脐带干细胞综述

脐带间充质干细胞的研究进展 间充质干细胞（mesenchymal stem cells,MSC S）是来源于发育早期中胚层的一类多能干细胞[1-5]，MSC S由于它的自我更新和多项分化潜能，而具有巨大的治疗价值 ,日益受到关注。MSC S有以下特点：(1)多向分化潜能，在适当的诱导条件下可分化为肌细胞[2]、成骨细胞[3、4]、脂肪细胞、神经细胞[9]、肝细胞[6]、心肌细胞[10]和表皮细胞[11, 12]；(2)通过分泌可溶性因子和转分化促进创面愈合；(3)免疫调控功能，骨髓源（bone marrow ）MSC S表达MHC-I类分子，不表达MHC-II类分子，不表达CD80、CD86、CD40等协同刺激分子，体外抑制混合淋巴细胞反应，体内诱导免疫耐受[11, 15]，在预防和治疗移植物抗宿主病、诱导器官移植免疫耐受等领域有较好的应用前景；(4)连续传代培养和冷冻保存后仍具有多向分化潜能，可作为理想的种子细胞用于组织工程和细胞替代治疗。1974年Friedenstein [16]首先证明了骨髓中存在MSC S ，以后的研究证明MSC S不仅存在于骨髓中，也存在于其他一些组织与器官的间质中：如外周血[17]，脐血[5]，松质骨[1, 18]，脂肪组织[1]，滑膜[18]和脐带。在所有这些来源中，脐血(umbilical cord blood)和脐带

(umbilical cord)是MSC S最理想的来源，因为它们可以通过非侵入性手段容易获得，并且病毒污染的风险低，还可冷冻保存后行自体移植。然而，脐血MSC的培养成功率不高[19, 23-24] ，Shetty 的研究认为只有6%，而脐带MSC的培养成功率可达100%[25]。另外从脐血中分离MSC S，就浪费了其中的造血干/祖细胞(hematopoietic stem cells/hematopoietic progenitor cells,HSCs/HPCs) [26, 27]，因此，脐带MSC S(umbilical cord mesenchymal stem cells, UC-MSC S)就成

为重要来源。 一． 概述 人脐带约40 g, 它的长度约60–65 cm, 足月脐带的平均直径约1.5 cm[28, 29]。脐带被覆着鳞状上皮，叫脐带上皮，是单层或复层结构，这层上皮由羊膜延续过来[30, 31]。脐带的内部是两根动脉和一根静脉，血管之间是粘液样的结缔组织，叫做沃顿胶质，充当血管外膜的功能。脐带中无毛细血管和淋巴系统。沃顿胶质的网状系统是糖蛋白微纤维和胶原纤维。沃顿胶质中最多的葡萄糖胺聚糖是透明质酸，它是包绕在成纤维样细胞和胶原纤维周围的并维持脐带形 状的水合凝胶，使脐带免受挤压。沃顿胶质的基质细胞是成纤维样细胞[32]，这 种中间丝蛋白表达于间充质来源的细胞如成纤维细胞的，而不表达于平滑肌细胞。共表达波形蛋白和索蛋白提示这些细胞本质上肌纤维母细胞。 脐带基质细胞也是一种具有多能干细胞特点的细胞，具有多项分化潜能，其形态和生物学特点与骨髓源性MSC S相似[5, 20, 21, 38, 46] ，但脐带MSC S更原始，是介于成体干细胞和胚胎干细胞之间的一种干细胞，表达Oct-4, Sox-2和Nanog等多种胚胎干细胞的特有分子标志[20]，有更高的克隆形成率[45]，倍增时间更短[47, 56]，具有更强的扩增能力， 7代后可扩增300倍[20]；Lund等的研究认为一条人脐带共可扩增到1015个细胞 [29][47]；UC-MSCS 在体外培养和体内移植都是安全的，不会自发转化成畸胎瘤[20] [43]，体外的细胞分裂周期可达50－60次[20]。目前各家报道的UC-MSCS的细胞动力学有差异，可能是由于UC-MSCS的来源不同，包括血管间、血管周及羊膜下细胞群，由此导致了UC-MSCS的异质性[20, 38]。 3.1. UC-MSC的分子标志[57]：目前文献报道的分子标志见表一。 脐带基质细胞的分子标志(通过蛋白，mRNA或基因表达分析检测所得) 分子标志 可得性 参考文献 Vimentin ＋ [20, 38] Desmin ＋ [20, 38] ASMA ＋ [19, 20] CD10 ＋ [43, 47] CD13 ＋ [43, 45, 47, 50, 58] CD14 － [20, 43, 45, 47] CD29(integrinβ1) ＋ [41, 43, 45, 46, 49, 58] CD31（PECAM） － [43, 45, 47, 49, 56, 58] CD33 － [43] CD34 － [20, 38, 42, 43, 45-47, 49, 50, 56, 58, 59] CD38 － CD44 (HCAM) ＋ CD45 － [38, 42, 43, 45-47, 49, 50, 56, 58, 59] CD49b (integrinα2) ＋ [43, 50] CD49c (integrinα4) ＋ [43] CD49d (integrinα3) ＋ [43] CD49e ＋ [43, 56] CD51 (integrinα5) ＋ CD54 (ICAM-1) －/＋a CD56 － [43] CD73 (SH3) ＋ CD90 (Thy-1) ＋ CD105 (endoglin, SH2) ＋ CD106 (VCAM-1) －/＋a [38, 45, 50, 58] CD117 (c-kit) －/＋a [32, 38, 47, 50, 56, 58] CD123 (IL-3 receptor) － [38] CD133 － [43] CD146 ＋ [56] CD166 (ALCAM) ＋ [45, 49] CD235a (glycophorin A) － [38] HLA-1 ＋ HLA-DR (MHC class II) － [38, 43, 45, 47, 50, 58, 60] HLA-DP (MHC class II) － [38, 47] HLA-DQ (MHC class II) － [47] HLA-A, B, C (MHC class I) ＋ [38, 45, 47, 50, 58] HLA-G (MHC class I) － [38] STRO-1 － [38, 56] Oct-4 －/＋ [38, 43, 48] Nanog ＋ [43, 48] SSEA-4 － [38] Sox-2 ＋ [43, 48] reference [48]细胞来源是猪，其它细胞来源均为人。 a不同参考文献的报道有矛盾

缩写: ALCAM, activated leukocyte cell adhesion molecule; HCAM, homing-associated cell adhesion molecule; HLA, human leukocyte antigen; ICAM, intercellular adhesion molecule; IL, interleukin; MHC, major histocompatibility complex; PECAM, platelet endothelial cell adhesion molecule; SSEA, stage-specific embryonic antigen; VCAM, vascular cell adhesion molecule. 3.2 人UC-MSC的类型 人UC-MSC作为一个异质的细胞群，从表型上至少有两种不同类型的细胞[20]：I型和II型，波形蛋白在两型细胞均表达，而I型细胞还表达角蛋白中间丝（Pancytokeratin），I型细胞主要来源于血管周细胞。两型细胞在向软骨、骨和脂肪谱系的分化上没有区别，但在神经谱系的分化上有区别，I型细胞体外不能向神经元细胞分化。 3.3 UC-MSC的分化潜能 UC－MSCs起源于胚外中胚层，脂肪、软骨、骨、心肌和骨骼肌的诱导是目前研究最多的谱系[57]。目前没有发现公认的MSCS特异性表面抗原，无直接方法可鉴定MSCS，都是通过在培养过程中出现分化表型，然后逆推得知是否为MSCS[61, 62]。研究证明人UC-MSC体外可以分化为脂肪细胞、软骨细胞[20, 40, 46, 56]、骨细胞、心肌细胞[46, 49]、骨骼肌细胞、神经元/神经胶质前体细胞[20, 45, 46]、多巴胺能神经元、内皮细胞[58]。与BM- MSCs相比，UC－MSCs分化为软骨和骨的能力更强[20]，成骨分化速度更快[56]，而分化为脂肪的能力更弱[20]。在向软骨谱系诱导时，UC-MSCs不仅表达I I型胶原，也表达I型胶原[20]。 四．临床应用前景 近来，随着对MSCS研究的深入，逐渐发现MSCS在损伤等刺激下能参与多种组织的修复，其机制尽管尚未完全阐明，但初步结果显示可能与创伤的刺激及局部创面的微环境中含有各种不同的因子有关，它们具有促进MSCS趋化以及诱导MSCS

向所需要的组织或细胞分化来参与组织的修复。有研究认为MSCS通过分泌可溶性

因子来改变微环境，在促进创面愈合过程中比细胞转分化起的作用更大。细胞分化依赖于细胞所处的三维空间结构和相应的多维分化信号[62]。细胞与细胞、细胞与细胞外基质间相互作用直接影响干细胞的分化方向和进程。周边环境对其增殖、分化有重要作用。生物体提供了复杂微妙的微环境，可以借助生物体本身来进一步完成多种干细胞的诱导分化。 Weiss等[64, 65]移植猪的UC－MSCs到纹状体接受过神经毒素6-羟基多巴胺注射的大鼠脑里，结果提示UC－MSCs移植是安全的，没有明显的宿主免疫应答，UC－MSCs能够增殖，不形成畸胎瘤；移植的UC－MSCs可以分化为酪氨酸羟化酶阳性细胞。他们以后的研究发现[43]，移植未分化的人UC－MSCs到单侧震颤麻痹症的大鼠脑中，UC－MSCs可以改善阿朴吗啡引起的眩晕。Jomura等[41]预先在大鼠的左侧丘脑核、海马、胼胝体和皮层显微注射了大鼠的Oct-4(+)UC－MSCs，然后通过心跳停止再复苏造成脑缺血，实验证明预先注射了UC－MSCs的大鼠脑部椎体细胞的损伤最轻，提示了UC－MSCs在脑缺血的治疗中是有前景的。Lund等[47]移植人UC－MSCs到有早期视网膜退变的大鼠视网膜下，通过视网膜电流图，空间分辨能力，亮度阈的测定，发现能够促进光感受器的恢复。人UC－MSCs可能有助于治疗视网膜退行性疾病如色素性视网膜炎。Tsai发现人UC－MSCs可以治疗四氯化碳诱导的大鼠的肝纤维化[66]。