壳聚糖微球 制备
壳聚糖微球制备
壳聚糖微球的制备方法有多种，以下是其中一种常用的方法：
1. 首先将壳聚糖溶解在酸性溶液中，调节pH值至2-4之间。
2. 然后加入一定量的乳化剂(如十二烷基硫酸钠),并充分搅拌使乳化剂均匀分布在溶液中。
3. 接着将油相(如大豆油)缓慢滴加到水相中，同时不断搅拌，形成微小的油滴。
4. 将上述混合物加热至70-90°C,保持一段时间，使油滴内部的水分蒸发出来，形成空心结构。
5. 最后通过过滤、洗涤等步骤去除未反应的物质和杂质，得到纯净的壳聚糖微球。
需要注意的是，在制备过程中需要控制好各种参数，如pH值、乳化剂用量、温度等，以确保微球的大小、形状和分布均匀性符合要求。
一种壳聚糖微球的制备方法与流程
一种壳聚糖微球的制备方法与流程英文回答：To prepare chitosan microspheres, there are several methods available. One common method is the emulsion crosslinking method. In this method, chitosan is dissolvedin an acidic solution and then mixed with an oil phase containing a crosslinking agent. The mixture is then emulsified using a high-speed homogenizer or sonicator to form droplets. The droplets are subsequently crosslinked by adding a crosslinking agent or by adjusting the pH. The crosslinked microspheres are then collected by filtrationor centrifugation and washed to remove any residualsolvents or impurities.Another method is the coacervation method. In this method, chitosan is dissolved in an acidic solution andthen mixed with a coacervation agent, such as gelatin or alginate. The mixture is then stirred or agitated to induce the phase separation of chitosan and the coacervation agent.The chitosan-rich phase forms microspheres, while the coacervation agent-rich phase forms a continuous phase. The microspheres are then collected by filtration or centrifugation and washed to remove any residual coacervation agent.A third method is the spray drying method. In this method, a chitosan solution is atomized into small droplets using a spray nozzle. The droplets are then dried in a hot air stream, resulting in the formation of chitosan microspheres. The drying process can be controlled toobtain microspheres with desired size and morphology.中文回答：制备壳聚糖微球的方法有几种。
壳聚糖纳米微球的制备及其在药物输送中的应用研究
壳聚糖纳米微球的制备及其在药物输送中的应用研究引言壳聚糖纳米微球是一种重要的纳米材料，具有广泛的应用潜力。
本文将讨论壳聚糖纳米微球的制备方法及其在药物输送领域的应用研究。
一、壳聚糖纳米微球的制备方法1. 电沉积法电沉积法是一种常用的壳聚糖纳米微球制备方法。
它通过电化学方法在电极表面沉积壳聚糖材料，形成纳米级的球状微粒。
此方法具有简单、可控性强、成本低等特点。
2. 水相反应法水相反应法是制备壳聚糖纳米微球的另一种常用方法。
该方法通过水相反应使含有壳聚糖和交联剂的溶液在适当的pH值和温度下发生交联反应，形成纳米级的壳聚糖微球。
3. 反相沉淀法反相沉淀法是一种制备单分散壳聚糖纳米微球的有效方法。
在此方法中，壳聚糖和乙酸乙酯等有机溶剂通过超声处理形成乳化液，然后将其引入水相中，壳聚糖微球通过反相沉淀形成。
二、壳聚糖纳米微球在药物输送中的应用研究1. 利用壳聚糖纳米微球的载药性能壳聚糖纳米微球可以通过静电相互作用或共价结合等方法将药物载入微球内部。
其稳定性和生物相容性使其成为一种理想的药物载体。
通过调节壳聚糖微球的大小和表面性质，可以改变药物的释放速度和释放方式，实现药物的缓释和靶向输送。
2. 利用壳聚糖纳米微球的靶向性壳聚糖纳米微球可以通过改变其表面性质来实现靶向输送。
例如，通过修饰壳聚糖微球表面的靶向分子，可以实现对特定细胞或组织的精确靶向输送。
这种靶向性可以提高药物的局部治疗效果，降低副作用。
3. 利用壳聚糖纳米微球的响应性壳聚糖纳米微球可以通过调整其结构和组成来实现对外界刺激的敏感性。
例如，通过改变壳聚糖微球的pH响应性，可以实现在特定pH环境下的药物释放。
这种响应性能使得壳聚糖纳米微球在肿瘤治疗等需要对外界刺激做出响应的场景中具有潜在应用价值。
结论壳聚糖纳米微球作为一种重要的纳米材料，在药物输送中具有广泛的应用潜力。
其制备方法包括电沉积法、水相反应法和反相沉淀法等。
壳聚糖纳米微球可通过载药性能、靶向性和响应性等特点，实现药物的缓释、靶向输送和对外界刺激的响应。
壳聚糖微球的制备及研究开题报告
壳聚糖微球的制备及研究-开题报告壳聚糖微球的制备及研究摘要：壳聚糖是性能优良的天然黏膜黏着剂，常用于多肽类药物的黏膜给药。
壳聚糖微球除具有壳聚糖本身特点外，在性能上又有新的改善，利用壳聚糖制成的微球可以延长药物在吸收位置的保留时间，达到控释目的。
实验以戊二醛，多聚磷酸钠为交联剂制备微球，通过单因素法考察微球制备工艺。
关键词：微球，壳聚糖，戊二醛，多聚磷酸钠1 研究背景1.1 微球微球是近年来发展的新剂型，它是以清蛋白、明胶、聚乳酸等材料制成的球状载体给药系统，微球中的药物分散或包埋在材料中而形成球状实体，微球直径大小一般为0.3~100μm。
不同粒径范围的微球针对性地作用于不同的靶组织。
这类剂型的开发，对于发展缓控释和靶向给药系统具有重要的意义。
微球的特点药物制备成微球后可达到下述目的：掩盖药物不良气味及口味，如鱼肝油、生物碱类等；提高药物的稳定性，如易氧化的β-胡萝卜素、对水气敏感的阿司匹林等；使液态药物固体化便于应用与储存，如油类、香料、脂溶性维生素等；对缓释或控释药物，可采用惰性基质、薄膜、可生物降解材料、亲水性凝胶等制成微球或微囊，可使药物控释或缓释；使药物浓集于靶区，如治疗指数低的药物或细胞毒素药物（抗癌药）制成微球或微囊的靶向制剂，可将药物浓集于肝或肺等靶区，提高疗效，降低毒副作用；除药物外，可将活细胞或生物活性物质包囊，如胰岛、血红蛋白等包囊，在体内生物活性高，而具有很好的生物相容性和稳定性[1]。
各种微球的制备研究.1 清蛋白微球清蛋白微球制剂是人或动物血清清蛋白与药物一起制成的一种球状制剂。
清蛋白是体内的生物降解物质，注入肌体后，在肌体的作用下逐渐降解后清除，性能稳定、无毒、无抗原性，因此清蛋白微球制剂是理想的控缓释靶向制剂之一。
其制备方法有：热变性法；化学交联法（即用化学交联剂同清蛋白发生交联反应使之变性）；聚合物分散法和界面缩聚法等。
.2 聚乳酸、聚乳酸乙醇酸微球聚乳酸(PLA)是一种无毒可生物降解的聚合物，具有很好的生物相容性。
壳聚糖改性
壳聚糖交联大豆蛋白
壳聚糖微球的制备：
分别向1L的烧瓶中加入200mL2%的壳聚糖和200mL液体石蜡，搅拌10min，升温50℃，再加入几滴司班，乳化30min,升温60℃，反应1h后调pH 9～10直到稳定不变，反应2h 后，用水洗，石油醚洗，再用乙醇抽提，最后得到壳聚糖微球颗粒。
将做好的壳聚糖微球过20目和60目筛子，截取中间部分，备用。
大豆蛋白的提取：
100g溶胀大豆，加入500mL水，打碎用水提取，4000r/min离心30min,取上清液。
将预冷的丙酮等体积加入到上清液中，再滴加6mol/L的盐酸至pH4.5～5.0,离心，取沉淀，称重。
壳聚糖微球交联大豆蛋白：
50g湿的壳聚糖微球加入100mL蒸馏水中，取3g大豆蛋白溶于100mL蒸馏水，将大豆蛋白溶液加入到壳聚糖微球溶液中，调pH9～10，再加10mL环氧氯丙烷。
壳聚糖微球的制备研究
实施。
在由靛红经靛红232肟最终热解制备邻氨基苯甲腈的两步反应中不难看出,两步反应的前后变化主要是溶剂的有无和反应温度的差异,从理论上说,该制备可以用一锅法加以实施。
显而易见,第一步缩合时的溶剂水是不利于第二步热分解反应的进行的,为此中间产物靛红232肟的除水和干燥就显得尤为重要。
至于稍过量的盐酸羟胺将随溶剂的除去而充分除去,微量残留并不影响靛红232肟的热分解反应的进行。
靛红与盐酸羟胺缩合时采用的溶剂为水,缩合完成后易于除去,留下的固体可在温热和真空条件下充分干燥。
靛红232肟不经处理,直接用于下步反应,研究表明,这样的做法是可行的。
为了实施前述两个目的,本文选用同时添加催化剂和高沸点有机溶剂的方法,达到了相当理想的结果。
本文选用甲醇钠为催化剂,添加甲醇钠后可使热分解温度由原来的224°C降低到165～180°C。
在选用高沸点有机溶剂时研究发现:卤代苯、硝基甲苯、煤油、聚乙烯醇等均存在不足,且可行的产物收率很低,实用价值不高。
本文选用水溶性好,易于除去且对人体危害不大的环丁砜作为热分解溶剂,充分满足了设计要求。
催化剂的添加量为靛红的0.005～0.05倍,溶剂为0.05～5倍。
考虑到成本及后处理的难易,最终选定为靛红∶甲醇钠∶环丁砜为1∶0.01∶0.5 (摩尔比),由此制得的邻氨基苯甲腈的收率可维持在80%以上。
热解温度达到靛红232肟的起始分解温度(165°C)时必须暂时撤去热源,避免反应过分剧烈,不易控制。
热分解完成后可以用减压蒸镏,收集成品,但产物易于在镏出通路凝固,造成堵塞,故本文选用化学处理。
热分解完成后的混合液经水和丙酮处理,可使催化剂,溶剂和热分解残渣充分除去,最终得到相对较纯的产品。
参考文献1 L itvishkov Y M,et al.Ger O ffen,1979:2810 8562 L itvishkev Y M.U SSR1980:7874063 A ro ra,P K,Sayre L M.T etrahedron L ett, 1991;32(8):10074 Bakke J M,H eikm ann H K Ger O ffen1971:2 1251325 Bakke J M.Ger O ffen1972:20956845 Bedfo rd G R,Partridge M W.J Chem Soc, 1959:1633修稿日期:1998.9.28壳聚糖微球的制备研究3丁 明 施建军 皇甫立霞 高建锋(合肥联合大学化工系 合肥230022)摘 要 利用液体石蜡作有机分散介质,甲醛、戊二醛作交联剂,通过反相悬液交联法制备了微米级窄分布壳聚糖微球,对合成最佳条件进行了实验选择,并对产物的形态、红外光谱特性及吸附行为进行了初步表征。
壳聚糖微球的制备及研究开题报告doc
壳聚糖微球的制备及研究-开题报告.doc壳聚糖微球是一种具有广泛应用潜力的功能性材料，其制备和研究引起了广泛的关注。
本开题报告将介绍壳聚糖微球的制备方法以及其在不同领域中的应用研究。
一、壳聚糖微球的制备方法目前，壳聚糖微球的制备方法主要包括溶液滴定、水相乳液聚合、胶体颗粒模板法等。
其中，溶液滴定法是最常用的一种方法。
该方法的步骤如下：首先，将壳聚糖溶液加入到碱性溶液中，并通过机械搅拌使溶液均匀混合；然后，利用滴定装置将酸性溶液滴入碱性溶液中，形成壳聚糖微球；最后，将得到的壳聚糖微球进行洗涤和干燥处理。
二、壳聚糖微球的应用研究壳聚糖微球在药物传递、生物传感、环境修复等领域具有广泛的应用价值。
1. 药物传递：壳聚糖微球可以作为药物的载体，通过调控微球的粒径和表面性质，将药物包埋或吸附在微球表面，实现药物的缓释和靶向释放，提高药物的疗效和减少副作用。
2. 生物传感：壳聚糖微球可以通过改变微球的形貌和结构，实现对生物分子的选择性识别和检测。
例如，将特定的生物分子固定在壳聚糖微球表面，可以用于生物传感器的构建，用于检测生物分子的浓度和活性。
3. 环境修复：壳聚糖微球可以作为吸附剂，吸附和去除水中的有机污染物和重金属离子。
此外，壳聚糖微球还可以作为载体，封装微生物和酶，实现对有机污染物的降解和去除。
三、研究目标和意义目前，壳聚糖微球的制备方法和应用研究还存在一些问题和挑战。
首先，现有的制备方法中，微球的尺寸和形貌控制不够精确；其次，壳聚糖微球的稳定性和生物相容性有待提高；此外，壳聚糖微球的应用研究还存在一些技术难题，如如何实现药物的靶向释放和环境修复效果的提高等。
因此，本研究的目标是改进壳聚糖微球的制备方法，实现对微球的粒径和形貌的精确控制；同时，研究壳聚糖微球的稳定性和生物相容性，并探索其在药物传递和环境修复等领域中的应用潜力。
通过实验研究和理论分析，探索壳聚糖微球的制备和应用的新方法和新途径，为其在生物医学、环境科学等领域的应用提供理论和实验基础。
壳聚糖微球的制备及表征
与 知识创新
壳聚糖微球的制备及表征
□
（汉中职业技术学院 摘
纪建华
陕西・汉中 723000）
要： 用来源丰富且廉价， 并具有许多优良生物特性的壳聚糖为原料,把它配成质量分数为 10%的溶液通过
乳液法与戊二醛交联合成壳聚糖微球。 用光学显微镜、 红外光光谱仪对合成的高分子微球进行形貌观察和结构 表征。 关键词：壳聚糖 中图分类号：Q53 微球 制备 表征 文章编号：1007-3973（2011）008-102-02 文献标识码：A
乙酸乙酯溶液 5ml , 反应 3h 后, 加入无水乙醇 200ml 陈化 4h, 超速离心分离,沉淀用无水乙醇洗涤 3 次后,得壳聚糖微球(cm)， 将微球分散于无水乙醇中备用。壳聚糖微球的表征应用扫描 电镜观察所制备的微球的表面形貌，所制备的壳聚糖微球的 球形良好，加入交联剂的壳聚糖微球表面有明显的沟壑。应 用扫描电镜测量所制备微球的直径，所得微球的平均直径为 (108±56) m， 微球的范围控制在 50 ～ 180 m。 4 结果与讨论影响壳聚糖成球质量因素 （1） 壳聚糖溶液的浓度的影响壳聚糖溶液浓度过高， 则溶 液粘度较大， 不宜分散， 制得的球较大、 不均匀且机械强度差； 壳聚糖溶液浓度过低， 也不能形成很好的球， 且球的机械强度 差。 通过实验对比发现： 使用 1.6%的壳聚糖溶液， 能形成很好 的球， 粒度均匀， 机械强度高。 （2） O/W 比率影响壳聚糖溶液的分散效果， 对粒径有较大 影响。O/W 比率越高则分散效果越好， 液滴的粒径较小， 且粒 径分布较窄； O/W 比率太低则分散效果差， 粒径较大， 且粒径 分布较宽。实验表明： O/W 比率为 1/1 时， 制得的液滴粒径及 分布最好， 但分离难度较大。 （3） 醛基与氨基的比例在反应的聚合过程中， 加入的戊二 醛试剂实际只有一部分参与反应能进入壳聚糖珠体内；由于 当其分子中的一个醛基与壳聚糖分子中的氨基反应后，壳聚 糖大分子的运动与缠绕，会造成某些氨基由于空间位置的原 因无法与戊二醛的另一个醛基反应， 形成“悬挂醛基” 。这样 形成的树脂结构相对松散，有较大的溶胀度和含水量。经对 比实验得出， 聚合时醛基与氨基的比例为 4/1， 可得到理想的 树脂。 （4） 戊二醛浓度的影响戊二醛是一种常用的交联剂， 两个 醛剂很活泼， 与壳聚糖中的氨基反应生成 Schiff 碱。若一 6% 的戊二醛作交联剂， 由于浓度低， 交联度低， 机械强度差， 不能 得到十分规整的球； 50%的戊二醛作交联剂， 以 浓度过高， 在 树脂表面生成致密结构， 阻碍戊二醛向树脂内部渗透， 使交联 结够不均匀， 机械强度不好。而且。随着交联剂浓度的增大， 交联度随之增大，树脂颜色也随之加深。这是因为交联度越 大， 树脂的结构越紧密。 实验表明： 25%的戊二醛作交联剂， 可 得到较好表面结构较好得树脂。 （5） 搅拌速度对成球性能的影响， 在制备过程中， 液滴与 分散介质间的界面张力和搅拌机的剪切力对成球的作用影响 相反。在一定的界面张力和搅拌强度下，液滴会通过分散和 合并的一系列过程， 达到一定的动态平衡， 最后达到一个平均 粒度， 但液滴大小仍存在一定得分布， 因为在制备过程中液滴 受到的搅拌强度是不均匀的。当搅拌速度提高时，所得的平 均粒经减小， 粒经分布变窄， 但成球率有所提高。这表明搅拌 速度的提高导致分散在介质中的壳聚糖小液滴粒经变小，比 表面积增大， 液滴数目增多。 （6）脱乙酰度对成球质量的影响 脱乙酰度太高，粘度太 大， 致使分散效果极差， 成球情况也不理想。经过对比实验可 知： 脱乙酰度在 80—85%最为理想。
(09综合实验)壳聚糖微球的制备
壳聚糖微球固定木瓜蛋白酶的研究1 壳聚糖微球的制备壳聚糖属多糖类物质，是一种生物相容性好、无毒、廉价易得的天然高分子生物材料。
壳聚糖易于进行化学改性，引入新的功能团，尤其是壳聚糖分子中含有游离的氨基，通过化学交联剂(戊二醛)很容易与酶发生间接共价结合，使酶牢固地固定在壳聚糖分子上。
因此，壳聚糖是一类性能优良的酶固定化载体。
壳聚糖在酸性条件下溶解、碱性条件下沉淀，在较低浓度的NaOH溶液中，壳聚糖微球在还未完全沉淀成球以前就己经塌陷，壳聚糖分子堆砌在一起，导致所成微球形态不好、强度较差、表面厚度不均一、凸凹不平、不能形成良好的结构。
随着NaOH浓度的增加，壳聚糖微球迅速成形，容易形成厚度均一、形态较好、韧性好的微球，此时微球表面被撑起，呈现出壳聚糖自身的疏松多孔结构。
不过当其浓度达到20%，又不能成球，因为浓度太高来不及成球就己经粘连在一起，形成一片絮状物。
所以适宜的NaOH浓度范围为7.5-15%。
在NaOH溶液中加入乙醇后形成的壳聚糖微球更加圆润，而且随着溶液中乙醇含量的增加，壳聚糖微球的机械强度得到了加强，韧性越来越好，但当乙醇浓度达到50%时，球表面产生了很多气泡，微球悬浮在溶液中，不利于操作。
故选取2.0%壳聚糖滴入10%NaOH:乙醇=4:1的溶液中为较好的成球条件。
壳聚糖2.0g 溶于100mL、1.0%乙酸溶液中((20℃条件下)充分溶解，将壳聚糖溶液逐滴滴入250mL混合液(10.0% NaOH与95%乙醇，体积比为4:1)，得粒度均匀、形状规整的壳聚糖微球，过滤收集壳聚糖微球，再用蒸馏水洗涤至中性，湿态保存。
2 壳聚糖微球的交联：将1.0g壳聚糖微球置于100mL蒸馏水中，加入一定体积（0.6、1.0、1.4mL）的25%戊二醛，30℃下恒温振荡 2.0 hr，用大量水反复洗涤，以去除残留的戊二醛溶液，即得壳聚糖微球载体。
3 木瓜蛋白酶的固定化称取上述壳聚糖微球载体，加入10mL的0.lmol/L磷酸缓冲溶液(pH = 6.0、7.0、8.0)和10mL木瓜蛋白酶溶液（浓度为：0.5、1.0、1.5mg.mL-1），30℃下恒温振荡一定时间（3.0、4.0、5.0 hr）。
实验一 壳聚糖载药微球的制备
实验一 壳聚糖载药微球的制备一、目的要求1. 掌握离子交联法制备壳聚糖载药微球的机理及基本操作。
2. 学会使用紫外分光光度计测量微球的载药量。
二、实验原理壳聚糖是一种多糖，自然界中第二大糖类，由甲壳素经脱乙酰反应得到的，而甲壳素是虾或螃蟹的外骨骼以及真菌的细胞壁的主要组成部分。
壳聚糖的结构与纤维素相似但是与纤维素不同的是在其糖苷链上连接着2-氨基-2-脱氧-β-D-葡聚糖，正是因为壳聚糖有了这个氨基使其广泛的应用于药物制备与研发当中。
同时壳聚糖还是无毒的，具有生物可降解性和生物相容性并且不会引发免疫排斥反应的材料。
更重要的是壳聚糖还具有粘膜吸附性，这可以是其在体内停留更长的时间，正是因为以上特点壳聚糖成为了药物载体的理想原材料。
焦磷酸钠分子式Na 4P 2O 7·10H 2O,为无色或白色结晶性粉末，相对密度1.82.易溶于水，不溶于乙醇，对热极稳定。
是一种常见的食品添加剂。
壳聚糖与焦磷酸钠反应的原理：壳聚糖在酸性条件下产生NH 3+（如图2-1）。
3图2-1 壳聚糖在酸性条件下产生自由氨基自由氨基带有正电荷，而三聚磷酸钠在水溶液中产生阴离子（如图2-2）。
OP P O -Na ++Na -OO -Na ++Na -O O O图2-2 三聚磷酸钠在水溶液中产生阴离子壳聚糖的自由氨基阳离子与三聚磷酸钠上的阴离子发生静电吸附反应，紧紧的吸附在一起。
OP P O -Na +-OO -+Na -O OO 3OH+HO图2-3 壳聚糖与焦磷酸钠的静电吸附反应三、实验方法（一）载药微球的制备先称取0.5 g 的壳聚糖并溶于50 ml （2% v/v ）醋酸溶液中，制得1 % (w/v)的壳聚糖醋酸溶液，然后用循环水式真空泵抽滤除去壳聚糖中的杂质。
在室温下，向壳聚糖醋酸溶液中滴加NaOH 溶液（0.1 mol/L ），调节pH=4.5值在一定范围。
加入0.2 g 的布洛芬，搅拌30 min 使其成为均一、稳定的悬浊液。
壳聚糖微球制备方法研究
耳烷两种带电聚合物相互作用获得的聚合 （高分子） 电解质复合水凝胶制备微球， 结果显示， 壳聚糖与苍 耳烷的复合使用能更好地控制微球的降解动力学。
［/］ 刘利萍等 采用乳化 % 化学交联法制备了含 /5
!"#$"%&& ’( !)*"+*,%-.’,*/ 0,’%(,%& 出， 洗涤， 干燥， 即得壳聚糖微球。 采用 !"# 等 对乳化%离子凝胶法进行了改进， 浊度滴定法研究了 & 种阴离子化合物 （三聚磷酸盐、 柠檬酸盐和硫酸盐） 与壳聚糖的相互作用。结果发 现， 在一定 ’( 范围内 （硫酸盐 ) 壳聚糖为 ’( *+, ， 柠檬酸盐 壳聚糖为 三聚磷酸盐 ) .+/ ) ’( 0+/ - .+/， 壳聚糖为 ’( *+1 - .+/） ， & 种阴离子化合物与壳聚 糖间存在静电作用， 这与阴离子的自然特性相关； 在 阴离子化合物与壳聚糖可发生静电作用的 ’( 范围 外， 无微粒形成， 且普通的乳化 % 离子凝胶法即使在 该 ’( 范围内， 也只能得到不规则的微粒， 而改进后 的方法则可得到直径为几十微米的球形微粒， 其关 键步骤是凝胶的引入和壳聚糖 ) 凝胶乳剂的离子交 联过程； 硫酸钠和柠檬酸钠交联的壳聚糖凝胶微球 其表面都非常光滑， 但是在三聚磷酸盐交联的壳聚 糖凝胶微球表面可观察到较大缝隙； 提高搅拌速度 可减小微球粒径及其分布范围。 234 等 设计出一种含载有转化生长因子5 !微 球的多孔壳聚糖支架， 并采用三聚磷酸盐制备了载 有模型蛋白 6!7 的微球。释放试验发现， 在磷酸缓 冲液 （ ’( .+0） 中， 两种蛋白可从微球中缓慢释放 / 天以上， 但转化生长因子5 !的释放速度远低于 6!7。 观察发现含载有转化生长因子5 !微球的支架能显著 促进细胞增殖和细胞外基质的增加， 提示此壳聚糖 支架有可能被开发成治疗软骨缺陷的植入剂。 *+& 离子沉淀%化学交联法 该方法的基本操作过程是， 搅拌状态下， 在含有 滴 89::; <, 的壳聚糖溶液中逐滴加入 $,= 硫酸钠， 毕， 继续搅拌几小时， 老化， 离心沉降， 用去离子水洗 再加入 ,+/= 乙二醛， 室温下交联 * 小时， 离 $ 次， 心， 洗涤， 低压冻干， 即得壳聚糖微球。此微球与四 环素溶液孵化 0< 小时， 包封率达 </= 以上， 其在胃 肠中滞留时间延长， 吸收增加， 约 > 小时后到达结