㊁长出新叶ꎬ品种的筛选能稳定有益的变异ꎬ进行原始玉露的品种改良ꎮ(５)原始玉露品种改良方法可用于其它植物ꎬ但效果有待试验ꎮ参考文献:[１]㊀王成聪ꎬ等.仙人掌与多肉植物大全[Ｍ].武汉:华中科技大学出版社ꎬ２０１１.[２]㊀朱亮锋.多肉植物[Ｍ].广州:南方日报出版社ꎬ２０１１.[３]㊀李梅华ꎬ刘耿豪.多肉植物仙人掌种植活用百科[Ｍ].汕头:汕头大学出版社ꎬ２００４.[４]㊀成雅京ꎬ赵世伟ꎬ揣福文.仙人掌与多肉植物赏析与配景[Ｍ].北京:化学工业出版社ꎬ２００８.[５]㊀宋正达ꎬ朱洪武ꎬ陈梅香.龙舌兰属三种多肉植物的耐寒性试验[Ｊ].黑龙江农业科学ꎬ２０１４(１１):１７４.[６]㊀宋正达ꎬ陈梅香.浓白笹之雪开花结果及播种育苗技术的研究[Ｊ].陕西农业科学ꎬ２０１５(０７):３６￣３７.[７]㊀宋正达ꎬ陈梅香.多肉植物蒂亚定制栽培与色彩变化的研究[Ｊ].陕西农业科学ꎬ２０１６(１０):１６￣１７.６１ 陕西农业科学２０２０年第６６卷第０１期。
玉露繁殖方法
玉露繁殖方法玉露，又名玉露草、玉露藤，是一种常见的盆栽植物，其叶片呈心形，叶色翠绿，叶片上布满了银白色斑点，十分美丽。
玉露不仅具有观赏价值，而且还具有一定的药用价值，因此备受人们喜爱。
那么，玉露的繁殖方法是怎样的呢？接下来，我们就来详细了解一下。
首先，玉露的繁殖方法有许多种，其中最为常见的方法包括扦插法、分株法和播种法。
扦插法是将玉露的枝条插入湿润的砂质土壤中，等待其生根并长出新叶，然后移栽到盆中。
分株法是将玉露的根茎分开，然后分别移植到新的盆中。
播种法则是将玉露的种子播撒在土壤表面，然后轻轻覆盖一层薄土，保持湿润即可。
这三种方法各有利弊，具体选择哪种方法要根据实际情况来定。
其次，玉露的繁殖需要注意一些问题。
首先是选择适宜的季节，一般来说，春季和秋季是玉露繁殖的最佳季节。
其次是选择适宜的土壤，玉露喜欢疏松、排水良好的土壤，因此在繁殖时要选择质地适宜的土壤。
此外，还需要注意适当的光照和温度，玉露喜欢充足的阳光和温暖的环境，因此在繁殖时要选择合适的光照和温度条件。
最后，玉露的繁殖过程中需要进行适当的管理。
首先是及时浇水，保持土壤湿润但不要过湿，以免导致根部腐烂。
其次是适当施肥，可以选择一些有机肥或者复合肥，每隔一段时间进行一次施肥。
此外，还需要定期修剪，促进玉露的生长和繁殖。
总的来说，玉露的繁殖方法并不复杂，只要掌握了正确的方法和技巧，就能够轻松地进行繁殖。
希望通过本文的介绍，能够帮助大家更好地了解玉露的繁殖方法，让玉露在我们的生活中更加常见和美丽。
玉露的繁殖技术与方法
玉露的繁殖技术与方法玉露（scientific name: Camellia sinensis var. sinensis）是一种常见的茶树品种，被广泛用于制作绿茶、白茶和黄茶。
它的繁殖技术与方法对于园艺爱好者来说是非常重要的。
本文将介绍玉露的繁殖技术和方法，帮助读者更好地了解和掌握这一过程。
一、播种繁殖玉露的播种繁殖是最常见和简单的方法之一。
首先，选择成熟的茶树果实，将果实剖开取出种子。
然后，将种子清洗干净，并在温水中浸泡24小时，以促进种子的发芽。
接下来，将种子放入湿润的培养土中，覆盖薄层土壤，保持适宜的湿度和温度。
约两周后，种子开始发芽，此时应将幼苗移至充足的光照下，继续保持适宜的湿度和温度。
在幼苗长到一定高度后，可以进行移栽。
二、扦插繁殖扦插繁殖是一种常用于繁殖玉露的方法。
首先，选择健康的茶树枝条作为扦插材料，长度约为10-15厘米。
然后，将枝条剪成带有两个至三个叶片的插条，并将插条的下部叶片剪去。
接下来，将插条插入湿润的培养土中，保持适宜的湿度和温度。
约两个月后，插条开始生根，此时可以进行移栽。
三、分株繁殖分株繁殖是一种适用于已经成熟的玉露茶树的繁殖方法。
首先，选择茶树的侧枝或地下茎作为分株材料。
然后，将分株材料剪下，并清洗干净。
接下来，将分株材料移植到适宜的培养土中，保持适宜的湿度和温度。
约一个月后，分株开始生根，此时可以进行移栽。
四、嫁接繁殖嫁接繁殖是一种常用于品种保持和改良的方法。
首先，选择茶树的砧木和接穗。
砧木是一种具有良好生长特性的茶树品种，而接穗则是需要繁殖的茶树品种。
然后，将砧木和接穗进行切割，使其相互匹配。
接下来，用特殊的嫁接胶带将砧木和接穗固定在一起，并将其放置在适宜的环境中。
约一个月后，嫁接部位开始愈合，此时可以进行移栽。
总结起来，玉露的繁殖技术与方法包括播种繁殖、扦插繁殖、分株繁殖和嫁接繁殖。
每种方法都有其特点和适用场景，园艺爱好者可以根据自己的需求和条件选择适合的繁殖方法。
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多肉植物玉露的组培快繁技术研究
作者：王莉
来源：《乡村科技》2017年第24期
[摘 要] 为了提高多肉植物玉露的繁殖效率，满足多肉植物玉露产业快速发展的需求，以
多肉植物草玉露叶片为试验材料进行组织培养与快速繁殖的研究。结果表明：玉露不定芽诱导
培养的最佳培养基为MS+6-BA 3.0 mg/L+NAA 0.1 mg/L，不定芽分化率最高（达到95%）；不
定芽增殖培养的最佳培养基为MS+6-BA 1.0 mg/L+NAA 0.1 mg/L，不定芽增殖分化率最高（达
到380%）；生根诱导效果最佳的培养基是1/2MS+IBA 2 mg/L，生根率最高，达到95%以上。
[关键词] 玉露；组织培养；快速繁殖
[中图分类号] S682.33 [文献标识码] A [文章编号] 1674-7909（2017）24-56-2
植物组织培养也称离体培养，是指将植物体各部分组织，如叶肉组织、胚乳、薄壁组织等
进行培养，从而获得再生植株；也指在培养过程中从各组织上得到愈伤组织，愈伤组织经过再
分化形成再生的完整植株。
1 材料与方法
1.1 试验材料
草玉露作为原材料，以草玉露幼嫩的叶片为外植体进行诱导分化不定芽试验，以2 cm左
右的组培苗进行生根试验。
1.2 试验方法
1.2.1 外植体的取得和灭菌处理。用剪刀剪取草玉露幼嫩的叶片作为外植体，放入烧杯
中，再将其放在水龙头下流水冲洗30 min，然后在洗衣粉水中浸泡7～10 min，最后用自来水
冲洗干净。在无菌室内的超净工作台上，外植体先用75%酒精进行表面消毒2～5 s，再用无菌
水冲洗一两次，然后放入2%次氯酸钠溶液中消毒5～10 min，再用无菌水漂洗两三次，用无菌
滤纸吸干表面水分。将灭菌后的叶片切成0.5 cm切段，分别接种于预先灭菌的培养基上。为
了减少出现杂菌，要在火焰旁进行接种。
1.2.2 培养基及培养条件。以MS培养基作为基本培养基，外加蔗糖30 g/L、琼脂6 g/L，
再根据试验要求加入不同量的植物激素制成试验所需的培养基，调节pH值到5.8。
培养温度为（25±2） ℃，恒温，培养光照为2 000 Lx，每天光照时间不少于10 h。丛生
芽的快速增殖和生根培养条件与此相同。
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1.2.3 诱导分化培养基的筛选。本试验以MS培养基为基本培养基，培养基配方根据两个
因素两个水平正交试验进行设计：其中，A因子为6-BA，设1.5、3.0、4.5 mg/L 3个水平，B
因子为NAA，设0.0、0.1、0.2 mg/L 3个水平。将切好的玉露外植体接种到培养基中，每瓶接
种4个外植体，每个处理接种10瓶。接种后按照上述培养条件进行培养，30 d后进行统计。
根据叶片外植体上再生出的不定芽数量及生长状况，经过比对，得出最适分化培养基配方。
2 结果与分析
2.1 不同激素浓度配比对芽诱导分化的影响
本试验探讨了6-BA与NAA的不同浓度配比对玉露不定芽分化的影响。结果表明（见表
1）：当6-BA的浓度不变时，随着NAA浓度的增加，不定芽增殖率大体趋势是增加的；当
NAA的浓度不变时，随着6-BA浓度的增加，不定芽增殖率大体趋势是增加的，但也有一定的
浓度范围。部分培养基出现了污染的情况，外植体在该培养基上萌芽较快，不定芽分化率最高
（达到95%），每个外植体诱导出的单芽数最多为12.2，单芽形态粗壮且正常。经过10 d左
右的培养，玉露叶片外植体明显增厚变大，部分切口还出现了绿色的愈伤组织，但也有部分外
植体愈伤组织不明显，30 d左右会从外植体边缘分化，形成不定芽。不定芽诱导培养的最佳培
养基配方为MS+6-BA 3.0 mg/L+NAA 0.1 mg/L+蔗糖30 g/L+琼脂6 g/L，pH=5.8。
2.2 不同激素浓度配比对芽增殖的影响
不定芽增殖不同处理的培养结果如表2所示。结果表明：当6-BA的浓度不变时，随着
NAA浓度的增加，不定芽增殖率大体趋势是增加的；当NAA的浓度不变时，随着6-BA浓度
的增加，不定芽增殖率大体趋势是增加的，但也有一定的浓度范围。培养30 d后，在不定芽
的基部可继续分化并形成8～10个单芽，这样每个外植体的不定芽都得到了大量增殖，不定芽
增殖培养的最优培养基配方为MS+6-BA 1.0 mg/L+IBA 0.1 mg/L+蔗糖30 g/L+琼脂6 g/L，
pH=5.8，不定芽在该培养基上增殖分化率最高（达到380%），每个外植体诱导增殖出的不定
芽平均数达到11.5个，不定芽的平均长度达到1.1 cm，单芽生长状况最好，不定芽粗壮，部
分芽也可长成小苗。
2.3 不同IBA浓度对芽生根的影响
本试验将长至2 cm以上的无根试管苗，转接到生根培养基中。以不加激素的1/2MS培养
基为参照，对比添加不同浓度的IBA后，统计不定芽的生根率，得出最优配比。由表3可以得
出，在未加激素的1/2MS培养基中，不定芽也会分化出根，但生根率较低，仅为23.3%，每个
芽上诱导出的根数很少，平均只有1条，根长平均1.81 cm。加入一定浓度的IBA可以促进于
玉露不定芽分化形成根，以1/2MS+IBA 2 mg/L+蔗糖30 g/L+琼脂6 g/L（pH=5.8）的生根培养
基效果最佳，此条件下玉露每个芽上诱导出的平均根数为4条，根长平均3.64 cm，试管苗的
生根率高，达到95%以上。
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3 结论
本研究结果表明：草玉露不定芽诱导培养的最佳培养基为MS+6-BA 3.0 mg/L+NAA 0.1
mg/L，不定芽分化率最高，达到95%；不定芽增殖培养的最佳培养基为MS+6-BA 1.0
mg/L+IBA 0.1 mg/L，不定芽增殖分化率最高，达到380%；试管苗的生根培养试验，生根效果
最佳的培养基是1/2MS+2 mg/L IBA，生根率最高，达到95%以上。