7影响缺氧耐受性的因素
机能小鼠缺氧实验报告
一、实验目的1. 复制不同病因导致小鼠缺氧的模型，了解乏氧性、血液性、组织中毒性缺氧的分类。
2. 观察缺氧对呼吸系统、中枢神经系统的影响，以及血液颜色变化。
3. 了解影响缺氧耐受性的因素。
二、实验原理分别复制三型缺氧模型，观察缺氧对机体的影响。
三、实验材料1. 实验动物：小白鼠2. 实验器材：缺氧瓶、一氧化碳发生装置、恒温水浴箱、刻度吸管、注射器、剪刀、镊子等3. 实验药品：钠石灰、甲酸、浓硫酸、5%硝酸钠、0.1%氰化钾、生理盐水等四、实验方法1. 乏氧性缺氧实验1. 将小白鼠放入缺氧瓶中，用钠石灰吸收瓶中的氧气。
2. 观察小鼠的呼吸、黏膜和血液颜色变化，记录小鼠的存活时间。
2. 一氧化碳中毒性缺氧实验1. 将小白鼠放入一氧化碳发生装置中，观察小鼠的呼吸、黏膜和血液颜色变化，记录小鼠的存活时间。
3. 亚硝酸中毒性缺氧实验1. 将小白鼠腹腔注射5%亚硝酸钠，观察小鼠的呼吸、黏膜和血液颜色变化，记录小鼠的存活时间。
五、实验结果1. 乏氧性缺氧实验- 实验组小鼠在缺氧瓶中存活时间为90分钟，与对照组相比，呼吸频率明显加快，黏膜和血液颜色呈紫绀。
2. 一氧化碳中毒性缺氧实验- 实验组小鼠在吸入一氧化碳后，迅速出现呼吸急促、黏膜和血液颜色呈紫绀，最终死亡。
3. 亚硝酸中毒性缺氧实验- 实验组小鼠腹腔注射5%亚硝酸钠后，出现呼吸急促、黏膜和血液颜色呈紫绀，最终死亡。
六、实验分析1. 缺氧对小鼠的影响主要体现在呼吸系统和中枢神经系统。
2. 乏氧性缺氧和一氧化碳中毒性缺氧会导致小鼠迅速死亡，亚硝酸中毒性缺氧会导致小鼠出现呼吸急促、黏膜和血液颜色呈紫绀，最终死亡。
3. 影响缺氧耐受性的因素包括缺氧程度、缺氧速度、小鼠个体差异、缺氧瓶的密闭性、钠石灰的吸附能力等。
七、实验结论1. 缺氧会对小鼠的呼吸系统和中枢神经系统造成严重影响，甚至导致死亡。
2. 乏氧性缺氧、一氧化碳中毒性缺氧和亚硝酸中毒性缺氧均可导致小鼠死亡。
缺氧
昆明医科大学机能学实验报告实验日期： 带教教师： 小组成员： 专业班级：缺氧实验一、实验目的1.复制不同病因导致小鼠缺氧的模型，了解乏氧性、血液性、组织中毒性缺氧的分类2.观察缺氧对呼吸系统、中枢神经系统的影响，以及血液颜色的变化3.了解影响缺氧耐受性的因素 二、实验原理由于组织氧供减少或利用氧障碍，引起缺氧，造成组织细胞代谢、功能和形态结构异常变化三、实验仪器设备小鼠缺氧瓶，co 发生装置广口瓶，恒温水浴箱，5ml 、2ml 刻度吸管，1ml 注射器，酒精灯，剪刀，镊子，钠石灰，甲酸，浓硫酸，5%亚硝酸钠，0.1%氰化钾，生理盐水四、实验方法与步骤①低张性缺氧取四只小鼠↓标记称重↓观察正常指标↓注射给药↓放入如含有钠石灰的缺氧瓶↓观察记录↓ 小鼠死亡后取生理盐水组解剖肝五、实验结果②Co 中毒性缺氧 装好co 发生装置 ↓ 将小鼠放入广口瓶 ↓ 观察其正常表现 ↓ 与co 装置连接 ↓ 观察记录 ↓ 小鼠死亡后解剖肝 ③亚硝酸钠中毒性缺氧 取小鼠一只 ↓ 观察记录正常指标 ↓ 腹腔注射5%亚硝酸钠0.3ml ↓ 观察记录 ↓ 小鼠死亡后解剖肝六、分析与讨论1、各种模型所致缺氧的发生机制。
本实验共用到两种模型：低张性性缺氧和血液性缺氧发生机制：1.低张性缺氧：小鼠处于缺氧瓶（内含钠石灰）中，O2的含量固定，随着时间的推移O2逐渐被消耗，小鼠呼出的CO2被钠石灰吸收，小鼠吸入气体的P O2降低，继而肺泡气P O2降低，使参与气体交换的气体不足，肺泡毛细血管中P aO2降低。
低动脉血氧分压引起血液向组织液的弥散O2的速度减慢，以致供应组织的氧不足，造成细胞缺氧。
2.血液性缺氧：①CO中毒：CO与Hb结合为HbCO的亲和力是CO与Hb 结合为HbO2的210倍。
当一个CO与Hb分子中的某一个血红素结合后，将增加其它3个血红素对氧的亲和力，氧离曲线左移，使O2 释放减少。
另外CO抑制红细胞内糖酵解，使2,3-DPG生成减少，抑制Hb向组织释放氧，造成细胞缺氧。
缺氧实验最终报告
昆明医科大学机能学实验报告实验日期：2015年9月17日带教教师：小组成员：专业班级：临床医学二大班缺氧实验一、实验目的1、复制不同病因导致小鼠缺氧的模型，了解乏氧性，血液性，组织中毒性缺氧的分类。
2、观察缺氧对呼吸系统，中枢神系统的影响，以及血液颜色变化。
3、了解影响缺氧耐受性的因素。
二、实验原理分别复制三型缺氧模型，观察缺氧对机体的影响。
三、实验仪器设备小鼠缺氧瓶（100ml-125ml带塞广口瓶），一氧化碳发生装置广口瓶，恒温水浴箱，5ml或2ml刻度吸管，1ml注射器，酒精灯，剪刀，镊子，钠石灰，甲酸，浓硫酸，5%硝酸钠，0.1%氰化钾，生理盐水。
四、实验方法与步骤①取小鼠四只，标记编号（甲，乙，丙，丁）分别称重记录甲：NS（0.1ml/10g）腹腔注射乙：0.25%水合氯醛（0.1ml/10g）放进缺氧装置中丙：1%咖啡因（0.1ml/10g）等待10min每2min记录呼吸频率死亡(（记录时间及耗氧量，甲鼠尸体待留）→计算耗氧量观察皮肤颜色，活动度丁：放入缺氧装置，40℃水浴锅放入装小鼠缺氧瓶，记录死亡时间，活动状态以及耗氧量②一氧化碳中毒性缺氧（小鼠一只）：检查装置气密性，连接一氧化碳发生装置，将一只小鼠放入广口瓶，然后与一氧化碳发生装置连接;先取甲酸1.5ml 放入试管内，再加入浓硫酸1ml。
连接加热试管（用酒精的间断加热，加速CO产生，不可使液体沸腾）观察记录一般状况*观察记录如下：死亡（记录时间），计算小鼠耗氧率（R）*3、亚硝酸中毒缺氧（小鼠一只）观察记录一般状况小鼠：腹腔注射*5%亚硝酸钠0.3ml 观察记录如下：死亡（记录时间），计算小鼠耗氧率（R）*4、取出甲鼠及2，3实验小鼠尸体部分肝叶进行对比，记录颜色。
五、实验结果表2.影响机体缺氧耐受性的因素(乏氧性缺氧)六、分析与讨论1、各种模型所致缺氧的发生机制。
（1）乏氧性缺氧（低张性缺氧）：以动脉血氧分压降低，血氧含量减少为基本特征的缺氧。
缺氧功能学实验报告
一、实验目的1. 研究缺氧对机体生理功能的影响。
2. 探讨缺氧条件下不同器官系统的适应机制。
3. 分析影响缺氧耐受性的因素。
二、实验原理缺氧是指组织、细胞或器官因氧供应不足而引起的生理、生化变化。
缺氧可分为乏氧性缺氧、血液性缺氧和组织中毒性缺氧。
本实验主要研究乏氧性缺氧对机体生理功能的影响。
三、实验材料1. 实验动物：体重20克左右的健康小白鼠4只。
2. 实验仪器：耗氧量测定装置、缺氧瓶、恒温水浴箱、5ml或2ml刻度吸管、1ml 注射器、酒精灯、剪刀、镊子、钠石灰、甲酸、浓硫酸、5%硝酸钠、0.1%氰化钾、生理盐水。
四、实验方法1. 缺氧模型建立：将小白鼠放入缺氧瓶中，加入5g钠石灰，密闭瓶口，使瓶内氧气浓度降低至10%以下。
2. 实验分组：将小白鼠分为实验组和对照组，每组2只。
3. 实验步骤：（1）实验组：将实验组小白鼠放入缺氧瓶中，记录缺氧时间，观察呼吸、心跳、体温、血液颜色等生理指标变化。
（2）对照组：将对照组小白鼠放入正常环境中，记录生理指标变化。
4. 数据处理：对实验数据进行统计分析，比较实验组和对照组的差异。
五、实验结果1. 呼吸：实验组小白鼠在缺氧过程中，呼吸逐渐减弱，最终停止呼吸。
对照组小白鼠呼吸正常。
2. 心跳：实验组小白鼠在缺氧过程中，心跳逐渐减慢，最终停止心跳。
对照组小白鼠心跳正常。
3. 体温：实验组小白鼠在缺氧过程中，体温逐渐下降，最终降至冰点以下。
对照组小白鼠体温正常。
4. 血液颜色：实验组小白鼠血液颜色呈暗红色，对照组小白鼠血液颜色呈鲜红色。
六、实验分析1. 缺氧对呼吸系统的影响：缺氧导致呼吸减弱，最终停止呼吸。
这可能是因为缺氧使呼吸中枢受到抑制，导致呼吸肌无力。
2. 缺氧对循环系统的影响：缺氧导致心跳减慢，最终停止心跳。
这可能是因为缺氧使心脏功能受到抑制，导致心脏泵血功能下降。
3. 缺氧对体温的影响：缺氧导致体温下降，最终降至冰点以下。
这可能是因为缺氧使机体散热增加，导致体温调节功能紊乱。
病生习题_精品文档
病生习题第7章缺氧一。
名词解释。
1、Hypoia(缺氧)。
2、Cyanoi(发绀)3、P50。
4、底张性缺氧5、血液性缺氧6。
循环性缺氧。
7。
血氧容量。
8。
血氧含量。
二。
填空题。
1、影响血氧分压的因素有⑴___和⑵______。
2、影响血氧含量的因素有⑴____和⑵______。
3、CO中毒时,血氧指标的变化是:血氧含量⑴_____,血氧容量⑵_______,PaO2⑶______,血氧饱和度⑷_______,呼吸变化⑸_______,皮肤黏膜颜色⑹______。
4、引起血液性缺氧的常见原因⑴_____,⑵______。
⑶______。
⑷_______,5、循环性缺氧可分为⑴___和⑵______。
6。
感染性休克引起缺氧的类型有⑴___和⑵______。
7。
底张性缺氧引起的代偿性心血管反应,主要变现有⑴_____,⑵______。
⑶______。
8。
缺氧时血液系统的主要变化有⑴___和⑵______。
9。
缺氧初期心输出量增加的主要机制有:⑴_____,⑵______。
⑶______。
10。
常用的血氧指标有:⑴_____,⑵______。
⑶______。
⑷_______,⑸_______。
11、毛细血管血液中⑴_____平均浓度达到⑵______以上,皮肤黏膜呈青紫色,称为发绀。
12、严重贫血的病人面色⑴_____。
CO中毒的病人皮肤黏膜呈⑵______。
高铁血红蛋白患者皮肤黏膜呈⑶______。
13、循环性缺氧血氧变化特点为动脉血氧分压⑴_____,血氧容量⑵______,血氧饱和度⑶______,动-静脉血氧含量差⑷_______。
14、缺氧时组织细胞的适应变化有⑴_____,⑵______。
⑶______。
⑷_______,⑸_______。
15、血氧饱和度等于⑴_____量减去⑵______量然后除以⑶______量的百分数。
16。
氰化物引起组织中毒性缺氧的机制是该物质迅速与⑴_____型细胞色素氧化酶的Fe3+结合为⑵_____细胞色素氧化酶,使之不能转变为⑶______型细胞色素氧化酶,使呼吸链中断,组织不能利用氧。
小鼠缺氧预处理对不同因素缺氧耐受性的影响
小鼠缺氧预处理对不同因素缺氧耐受性的影响【摘要】目的研究缺氧预处理对不同因素缺氧耐受性的影响。
方法于室温下复制小鼠的急性重复缺氧模型，给予筒箭毒碱、咖啡因药物，来观察记录小鼠的一般状态及存活时间。
结果急性缺氧预处理后，小鼠对筒箭毒碱、咖啡因的缺氧耐受性与对照组相比，P＜0．05，差异具有统计学意义；腹腔注射筒箭毒碱与注射生理盐水相比，差异具有统计学意义。
结论急性缺氧预处理可以提高小鼠对缺氧的耐受性。
【Abstract】Objective The Influence of hypoxic precondition to different factors’anxic tolerance was studied in acute hypoxia pretreated mice.Methods Duplicates mouse’s acute hypoxic precondition model under the room temperature，recording mouse survival time.Results Dynamic changes were monitored by intraperitoneal injection.Conclusion Hypoxic precondition and tubocurarine can enhance anxic tolerance of mice，and both of them can be used at the same time.【Key words】Anxic tolerance；Hypoxic precondition；Tubocurarine Caffeine短时间内的缺氧就可对机体器官造成不可逆的损伤，因此如何延长耐缺氧时间成为治疗伴缺氧症状疾病的关键。
据报道，大鼠预先经过进行性缺氧仅3 min 即可获得对严重缺氧的耐受性。
病理生理学-缺氧
组织性缺氧
肺淤血、水肿
低张性缺氧
循环障碍
循环性缺氧
失血 Hb
血液性缺氧
63
三、缺氧时机体的功能及代谢变化
（一）呼吸系统—代偿反应
(<P6a0Om2m↓Hg)
意义： 提高PaO2 增加回心血量
颈动脉体、主动 脉体化学感受器
呼吸中枢兴奋
反射性的引起 呼吸加深加快
64
三、缺氧时机体的功能及代谢变化
与红细胞内的血红蛋白(Hb)结合成 氧合血红蛋白(HbO2).
外呼吸
气体在血液中的运输 内呼吸
ห้องสมุดไป่ตู้
氧 气 的 获 得 和 利 用
11
13
14
15
16
17
18
19
一、常用的血氧指标及其意义
基本血氧指标
概念 正常值 影响因素
血氧分压 血氧容量
血氧含量 血氧饱和度
20
21
22
23
24
？
请大家从这个 角度上来分析 一下为什么登 山运动员的四 肢、鼻子及耳 朵等部位最容 易冻伤？
70
三、缺氧时机体的功能及代谢变化
（三）血液系统
2、血红蛋白释放氧能力增强 ◆ 2,3–DPG含量升高 ◆ 氧离曲线右移，有利于氧的释放
71
三、缺氧时机体的功能及代谢变化
（四）组织细胞的变化
72
三、缺氧时机体的功能及代谢变化
第九章 缺氧
1
2
3
软骨 平滑肌
动脉 毛细血管
静脉
细支气管 终末细支气管 呼吸性细支气管 肺泡管
肺泡囊 肺泡
6
第五章 呼吸
肺通气 肺换气 气体运输 组织换气
缺氧实验报告[最新版]
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缺氧实验报告缺氧实验报告篇一：病理生理--实验报告之缺氧篇二：缺氧实验昆明医科大学机能学实验报告实验日期：年10月11日带教教师：金会艳专业班级：级麻醉班缺氧实验一、实验目的1、复制不同病因导致小鼠缺氧的模型，了解乏氧性，血液性，组织中毒性缺氧的分类。
2、观察缺氧对呼吸系统，中枢神系统的影响，以及血液颜色变化。
3、了解影响缺氧耐受性的因素。
二、实验原理分别复制三型缺氧模型，观察缺氧对机体的影响。
三、实验仪器设备小鼠缺氧瓶（100ml-125ml带塞广口瓶），一氧化碳发生装置广口瓶，恒温水浴箱，5ml或2ml刻度吸管，1ml注射器，酒精灯，剪刀，镊子，钠石灰，甲酸，浓硫酸，5%硝酸钠，0.1%氰化钾，生理盐水。
四、实验方法与步骤1、乏氧性缺氧1 取小鼠四只，标记编号（甲，乙，丙，丁）每2min记录死亡（记录时间及耗氧量，甲鼠尸体待留）计算小鼠耗氧率（R）一般情况* 2、一氧化碳中毒性缺氧（小鼠一只）观察记录如上死亡（记录时间）计算小鼠耗氧率（R）* 3、亚硝酸中毒缺氧（小鼠一只）观察记录一般状况*观察记录如上小鼠腹腔注射*5%亚硝酸钠死亡（记录时间，）2 计算小鼠耗氧率（R）* 4、取出甲鼠及2，3实验小鼠尸体部分肝叶进行对比，记录颜色。
备注：（1）一般状况*，呼吸频率，精神状态，皮肤黏膜颜色。
（2）缺氧瓶*，一定要密封，可用凡士林涂在瓶塞外面，且可以加入钠石灰吸收水汽。
（3）腹腔注射，正确拿握小鼠，左下腹，45°进针，回抽。
（4）耗氧率计算：R[ml/ 4 注：从左至右依次为，亚硝酸钠中毒，乏氧性缺氧，一氧化碳中毒。
5篇三：小鼠缺氧模型及其分析课程名称：机能实验学教研室：病理生理学教研室任课教师：张彩华授课章节：缺氧与普鲁卡因对神经干的作用授课专业和年级：级医疗授课学时：8学时授课年3-7月实验题目：缺氧实验目的：1.观察原因和条件在疾病发生发展中的作用2.复制几种类型缺氧的模型，观察血液颜色的特点，分析其机制根据大纲要求：掌握概念：缺氧、低张性缺氧、血液性缺氧、循环性缺氧和组织性缺氧，紫绀、肠源性紫绀。
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7影响缺氧耐受性的因素
七、影响缺氧耐受性的因素
【实验目的】
1．观察中枢神经系统功能状态、外界环境温度及CO2浓度增高，以及预适应对机体缺氧耐受性的影响。
2．探讨条件因素在缺氧发病中的重要性和临床应用冬眠疗法，低温疗法及预适应研究的实用意义。
【实验原理】
机体对缺氧的耐受性除受缺氧程度和发生速度影响外，还与其他许多因素有关。
本实验①通过给予小白鼠中枢兴奋剂和抑制剂，改变中枢神经系统的功能代谢状态，观测动物的代谢耗氧量及存活时间，并通过计算代谢耗氧率，探讨中枢神经系统功能状况不同对缺氧耐受性的影响。
②通过改变小白鼠所处的环境温度，观测高温与低温情况下小白鼠的代谢耗氧量和存活时间，并通过计算代谢耗氧率，探讨温度对缺氧耐受性的影响。
③通过增加环境中CO2浓度，观测小白鼠在高浓度CO2情况下的代谢耗氧量和存活时间，计算代谢耗氧率以探讨环境中CO2浓度对小白鼠缺氧耐受性的影响。
④通过三次预缺氧实验，检测同样指标，观察预适应对缺氧耐受性的影响。
【实验动物】
小白鼠，相同性别、相同年龄段、体重近似。
【实验药品及器材】
1％咖啡因，0.25％氯丙嗪，生理盐水，钠石灰，碎冰块，无氧水(用时临时配制)；小臼鼠缺氧瓶和测耗氧量装置，1ml、5ml注射器，粗天平,1000ml烧杯。
【实验步骤与观察指标】
1．机体状况对缺氧耐受性的影响。
⑴取小白鼠3只，分别作如下处理：甲鼠，腹腔注射1％咖啡因10ml／kg；乙鼠，腹腔注射0．25％氯丙嗪10m1／kg，待动物安静后；丙鼠，腹腔注射生理盐水10ml／kg。
⑵约15～20min后，将3只小白鼠分别放入盛有钠石灰的缺氧瓶中(瓶中钠石灰大约5g)，观察动物一般表现（呼吸，唇色，活动等），密闭后开始计时。
⑶持续观察各鼠在瓶中的活动情况，待小鼠死亡后，准确计算存活时间(t)。
⑷用测耗氧量装置测量小鼠的耗氧量（见附录及图示）。
按下公式计算小白鼠的耗氧率（R）：
耗氧率[ml/(g.min)]=耗氧量/体重（g）/存活时间 (公式12-2)
2．环境温度对缺氧耐受性的影响。
⑴取小白鼠缺氧瓶3只，分别放人钠石灰约5g。
⑵取1000m1烧杯2个，一个加入碎冰块和冷水，将杯内水温调至0～-4℃，另一个加入热水，将温度调至40～42℃。
⑶取体重相近的小白鼠3只，称重后分别装入缺氧瓶内，两只缺氧瓶分别放入盛有冰水和热水的烧杯内，另一只置室温中，观察动物的一般表现、呼吸等，塞紧瓶塞开始计时。
⑷持续观察各鼠在瓶中的活动情况，待小鼠死亡后，计算存活时间(t)，并立即从烧杯内取出缺氧瓶，置室温中平衡15min。
⑸以下方法同1的(4)步骤。
3．CO2浓度增高对缺氧耐受性的影响。
⑴取小白鼠2只，称重后分别放人有钠石灰和无钠石灰的缺氧瓶内，密闭后开始计时。
⑵以下方法同1的(3)、(4)步骤。
4．预缺氧对缺氧耐受性的影响。
⑴取小白鼠2只，称重后分别放入有钠石灰的缺氧瓶内，密闭后开始计时，记录其中1只出现喘息、直至死亡的时间。
另1小鼠当出现剧烈喘息呼吸时，记录喘息出现的时间，立即将瓶塞打开，恢复常氧15分钟，然后盖紧瓶塞，进行第二次同样的缺氧实验，恢复10分钟后，进行第三次缺氧实验，恢复10分钟后，进行第四次缺氧，直至小鼠死亡，同样记录小鼠出现喘息的时间及直至死亡的时间。
⑵以下方法同1的(4)步骤。
【实验结果】
（一）中枢神经系统状态
1号鼠咖啡因
2号鼠氯丙嗪
3号鼠盐水对照
（二）环境温度
1号鼠 0～4℃
2号鼠 40～42℃
3号鼠室温
（三）CO2
1号鼠有钠石灰
2号鼠无钠石灰
（四）缺氧预适应
1号鼠
第一次预缺氧
第二次预缺氧
第三次预缺氧
第四次缺氧
2号鼠
【注意事项】
1.缺氧瓶一定要密闭。
2．咖啡因、氯丙嗪注射后，一定待药物发挥作用后进行实验。
3．放在冰水和热水中的两只缺氧瓶须放在室温下平衡15min左右才测耗氧量。
4．各组小白鼠的性别、体重以及一般状态应尽可能相近。
附录：用测耗氧量装置测定小白鼠的总耗氧量
1．原理小白鼠在密闭的缺氧瓶内不断消耗氧气，而产生的C02又被钠石灰吸收，瓶内氧分压逐渐降低而产生负压，当缺氧瓶与测耗氧量的量筒相连时，量筒内与缺氧瓶相通，移液管内液面因瓶内负压吸引而上升，此时，移液管内液面上升的毫升数即为小白鼠消耗氧的量。
2．方法与步骤
⑴向量筒内充水至适当高度，将有刻度的移液管一端浸入盛水的量筒内，使移液管管中液体达平衡位置，记下零参考点，然后将另一端与缺氧瓶塞上的橡皮管相连，。
⑵打开橡皮管上的螺旋夹，待移液管内水平面上升稳定后，从移液管读出液面从参考零点上升的ml数，即为小白鼠的总耗氧量(A)。
【思考题】
1．中枢神经系统的功能状况不同和环境温度的改变，对缺氧耐受性影响的机制?对临床有何指导意义?
2．缺氧瓶中无钠石灰为什么会影响机体对缺氧的耐受性?
3．缺氧预适应影响机体对缺氧耐受性的机制是什么？对临床有何指导意义?。