关于重组酶Cre的逆转录病毒载体的构建及鉴定

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Cre-loxP、CRISPR-Cas9技术与病毒载体在基因敲除中的联用

Cre-loxP、CRISPR-Cas9技术与病毒载体在基因敲除中的联用

基因敲除技术在病毒感染性疾病治疗中的应用
基因敲除技术能够消除病毒复制所需的宿主细胞内基因从而阻止病毒的复制和感染。
基因敲除技术可以用于开发新型抗病毒药物通过抑制病毒复制或干扰病毒生命周期的关键环节 来治疗病毒感染。
基因敲除技术可以用于基因治疗通过将正常基因导入宿主细胞替代缺陷基因恢复细胞功能达到 治疗目的。
CRISPR-Cs9与病毒载体的联用
Cre-loxP技术用于控制基 因表达
CRISPR-Cs9技术用于编 辑基因
病毒载体在基因敲除中的重 要作用
Cre-loxP、CRISPR-Cs9 技术与病毒载体的联用原理
三者联用的优势与挑战
优势:Cre-loxP、CRISPR-Cs9技术与病毒载体在基因敲除中的联用可以实现高效、精准 的基因敲除有助于研究基因功能和疾病治疗。
基因敲除技术简介 Cre-loxP系统在基因敲除中的应用 CRISPR-Cs9系统在基因敲除中的应用 病毒载体在基因敲除中的联用
基因敲除技术在癌症治疗中的应用
基因敲除技术能够精准地编辑人类基因为癌症治疗提供了新的手段。
通过敲除致癌基因或激活抑癌基因基因敲除技术可以有效抑制癌症细胞的生长和扩散。 基因敲除技术在癌症治疗中具有个体化、精准化的特点可以降低治疗副作用和提高治疗 效果。 目前基因敲除技术在癌症治疗领域仍处于研究阶段但已取得了一定的成果和进展。
基因敲除技术还可以用于疫苗开发通过消除病毒基因中的关键位点降低病毒的毒力或致癌性从 而开发出更安全、更有效的疫苗。
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未来展望与研究方向
Cre-loxP、CRISPR-Cs9技术与病毒载体联用技术的发展 前景
技术改进:随着 基因编辑技术的 不断进步CreloxP、 CRISPR-Cs9与 病毒载体的联用 技术将得到进一 步优化提高敲除 效率和应用范围。

利用不相容质粒共转化大肠杆菌对Cre重组酶体内重组活性的可视检测

利用不相容质粒共转化大肠杆菌对Cre重组酶体内重组活性的可视检测

45卷 1期2005年2月微生物学报Acta Microbiologica SinicaV ol.45February N o.12005基金项目:国家“863计划”(2002AA227031)3通讯作者。

T el :86210262522109;E 2mail :xiaoyingc @作者简介:庞永奇(1978-),男,河北省容城县人,硕士研究生,主要从事应用Cre Πlox 系统消除标记基因的研究。

E 2mail :pangy ongqi @1261com收稿日期:2004205210,修回日期:2004207216利用不相容质粒共转化大肠杆菌对Cre 重组酶体内重组活性的可视检测庞永奇1,2 贾洪革1 方荣祥1 郭蔼光2 陈晓英13(1中国科学院微生物研究所植物基因组学国家重点实验室 北京 100080)(2西北农林科技大学生命科学学院 杨凌 712100)摘 要:源自噬菌体P1的Cre 重组酶可以识别34bp 的靶DNA 序列loxP ,进行位点特异性的重组反应。

为了简便地检测Cre 酶在大肠杆菌中的重组活性,分别将cre 基因和上下游带有loxP 的绿色荧光蛋白基因(gfp )克隆到具有不同抗性的两种不相容质粒中,然后将构建的原核表达载体pET 30a 2Cre 和pET 23b 2lox G FP 电击共转化大肠杆菌BL21(DE3),利用卡那霉素和氨苄青霉素双抗生素抗性进行筛选。

通过直接观察转化子的绿色荧光,便可以显示Cre 酶的体内重组活性,并进一步通过S DS 2PAGE 分析、质粒酶切鉴定进行了验证。

结果表明:以gfp 为报告基因、通过两种不相容质粒共转化大肠杆菌可以为研究和改进Cre ΠloxP 重组系统提供一种简便直观的检测方法。

关键词:Cre 重组酶,共转化,不相容性质粒,绿色荧光蛋白中图分类号:Q93 文献标识码:A 文章编号:000126209(2005)0120125204 源自噬菌体P1的Cre ΠloxP 位点特异性重组系统目前已被广泛用于原核生物和真核生物体内、体外的基因操作,并成为控制外源基因的行为、研究基因的功能等方面的有力工具[1~4]。

大鼠CREB结合蛋白RNA干扰重组慢病毒载体的构建与鉴定

大鼠CREB结合蛋白RNA干扰重组慢病毒载体的构建与鉴定
s o t u c e c ls( m o h m s l e l VSM Cs .M e ho Fou h ) t ds r s RNA e ue c s t r e i s q n e a g tng CBP e r - g ne we e de
sg d a y h sz d, nd t e be ton a l e nt he pFU — W —RN A e t r t o s r c i ne nd s nt e ie a h s e w s con d i o t G i v co o c n tu t
CRE i d n r t i ( P) g n , n b e v h f e t fCBP g n i n i g i a a c lr B b n i g p o e n CB e e a d o s r e t e efc so e e sl cn n r tv s u a e
t e i r le p e so e t r c nt i n he lntvia x r s i n v c o o ani g CBP s hRNA ( LV— CBP h s RNA) .LV— CBP hRNA on s c — fr d b ime y PCR n a d DNA e u ncn s q e i g wass s q n l o r n f c e t a k g ng pl s d n o ub e ue ty c t a s e t d wih p c a i a mi s i t 2 3 c ls by Li of c a n 00 . e tt r o r s wa t c e c o di g t he e r s i f 9 T e l p e t mi e 2 0 Th ie fviu s de e t d a c r n o t xp e son o

含抗凋亡基因bcl-2重组逆转录病毒重组体的构建及鉴定

含抗凋亡基因bcl-2重组逆转录病毒重组体的构建及鉴定

含抗凋亡基因bcl-2重组逆转录病毒重组体的构建及鉴定李素芳;魏锐利;金玲
【期刊名称】《国际眼科杂志》
【年(卷),期】2006(6)4
【摘要】目的:构建并鉴定含鼠bcl-2基因重组逆转录病毒.方法:将抗凋亡基因
bcl-2片段从载体pcDNA3.1中切下,定向插入逆转录病毒载体PLNCX2中,酶切鉴定;脂质体法将重组逆转录病毒转入包装细胞系PT67,G418筛选建立稳定表达bcl-2的细胞株.结果:双酶切鉴定,成功构建重组逆转录病毒载体;重组逆转录病毒转入包装细胞PT67,经G418筛选,形成了抗性克隆,并测得病毒滴度为3×1011cfu/L,提示构建的含鼠bcl-2基因重组逆转录病毒载体及稳定的包装细胞系成功.结论:含抗凋亡基因bcl-2重组逆转录病毒载体构建成功.
【总页数】2页(P781-782)
【作者】李素芳;魏锐利;金玲
【作者单位】201103,中国上海市,武警上海总队医院眼科;200003,中国上海市,第二军医大学长征医院眼科;201103,中国上海市,武警上海总队医院眼科
【正文语种】中文
【中图分类】R77
【相关文献】
1.含TK基因逆转录病毒重组体的构建 [J], 安威
2.含自杀基因酵母菌Fcy::Fur融合基因重组逆转录病毒表达载体的构建与鉴定 [J],
贾雪梅;王淑玉;王清;刘嘉茵;胡卫星;曾怡;黄丽
3.含人铜锌SOD基因逆转录病毒重组体的构建 [J], 郑新程;安威
4.HSV—TK基因逆转录病毒重组体的构建和鉴定 [J], 谢文练;梁正东
5.人乳头瘤病毒16型(湖北株)E7基因逆转录病毒重组体的构建和鉴定 [J], 盛德乔;伍欣星;赵文先
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重组质粒的构建、转化、筛选和鉴定解析

重组质粒的构建、转化、筛选和鉴定解析

重组质粒的构建、转化、筛选和鉴定实验目的:1. 学习在实现DNA体外重组过程中,正确选择合适的载体和限制性内切酶并能对限制性核酸内切酶对载体和目的DNA进行切割,产生利于连接的合适末端。

2. 学习设计构建重组DNA分子的基本方法,掌握载体和外源目的DNA酶切的操作。

3. 学习利用T4DNA连接酶把酶切后的载体片段和外源目的DNA片段连接起来,构建体外DNA分子的技术,了解并掌握几种常用的连接方式。

4. 掌握利用Cacl2感受态细胞的方法。

5. 学习掌握热击法转化E.coli的原理和方法。

6. 掌握α互补筛选法和PCR检测法筛选重组子的方法。

并鉴定体外导入目的DNA片段的大小。

7. 学习和掌握PCR反应的基本原理和操作技术,了解引物设计的基本要求。

实验原理:外源DNA与载体分子的连接即为DNA重组技术,这样重新组合的DNA分子叫做重组子。

重组的DNA分子式在DNA连接酶的作用下,有Mg2+、ATP存在的连接缓冲系统中,将分别经限制性内切酶酶切的载体分子和外源DNA分子连接起来。

将重组质粒导入感受态细胞中,将转化后的细胞在选择性培养基中培养,可以通过α互补筛选法筛选出重组子,并可通过酶切电泳及PCR检验的方法进行重组子的鉴定。

1. 重组子的构建酶切时首先要了解目的基因的酶切图谱,选用的限制性内切酶不能目的基因内部有专一的识别位点,否则当用一种或两种限制性内切酶切割外源工体DNA时不能得到完整的目的基因。

其次要选择具有相应的单一酶切位点质粒或者噬菌体载体分子。

常用的酶切方法有双酶切法和单酶切法两种。

本实验采用单酶切法,即只用一种限制性内切酶切割目的DNA片段,酶切后的片段两端将产生相同的黏性末端或平末端,再选用同样的限制性内切酶处理载体。

在构建重组子时,除了形成正常的重组子外,还可能出现目的DNA片段以相反方向插入载体分子中,或目的DNA串联后再插入载体分子中,甚至出现载体分子自连,重新环化的现象。

单酶切法简单易行单是后期筛选工作比较复杂。

C-erbB-2特异性siRNA逆转录病毒载体的构建与鉴定

C-erbB-2特异性siRNA逆转录病毒载体的构建与鉴定

C-erbB-2特异性siRNA逆转录病毒载体的构建与鉴定陈敏;冯定庆;祝怀平;凌斌;周颖;朱园园;高婷;程志祥;沈国栋;赵卫东【期刊名称】《临床输血与检验》【年(卷),期】2006(8)3【摘要】目的构建并鉴定C-erbB-2特异性siRNA逆转录病毒载体.方法体外合成含针对C-erbB-2特异基因序列的寡核苷酸,并定向克隆入逆转录病毒载体RNAi-Ready pSIREN-RetroQ.结果构建的重组逆转录病毒载体可以被限制性内切酶MIu I、BamH I、EcoR I切开,电泳可显示相应条带,经测序其序列与设计的一致.结论成功构建了C-erbB-2特异性siRNA逆转录病毒载体pRetroQ/C-erbB-2/siRNA-1、pRetroQ/C-erbB-2/siRNA-2、pSIREN-RetroQ/C-erbB-2/siRNA-3,为进一步研究p185基因沉默奠定了基础.【总页数】4页(P161-164)【作者】陈敏;冯定庆;祝怀平;凌斌;周颖;朱园园;高婷;程志祥;沈国栋;赵卫东【作者单位】230001,合肥,安徽省分子医学重点实验室,安徽医科大学附属安徽省立医院;230001,合肥,安徽省分子医学重点实验室,安徽医科大学附属安徽省立医院;230001,合肥,安徽省分子医学重点实验室,安徽医科大学附属安徽省立医院;230001,合肥,安徽省分子医学重点实验室,安徽医科大学附属安徽省立医院;230001,合肥,安徽省分子医学重点实验室,安徽医科大学附属安徽省立医院;230001,合肥,安徽省分子医学重点实验室,安徽医科大学附属安徽省立医院;230001,合肥,安徽省分子医学重点实验室,安徽医科大学附属安徽省立医院;230001,合肥,安徽省分子医学重点实验室,安徽医科大学附属安徽省立医院;230001,合肥,安徽省分子医学重点实验室,安徽医科大学附属安徽省立医院;230001,合肥,安徽省分子医学重点实验室,安徽医科大学附属安徽省立医院【正文语种】中文【中图分类】R392.11;R73【相关文献】1.mTOR特异性siRNA重组表达载体的构建及鉴定 [J], 张才成;陈静;陈唐勇;章登珊;郑晓丰;李俊明2.Cdc2/cdk1和survivin特异性siRNA真核表达载体的设计、构建和鉴定 [J], 朱俊;袁玉林;彭涛;陈树;黄铄;李双3.EGF和IGF-1受体特异性siRNA真核表达载体的设计、构建及鉴定 [J], 李卓先;周绪红;王蕾;方文敏;刘业军;张岑;袁玉林4.ABCE1特异性siRNA慢病毒载体的构建与鉴定 [J], 任翼;刘永煜;郭微;田大力5.Bcl-xl和IGF-1受体特异性siRNA真核表达载体的设计、构建及鉴定 [J], 游兴松;王蕾;李卓先;方文敏;袁玉林因版权原因,仅展示原文概要,查看原文内容请购买。

基于Cre-LoxP系统的新型慢病毒表达载体pLOX-CMV-E/P的构建与鉴定

基于Cre-LoxP系统的新型慢病毒表达载体pLOX-CMV-E/P的构建与鉴定

第36卷第2期暨南大学学报(自然科学与医学版)Vol.36 No.22015年4月JournalofJinanUniversity(NaturalScience&MedicineEdition)Apr. 2015基于Cre LoxP系统的新型慢病毒表达载体pLOX CMV E/P的构建与鉴定高文勇1, 夏景波2,3, 陈卓莹2,3, 吴彩红2,3, 王健欢2,3, 龙颖妍2,3, 齐绪峰2,3(1.武汉市汉口医院神经内科,湖北武汉430012;2.暨南大学再生医学教育部重点实验室,广东广州510632;3.暨南大学生命科学技术学院发育与再生生物学系,广东广州510632)[摘 要] 目的:基于Cre LoxP系统构建携带EGFP及Puromycin抗性基因,并带有巨细胞病毒(CMV)及翻译延伸因子1α(EF1α)双启动子的新型慢病毒表达载体,为基因治疗及基因功能研究提供有效的慢病毒载体系统.方法:以已经插入LoxP序列的pLOX TERT iresTK慢病毒载体为模板,用SpeI与KpnI进行双酶切,去除TERT iresTK片段,然后与人工设计合成的多克隆位点片段连接,构建pLOX MCS表达载体.同时,以pB513载体为模板扩增EF1α EGFP Puro表达框(带有BamHI及KpnI酶切位点),然后与经过BamHI及KpnI双酶切的pLOX MCS载体连接,进而构建pLOX CMV EF1α EGFP Puro(简称pLOX CMV E/P)载体.将pLOX CMV E/P载体与慢病毒包装载体pCMVR8.74及pMD2.G共转染293T细胞,包装病毒进行报告基因的功能分析.结果:菌落聚合酶链式反应(PCR)、酶切鉴定及测序结果均与预期结果一致,绿色荧光蛋白及抗药性基因均有较好的活性与功能.结论:成功构建了pLOX MCS及pLOX CMV E/P慢病毒表达载体,为基因治疗及基因功能研究提供有效的慢病毒表达系统.[关键词] 慢病毒表达载体; Cre LoxP系统; 绿色荧光蛋白基因; 嘌呤霉素抗性基因[中图分类号] Q782;Q784;Q786 [文献标志码] A [文章编号] 1000-9965(2015)02-0160-08doi:10.11778/j.jdxb.2015.02.013ConstructionandverificationofnovellentiviralexpressionvectorpLOX CMV E/PbasedonCre LoxPsystemGAOWenyong1, XIAJingbo2,3, CHENZhuoying2,3, WUCaihong2,3,WANGJianhuan2,3, LONGYingyan2,3, QIXufeng2,3(1.DepartmentofNeurology,HankouHospitalofWuhan,Wuhan430012,China;2.KeyLaboratoryofRegenerativeMedicineofMinistryofEducation,JinanUniversity,Guangzhou510632,China;3.DepartmentofDevelopmentalandRegenerativeBiology,CollegeofLifeScienceandTechnology,JinanUniversity,Guanghzou510632,China)[Abstract] Aim:ToconstructanovellentiviralexpressionvectorbasedontheCre LoxPsystem.Thenovellentiviralexpressionvectorconsistsoftowreportergenes(EGFPandpuromycinresistancegene(Puro)drivenbyEF1αpromoter,andthemultipleclonesite(MCS)drivenbyCMVpromoter).Meth ods:pLOX TERT iresTKlentiviralvectorwasusedasthetemplateanddigestedbySpeIandKpnIre[收稿日期] 2014-10-23[基金项目] 国家自然科学基金项目(81270183,81100079,81211140351);广东省自然科学基金项目(S2013010013598);教育部留学回国人员科研启动基金项目(2013-693);中央高校基本科研业务费专项资金项目(11614601);广州市珠江科技新星专项(2014J2200002).[作者简介] 高文勇(1977-),男,医师,研究方向:神经内科学通信作者:齐绪峰,副教授,硕士生导师,Tel:020-85222687;E-mail:qixufeng@jnu.edu.cnstrictionenzymestoremovetheTERT iresTKfragment.ThelinedvectorwasthenligatedwithanovelMSCfragmentincludingSpeIandKpnIcohesiveendsiteswhichwasgotbyannealingtwooligonucleoti des,therebyconstructingpLOX MCSvector.Atthesametime,EF1α EGFP PurofragmentwithBamHIandKpnIcohesiveendsiteswasamplifiedfromthepB513plasmidandligatedwithpLOX MCSvectordi gestedbyBamHIandKpnIrestrictionenzymes,therebyconstructingpLOX CMV EF1α EGFP Puro(pLOX CMV E/P)vector.pLOX CMV E/Pvectorwasco transfectedinto293TcellswithpackagingplasmidsincludingpCMVR8.74andpMD2.Gtoexaminethevirustitersandfunctionofreportergenes.Results:Throughsequencinganalysis,itwasfoundthatthesequenceofpLOX CMV E/Pvectoriscor rect.Furthermore,thefunctionofreportergenes(EGFPandPuromycin)wasverifiedbyfluorescencemicroscopeandpuromycintreatment,respectively.Conclusion:Takentogether,thisstudyhassuccess fullyconstructedanovellentiviralvectorpLOX CMV E/PincludingtworeportergenesdrivenbyEF1αpromoterandaMCSdrivenbyCMVpromoter,whichprovidesamoreeffectivelentiviralexpressionsys temforgenetherapyandfunctionstudies.[Keywords] Lentiviralexpressionvector; Cre LoxPsystem; EGFP; Puromycinresistancegene 慢病毒载体是以人类免疫缺陷病毒(humanim mune deficiencyvirus,HIV)为基础改造而来,具有宿主范围广,能感染分裂相细胞及非分裂相细胞,转染效率高,能携带多达8~10kb的外源基因等优势,是基因功能研究及基因治疗领域的重要途径之一[1-2].近年来,随着分子生物学技术的深入发展,根据慢病毒载体的物理特性将其分装到几个不同的质粒中,进一步提升了慢病毒载体用于基因治疗的安全性.这种技术改进不但使得慢病毒载体所携带的外源基因有效整合到宿主细胞的基因组并稳定表达,同时又具有较低的免疫原性,进而能有效降低慢病毒载体作为基因治疗手段的潜在风险[3].而且,与逆转录病毒载体相比,慢病毒载体通过随机整合的方式将外源基因插入到宿主细胞的基因组中,因此不容易造成原癌基因及致癌基因位点的插入突变[4].目前,基于慢病毒载体的基因转染已经在造血干细胞、自然杀伤(NK)细胞、树突状细胞(DC)细胞等免疫细胞中取得成功,从而为有关免疫细胞相关疾病的基因治疗提供了一条有效途径[5-6].而且,慢病毒载体系统在肿瘤基因治疗领域同样显示出良好的应用前景[7].2006年,Levine等进行了第一项基于慢病毒载体的人体临床实验,利用表达靶向HIV的反义基因的慢病毒载体转染T细胞,并回输到患者体内,用于治疗5名经过多个疗程的抗病毒治疗仍然无效的HIV患者.结果表明,其中4名患者体内观察到靶向HIV的细胞免疫,在随后的4年随访中,未发现白血病或其他严重的与基因治疗相关的不良反应,进一步表明了慢病毒载体在临床基因治疗中基本安全[8].虽然通过慢病毒载体能将外源基因有效整合到靶细胞的基因组中实行稳定表达,但外源基因及慢病毒载体骨架序列的整合对靶细胞仍然存在潜在的安全风险,无法根据需要将外源基因及时删除,急需研发出既能有效筛选、鉴定转染的阳性细胞,又能根据需要有效删除外源基因及载体骨架的更加安全有效的慢病系统.位点特异性基因重组技术是通过对特定的DNA序列进行精确切割及连接,实现在基因水平上对生物体进行遗传改造的一种基因操作技术,其中Cre LoxP系统已经发展成为一种成熟且广泛应用的删除目的基因片段的方法.本研究首先利用已经在3′端LTR区域的U3原件中插入了LoxP位点的慢病毒载体pLOX TERT riesTK为基础,通过设计、合成并插入多克隆位点(MCS)构建pLOX MCS载体,同时在人工合成的MCS末端引入由EF1α启动子驱动的EGFP绿色荧光蛋白基因及Puromycin抗性基因(Puro)片段,进而构建既能进行荧光示踪及抗药性筛选,又能根据需要适时外源基因的新型慢病毒表达载体pLOX CMV EF1α EGFP Puro(简称pLOX CMV E/P),为基因治疗及基因功能研究提供一种安全有效的慢病毒载体系统.1 材料与方法1.1 材料(1)质粒与菌株 pLOX TERT iresTK(12245)、pCMVR8.74(22036)、pMD2.G(12259)及pX458(48138)质粒购自美国Addgene公司.DH5α感受态购自北京天根生化科技有限公司(货号:CB101).PiggyBac转座子质粒pB513B 1购自于美国System161 第2期高文勇,等:基于Cre LoxP系统的新型慢病毒表达载体pLOX CMV E/P的构建与鉴定Biosciences(SBI)公司.(2)试剂 DMEM细胞培养基(DulbeccoModifiedEagleMedium,DMEM)(货号:SH30243.01B)购自于Hyclone公司,胎牛血清(货号:10099-141)、Opti MEM IReducedSerumMedium(货号:31985-062)购自Gibco公司,限制性内切酶、T4DNA连接酶(货号:EL0014)及T4PNK(货号:EK0031)均购自于Thermo公司,高保真酶KOD Plus Neo(货号:KOD 401)购自日本TOYOBO公司,分子量标准DL5000Marker(货号:3428A)、DL15000Marker(货号:DL10003)分别购自日本Takara公司和上海捷瑞生物工程有限公司,QIAprep SpinMiniprepKit质粒提取试剂盒(货号:27104)购自于美国Qiagen公司,TIANgelMidiPurificationKit凝胶回收试剂盒(货号:DP209)购自北京天根生化科技有限公司,AxyPrepTMPCRCleanupKit纯化试剂盒购自Axygen公司(货号:AP PCR 50),脂质体转染试剂LipoFiterTM(货号:HB TRLF 1000)购自汉恒生物科技(上海)有限公司,嘌呤霉素(Puromycin)(货号:P8833)购自美国Sigma公司.慢病毒浓缩试剂盒(货号:V2001 02)够购自美国BIOMIGA公司.2×Taq NeoPCRMasterMix(货号:M0201)购自美津生物技术有限公司.SOCOutgrowthMedium(货号:B9020)购自NewEnglandBiolabs公司.氨苄青霉素(Ampicillinsodiumsalt)(货号:BS050B)购自BIO SHARP公司.1.2 方法(1)pLOX MCS载体构建 以pLOX TERT ir esTK质粒DNA为模板,利用NEBcutterV2.0(ht tp://tools.neb.com/NEBcutter2/)在线分析软件进行限制性酶切位点分析,选择质粒中没有的常用限制性酶切位点的DNA序列,构建人工多克隆位点序列:设计合成MCS F:5′ CTAGTGATCAGAATTCTTAATTAACTCGAGTCGACGGATCCTGCAGGACGCGTGGTAC 3′及MCS R:5′ CACGCGTCCTGCAGGATCCGTCGACTCGAGTTAATTAAGAATTCTGATCA 3′引物对,退火形成双链,构成多克隆位点序列(图1).反应体系:MCS F(100μM)1μL,MCS R(100μM)1μL,T4PNK0.5μL,10×T4LigaseBuffer1μL,补足ddH2O至10μL.退火条件:37℃30min,95℃5min,25℃pause(0 08℃/s降温).将pLOX TERT iresTK质粒经SpeI和KpnI双酶切,切胶回收8195bp大小片段,并与上述退火形成的MCS片段进行连接,用T4DNA连接酶于16℃酶连过夜,重组质粒中MCS上游的CMV启动子中的测序引物(CMV F:5′ CGCAAATGGGCGGTAGGCGTG 3′)进行测序(北京六合华大基因科技有限公司),测序正确的重组质粒命名为pLOX MCS.(2)pLOX CMV E/P载体构建 以pB513质粒为模板,设计正向引物EF1α GFP/Pur F:5′ CGGGATCCGAAGGATCTGCGATCGCTCC 3′(下划线为BamHI酶切位点),以及反向引物EF1α GFP/Pur R:5′ GGGGTACCTCAGGCACCGGGCTTGCGGGT 3′(下划线为KpnI酶切位点),用KOD Plus Neo高保真酶扩增EF1α EGFP Puro片段,大小为1986bp,切胶回收目的大小片段.PCR体系为:10×PCRBuffer(5μL),2mMdNTPs(5μL),25mMMgSO4(3μL),上下游引物(10μM)各1 5μL,pB513质粒0 3μL(约50ng),高保真酶1μL,补足ddH2O至50μL.PCR条件为:94℃预变性2min,98℃10s,58℃退火30s,68℃延伸1min10s;共35个循环;最后于68℃延伸7min.PCR产物用质量分数为1%的琼脂糖凝胶电泳进行检查.pLOX MCS载体与PCR产物经BamHI和KpnI双酶切,切胶纯化后进行酶连反应.然后转化感受态大肠杆菌DH5α,涂布于含有氨苄青霉素(质量浓度100μg/mL)的LB平板,37℃培养过夜.重组质粒经过菌落PCR挑选阳性克隆及双酶切鉴定后,分别利用CMV F及Sp6 R(5′ ATTTAGGTGACACTATAG 3′)进行正、反双向测序,CMV F正向测序引物位于插入位点上游的CMV启动子内部,Sp6 R反向测序引物位于3′LTR区域(测序由北京六合华大基因科技有限公司完成).测序正确的重组质粒命名为pLOX CMV EF1α EGFP Puro(pLOX CMV E/P),并提取质粒备用.(3)pLOX CMV E/P载体表达绿色荧光蛋白及Puromycin抗性基因的功能验证 将本研究所构建成功的慢病毒表达载体pLOX CMV E/P(或pLOX MCS)分别与包装质粒pCMVR8.74及包膜质粒pMD2.G共转染293T细胞,进行病毒颗粒的包装.将293T细胞提前一天接种到10cm的培养皿中,待第2天达到70%~80%融合时进行上述表达载体与包装载体的共转染,转染1d后观察293T细胞绿色荧光表达情况.转染体系:pLOX CMV E/P(或pLOX MCS)载体:pCMVR8 74质粒:pMD2.G质粒的摩尔比为1 5∶1∶1,三者的总DNA量为24μg,与LipoFiterTM脂质体转染试剂共转染293T细胞,转染48h后收集上清液,同时加入10mL新鲜培养基并于转染后72h后收集上清,将两次收集的病毒上清261暨南大学学报(自然科学与医学版)第36卷液混合,3000r/min水平离心去除细胞碎片,上清液通过Milipore0 45μm滤膜过滤,进一步去除细胞碎片.将过滤后的病毒上清液与慢病毒浓缩试剂盒(BIOMIGA,美国)中的LPbuffer按照4∶1(V/V)的比例混合,并于4℃过夜.然后将病毒混合液于4℃条件下,以3000r/min的转速离心30min,移除上清,用慢病毒浓缩试剂盒中的LSbuffer(100μL)溶解病毒颗粒沉淀,并于4℃条件下,以8000rpm/min的转速离心2min,收集上清液,分装后于-80℃冻存备用.将293T细胞提前一天种于24孔板中,待细胞融合到50%~60%时用5μL慢病毒颗粒进行感染,3天后加入嘌呤霉素(Puromycin),终质量浓度为3μg/mL,继续培养至4天及7天,用荧光显微镜检测细胞存活及绿色荧光蛋白表达情况.只进行慢病毒感染,而不进行Puromycin处理的细胞直至感染7天后观察绿色荧光蛋白表达情况;未经任何处理的细胞用作空白对照.2 结果2.1 pLOX MCS载体的构建及测序鉴定pLOX MCS载体的构建流程如图1所示,本研究所设计合成的人工多克隆位点包含SpeI、BclI、EcoRI、PacI、XhoI、SalI、BamHI、SbfI、MluI及KpnI等10个酶切位点.将所挑选的重组质粒进行测序鉴定,筛选到与预期序列一致的重组质粒,命名为pLOX MCS(图2).所插入的MCS位点位于CMV启动子下游,可用于插入外源基因片段.A:pLOX TERT iresTK载体图谱;B:合成的人工多克隆位点图谱;C:pLOX MCS载体图谱.图1 pLOX MCS慢病毒表达载体构建流程Fig.1 SchematicrepresentationoftheestablishmentofpLOX MCSvector图2 pLOX MCS载体的测序结果分析Fig.2 SequencinganalysisofpLOX MCSvector2.2 pLOX CMV E/P载体的构建及鉴定pLOX CMV EF1α EGFP Puro载体(pLOX CMV E/P)的构建流程如图3所示,其多克隆位点包含SpeI、BclI、EcoRI、PacI、XhoI、SalI及BamHI等7个酶切位点,其上游为CMV启动,下游为EF1α启动子驱动的EGFP及Puromycin抗性基因.以pB513载体为模板进行PCR扩增,获得1986bp大小的片段,与预期结果一致(图4A).将目的大小片段切胶回收,经BamHI及KpnI双酶切并纯化,然后与经BamHI及KpnI双酶切的pLOX MCS载体进行连接反应,转化大肠杆菌,挑选5个单菌落进行菌落PCR361 第2期高文勇,等:基于Cre LoxP系统的新型慢病毒表达载体pLOX CMV E/P的构建与鉴定A:pLOX MCS载体图谱;B:pB513载体图谱;C:pLOX CMV E/P载体图谱.图3 pLOX CMV EF1αEGFP Puro(pLOX CMV E/P)载体的构建流程Fig.3 SchematicrepresentationoftheestablishmentofpLOX CMV EF1αEGFP Puro(pLOX CMV E/P)vector A:EF1α EGFP Puro片段的PCR扩增.M为DNA分子量,Exp为实验组的PCR产物;B:重组子的菌落PCR验证.M为DNA分子量,1-5号泳道分别为挑选的5个单克隆.图4 PCR扩增及重组子的菌落PCR验证Fig.4 PCRamplificationandtheverificationofrecombinantsbycolonyPCRanalysis检测,结果发现1#与5#克隆扩增出与预期大小一致的目的片段(图4B).将1#与5#克隆提取的质粒用BamHI及KpnI进行双酶切鉴定,两个克隆均检测出1986bp及8225bp两条与预期大小一致的目的片段(图5A).对其中的1#克隆插入位点的上、下游分析进行正、反双向测序分析,结果表明:以位于CMV启动子内部的正向测序引物CMV F测序的结果与部分CMV启动子、MCS及EF1α启动子的5′端DNA序列完全一致(图5B);而且,以位于3′LTR内部的反向测序引物Sp6 R测序的结果与部分3′LTR、KpnI酶切位点及Puro mycin抗性基因编码区的C端DNA序列完全一致(图5C).461暨南大学学报(自然科学与医学版)第36卷A:1号与5号克隆的双酶切(BamHI及KpnI)鉴定结果;B:1号克隆的正向测序结果;C:1号克隆的反向测序结果.图5 重组载体的酶切鉴定及序列分析Fig.5 Enzymedigestionandsequencinganalysisofrecombinant2.3 报告基因功能鉴定慢病毒载体与包装质粒共转染293T细胞1天后,荧光显微镜观察结果表明:用pLOX CMV E/P表达载体与包装质粒共转染靶细胞后,能够产生稳定的绿色荧光,表明绿色荧光蛋白能够稳定表达;然而,用pLOX MCS载体与包装质粒共转染靶细胞后,未观察到绿色荧光(图6).上述结果表明所构建的pLOX CMV E/P慢病毒表达载体中EGFP能够有效工作.同时,用Puromycin(3μg/mL,经筛选发现此浓度下处理4天能全部杀死正常的293T细胞)处理慢病毒感染的293T细胞,结果表明:未处理的正常细胞能够有效存活,但无绿色荧光蛋白表达;经慢病毒感染而未经Puromycin处理的细胞仍然观察到大量存活的细胞,并且可观察到相当比例的细胞中表达绿色荧光蛋;然而,用Puromycin处理慢病毒感染的细胞4天后,仅有少量细胞存活,且存活的细胞均能表达绿色荧光蛋白;而且,继续用Puromycin筛选到7天后,仍然有存活并能表达绿色荧光蛋白的细胞(图7).该结果表明,所构建的慢病毒表达载体pLOX CMV E/P中的嘌呤霉素抗性基因及EGFP编码基因能够协同表达,同时发挥各自的生物学功能.图6 重组载体pLOX CMV E/P中EGFP报告基因的功能验证Fig.6 IdentificationofEGFPexpressedbypLOX CMV E/Pvectorbyfluorescencemicroscopy561 第2期高文勇,等:基于Cre LoxP系统的新型慢病毒表达载体pLOX CMV E/P的构建与鉴定图7 重组载体pLOX CMV E/P中Puromycin抗性基因的功能验证Fig.7 IdentificationofpuromycinresistancegeneexpressedinpLOX CMV E/Pvectorbyfluorescencemicroscopy3 讨论 随着分子生物学技术的不断发展,基因治疗被认为是治愈疾病的有效方式之一.基因治疗面临的主要问题是如何将治疗基因有效转移到靶细胞及靶组织中,使其以适当的水平表达而发挥疾病治疗功能.因此,基因传递系统中载体的选择十分关键,它不但决定了外源基因的转染效率,同时还决定了外源基因表达的靶向性及有效性[9].目前,用于基因传递的病毒载体主要包括逆转录病毒、腺病毒及慢病毒载体等几种类型.其中,逆转录病毒载体虽然能够将外源基因整合到宿主细胞的基因组实现稳定表达,但不能转染非分裂相细胞,且在干细胞中的表达效率较低;腺病毒载体虽然能够同时转染分裂相及非分裂相细胞,但目的基因不能整合到靶细胞的基因组中,仅能实现瞬时表达[10-11].而慢病毒载体同时克服了上述两种载体的缺陷,具有容量大、转染效率高、细胞毒性小、可长期稳定表达外源基因、免疫原性低等优势,已经成为基因治疗领域的重要途径[12].目前,国际上已开展了多项基于改造后的慢病毒载体作为基因递送工具的临床试验,从而给一些因基因缺陷而导致的致命性疾病患者带来了希望.用于基因治疗及基因功能研究的理想的慢病毒载体不仅能够有效将外源基因稳定地整合到宿主细胞的基因组中,同时应当带有合适的示踪及筛选标记,以满足体外筛选及体内示踪的研究需要.更重要的是,如能利用特定的分子生物学手段,根据需要适时将整合到宿主基因组中的外源基因及筛选与示踪标记进行有效删除,可有效提高慢病毒载体系统在临床应用领域的安全性.Cre重组酶是源于P1噬菌体cre基因所编码的一个Int家族蛋白,可特异性识别基因组上由34个核苷酸序列构成的LoxP位点,并能根据LoxP位点的方向性实现两个LoxP位点之间DNA序列的有效删除、插入及倒置,从而实现不同的基因编辑功能.而且,Cre LoxP系统对靶基因的编辑无需其他辅助因子的参与,同时没有种属特异性.Cre LoxP位点特异性重组系统因其具有作用方式简单,且可利用特异性启动子实现在生物体发育的特定时间及特定组织中表达,已经广泛应用于基因的功能鉴定及基因组的修饰[13].因此,本研究利用Cre LoxP系统的工作原理,构建既能适时删除外源基因及载体原件,又能对靶细胞实行有效筛选及荧光示踪的慢病毒表达载体,以便为基因治疗及基因功能研究提供一种安全有效的慢病毒载体系统.本研究构建的pLOX CMV MCS EF1αEGFP PuroR(pLOX CMV E/P)慢病毒表达载体带有绿色荧光蛋白基因(EGFP)及嘌呤霉素抗性基因(Puro)661暨南大学学报(自然科学与医学版)第36卷两个报告基因,既能实现荧光示踪,又能实现抗性筛选;而且两个报告基因均在广谱性启动子EF1α驱动下表达,两者之间用T2A连接肽进行融合,不但能实现两种报告基因的高水平表达,又能使两者的表达水平互不影响.本研究构建的慢病毒载体同时带有多克隆位点,用于外源基因的插入,其上游带有另一种广谱性启动子CMV,用于驱动外源基因的表达.同时,本慢病毒表达载体框架的3′端LTR区域的构成原件(U3 R U5)已经进行了遗传改造,已经将LTR区域内U3原件-418至-18之间的碱基序列删除掉,保留U3原件上游35个碱基及下游18个碱基,并在中间插入了LoxP序列,进而实现在慢病毒载体3′端LTR区域的U3原件内插入LoxP序列[14].通过慢病毒载体的转录及反转录过程,最终在外源基因及表达原件整合到宿主基因中的同时,在其两端同时整合了同向的LoxP位点,在Cre重组酶表达的情况下,包含外源基因在内的整合片段将被有效删除.因此,利用本研究构建的慢病毒载体,结合Cre重组酶在不同时间及不同细胞类型中的表达情况,能够实现外源基因的条件性敲除,为更加精确地研究外源基因的功能提供了有力工具.本研究所构建的慢病毒表达载体pLOX CMV E/P可用慢病毒包装质粒pCMVR8.74及慢病毒包膜质粒pMD2.G进行病毒颗粒的包装,本实验利用所构建的新型慢病毒表达载体及上述慢病毒包装载体共转染293T细胞,通过慢病毒浓缩试剂进行病毒颗粒浓缩,感染293T细胞3天后能够稳定表达绿色荧光蛋白.同时,用3μg/mL的Puromycin连续筛选4天后,野生型293T细胞全部死亡,而用含有pLOX CMV E/P载体包装的慢病毒颗粒转染的靶细胞不但能够存活,并且稳定表达绿色荧光蛋白,表明本研究所构建的慢病毒表达载体pLOX CMV E/P能够有效工作.本研究成功构建的慢病毒表达载体pLOX CMV E/P不但能为基因功能研究提供一种有效的基因操作工具,同时有望为下一步的基因治疗研究提供一种安全高效的慢病毒系统.[参考文献][1] CASESS,PRICEMA,JORDANCT,etal.StabletransductionofquiescentCD34(+)CD38(-)humanhematopoieticcellsbyHIV 1 basedlentiviralvectors[J].ProcNatlAcadSciUSA,1999,96(6):2988-2993.[2] CHANGLJ,GAYEE.Themoleculargeneticsoflenti viralvectors———currentandfutureperspectives[J].CurrGeneTher,2001,1(3):237-251.[3] KUNGSK,ANDS,BONIFACINOA,etal.Inductionoftransgene specificimmunologicaltoleranceinmyeloablatednonhumanprimatesusinglentivirallytransducedCD34+progenitorcells[J].MolTher,2003,8(6):981-991.[4] MONTINIE,CESANAD,SCHMIDTM,etal.Hemato poieticstemcellgenetransferinatumor pronemousemodeluncoverslowgenotoxicityoflentiviralvectorintegration[J].NatBiotechnol,2006,24(6):687-696.[5] MAHMOODS,KANWARN,TRANJ,etal.SHP 1phosphataseisacriticalregulatorinpreventingnaturalkillercellself killing[J].PLoSOne,2012,7(8):e44244.[6] TRANJ,MAHMOODS,CARLYLEJR,etal.AlteringthespecificityofNK:targetcellinteractionsbygeneticmanipulationofNKreceptorexpressiononprimarymouseNKcells[J].Vaccine,2010,28(22):3767-3772.[7] 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重组酶Cre在体外对LoxP标记的基因组进行重组的初步研究

重组酶Cre在体外对LoxP标记的基因组进行重组的初步研究

重组酶Cre在体外对LoxP标记的基因组进行重组的初步研究陆群;吴补领;张洪伟;王冀姝;韩骅;余擎;苏凌云【期刊名称】《牙体牙髓牙周病学杂志》【年(卷),期】2002(012)003【摘要】目的:研究逆转录病毒体系转导的重组酶Cre在体外对LoxP标记的基因组进行重组的能力.方法:用逆转录病毒表达Cre,体外感染条件性基因剔除(即LoxP 标记的基因)小鼠来源的原代培养的牙乳头间充质细胞.从被感染的牙乳头间充质细胞中提取基因组DNA,用PCR的方法显示LoxP标记的基因组长度的变化,从而反映Cre在体外的重组能力.结果:被表达Cre的逆转录病毒感染的牙乳头间充质细胞,其标记的基因组长度发生了预期的变化,被标记的部分发生缺失.结论:用逆转录病毒体系转导重组酶Cre能够有效地对LoxP标记的基因组进行重组.为用这一方法在体外研究特异基因对细胞生物学行为的影响奠定基础.【总页数】3页(P124-126)【作者】陆群;吴补领;张洪伟;王冀姝;韩骅;余擎;苏凌云【作者单位】第四军医大学口腔医学院,陕西,西安,710032;第四军医大学口腔医学院,陕西,西安,710032;第四军医大学西京医院胃肠外科,陕西,西安,710032;第四军医大学基础部医学遗传学与发育生物学教研室,陕西,西安,710032;第四军医大学基础部医学遗传学与发育生物学教研室,陕西,西安,710032;第四军医大学口腔医学院,陕西,西安,710032;第四军医大学口腔医学院,陕西,西安,710032【正文语种】中文【中图分类】R780.2【相关文献】1.Cre/loxp重组系统在转基因植物中删除标记基因的应用 [J], 郑雪琴2.Tet-on和Cre/loxP双调控肝靶向表达Cre重组酶转基因小鼠的制备和功能评价[J], 赵亚;康健;招明高;汪爱勤;尹文;马玉;黄豫晓;兰海云;孙梦宁;吕欣;杨敬;雷迎峰;张建敏3.表达Cre重组酶Cre-pCEP4载体的构建及其在Cre/loxP重组系统中的应用 [J], 周杨;朱建国;唐小春;闫森;宋娜;张明军;李莉;欧阳红生;逄大欣4.逆转录病毒转导的重组酶Cre在体外对LoxP标记的小鼠骨髓细胞DNA重组[J], 陆群;吴补领;周学东;王冀姝;韩骅5.植物无标记转化的诱导表达Cre/loxP重组系统的构建 [J], 段小瑜;张录霞;马超;郝青楠;马兵钢因版权原因,仅展示原文概要,查看原文内容请购买。

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关于重组酶Cre的逆转录病毒载体的构建及鉴定【关键词】逆转录病毒关键词: 重组,遗传;基因剔除;逆转录病毒;遗传载体摘要:目的构建表达重组酶Cre的逆转录病毒载体并进行初步的体外感染研究. 方法将Cre基因片段插入到逆转录病毒载体pMx-IRES-GFP中,转染包装细胞系获得表达Cre的病毒颗粒,体外感染NIH-3T3细胞,通过绿色荧光蛋白GFP测定病毒滴度. 结果构建了表达Cre的逆转录病毒载体pMx-IRES-GFP-Cre.通过包装细胞系得到的含有病毒颗粒的培养上清,这种培养上清具有体外感染细胞的能力,病毒滴度为105 cfu mL-1 . 结论用逆转录病毒体系表达重组酶Cre并能有效地进行体外感染.为用这一方法在体外研究特异基因对细胞生物学行为的影响奠定基础.Keywords:recombination,genetic;gene knockout;retro-virus;genetic vectorAbstract:AIM To construct recombinase Cre expressing retrovirus expression vector and infect the mouse host cell in vitro.METHODS Cre gene was inserted into retrovirus expression vector pMx-IRES-GFP and the packing cell line was transfected to produce retrovirusparticles.Retrovirus particles infected NIH-3T3cells in vitro,and the virus titer was determined by green lusaferase protein.RESULTS Re-combinase Cre expressing retrovirus expression vector pMx-IRES-GFP-Cre was constructed successfully,and the packing cell line was able to produce retrovirus particles.The virus titer was105 cfu mL-1 .CONCLUSION Recombinase Cre would be expressed by retrovirus expression system,and the retrovirus particles can infect the host cells effectively.This system will be helpful in studying the function of specific gene.0 引言Cre是P1噬菌体表达的重组酶,可以特异地识别基因组上的LoxP位点并对之进行切割和重组.任何基因的两侧含有LoxP位点(floxed基因),都可以被Cre重组酶剪切[1] .因此Cre-LoxP系统目前成为一种普遍应用的条件性剔除基因的方法;为了研究Cre重组酶在体外细胞水平对LoxP位点的识别和剪切的能力,我们利用逆转录病毒载体pMx-IRES-GFP表达Cre重组酶,用重组的逆转录病毒感染体外培养的细胞,从而达到携带Cre进入体外培养的细胞.1 材料和方法1.1 材料①细菌与质粒:大肠杆菌XL-10,质粒pSP72(Promega公司),逆转录病毒载体pMx-IRES-GFP.细胞系NIH3T3和PLAT-E(均由第四军医大学医学遗传学与发育生物学教研室韩骅教授惠赠).②试剂:限制性核酸内切酶和修饰酶(TaKaRa公司和Gibicol公司)细菌LB培养基(Promega公司),小提质粒提取试剂盒和核酸凝胶回收试剂盒(上海华舜生物技术公司),磷酸钙共沉淀细胞转染试剂盒cellphect transfention kit(Pharmacia公司).③仪器:37℃和30℃普通培养箱(重庆四达公司).30℃摇床(哈尔滨东联电子技术有限公司),DNA电泳仪(北京东方仪器公司),凝胶成相系统(Alpha innate-ch公司),低温冷冻离心机(Beckman公司),倒置显微镜(Laika公司),荧光显微镜(Olympus公司).CO2 恒温孵箱(Nuaire公司),超净工作台(Super公司).1.2 方法1.2.1 构建表达Cre逆转录病毒重组DNA 用BglⅡ,SalⅠ双酶切pSP72质粒,凝胶电泳,小量胶回收以获得Cre基因片段,将其顺式插入逆转录病毒载体pMx-IRES-GFP的BamHⅠ,XhoⅠ酶切位点.转化感受态细胞扩增,小量质粒快速抽提纯化得到pMx-IRES-GFP-CreN.1.2.2 鉴定pMx-IRES-GFP-Cre重组质粒根据质粒图谱,选用4种酶以4种方式切开pMx-IRES-GFP-Cre重组质粒,NotⅠ,BamHⅠ,NotⅠ和BglⅡ双酶切;ClaⅠ和BglⅡ双酶切.1.2.3 转染逆转录病毒包装细胞系包装细胞PLAT-E培养于DMEM培养液(添加有100mL L-1 胎牛血清,2mol L-1 L-谷氨酰胺及青、链霉素)中.用Pharmacia公司的磷酸钙共沉淀法转染试剂盒(cellphect transfection kit)进行细胞转染.转染前,将1×105 细胞接种于6孔培养板中过夜培养,使细胞生长到汇合率为40%~60%.取1μg待转染DNA与试剂盒提供的CaCl2 溶液(缓冲液A)混合,室温孵育10min后,加入试剂盒提供的磷酸缓冲液(缓冲液B),立即混合后放于室温15min使沉淀形成.将形成的DNA-磷酸钙沉淀加入细胞培养液,培养12h后用培养液洗细胞,用150mL L-1 等渗甘油溶液处理细胞3min,再更换成普通培养液.继续培养48h后,收集培养上清-70℃保存.1.2.4 体外用逆转录病毒颗粒感染细胞逆转录载体转染包装细胞系PLAT-E,收集培养上清直接加入到NIH3T3细胞的培养上清中,培养3d,用40mL L-1 多聚甲醛固定,荧光显微镜下观察并照相.2 结果2.1 重组质粒构建及初步鉴定将Cre基因插入到逆转录病毒载体pMx-IRES-GFP中相应的酶切位点(Fig1).用多种限制性内切酶进行酶切鉴定,凝胶电泳片段大小与预期的结果完全相同(Fig2).图1 构建表达Cre的逆转录病毒质粒示意图略2.2 重组的逆转录病毒体外感染细胞用磷酸钙转染法将重组的逆转录病毒载体转入包装细胞系,正常条件下培养48h,收集培养上清,得到重组的逆转录病毒.将含有重组逆转录病毒载体的上清加入NIH-3T3细胞系培养液中,在正常条件下孵育3d.荧光显微镜观察.表达绿色荧光的细胞约占50%,病毒滴度约为105 cfu mL-1 .同时将空载体转入作为对照,荧光镜下观察绿色荧光细胞占约51%,与实验组近似.3 讨论Cre-LoxP系统是目前一种普遍应用的条件性剔除基因的方法.这一方法是首先培育在目的基因的两侧插有LoxP位点的小鼠,即条件剔除性小鼠[2],同时培育Cre转基因小鼠,两种小鼠交配后即可得到被Cre切除了目的基因的小鼠.为了研究Cre重组酶在体外细胞水平对LoxP位点的识别和剪切的能力,以及在体外研究条件性剔除的基因对细胞增殖分化的影响,我们利用逆转录病毒载体表达Cre重组酶,并在体外感染培养的细胞,从而达到携带Cre进入体外培养的条件剔除基因的小鼠的细胞中[3] .图2 酶切鉴定质粒电泳图略我们首先构建了可表达Cre的逆转录病毒质粒,这一载体含有一个绿色荧光蛋白的基因(GFP),可以和Cre同时独立表达[4,5] .表达了GFP的细胞在荧光显微镜下呈现为绿色,这样的细胞也同时能够表达Cre.因此,能够对Cre表达的情况进行观察.结果表明我们建立的这一系统能够在体外有效地感染小鼠细胞系NIH3T3,病毒滴度约为105 cfu mL-1 .与其他类型的外源基因转导的方法相比,反转录病毒系统具有转导效率高优点[6,7] .这种逆转录病毒载体系统建立成功后,可以通过这种方法便捷地观察剔除了目的基因的细胞的生物学变化.总之,利用逆转录病毒载体将外源基因导入细胞中是目前一种效率高操作简便的方法.我们利用逆转录病毒载体表达重组酶Cre,并初步验证了它的感染效率,为这一系统在体外研究特异基因对细胞生物学行为的影响奠定基础.参考文献[1]Xu X,Li C,Garrett-Beal L,Larson D,Wynshaw-Boris A,Deng CX.Direct removal in the mouse of a floxed neo gene from a three-loxp conditional knockout allele by two novel ap-proaches [J].Genesis,2001;30(1):1-6.[2]Huelsken J,Vogel R,Erdmann B,Cotsarelis G,BirchmeierW.Beta-Catenin controls hair follicle morphogenesis and stem cell differentiation in the skin [J].Cell,2001;18,105(4):533-545.[3]Le Y,Sauer B.Conditional gene knockout using Cre recombi-nase [J].Mol Biotechnol,2001;17(3):269-275.[4]Gagneten S,Le Y,Miller J,Sauer B.Brief expression of a GFP cre fusion gene in embryonic stem cells allows rapid retrieval of site-specific genomic deletions [J].Nucleic Acids Res,1997;25(16):3326-3331.[5]Rossant J,McMahon A.”Cre”-ating mouse mutants A meeting review on conditional mouse genetics [J].Genes Dev,1999;13(2):142-145.[6]Zhukova E,Sinnett-Smith J,Rozengurt E.Protein kinase D po-tentiates DNA synthesis and cell proliferation induced by bombesin,vasopressin or phorbol esters in Swiss3T3cells [J].J Biol Chem,2001;276(43):40298-40305.[7]Lois C,Refaeli Y,Qin X,Van Parijs L.Retroviruses as tools to study the immune system [J].Curr Opin Immunol,2001;13(4):496-504.。

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