检验标本采集与转运规范
检验标本的采集、转运规范
检验标本的采集
一、血液标本的采集
血液标本可来自于静脉、动脉或毛细血管。静脉血是最常用的标
本，静脉穿刺是最常用的采血方法。毛细血管采血主要用于儿童，血
气分析多使用动脉血。
（一） 静脉采血法
1 ．采血步骤
采血前核对病人姓名、性别、年龄、编号及检验项目等，按试验
项目要求，准备好相应的容器，如空白试管、抗凝管或促凝管等。病
人应取坐位或卧位，采血部位通常是前臂肘窝的正中静脉。若用普通
采血法，采血后应取下针头，将血液沿管壁缓慢注入试管内。
2 ．注意事项
（ 1 ） 防止溶血：造成溶血的因素有注射器和容器不干燥、不清洁；
淤血时间过长；穿刺不顺利，组织损伤过多；抽血速度太快；血液注
入容器时未取下针头或注入速度过快产生大量泡沫；震荡过于剧烈等。
若用普通注射器采血后，未取针头直接将血注入真空管内，也易造成
溶血。体内溶血属合格标本，但应在报告单上注明。
（ 2 ） 避免充血和血液浓缩：采血时应动作迅速，尽可能缩短止血
带使用时间。用止血带压迫时间最好不超过半分钟，否则将使生化结
果升高或下降。
（ 3 ） 若病人正在进行静脉输液，不宜在输液同侧手臂采血；若女
性病人做了乳腺切除术，应在手术对侧手臂采血。
（ 4 ） 采血的体位：体位改变可引起一系列的生理变化，使血液中
的许多指标发生改变。采血时要注意保持正确的体位（坐位或卧位），
以及体位的一致性。
（ 5 ） 采血时只能向外抽，决不能向静脉内推，以免注入空气，形
成气栓而造成严重后果。
（ 6 ） 很多生化成分受膳食影响，因此，采血前要确认病人是否空
腹。
（二） 动脉采血法
肱动脉、股动脉、桡动脉以及其它任何部位的动脉都可以作为采
血点，但多选择肱动脉和桡动脉。在摸到明显搏动处，按常规消毒，
左手固定搏动处，右手持注射器，针头成 60 °角刺入，血液将自动
进入注射器内。采血注意事项见血气分析部分。
（三） 真空采血法
双向针的一端在持针器的帮助下刺入静脉，另一端插入真空试管
内，血液在负压作用下自动流入试管内。由于在完全封闭状态下采血，
避免了血液外溢引起的污染，并有利于标本的转运和保存。标准真空
采血管采用国际通用的头盖和标签颜色显示采血管内添加剂种类和
试验用途。可根据需要选择相应的盛血试管。
1 ．普通血清管
红色头盖，采血管内不含添加剂，用于常规血清生化、血库和血
清学相关检验。
2 ．快速血清管
橘红色头盖，采血管内有促凝剂，可激活纤维蛋白酶，使可溶性
纤维蛋白变为不可溶的纤维蛋白多聚体，进而形成稳定的纤维蛋白凝
块。快速血清管可在 5 分钟内使采集的血液凝固，适用于急诊血清
生化试验。
3 ．惰性分离胶促凝管
金黄头盖，采血管内添加有惰性分离胶和促凝剂。标本离心后，
惰性分离胶能够将血液中的液体成分（血清或血浆） 和固体成分（红
细胞、白细胞、血小板、纤维蛋白等） 彻底分开并完全积聚在试管
中央而形成屏障，标本在 48 小时内保持稳定。促凝剂可快速激活
凝血机制，加速凝血过程，适用于急诊血清生化试验。
4 ．肝素抗凝管
绿色头盖，采血管内添加有肝素。肝素直接具有抗凝血酶的作用，
可延长标本凝血时间。适用于红细胞脆性试验、血气分析、红细胞压
积试验、血沉及普通生化测定，不适于做血凝试验。过量的肝素会引
起白细胞的聚集，不能用于白细胞计数。因其可使血片染色后背景呈
淡蓝色，故也不适于白细胞分类。
5 ．血浆分离管
浅绿色头盖，在惰性分离胶管内加入肝素锂抗凝剂，可达到快速
分离血浆的目的，是电解质检测的最佳选择，也可用于常规血浆生化
测定和 IC U 等急诊血浆生化检测。血浆标本可直接上机并在冷藏状
态下保持 48 小时稳定。
6 ． E DT A 抗凝管
紫色头盖，乙二胺四乙酸（ E DT A ，分子量 292 ） 及其盐
是一种氨基多羧基酸，可以有效地螯合血液标本中的钙离子。螯合钙
或将钙从反应位点移去将阻滞和终止内源性或外源性凝血过程，从而
防止血液标本凝固。适用于一般血液学检验，不适用于凝血试验及血
小板功能检查，亦不适用于钙离子、钾离子、钠离子、铁离子、碱性
磷酸酶、肌酸激酶和亮氨酸氨基肽酶的测定及 PCR 试验。
7 ．枸橼酸钠凝血试验管
浅蓝头盖，枸橼酸钠主要通过与血样中钙离子螯合而起抗凝作用。
适用于凝血实验，抗凝剂与血液的比例是 1 ∶ 9 。
8 ．枸橼酸钠血沉试验管
黑色头盖，血沉试验要求的构橼酸钠浓度是 3 ． 2 ％ （相当
于 0 ． 109 mol ／ L ），抗凝剂与血液的比例为 1 ∶ 4 。
二、尿液标本的采集
（一） 采集方法
尿液标本有随机新鲜尿、定时尿及 24 小时尿，根据检查项目
选择标本的采集类型。定量生化分析多收集 24 小时尿液， 24 小
时尿标本采集方法如下：
嘱病人在早晨 8 时排尿弃去，以后每次排尿均收集于一大容器
内，至次日早晨 8 时最后一次尿亦收集于容器内。测量并记录 24
小时尿液总量，然后混匀尿液，取适量尿液送检。
（二） 注意事项
收集尿液标本的容器必须清洁干燥， 最好是一次性使用的容器。
若容器反复使用，则须用洗涤液和自来水清洗， 再用蒸馏水冲洗。
尿标本要防止混入月经血、阴道分泌物、精液、前列腺液、粪便等异
物。尿标本收集后应 12 时内送检，以免细菌作用和化学成分分解。
若不能及时检验（如收集 24 小时尿液），将标本置冰箱保存，若加
入防腐剂，保存效果更佳。
三、粪便标本采集
标本的收集、存放与运送的得当与否，直接关系到检验结果的准
确性。
应采取新鲜粪便，盛于洁净、干燥无吸水性的有盖容器内，不得
混有尿液、水或其他物质，以免破坏有形成分，使病原菌死亡和污染
腐生性原虫、真菌孢子、植物种子、花粉易混淆检验结果。
采集标本时应用干净竹签选取含有粘液、脓血等病变成分的粪便；
外观无异常的粪便须从表面、深处及粪端多处取材，其量至少为大拇
指末段大小（约 5g ）。
标本采集后一般情况应于 1h 内检查完毕，否则可因 p H 及消
化酶等影响导致有形成分破坏分解。查痢疾阿米巴滋养体时应于排便
后立即送检。从脓血和稀软部分取材，寒冷季节标本传送及检查时均
需保温。
检查日本血吸虫卵时应取粘液、脓血部分，孵化毛蚴时至少留取
30g 粪便，且须尽快处理。
检查蛲虫卵须用透明薄膜拭子于晚 12 时或清晨排便前自肛门
周围皱襞处拭取并立即镜检。
找寄生虫虫体及做虫卵计数时应采集 24h 粪便，前者应从全部
粪便中仔细搜查或过筛，然后鉴别其种属；后者应混匀后检查。
对某些寄生虫及虫卵的初步筛选检验，应采取三送三检。因为许
多肠道原虫和某些蠕虫卵都有周期性排出现象。
隐血试验，应连续检查 3 天，选取外表及内层粪便，应迅速进
行检查，以免因长时间放置使隐血反应的敏感度降低。
粪胆原定量检查应连续收集 3 天的粪便，每天将粪便混匀称重
后取出约 20g 送检。查胆汁成分的粪便标本不应在室温中长时间放
置，以免阳性率减低。
脂肪定量检查时，应先食定量脂肪食，每天进食脂肪 50 ～
150g ，连续 6 天。从第 3 天起，收集 72h 粪便，也可定时口服
色素（刚果红），作为留取粪便的指示剂，将收集的粪便混合称量，
从中取出 60g 左右送检。简易法为在正常膳食情况下，收集 24h 的
全部粪便，混合称量，从其中取出约 60g 送检，测脂肪含量。
细菌检验用标本应全部用无菌操作收集，立即送检。无粪便排出
而又必须检查时，可经肛门指诊或采便管拭取标本，灌肠或服油类泻
剂的粪便常因过稀且混有油滴等而不适于做检查标本。
标本的分离、储存和转运
血液标本采集后应及时分离血清或血浆，否则可发生红细胞与血
清之间成分的相互转移，或细胞中的某些酶分解待测物等，而影响检
验结果。例如，血清无机磷可由于红细胞内有机磷酸酯被磷酸酯酶的
水解而增加；血清中葡萄糖可因红细胞内糖酵解酶的分解作用而降低，
此外，钠存在于红细胞与血清中之比为 1 ∶ 2 ；钾在血清和红细胞
中之比为 1 ∶ 20 ；钙在红细胞中极少， 几乎全部在血清中。因此，
血清钠、钾、钙测定时，需注意及时分离标本，若不能立刻分离血清
或血浆，应将标本放置于室温或 37 ℃ 水浴箱内，不能将血液标本
直接放入 4 ℃ 冰箱， 以免发生溶血。对不是因操作不当引起的溶
血、脂血或胆红素血，应在检验报告上注明，供医生参考。尿液、脑
脊液和胸腹水等标本常需离心，取上清液进行分析。
分离后的标本若不能及时检测或需保留以备复查时，一般应放于
4 ℃ 冰箱，某些检测项目的标本存放于－ 20 ℃ 冰箱更稳定。标
本存放时需加塞，以免水分挥发而使标本浓缩。需注意的是，某些检
测指标如乳酸脱氢酶的标本应存放于室温， 置 4 ℃ 反而不稳定。
标本采集后应尽快送实验室分析，标本管道传递系统可加快标本
传递速度和避免标本的错误传递。若标本不能及时转运到实验室或欲
将标本送到上级部门或检测中心进行分析时，应将标本装入试管密封，
再装入乙烯塑料袋，置冰瓶或冷藏箱内运输，运送过程中应避免剧烈
震荡。
要视所有标本为传染品，对“高危” 标本，如乙肝病人标本、
艾滋病病人标本等，要注明标识；急症或危重病人标本要特别注明。
严禁标本直接用口吸取、接触皮肤或污染器皿的外部和实验台。标本
用后均要做消毒处理，盛标本的器皿要消毒处理或毁型、焚烧。
痰培养标本采集与运送标准
痰培养标本采集与运送标准操作规程一、适应症1.咳嗽、脓痰，伴有发热，影像学检查出现新的或扩大的浸润影，考虑肺部感染时。
2.气道开放患者出现脓痰或血性痰，考虑肺部感染时。
3.其他考虑肺部感染的情形。
二、痰标本采集与转运流程注：a：宜在医护人员直视下留取合格痰标本；自然咳痰标本必须为深部咳痰，不能留取唾液和鼻咽腔分泌物。
b：诱导痰只适用于检测卡氏肺抱子菌和结核分枝杆菌，对其他病原菌检出效果差。
C.有气道高反应者慎用高渗NaCl诱导。
d.仅当气管插管的患者出现肺炎症状时，可采集气管导管吸出物标本(气管在插管24小时后即有定植菌，若未有肺部感染指征时送检气管吸出物，可导致结果与疾病不符)。
e.室温下应在2小时内送至微生物室，如不能及时送检，可将标本放置2〜8°C 环境保存2〜24小时；延迟送检将导致非苛养的口咽部定植菌过度生长，有临床意义的病原菌数量相对减少，低温保存会使肺炎链球菌等苛养菌的分离机会和数量减少；故若标本延迟送检，应在报告中予以说明并指出可能对培养结果的影响。
三、标本拒收标准1.显微镜下细胞学检查发现标本受口咽部菌群污染，合格痰标本鳞状上皮细胞﹤10 个/低倍视野。
2.送检标本为唾液、口咽分泌物或鼻咽部窦内引流物等。
3.痰液中含有食物残渣。
4.无标签或标签贴错；标识信息不明，未提供釆集时间及送检目的等。
5.送检时间超过2小时且未正确保存的标本。
6.收集容器有渗漏或容器存在其他不合格情况。
四、注意事项1.24小时内不要重复采集痰标本。
2.咳痰、诱导痰、气管吸出痰标本不适合做厌氧菌培养。
3.尽量在首剂抗菌药物使用前及更换抗菌药物前釆集标本。
只要有可能得到合格的痰标本，应马上釆集、送检。
4.当肺部感染患者伴有发热(≥38°C)或低体温(≤36°C)、白细胞增多或粒细胞减少等血培养送检指征时，应同时釆集血标本送检。
5.申请单应注明患者的临床诊断、症状、是否使用了抗菌药物、检测目的、标本釆集时间，并标识是普通培养、抗酸杆菌培养还是真菌培养。
病理标本采集、运送、交接制度
病理标本采集、运送、交接制度Ⅰ 目的为规范医院病理标本的采集、运送及交接，特制定本制度。
Ⅰ 范围适用于医院病理科。
Ⅰ 制度一、标本采集与送检（一）病理标本包括手术标本、活检标本及脱落细胞学标本；具有执业医师资格者方可采集病理标本。
（二）组织标本采集注意事项：1.送检脏器和较大标本，不得任意切开和翻转，避免破坏解剖关系；对较小病灶应加以标记，不同部位的组织应分开装置，并加以说明。
2.常规组织标本放于盛有10%中性福尔马林容器内，固定液至少为组织标本体积的4-5倍。
对于需要做特殊项目检查（如微生物、免疫组织化学、分子生物学等）的标本，应按相关的技术要求进行固定或预处理。
3.标本从离体到固定的时间不宜超过半小时，固定时间准确记录（精确到分）。
4.需做快速术中切片的病例，最迟应在术前一日与病理科联系；因故取消手术或术中认为不需要切片时，应及时通知病理科。
5.术中冰冻需送未固定的新鲜组织，手术取下后立即送检。
（三）细胞学标本采集注意事项：1.正确选择采集部位，尽可能自病变部位直接采取。
2.保证标本新鲜，防止细胞自溶、变质或腐败，采集后尽快送检；如遇特殊情况不能及时送出的浆膜腔积液标本，放入4-6℃冰箱冷藏。
3.痰标本：以晨痰为宜，嘱患者先漱口再深咳嗽。
4.尿液标本：排去晨尿后，收集下次尿量30-50ml。
5.浆膜腔积液：标本量应在100ml以上。
6.宫颈刮/涂片应及时做成涂片，保存在95%酒精固定液中15分钟后送检。
（四）送检科室应建立送检标本登记本，每次送检标本应由病理科人员签收，以避免丢失标本。
（五）标本切取、固定后应尽快送往病理科，以便于及时取材、制片和诊断，及时发出病理报告。
二、标本交接接收标本时需进行严格的查对，在核实无误后进行编号、登记或电脑录入。
具体查对项目如下：1.申请单填写是否完整。
2.申请单与标本袋上的基本情况是否一致。
3.标本名称、部位及数量与申请单是否一致。
4.标本袋中有无组织，是否已经固定。
临床微生物标本采集与运送
临床微生物标本采集与运送LG GROUP system office room 【LGA16H-LGYY-LGUA8Q8-LGA162】临床微生物标本采集与运送一、血培养标本采集、运送与报告标准操作规程一、血培养指征患者出现寒战，体温超过38℃或低体温，怀疑血流感染时，尤其存在以下情况时，应抽血做细菌和真菌培养：医院内肺炎；留置中心静脉导管超过72 h；感染性心内膜炎；骨髓炎；有严重基础疾病、免疫缺陷伴全身感染症状；临床医生怀疑有血流感染可能的其他情况。
二、采血时机一旦怀疑有血流感染可能，应立即采血做血培养，最好在抗菌治疗前或停用抗菌药物24 h后，以寒战、发热时采集为宜。
三、采血流程(一)消毒1．培养瓶消毒程序：用消毒液消毒培养瓶橡皮塞，待干燥后使用。
2．皮肤消毒程序：用消毒液从穿刺点向外画圈消毒，至消毒区域直径达5 cm以上，待消毒液挥发干燥后(常需30 s以上)穿刺采血。
(二)静脉穿刺和培养瓶接种成人用注射器无菌穿刺取血后，排尽针头内空气，直接注入血培养瓶，勿换针头(如果行第二次穿刺或用头皮针取血时，应换针头)，先注于厌氧培养瓶，避免注入空气，然后注入需氧培养瓶，轻轻混匀以防血液凝固。
近年来，临床普遍采用负压血培养瓶，将血从患者静脉直接吸入血培养瓶，减少污染环节。
(三)注意事项1．检验单需注明抗菌药物使用情况、血液采集时间和部位、临床诊断等患者信息。
2．采血部位通常为肘静脉，疑为细菌性心内膜炎时以肘动脉或股动脉采血为宜，切忌在静滴抗菌药物的静脉处采血。
除非怀疑有导管相关的血流感染，否则不应从留置静脉或动脉导管取血，因为导管易被皮肤正常菌群污染。
3．采血次数：对于成年患者，应该同时分别在两个部位采集血标本，在两个不同部位分离到同样菌种才能确定是病原菌。
4．细菌性心内膜炎：在24 h内取血3次，每次间隔不少于30 min；必要时次日再做血培养2次。
5．采血量：以培养基与血液之比10：1为宜，以稀释血液中的抗菌药物、抗体等杀菌物质。
病原学标本采集、送检和转运规范考核试题及答案
病原学标本采集、送检和转运规范考核试题及答案
1. 以下哪项不属于病原学标本采集的原则？（ ） A. 遵照医嘱 B. 严格查对 C. 采集前核对患者信息 D. 采集后立即送检 答案：D 解析：病原学标本采集应在采集后尽快送检，但并非必须立即送检。
2. 以下哪种病原体适用于诱导痰采集？（ ） A. 卡氏肺孢子菌 B. 结核分枝杆菌 C. 上述两者都适用 D. 上述两者都不适用 答案：C 解析：诱导痰适用于卡氏肺孢子菌和结核分枝杆菌的采集。 3. 采集脑脊液时，以下哪项操作是错误的？（ ） A. 使用腰椎穿刺术采集 B. 采集量3-5毫升 C. 标本采集后立即保温送检 D. 标本采集后放置1小时再送检 答案：D 解析：脑脊液采集后应立即保温送检，一般不能超过1小时。
4. 采集尿标本时，以下哪项操作是错误的？（ ） A. 使用无菌容器采集 B. 尿标本采集后立即送检 C. 尿标本采集后放置室温2小时再送检 D. 尿标本采集后冷藏保存 答案：D 解析：尿标本采集后应立即送检，不宜冷藏保存。 5. 采集血液标本时，以下哪项操作是错误的？（ ） A. 严禁在输液的针头处采血 B. 如需空腹采血，应提前通知病人禁食 C. 全血标本不可摇动试管以防溶血 D. 血培养标本应在使用抗生素之前采集 答案：C 解析：全血标本在采集后应轻轻摇动试管，使血液与抗凝剂充分混合。
二、多选题 1. 以下哪些病原学标本采集时需注意无菌操作？（ ） A. 脑脊液 B. 尿液 C. 血液 D. 痰液 答案：A、C、D 解析：脑脊液、血液和痰液在采集过程中均需注意无菌操作。
2. 以下哪些病原学标本采集后需立即送检？（ ） A. 脑脊液 B. 尿液 C. 血液 D. 痰液 答案：A、B、C 解析：脑脊液、尿液和血液采集后需立即送检，以保证检验结果的准确性。
3. 以下哪些病原学标本采集后需保温送检？（ ） A. 脑脊液 B. 尿液 C. 血液 D. 痰液 答案：A、C 解析：脑脊液和血液采集后需保温送检，以保证检验结果的准确性。
厌氧培养标本的采集和运送规范
厌氧培养标本的采集和运送规范首先，我们应当知道厌氧菌感染可能性比较高的疾病类型以及厌氧菌感染的特征性表现。
厌氧菌引起的感染病主要包括封闭脓肿如肝脓肿、腹膜炎、腹腔感染、糖尿病足等感染，还可以引起血流感染、中枢神经系统感染，有些感染一般不考虑厌氧菌。
厌氧菌感染特征性表现1.局部有气体产生；2.发生在黏膜附近的感染；3.深部外伤，如枪伤、人或动物咬伤后的继发感染；4.分泌物有恶臭或暗红色或在紫外灯下发出红色荧光，或脓汁中有硫磺颗粒考虑放线菌感染；5.某些抗菌药物治疗无效的感染；6.革兰染色着色不均、形态奇特、呈明显多形性；或镜检见细菌而需氧培养为阴性者。
其次，要明确厌氧菌培养的一般原则1、采集、运送过程中要避免与空气接触；7•采集部位因很多地方有厌氧菌定植，所以只有特殊部位才可以取材；8.床旁厌氧接种最好；9.活检或针头抽吸物，置于无空气的注射器或厌氧转运环境送至微生物室;10无菌拭子一般不建议送厌氧培养，因暴露于空气；11所有标本都要做革兰染色找细菌；12立即送检，并置于厌氧环境运送；13不能冷藏，需室温保存。
最后，要知道可接受和不可接受的标本范围1可接受的标本：抽吸物（用注射器）、胆汁、血液、骨髓、支气管镜下保护性毛刷、后穹窿穿刺术、输卵管、子宫内装置检查放线菌、卵巢、剖宫时的胎盘、鼻窦抽吸物、粪便查艰难梭菌、外科组织、外科厌氧转运拭子、经气管抽吸物、经耻骨上穿刺的尿液、子宫内膜抽吸物、正常无菌部位的体液、正常无菌部位的外科活检标本、脓液、深部伤口的抽吸物，眼部标本（泪道/结膜等结石、房水、前房液（穿刺）、玻璃体洗液（术中采集）。
14不可接受的标本：无保护的支气管肺泡灌洗液、宫颈分泌物、被污染的宫颈内拭子、气管抽吸物、恶露、鼻咽拭子、会阴分泌物、前列腺液或精液、痰液、诱导痰、粪便标本查非梭菌类厌氧菌、咽拭子、支气管造口抽吸物、尿道分泌物、中段尿或导管尿、阴道拭子或外阴拭子、一切被定植厌氧菌污染的标本、浅表伤口拭子等。
检验标本采集运输指南
检验标本采集运输指南检验科民乐县妇幼保健院重要警示语将每一份标本都看作是无法重新获得、唯一的标本，必须小心地：采集、保存、转运。
按照时间顺序，从临床医生开出医嘱开始，到分析检验报告发回的步骤，包括：检验申请、患者准备、原始样品采集、运送到实验室完成分析前的质量控制。
大部分工作都是医生、护士、运输人员、检验人员共同协调完成。
在实验室检测以外空间完成的分析前的质量管理最易出现问题。
临床反馈不满意的检验结果，60%报告最终可溯源到标本质量不合格。
可靠的检验结果，第一个环节必须依赖于标本的高质量。
要获得高质量的标本：临床医生：应主动明确地告之患者如何配合好护理人员和检验人员：采集好、检测好标本运输人员：及时快速规范转运好标本在实验室进行检测、检验结果审核、报告数据发回。
一、采集标本前质量保证、对策（一）加强沟通，合理选项医生应认真、完整地填写检验申请单，特别是：患者服药史、特殊病理变化、留取标本、送检标本的时间等。
（二）患者准备，至关重要医护人员应了解在标本采集前影响结果的非病理性因素（药物、饮食、运动、治疗、生理变化、生活环境和习性、标本采集时间）正确指导患者，采取切实措施，规范采集标本前患者的一切行为，保证采集的标本符合疾病的实际情况，留取合格的标本。
应告之患者：试验名称、所需标本类型、为什么要检测、检测报告时间、如何获得结果。
（三）采集前准备：1、条码生成与粘贴。
2、合格的采血人员。
3、标准化的采血程序。
4、合格的采血器材。
二.标本基本类别全血、血浆、血清、尿液、粪便、脑脊液、心包积液、胸腔积液和腹腔积液关节积液、前列腺液和精液、痰其他（包括乳汁、泪液、房水、唾液、脓液和各种分泌物等）各种穿刺物[血液标本的采集]一.血液标本基本要求保持标本完整性：控制各种干扰因素保持标本新鲜：最好的尺度是时间拒绝不合格血标本：脂血、溶血、凝固等二.标本采集的时间（一）随机和急诊标本随机和急诊标本是指无时间限定或无法规定时限而必须采集的血和尿等标本，一般无法让患者进行准备。
临床微生物标本采集与运送
临床微生物标本采集与运送临床微生物标本采集与运送一、血培养标本采集、运送与报告标准操作规程血培养是一种常见的检测方法，适用于疑似血流感染的患者。
当患者出现寒战、体温超过38℃或低体温时，应考虑进行血培养检测。
特别是对于存在以下情况的患者，更应该抽血做细菌和真菌培养：医院内肺炎；留置中心静脉导管超过72小时；感染性心内膜炎；骨髓炎；有严重基础疾病、免疫缺陷伴全身感染症状；临床医生怀疑有血流感染可能的其他情况。
二、采血时机一旦怀疑患者可能存在血流感染，应立即采血做血培养。
最好在抗菌治疗前或停用抗菌药物24小时后采集，以寒战、发热时采集为宜。
三、采血流程一）消毒对于培养瓶，应使用消毒液进行消毒，并等待其干燥后再使用。
对于皮肤，应使用消毒液从穿刺点向外画圈消毒，至消毒区域直径达5 cm以上。
待消毒液挥发干燥后（常需30秒以上），再进行穿刺采血。
二）静脉穿刺和培养瓶接种成人用注射器无菌穿刺取血后，排尽针头内空气，直接注入血培养瓶，勿换针头。
如果行第二次穿刺或用头皮针取血时，应换针头。
先注于厌氧培养瓶，避免注入空气，然后注入需氧培养瓶，轻轻混匀以防血液凝固。
近年来，临床普遍采用负压血培养瓶，将血从患者静脉直接吸入血培养瓶，减少污染环节。
三）注意事项检验单需注明抗菌药物使用情况、血液采集时间和部位、临床诊断等患者信息。
采血部位通常为肘静脉，疑为细菌性心内膜炎时以肘动脉或股动脉采血为宜，切忌在静滴抗菌药物的静脉处采血。
除非怀疑有导管相关的血流感染，否则不应从留置静脉或动脉导管取血，因为导管易被皮肤正常菌群污染。
对于成年患者，应该同时分别在两个部位采集血标本，在两个不同部位分离到同样菌种才能确定是病原菌。
4.关于细菌性心内膜炎的血培养方法：需要在24小时内取血3次，每次间隔不少于30分钟；如果必要，可以在次日再做2次血培养。
5.采血量的要求：推荐采用培养基与血液1：10的比例，以稀释血液中的抗菌药物、抗体等杀菌物质。
临床微生物学检验样本的采集和转运
临床微生物学检验标本的采集和转运1 范围本标准规定了临床微生物学（病毒学、细菌学和真菌学）检验标本采集和转运的技术要求。
本标准适用于开展临床微生物学检验的各级医疗机构及其临床微生物学实验室。
2 规范性引用文件下列文件对于本文件的用是必不可少的。
凡是注明日期的引用文件，仅所注日期的版本适用于本文件。
凡是不注明日期的引用文件，其最新版本（包括所有的修改单）适用于本文件。
WS/T 348 尿液标本的收集及处理指南WS/T 499 下呼吸道感染细菌培养操作指南WS/T 442 临床实验室生物安全指南WS/T 503 临床微生物实验室血培养操作规范3 术语和定义下列术语和定义适用于本文件。
3.1微生物学检验标本Clinical Microbiological Specimen本文件微生物学标本指临床病毒学、细菌学和真菌学检验（包括涂片镜检、培养、抗原、抗体和分子技术等）所用的标本。
3.2紧急检查标本STAT因疾病可能危及患者生命而需要立即处理的标本。
3.3采样拭子Sampling swab用于采集含病原微生物标本的拭子，由两部分组成：① 涂抹棒：柄部常为塑料或铝杆，柄部的一端是具有吸附作用的采样头，采样头材质包括脱脂棉、合成聚酯纤维、聚酰胺纤维、人造丝和泡沫聚氨酯等；②手柄：位于柄部的另一端，也可作为转运装置（容器或管）的帽。
3.4转运Transport标本由采样地点运送到检验地点的过程，分为内部转运（如使用人工或气动传输等内部送样方式）和外部转运（如使用汽车、飞机或火车等外部送样方式）。
3.5转运容器Transport container用于盛放转运培养基和送检标本的容器。
该容器应无菌、无消毒剂及防腐剂、无污染、密封性好及透明以便于从外部观察。
当采样装置具备密闭功能，且能有效保护样本不被污染时，可作为转运容器运送标本。
3.6转运培养基Transport medium液体或半固体的培养基，用于保护和维持标本在转运期间（从标本采集后到实验室处理这段时间）的完整性。
检验标本的留取及注意事项ppt课件
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血液标本的采集
• 生化标本一般应空腹抽血，3-5ml，促凝管或红色普 通管。
• 免疫标本，3ml，促凝管或红色普通管。 • 输血用标本，红色普通管采血3mL • 乙肝DNA检测：分离胶采血管3ml
一.患者的准备 一般要求（1）病人在采集前2小时内避免剧烈运 动和情绪激动，否则可引起生化和血液指标生理 性改变。（2）注意合理饮食，血液生化检查一般 建议空腹8-12小时。采血前避免饮酒，否则影响 生化指标假性异常 (3)部分药物可影响血液和尿液的检查．做微生物 检查，须在使用抗菌素之前采集标本。
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四、痰标本采集
一般宜采集清晨咳出的痰液，癌细胞检查则例外
（一）采集方法
1.常规痰标本：患者清晨醒来未进食前先漱口，数 次深呼吸后用力咳出气管深处的痰液，盛于痰盒 内，盖好盒盖送检。
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2.细菌检验用粪便标本全部采用无菌干燥带盖容器 收集，及时送检。 3.为提高检出率，要采集新鲜粪便作培养。 4.腹泻病人应尽量在急性期采集标本（3天以内）， 以提高阳性率。 5.虽粪便含有多种杂菌，但应尽量采用无菌容器。
采血管介绍
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尿培养标本采集与转运标准操作规程
尿培养标本采集与转运标准操作规程一、适应症1.患者出现尿频、尿急、尿痛、血尿、肾区疼痛等症状，同时可能伴有寒战、高热、白细胞计数升高,怀疑存在泌尿系统感染时;尿常规结果提示泌尿系统感染时；留置导尿管患者出现发热时。
2.对于门诊患者、大部分非复杂性泌尿系统感染患者，一般可采集清洁中段尿进行常规培养；对于有持续症状但既往培养未发现致病菌、有持续症状但治疗无效的患者以及怀疑为少见菌感染的患者，一般可通过耻骨上膀胱穿刺或膀胱导尿采集标本进行特殊培养.包括厌氧培养等。
3.对于留置导尿管患者，如无症状，通常不建议常规进行尿培养检测。
二、尿液标本的常用采集方法（一）清洁中段尿采集1.女性：在采集标本前分开大阴唇，用肥皂水充分清洗会阴部，再用清水冲洗尿道口周围。
2.男性：在采集标本前上翻包皮，用肥皂水充分清洗会阴部，再用清水冲洗尿道口。
3.拧开无菌杯盖，手持无菌杯外侧，避免接触杯口边缘。
先排出几毫升尿液丢弃，不停止尿流，然后用无菌杯盛装约10 ml尿液（＞1 ml）。
4.立即盖上无菌杯盖，旋紧，避免溢洒。
5.及时送检。
尿标本采集后尽可能在30分钟内送检，室温下一般不超过2小时，如不能及时送检，普通采集容器应置于4°C冰箱内暂存；专用防腐转运管可置于室温下暂存，但均不应超过24小时。
（二）留置导尿管采集1.夹闭导尿管10-20分钟；2.消毒：用75%乙醴消毒导管近端采样部位周围外壁；3.穿刺收集：注射器穿剌进入导管腔，抽取5〜10 ml尿液置于无菌杯或专用转运试管中；4.立即盖上无菌杯盖，旋紧，避免溢洒；5.及时运送。
尿标本采集后尽可能在30分钟内送检，室温下一般不超过2小时，如不能及时送检，普通采集容器应置于4°C冰箱内暂存；专用防腐转运管可置于室温下暂存，但均不应超过24小时。
6.禁止从集尿袋中采集标本。
（三）耻骨上膀胱穿刺采集1.消毒：脐部与耻骨区域皮肤；2.局部麻醉：对穿刺部位进行局部麻醉；3.穿刺收集：在耻骨联合和脐部中线位置穿刺插入充盈的膀胱并吸取尿液约20 ml置无菌杯或专用转运试管中；4.立即盖上无菌杯盖，旋紧，避免溢洒；5.及时运送。