兽药小鼠骨髓细胞微核试验指导原则
为了确保小鼠骨髓细胞微核试验结果的真实性、可靠性和可追溯性，根据新 兽药研究的规律，结合国内兽药毒理学评价的实际情况制定了本指导原则。
（二）适用范围
本指导原则适用于兽用化学药品、中兽药、消毒剂及饲料药物添加剂的哺乳 动物体细胞遗传毒性检测。
二、试验设计
（一）材料与方法
1.实验动物 SPF小鼠，7～12周龄，体重25～30g，100只左右，雌、雄各半。 2.试剂 （1）致突变阳性对照物 环磷酰胺，分析纯以上，含量不低于98.5%。
（2）其他试剂 甲醇：分析纯； 甘油：分析纯； 磷酸二氢钾：分析纯； 磷酸氢二钠：分析纯； 姬姆萨（Giemsa）染料：分析纯； 小牛血清：分析纯。 过滤除菌后放入56℃恒温水浴中保温1h进行灭活。储存于4℃冰箱或冰盒里 备用。 （3）Giemsa 贮备液配制 称取Giemsa染料3.80g于研钵中，加入375 mL甲醇（分析纯）一起研磨，待 完全溶解后再加入125 mL甘油。移入试剂瓶内，置37℃恒温箱保温48h，其间振 摇数次, 两周后过滤可用。 （4）1/15mo1/L 磷酸盐缓冲液（pH6.8）配制 分别称取磷酸二氢钾（KH2PO4）9.08g和磷酸氢二钠（Na2HPO4.12H2O） 23.88g，加蒸馏水980mL溶解，用酸度计调整pH至6.8，转入1000mL容量瓶，用 蒸馏水定容至1000mL。 （5）Giemsa 工作液配制 取1份Giemsa贮备液与6份1/15mo1/L磷酸盐缓冲液（pH6.8）混合即成，临用 时配制。 3.仪器设备 （1）台式离心机 （2）生物显微镜（带 100×油镜头） （3）恒温水浴（温控误差士 0.5℃） （4）细胞计数器 （5）解剖器械、载玻片、注射器、灌胃针头等实验室常用仪器设备
2.实验动物饲养环境要求达到 SPF 级。
三、试验报告
为公正、科学地评价药物的特殊毒性，对试验报告内容做如下要求： 1.试验目的。 2.试验时间与地点。 3.试验设计者、负责人、参加者及电子邮箱。 4.受试药物需注明兽药名称、生产厂家、规格、生产批号及用法与用量。 5.试验动物的品种与品系、体重、日龄或月龄、健康状况、检疫情况等。 6.归纳总结该药物的试验结果，评价受试药物的致突变作用。 7.参考文献。 8.试验数据，应有详细的试验原始记录。原始资料保存处、联系人、电话。 9.试验单位（加盖公章）。
（四）结果评价
1.小鼠的正常 PCE/RBC 值约等于 1，正常范围为 0.6～1.2。如果比值小于 0.1，则表示 PCE 形成受到严重抑制；如比值小于 0.05，则表示受试药物的剂量 过大，试验结果不可靠，须重新设计剂量进行试验。
2.阴性对照组和阳性对照组小鼠嗜多染红细胞的微核率应与试验所用阳性 对照物、动物种属品系的文献报道或者与本实验室研究的历史数据相一致。一般 阴性对照组的微核率小于 5‰。
兽药小鼠骨髓细胞微核试验微核试验是通过测量微核率来评价染色体损伤的一种细胞遗传学方法。微核 是在细胞的有丝分裂后期染色体有规律地进入子细胞形成细胞核时，仍然滞留在 细胞质中的染色单体或染色体的无着丝粒断片或环。它在末期以后，单独形成一 个或几个规则的次核，包含在细胞的胞质中，由于比核小得多故称微核。这种情 况的出现往往是受到染色体断裂剂作用的结果。另外，也可能在受到纺锤体毒物 的作用时，主核没有能够形成，代之以一组小核。此时小核往往比一般典型的微 核稍大。
3.试验组与对照组相比，如试验组小鼠嗜多染红细胞的微核率与阴性（溶剂） 对照组结果比较有显著性差别，并且呈现剂量-反应关系，即可判定受试药物微
核试验结果阳性，即受试药物有致突变； 若统计学上虽有显著性差别，但无剂 量反应关系，则须进行重复试验。如试验结果能重复，则也判断为阳性。
（五）注意事项
1.除特别注明外，试验用水为蒸馏水，试剂为分析纯试剂，动物为 SPF 实验 动物。
2.受试药物溶液配制 根据受试药物理化性质，选定溶剂，将受试药物配制成水溶液（或乳化剂、 混悬液、糊状物等）。必要时加入增溶剂或助悬剂（如吐温-80、淀粉、羧甲基 纤维素钠等）。 各剂量组受试药物溶液可采用2倍递次稀释法配制。根据受试药物的小鼠 LD50，按小鼠0.1～0.2mL/10g体重受试药物给予体积要求，先确定1/2 LD50剂量 组（即高剂量组）受试药物溶液需配制的浓度，再确定各剂量组所需受试药物溶 液体积，以及将1/2 LD50剂量组受试药物溶液作为初始溶液需配制的体积，计算 配制溶液时需称取/量取受试药物的量。 用天平或移液管，称取或量取受试药物置烧杯内，加入适量选定的溶剂溶解 或稀释，转入容量瓶内，混匀并定容，即获得1/2 LD50剂量组（高剂量组）所需 浓度的受试药物溶液。用量筒分取1/2体积的溶液供1／2 LD50剂量组给药，向原 溶液中加入同体积的溶剂，混匀后溶液正好是1/4 LD50剂量组（中剂量组）所需 的剂量浓度；用量筒分取1/2体积的溶液供1/4 LD50剂量组给药，再加入同体积的 溶剂，混匀后溶液正好是1/8LD50剂量组（低剂量组）所需的剂量浓度，可供其 给药。 3.试验动物称重、标记编号和分组 将购置的小鼠饲养观察1周。选择健康雌、雄小鼠各40只，分别进行标记编 号和称重，采用完全随机法，分别将雌、雄小鼠分为5组，每组雌、雄各8只。 4.给药 按受试药物给予要求，采用灌胃（或注射）给药，给药两次，两次给药间隔 24h。每次给药先称取小鼠体重， 按0.1～0.2mL/10g要求给予小鼠受试药物剂体 积，用注射器吸取受试药物溶液通过灌胃（或注射）对各小鼠进行给药。
5.标本制备 在第二次给予受试药物6h后，采用颈椎脱臼法每组各处死雌鼠和雄鼠不少于 5只。按下列方法制片： （1）取下每只小鼠的两侧股骨，剔去肌肉，用滤纸或纱布擦去表面血污， 剪去股骨两端。用配有6号针头的1mL注射器吸取小牛血清约0.2～0.5mL冲洗骨 髓腔数次，将冲洗物滴在已对应编号的载玻片上。 （2）将玻片上的骨髓腔冲洗物调匀后，推片，每只小鼠2～3张，迅速干燥 （可在酒精灯上短时烘烤）。 （3）将干燥的涂片置甲醇中固定5～10min，取出晾干。 （4）固定好的涂片用吉姆萨应用液染色15～30min，蒸馏水冲洗，晾干，待 检。 6.阅片 用双盲法阅片。先用低倍镜观察涂片, 以有核细胞形态完好作为判断制片优 劣的标准。选择细胞完整、分散均匀，着色浓淡适中的区域，用油镜观察。Giemsa 染色法嗜多染红细胞（PCE）呈灰蓝色，成熟红细胞（RBC））呈粉红色。典型 微核呈圆形、边缘光滑整齐，嗜色性与核质一致呈紫红色或蓝紫色，直径通常为 主核的1/20～1/5。 每只小鼠涂片计数 PCE 细胞 1000 个以上，观察并计数其中含有微核的 PCE 细胞（一个 PCE 细胞中出现两个或多个微核时仍按一个微核细胞计算）。另外， 观察计数 PCE 时，在同一视野下也对成熟红细胞（RBC）进行观察计数。并记 录各组每只小鼠嗜多染红细胞（PCE）检查数、含微核 PCE 细胞数、成熟红细 胞（RBC）数等。
（三）数据整理与分析
1.分别计算雌、雄小鼠各试验组的嗜多染红细胞（PCE）数、含微核嗜多染
红细胞数及成熟红细胞（RBC）数，将计算结果列入下表：
组别
动物 PCE 检查数 含微核 PCE 数
RBC 数
数
阴性（溶剂）对照 阳性对照 2.按下列公式计算雌、雄小鼠各试验组的 PCE 微核率和 PCE/RBC 值，同时
计算各自的标准差，将结果列入下表中：
嗜多染红细胞微核率＝
含微核PCE数 PCE检查数
×1000‰
PCE/RBC比值＝
PCE 检查数 RBC数
组别
剂量
PCE/RBC PCE 微核率 差异显
动物数
（mg/kg 或 mL/kg）
比值
（‰） 著性
…... 阴性（溶 剂）对照 阳性对照
3.利用卡方检验分析致突变阳性对照组以及 3 个试验组小鼠 PCE 微核率与阴 性（溶剂）对照组结果的差异显著性。
（二）试验步骤
1.剂量组设计
设3个剂量组，即1/2LD50 、1/4LD50、1/8LD50，当受试药物LD50大于5000mg/kg （或mL/kg）时，试验组高剂量设为5000mg/kg（或mL/kg），将2500mg/kg（或 mL/kg）和1250mg/kg（或mL /kg）分别设为中剂量和低剂量；另外设1个阴性(溶 剂)对照组和1个阳性对照组。阳性对照物可选用环磷酰胺，剂量为40mg/kg体重， 经口给予。每组小鼠16只，雌、雄各半，确保给药后雌、雄小鼠至少各存活5只 供采样、制片。
实验五小鼠骨髓细胞微核试验
小鼠骨髓细胞的采集与处理
小鼠麻醉
将小鼠麻醉，并固定在 操作台上。
暴露骨髓
用消毒手术刀切开小鼠 的腿骨，暴露骨髓腔。
采集骨髓细胞
用注射器吸取生理盐水， 冲洗骨髓腔，收集骨髓
细胞。
细胞处理
将采集的骨髓细胞进行 洗涤、离心、分离等处 理，得到所需的细胞样
本。
骨髓细胞的培养与观察
细胞培养
将处理后的骨髓细胞接种在细胞 培养皿中，加入适量的细胞培养 基，在适宜的温度和湿度条件下 进行培养。
率之间存在正相关关系。
本实验为进一步研究致突变物的 致突变作用提供了有力证据，有 助于深入了解致突变物的致癌机
制。
对实验结果的理解与讨论
本实验结果表明，致突变物能够诱导小 鼠骨髓细胞微核的形成，这可能是致突 变物导致基因突变和细胞恶性转化的重 要机制之一。
实验结果还提示，致突变物的致突变作用可 能与其在体内的代谢活化有关，因此需要进 一步研究致突变物的代谢活化过程及其与微 核形成之间的关系。
实验五小鼠骨髓细胞 微核试验
目录
CONTENTS
• 实验目的 • 实验原理 • 实验步骤 • 实验结果分析 • 结论与讨论
01 实验目的
了解微核试验的原理
微核试验是一种用于检测染色体畸变和DNA损伤的细胞遗传 学方法。它通过观察细胞中微核（微小的细胞核）的数量， 来评估细胞受到的遗传损伤程度。
染色体结构畸变
分析实验组和对照组的染色体结构畸变类型，如断裂、倒位、重 复等。
染色体数目畸变
观察染色体数目畸变情况，包括非整倍体、多倍体等。
畸变类型与实验条件关系
探讨不同实验条件下染色体畸变类型的差异及其与实验条件的关系。
实验结果与预期结果的比较
骨髓细胞微核试验
骨髓细胞微核试验(保健食品)1.实验动物小鼠是微核试验的常规动物，也可选用大鼠。
通常用7周~12周龄，体重25g~30g的小鼠或体重150 g~200 g的大鼠。
每组用两种性别的动物至少各5只。
动物购买后适应环境至少3天。
2．剂量及分组受试物应设三个剂量组，最高剂量组原则上为动物出现严重中毒表现和/或个别动物出现死亡的剂量，一般可取1/2LD50，低剂量组应不表现出毒性，分别取1/4LD50和1/8LD50作为中、低剂量。
急性毒性试验给予受试物最大剂量（最大使用浓度和最大灌胃容量）动物无死亡而求不出LD50时，高剂量组则按以下顺序：a) 10g/kg体重; b)人的可能摄入量的100倍;或c) 一次最大灌胃剂量进行设计，再下设中、低剂量组。
另设溶剂对照组和阳性对照组。
阳性对照物可用环磷酰胺40mg/kg体重经口或腹腔注射(首选经口)给予。
3．操作步骤3.1 受试物配制一般用蒸馏水作溶剂，如受试物不溶于水，可用食用油、医用淀粉、羧甲基纤维素等配成乳化液或悬浊液。
受试物应于灌胃前新鲜配制，除非有资料表明以溶液(或悬浊液、乳浊液等)保存具有稳定性。
3.2 实验动物的处理经口灌胃。
根据细胞周期和不同物质的作用特点，可先做预试，确定取材时间。
常用30h给受试物法。
即两次给受试物间隔24h，第二次给受试物后6h，颈椎脱臼处死动物。
3.3 标本制备取胸骨或股骨,用止血钳挤出骨髓液与玻片一端的小牛血清混匀,常规涂片,或用小牛血清冲洗股骨骨髓腔制成细胞悬液涂片,涂片自然干燥后甲醇固定5~10min。
当日固定后保存。
将固定好的涂片放入Gleams应用液中，染色10~15 min，立即用pH6.8的磷酸盐缓冲液或蒸馏水冲洗、晾干。
写好标签，阴凉干燥处保存。
3.4 阅片选择细胞完整、分散均匀、着色适当的区域,在油镜下观察。
以有核细胞形态完好作为判断制片优劣的标准。
本法系观察嗜多染红细胞的微核。
用Giemsa染色法，嗜多染红细胞呈灰蓝色，成熟红细胞呈粉红色。
兽药临床前毒理学评价试验指导原则
兽药临床前毒理学评价试验指导原则一、概述（一）定义与目的为保障新兽药对使用对象动物（靶动物）的安全，特别是人的食品消费安全，必须对临床前兽药的毒理学（或安全性）进行评价。
目前，对兽药的安全性进行评价一般采取毒理学评价方法，包括三性（急性、亚慢性、慢性毒性）试验和三致（致突变、致畸、致癌）试验，以预测新兽药的安全性。
临床前药物毒理学评价的目的是预测临床用药的安全性，为临床试验提供可靠的参考。
毒理学评价结果不但为最后确定该化合物是否可以作为新兽药使用提供科学依据，还是制订动物性食品中最高残留限量（MRL）的重要依据。
（二）适用范围本指导原则适用于评价兽用化学药品（化学合成药、抗生素、药物饲料添加剂）及消毒剂临床前的安全性。
二、毒理学评价程序及内容兽药毒理学评价试验一般分为五个阶段，具体研究内容如下：（一）第一阶段：急性毒理学试验阶段的测定：所有用途的原料药必做；1.经口LD50的测定：注射用原料药必做，肌注、皮下注射或腹腔注射2.注射途径LD50途径任选一种；3.经皮LD的测定：供皮肤给药的原料药必做；504.皮肤刺激试验：供注射和透皮吸收的制剂必做；5.肌肉刺激试验：供肌内注射的制剂必做；6.眼结膜刺激试验：眼科用、喷雾和易挥发的制剂必做；7.粘膜刺激试验：子宫注入剂、喷雾和易挥发的制剂必做；8.溶血性试验：静脉注射用制剂必做。
（二）第二阶段：亚慢性毒性试验阶段研究内容有：30～90天亚慢性毒性试验：所有原料药必做；（三）第三阶段：致突变试验阶段原料药必做此阶段试验，各种制剂可不做此阶段试验。
1.Ames试验，必做；2.小鼠骨髓细胞微核试验，必做；3.小鼠精子畸形试验或睾丸精原细胞染色体畸变分析试验任选一项，必做；4.小鼠骨髓细胞染色体畸变分析试验，必要时选做；5.显性致死试验，必要时选做；以上致突变试验的组合必须考虑原核细胞和真核细胞、生殖细胞与体细胞、体内和体外试验相结合的原则，任何原料药不能低于三项，必要时做四至五项；如果在1～3项试验有阳性结果或可疑时，可选做第4、5项试验。
小鼠骨髓细胞微核试验讲解学习
染毒途径：经口、经皮、经呼吸道、注射。
染毒次数：多次染毒法（每天染毒一次，连续4天，第五天取样） 两次染毒法（第一次染毒24h后进行第二次染毒，6h取样）
五、操作步骤
本次实验染毒处理： 环磷酰胺
剂量：0.8mg/10g 每次染毒(腹腔注射） 次数：多次染毒法（4次）----最佳浓度及作用时间
五、操作步骤
骨髓液制备 ↓
涂片 ↓
染色 ↓
观察与计数
五、操作步骤
骨髓液制备及涂片 猝死：颈椎脱臼、麻醉 取组织：胸骨、股骨 获取骨髓液：在胎牛血清中迅速制取骨髓液 涂片：均匀
五、操作步骤
染色 涂片充分晾干后 染色：1. 平置涂片于染色架上，滴加试剂一5滴，
迅速均匀盖满涂片，染色1.5 min 2. 不要丢弃试剂一，直接滴加试剂二10滴， 轻轻均匀摇晃涂片使染液均匀覆盖涂片，染色8 min 3. 水洗涂片30s, 待干后镜检
到严重抑制，实验结果不可靠
2. 微核率：含有微核的嗜多染红细胞数，以千分率（‰）表 示
（若一个PCE中出现两个或两个以上微核，仍按有一个微核细胞计数）
3.阴性对照组和阳性对照组的微核发生率，根据实 验对象的不同，应与相关文献报道或研究历史数 据相一致。
4.统计分析（Poinsson分布、二项分布、X2检验等）
试验组微核率与阴性对照组相比有显著差异时， 可认为受试物为具有遗传毒性。
骨髓微核观察的步骤
取胸骨
擦净血污，剔去肌肉
剪去骨骺端
小牛血清
混匀、推片
晾干
Giemsa应用液 反面冲洗、晾干 细胞计数
六、注意事项
骨髓液制备：迅速。在胎牛血清中迅速制取骨 髓液。
小鼠骨髓多染红细胞微核试验(氟化钠)
实验设计
一．实验动物：ICR小鼠，体重18-22克，每组10只，雌雄各半，随 机分组
二．剂量分组： 原则： 最高剂量可选用动物的最大耐受剂量或化合物LD50的50% 不能引起明显的骨髓抑制，即PCE/(PCE+NCE)不低于对照值的20%
（因为骨髓发生抑制时，外周血会发生反流）
氟化钠：LD50=224.9mg/kg
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多染红细胞 PCE
浅兰色 胞浆呈颗粒状 油画
正染红细胞 NCE
淡红色 胞浆呈均质状 水彩画
微粒
圆形或椭圆形 边缘光滑 染色与有核细胞的核一致，紫红色 大小约为红细胞的1/20-1/5
• 每例样本计数1000个PCE，记录有微核细胞数，一个细胞中有几 个微核时，记为一个有微核细胞。 • 再计数200个红细胞，记录PCE在总红细胞（PCE+NCE）中的比例， 作为对细胞毒性的指标
MN
MN
NCE
图 1 ：正常嗜多染红细胞 PCE （× 400 ） 图 2 带微核嗜多染红细胞 MNPCE （× 400）
结果分析与评价
受试物 剂量 （mg/kg） 112.5 NaF 56.25 28.125 各受试小鼠1000个受检细胞中含微核细胞数 1 2 3 4 5 6 7 8 9 10 总计
PCE：polychromatic erythrocyte,多染红细胞 NCE：normochromatic erythrocyte,正染红细胞
试剂与器材
（一）实验动物：成年小鼠 （二）试剂： ① 受试物：氟化钠 ② 阳性对照物：环磷酰胺、丝裂霉素C、三亚乙基密胺、 甲磺酸乙酯、乙基亚硝基脲… ③ 小牛血清（使用前pH调至6.4） ④ 甲醇 ⑤ 磷酸缓冲液 ⑥ Giemsa（吉姆萨）染液：用时，将Giemsa原液用pH6.4的 磷酸缓冲液1:10稀释
实验3-小鼠骨髓细胞微核试验-20121101
3.染毒次数及取样时间： 一般采用多次染毒方法，常用的 比较合理、方便的方法是 4 次染毒，即 每天染毒一次，连续 4 天，第 5 天（即 最 末 一 次 染 毒 后 24 小 时 ） 取 样 。 这 样 ， 仅 仅 取 样 一 次 就 能 复 盖 24~72 小 时，而且如果高峰在96小时，也不会漏 掉。（2次染毒，末一次染毒后6小时） 取样）
４.染毒剂量选择： 如有受试化学物的LD50资料，通常选 1/2 LD50作为高剂量，1/20 LD50为低剂 量，中间再安排两个剂量，并同时设立 阳性对照组和阴性对照组，阳性对照组 一般用环磷酰胺（小鼠按50～100 mg/kg )，按0.1ml/10g的体积，腹腔注 射一次或二次；阴性对照使用等体积的 溶剂注射.
实 验 四 小鼠骨髓细胞微核试验
一．实验目的
1.了解遗传毒理学技术和方法 2.掌握小鼠骨髓多染红细胞（PCE） 微核测定方法
二. 实验原理
染色体 断裂
影响纺 缍丝
染色体 化学致突变物
无着丝点,片或环
作用于纺锤丝
整条染色体 带着丝粒的环和断片
形成微核
于细胞分裂末期细胞质中
微核成因
1. 正常细胞在有丝分裂后期其染色体 逐渐从赤道向两极移动并在末期成为 两个子细胞的核心，若染色体断裂或 损伤，则它们在有丝分裂后期不能正 常向两极移动而滞留形成微核，从而 在有丝分裂的间期看到微核。
四、注意事项
1.Giemsa染液pH6.8是细胞染色质量的 重要保证； 2.推制良好的骨髓涂片是本试验的关 键步骤； 3.正确区分PCE细胞、NCE细胞及白细 胞； 4.正确区分微核与染料颗粒。
成熟红细胞模式图
红细胞
电镜
MN NCE
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兽药临床前毒理学评价试验指导原则
兽药临床前毒理学评价试验指导原则一、概述（一）定义与目的为保障新兽药对使用对象动物（靶动物）的安全，特别是人的食品消费安全，必须对临床前兽药的毒理学（或安全性）进行评价。
目前，对兽药的安全性进行评价一般采取毒理学评价方法，包括三性（急性、亚慢性、慢性毒性）试验和三致（致突变、致畸、致癌）试验，以预测新兽药的安全性。
临床前药物毒理学评价的目的是预测临床用药的安全性，为临床试验提供可靠的参考。
毒理学评价结果不但为最后确定该化合物是否可以作为新兽药使用提供科学依据，还是制订动物性食品中最高残留限量（MRL）的重要依据。
（二）适用范围本指导原则适用于评价兽用化学药品（化学合成药、抗生素、药物饲料添加剂）及消毒剂临床前的安全性。
二、毒理学评价程序及内容兽药毒理学评价试验一般分为五个阶段，具体研究内容如下：（一）第一阶段：急性毒理学试验阶段的测定：所有用途的原料药必做；1.经口LD50的测定：注射用原料药必做，肌注、皮下注射或腹腔注射2.注射途径LD50途径任选一种；3.经皮LD的测定：供皮肤给药的原料药必做；504.皮肤刺激试验：供注射和透皮吸收的制剂必做；5.肌肉刺激试验：供肌内注射的制剂必做；6.眼结膜刺激试验：眼科用、喷雾和易挥发的制剂必做；7.粘膜刺激试验：子宫注入剂、喷雾和易挥发的制剂必做；8.溶血性试验：静脉注射用制剂必做。
（二）第二阶段：亚慢性毒性试验阶段研究内容有：30～90天亚慢性毒性试验：所有原料药必做；（三）第三阶段：致突变试验阶段原料药必做此阶段试验，各种制剂可不做此阶段试验。
1.Ames试验，必做；2.小鼠骨髓细胞微核试验，必做；3.小鼠精子畸形试验或睾丸精原细胞染色体畸变分析试验任选一项，必做；4.小鼠骨髓细胞染色体畸变分析试验，必要时选做；5.显性致死试验，必要时选做；以上致突变试验的组合必须考虑原核细胞和真核细胞、生殖细胞与体细胞、体内和体外试验相结合的原则，任何原料药不能低于三项，必要时做四至五项；如果在1～3项试验有阳性结果或可疑时，可选做第4、5项试验。
[整理版]小鼠骨髓多染红细胞微核试验
小鼠骨髓多染红细胞微核实验目的和意义微核试验用于检测受试物在哺乳动物所引起的染色体或原红细胞有丝分裂器损伤，以确定该受试物有无诱变性。
通过本次实验学习和掌握小鼠骨髓多染红细胞微核测定方法。
原理正常细胞的有丝分裂的分裂中期，染色体均匀地排列在赤道板附近，到分裂后期便分成两份，分别向两极移动，并在末期分别形成两个子细胞的核。
如果由于某种化学物质的作用而使分裂期的细胞染色体受到损伤，在中期就会观察到染色体断裂，在进入分裂后期时，这种断片落后于向两极移动的染色体而滞留在赤道板附近，当其它染色体分别形成子细胞核时，这些落后的断片便独立形成微核，如果纺锤体功能受损，也可产生微核。
由上可见，微核的出现和染色体畸变有密切相关性，同时微核的观察是在细胞的间期，不必分析中期相，这比分析染色体畸变要方便一些。
进行骨髓细胞微核分析一般观察红细胞，记数嗜多染红细脑中微核出现率。
器材与试剂1、器材载玻片、推片、血细胞计数器、滴管、注射器、解剖剪、镊子、止血钳、晾片架、滤纸、电吹风机、染色缸、研钵、恒温水浴箱、光学生物显微镜（或荧光显微镜）。
2、试剂小牛血清；甲醇；吉姆萨储备液：将1g 吉姆萨倒入研钵内，加入少许甘油混合研细，分次倒入剩余的甘油至66ml，转移到烧杯内（或试剂瓶内）。
放入55~60℃水浴中并不断搅动至2h。
取出冷却后加入60ml甲醇，混匀后置室温，2~3周后过滤，保存于棕色瓶内备用（存放时间越长染色效果越好）。
吉姆萨染色液：实验前取吉姆萨储备液与磷酸盐缓冲液（pH 6.8）1 : 9混匀。
磷酸盐缓冲液（pH 6.8）阳性对照物：环磷酰胺。
操作步骤一、试验动物及处理1、动物的选择：选用小鼠，每组10只动物，雌雄各半。
小鼠体重在18~20g，7~12w。
2、染毒途径：采用腹腔注射给药。
3、剂量选择：环磷酰胺按50mg/kg剂量染毒，同时设立阴性对照（空白对照）。
4、染毒次数和取样时间：采用30h给药法，即两次给药间隔24h，在第二次给药后6h处死动物采集骨髓。
小鼠骨髓细胞微核试验
操作步骤
• 1.取材：实验动物最后一次染毒后，按确定的时间将 小鼠颈椎脱臼（大鼠断头）处死后，剪取一侧股骨， 剔净肌肉，用纱布擦掉附在股骨上的血液和肌肉，剪 掉股骨头，露出骨髓腔。用带７号针头的注射器吸取 小牛血清（小鼠需１ml，大鼠需２ml），插入骨髓腔
微核。
试验设计
• 1.动物选择 一般常用的实验动物为大、小
鼠。以小鼠用的最多，要求体重18-20g，
7-12周龄。每组小鼠数量10只，雌、雄各
半。
试验设计
• 2.染毒途径 根据研究目的或受试化学毒物
性质不同，可分别选用经口、经皮、经呼
吸道及注射等染毒途径。但原则上应尽可
能采取如人接触化学毒物相同的途径。
原 理
• 微核试验是用于检测染色体损伤和干扰细
胞有丝分裂的化学毒物的快速方法。微核
是指存在于细胞中主核之外的一种颗粒，
大小相当于细胞直径的1/20~1/5，呈圆形或
杏仁状，其染色与细胞核一致，在间期细
胞中可以出现一个或多个。
原 理
• 一般认为微核使细胞内染色体断裂或纺锤
丝受影响而在细胞有丝分裂后期滞留在细
10min。如当日不染色，也需固定好保存。
• 4.染色：片子固定后，滴加瑞氏-姬姆萨A溶液于涂
片上，让染液覆盖整个标本涂片染色1分钟；再将
B溶液滴加于A液上面（滴加量为A液的2~3倍），
以嘴或洗耳球吹出微风使液面产生涟漪状，使两液
充分混合，染色8分钟；水洗、干燥、镜检。
• 注意：（不要把细胞冲洗掉）
胞核外的遗传物质。所以，微核试验能检
测化学毒物或物理因素诱导产生的染色体
兽药小鼠骨髓细胞微核试验指导原则
兽药小鼠骨髓细胞微核试验指导原则
一、概述
（一）定义与目的
微核试验是通过测量微核率来评价染色体损伤的一种细胞遗传学方法。微核 是在细胞的有丝分裂后期染色体有规律地进入子细胞形成细胞核时，仍然滞留在 细胞质中的染色单体或染色体的无着丝粒断片或环。它在末期以后，单独形成一 个或几个规则的次核，包含在细胞的胞质中，由于比核小得多故称微核。这种情 况的出现往往是受到染色体断裂剂作用的结果。另外，也可能在受到纺锤体毒物 的作用时，主核没有能够形成，代之以一组小核。此时小核往往比一般典型的微 核稍大。