某规模化猪场4种疫病抗体检测与结果分析

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猪伪狂犬抗体检测报告

猪伪狂犬抗体检测报告检测单位：XXX检测中心
受检单位：XXX猪场
样本编号：XXX
检测时间：20XX年XX月XX日
检测结果：
猪伪狂犬抗体检测值：XXX IU/mL
诊断结果：检测结果符合猪伪狂犬抗体标准。

说明：
1. 本次检测采用ELISA法进行。

2. 检测结果基于该猪场提供的血清样本。

本次检测仅针对猪伪狂犬抗体进行，不涉及其他疫病。

3. 抗体检测值的具体含义：
<0.50 IU/mL：阴性
≥0.50 IU/mL：阳性，但无法判断是否患病
≥1.0 IU/mL：阳性，疑似患病
≥2.0 IU/mL：阳性，确诊为患病
4. 此次检测结果仅对本次检测提供的样本有效。

如有其他病情发生，需要重新进行抗体检测。

5. 猪伪狂犬是一种严重的猪类传染病，会对猪场产生巨大的经济损失。

及时进行抗体检测是预防和控制该病的重要手段之一。

本检测报告仅作为参考，如有需要，请联系检测单位进行具体咨询和建议。

2017年广西部分猪场五种常见病毒性疾病血清学调查与分析

抗体检测试剂盒均购自ＭＥＤＩＡＮ公司ꎮ
广西普遍存在ꎬ应加强猪场ＰＲＶ野毒的净化ꎮ
关键词:猪病毒性疾病ꎻ血清学调查ꎻＥＬＩＳＡꎻ离散度
ＣＳＦ、ＰＲＲＳ、ＰＣＶ－２、ＦＭＤ、ＰＲＶ等疫病是危害
养猪业发展的主要传染病ꎮ 我国在２０１７年颁布
«２０１７年国家动物疫病强制免疫计划» [１] ꎬＣＳＦ与
１. ２试剂盒
同个体之间抗体水平仍有较大差异ꎬＦＭＤＶ－Ｏ的免疫
剂盒均购自ＩＤＥＸＸ公司ꎮ ＰＣＶ－２、和ＦＭＤＶ－Ｏ
ＰＲＲＳＶ、ＰＣＶ－２和ＰＲＶ的免疫效果较好ꎬ但ＰＲＲＳＶ不
ＣＳＦＶ、ＰＲＲＳＶ、ＰＲＶｇＢ和ＰＲＶｇＥ抗体检测试
效果相对较差ꎮ ＰＲＶｇＥ高达１９５％ ꎬ表明ＰＲＶ野毒在
齐度均匀ꎮ 桂林地区抗体阳性率最低为７９２％ ꎬ
林地区虽然阳性率达到８５％ ꎬ 但ＣＶ值高达
５２３４％ ꎬ说明ＣＳＦＶ抗体水平差异很大ꎬ猪群有感
染ＣＳＦＶ的风险ꎮ 总的来看ꎬ虽然来自６个地区猪
场ＣＳＦＶ抗体阳性率均高于７０％ ꎬ与实行猪瘟强制
免疫前差异不大
ＣＳＦＶ抗体检测结果见表１品数
桂林
柳州
梧州
南宁
玉林
总
１２０
５４６
４２
２７５
３９３
１４５５
阳性数
９５
５０３
３９
２３８
３３４
１２８１
阳性率( ％ )
７９２
９２１
９２９
８６５
８５０
８８０
离散度( ％ )
４５６０

黑龙江某猪场主要疫病的血清学调查与免疫效果分析

监测该猪场的ＰＲＲＳＶ、ＣＳＦＶ、ＰＲＶ的抗体水平。
表３不同猪群主要疫病血清学抗体阳性检测结果
１材料和方法
被检血清采自该场仔猪、后备母猪和经产母猪，共检测２０３份次。检测试剂有ＰＲＶｇＢ抗体ＥＬＩＳＡ检
产性能下降，腹泻，消瘦，呼吸困难，步态不稳。猪场
常规免疫后进行抗体检测，抗体水平不均匀。为弄清该猪场疫病的流行状况，摸清该场中ＰＲＲＳ、ＣＳＦ、ＰＲ
免疫状况，我们从２０１２年３月至２０１３年３月开始
仔猪３５日龄（２头份）
２０日龄首免（４２８日龄（１头份）头份），６０日龄二免（２头份）
３讨论
后备配种前３周（２头配种前２周（２配种前５周首免，配种母猪份）头份）前１周二免（１头份）
份）
２结果与分析
ＰＲＶ抗体检测结果分析及防治措施。共检测血
己疫程序，有计划地选择
高效疫苗低该场的
制和净化的目标，最终降
调
清样品５３份，ＰＲＶｇＢ阳性抗体５３份，阳性率
养殖技术顾问２０１４．１
测试剂盒ＣＳＦＶ抗体ＥＬＩＳＡ检测试剂盒、ＰＲＲＳＶ抗
体ＥＬＩＳＡ检测试剂盒均购自美国ＩＤＥＸＸ公司。抗体检测均使用ＥＬＩＳＡ方法，操作及结果判定均按说明

猪瘟抗体检测不合格的原因分析

接种时由接种人员及工具带人病原体。动物群中有免疫抑制性疾病存在，或有其他疫病存在，使免疫力暂时下降而导致发病。
１疫苗因素
个别猪场使用的猪瘟疫苗中可能未含有足够量的有活力的抗原，其本身的保护性能差，影响了免疫效果。疫苗毒（菌）株与田间流行毒（菌）株血清型
个规模养猪场各采集血样ｌ０份进行猪瘟抗体检测。大多数猪场的猪瘟抗体检测合格率均可达到８５％以上，而个别猪场的猪瘟抗体检测结果则未达到规定的标准。笔者结合实际情况，将其原因总结如下。
有较高的母源抗体或前次免疫残留的抗体，对疫苗产生了免疫干扰。接种时动物已处于潜伏感染，或在
或亚型不一致，或流行株的血清型发生了变化，或疫
３人为因素
免疫接种工作不规范。如肌注免疫时出现 “ 飞
苗选择不当甚至于用错疫苗。疫苗运输、保管不当，或疫苗稀释后未及时使用，造成疫苗失效或减效，或使用过期、变质的疫苗。不同类疫苗之间的干扰作
经常消毒，对仔猪要加强调教，加强护理，平时注意观察，及时发现病猪，及时隔离治疗，防止传播蔓延。
春季节，在猪多拥挤，圈舍潮湿，保温差等饲养管理
４治疗
“ 除癞灵”（主要成分为辛硫磷）按说明涂抹，先用洁净的温水洗净患部，把竹筷劈开，然后轻轻刮去硬皮，再涂抹。Ｏ．５％～１．Ｏ％的 “ 敌百虫”（邻氨基苯
兽药
猪瘟抗体检测不合格的原因分析
耿松王兆亮（江苏省沛县畜牧兽医站２２１６００）

猪场非洲猪瘟抗体检测意义

2. 非瘟抗体
抗体：人和动物的血清中，由于病菌或病毒的侵入而产生的具有免疫功能的蛋白质。抗体只能跟相应的抗原起作用，如伤寒患者体内所产生的抗体只能对伤寒杆菌起作用。
—— OIE：世界动物卫生组织，国际兽医局
3. 非瘟抗体检测意义
样品编号
1 2 3 4 5 6 7 8 9 10 11 12 13 14 15 16 17 18 19 20 21 22 23 24 25 26 27 28 29 30 31 32 33 34 35 36 37 38 39
猪场非洲猪瘟抗体检测
非瘟抗体检测
➢ 野毒和疫苗毒 ➢ 非瘟抗体 ➢ 临床参考：
➢ 大栏单栏或多栏出现呼吸道症状，如咳喘、腹式呼吸异常出现。 ➢ 猪只采食下降，发热，关节肿胀、弱猪增多，死亡等。 ➢ 其它疑似野毒感染症状
野毒及“疫苗毒”有 3 种决策分类：
（1）野毒： p72 阳性且 CD2V/MGF 阳性；（2） “I 型疫苗毒”： p72 阳性且 CD2V 或者 MGF 之一阴性，则为单基因缺失苗，要做基因型鉴别，如果为基因 I 型；（3） “低毒力疫苗毒”： p72 阳性，且 CD2V/MGF 均为阴性，则为双基因缺失苗。
结果判定
阳性阴性阴性阴性阳性阴性阴性阳性阴性阳性阳性阳性阳性阴性阴性阳性阴性阴性阳性阴性阴性阴性阳性阴性阴性阳性阴性阳性阳性阳性阳性阴性阴性阴性阴性阳性阳性阴性阴性
非洲猪瘟抗体检测试剂盒（磁微粒化学发光法）来自上海鸣捷生物科技有限公司；判定标准：ASFV抗体滴度≥20判定为阳性，滴度＜20判定为阴性
背景资料
后备母猪后备母猪后备母猪后备母猪后备母猪后备母猪后备母猪后备母猪后备母猪后备母猪后备母猪后备母猪后备母猪后备母猪后备母猪后备母猪后备母猪后备母猪后备母猪后备母猪后备母猪后备母猪后备母猪后备母猪后备母猪后备母猪后备母猪后备母猪后备母猪后备母猪后备母猪后备母猪后备母猪后备母猪后备母猪后备母猪后备母猪后备母猪后备母猪

规模猪场成年公猪伪狂犬野毒感染抗体(gPI抗体)的检测结果初报

Ｍ南放虏廛
ｄｉ．９９ｊｓｎ１０－９７２１．２０９ｏ：０３６／ｉｓ．０６４０．００．０１．１
２ｌ年第２总猪场必备防疫条件及操作规程
向红球
（南省衡东县畜牧水产局，南衡东４１０）湖湖２００
品种间野毒感染阳性率差异不大。
关键词：模猪场；公猪；伪狂犬；毒感染抗体；ＬＳ检测规种猪野ＥＩＡ中图分类号：８８２；８２６．￥５．８￥５．５１文献标识码：Ａ文章编号：０６４０（０）２０１－２１０— ９７２１０ —０８０１
摘要：着我国改革开放的深入，随社会的不断发展，民群众的食品结构发生了巨大变化，４对肉、、人Ａ．ＩＩ蛋奶等畜禽产
品的需求不断提高，年来，国家一系列惠农政策的引导、励和支持下，牧业有了较快的发展，发展的近在鼓畜新规模养殖户象雨后春笋迅速增长，而动物疫病也越来越猖獗，以制定并严格执行防疫操作规程，能保证然所才
１２主要试剂．
ｌ８
１０最低的为２．％。４份抽检血清样本中有０％，５００２１份伪狂犬野毒感染抗体（ｎ抗体）１ｇ呈阳性，阳性猪伪狂犬病野毒抗体ＥＩＡ检测试剂盒，自ＬＳ购

猪伪狂犬病病毒基因序列分析

猪伪狂犬病病毒主要功能蛋白基因序列分析摘要：根据Genbank中已发表的猪伪狂犬病病毒（PRV）gE、TK基因的序列各设计了1对引物，对分离得到的PRV毒株的gE、gG、TK基因进行了PCR扩增、回收、克隆、测序，测序结果与预期的PRV gE、gG、TK基因片段相符。

遗传进化树分析和氨基酸序列比对结果发现PRV毒株的gE、gG、TK氨基酸序列发生变化的位点与2012年国内分离到的PRV 流行株相同，从而推测该毒株为PRV变异毒株。

关键词：伪狂犬病毒；gE基因；TK基因；序列分析猪伪狂犬（Pseudorabies，PR）是由伪狂犬病毒（Peudorabies virus，PRV）引起的以家畜和多种野生动物发热、奇痒及脑脊髓炎为特征的急性传染病[1]。

该病在我国发生较为严重，是严重危害我国养猪业的疫病之一。

我国目前广泛应用的是自然缺失弱毒活疫苗Bartha-k61株，使猪伪狂犬病得到了很好的控制。

但是，2011年底至2012年该病在中国东北部分省份流行，甚至在许多使用基因缺失活疫苗免疫的规模化猪场出现了猪伪狂犬病疫情，给中国的养猪业造成了巨大的经济损失[2-6]。

伪狂犬病病毒(猪疱疹病毒1型)属于双股线性DNA病毒，大小约150kb，DNA基因组中G+C的含量高达73%，可编码100种蛋白质。

基因组由独特的长节段(UL)、独特的短节段(US)、内部倒转重复序列(IRs)和末端倒转重复序列(TRs)组成。

在病毒的结构蛋白中，gE糖蛋白是主要毒力因子之一，并作为标志基因用来区分疫苗免疫和野毒感染。

TK基因不仅是最主要的毒力基因，而且也是决定病毒持续感染的重要因素[7]。

一旦TK基因缺失，PＲV变异株对宿主的毒力将丧失或明显降低。

2013年至2014年上海市农业科学院畜牧兽医研究所繁殖障碍研究室从山西某免疫猪伪狂犬病（Bartha）疫苗的规模化猪场成功分离并鉴定出四株PRV，命名为SX1，SX2，SX3，SX4株，为明确该四株分离株是否属于PRV抗原变异毒株，本研究对PRV SX株的gE、gG、TK全基因进行克隆和测序，通过与国内外其他已公布PRV分离株的gE、gG、TK推导的氨基酸序列进行比对，构建核苷酸序列遗传进化树，以期为丰富PRV分子流行病学和开发科学有效的新型猪伪狂犬病疫苗提供重要科学依据。

规模场猪口蹄疫抗体效价的检测

2020年第10期猪口蹄疫是由口蹄疫病毒引起的猪的一种急性、热性、高度接触性疾病,主要侵害猪的蹄部、口部及乳房等,仔猪多伴有心肌炎。

该病不仅造成重大的经济损失,还严重制约畜牧业的健康发展,甚至威胁着国家声誉和人类食品卫生安全。

因此口蹄疫的防控对畜牧业的健康发展有着重要意义。

规模场中通过采集猪血清检测血液中口蹄疫抗体的技术手段,可以有效的预防和掌握口蹄疫的流行动态,再配合有效的猪场生物安全措施,可降低口蹄疫的感染风险。

笔者对采集的某地区规模化育肥场的猪血清进行了抗体检测和结果分析,为制定口蹄疫的防控策略提供科学依据。

1血清采集及检测秋季免疫后1个月内,选择5个免疫口蹄疫多价灭活苗的规模化育肥场,存栏4000头左右。

对每个场随机选取100头育肥猪进行血液样品采集,采血部位为前腔静脉,血量为5m L 左右,共采集500份血液样品,样品按照不同养殖场进行分类,用油性记号笔在采血器表面标记样品并编码。

将装血样的采血管斜置或平放静置30m i n ,待血清析出后,送至实验室,离心分离血清,备用。

然后使用采购自中国农业科学院兰州兽医研究所的口蹄疫O 型液相阻断ELI SA 抗体检测试剂盒检测血清中猪口蹄疫的抗体,并记录结果。

2结果与分析使用口蹄疫O 型液相阻断ELI SA 抗体检测试剂盒检测血清中猪口蹄疫抗体,结果见表1。

由表1得知,5个规模化育肥场O 型口蹄疫的抗体合格率为93%。

其中,B 育肥场O 型口蹄疫免疫合格率高达到98%,在所调查育肥场中免疫保护效果最好;D 场O 型口蹄疫免疫合格率为87%,免疫保护效果率相对较低。

剩余A 、C 、E3个规模化育肥场O 型口蹄疫免疫合格率都在90%以上,5个规模化育肥场O 型口蹄疫的免疫保护率均达标。

免疫抗体监测是对动物的健康状况进行反馈的一项重要工作,猪作为口蹄疫的放大器,对口蹄疫病毒极为敏感,对猪群血清样品的检测能反映口蹄疫在易感家畜中的感染情况。

本次随机抽检了的5个规模化育肥场,从检测结果看,检测的500份血清样品口蹄疫抗体合格率,达到了农业部免疫抗体合格率70%以上的规定。

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用于猪场免疫效果监测、免疫方案制定及潜伏
送检的２８５份血清进行了猪瘟（ＣＳＦ）、猪繁殖与呼吸综合征（ＰＲＲＳ）、伪狂犬（ＰＲ）和圆环病毒病（ＰＣ）的抗体检测，并将检验结果结合猪群生产
Ｉ￣ｗｏｒｄｓ．Ｐｉｇｆａｒｍ；Ａｎｉｔｉｂｏｄｙ；Ａｎａｌｙｓｉｓ
抗体检测是指根据抗原抗体特异结合原理，利用某些方法对样品中的抗体类型和含量进行定性或定量测定的一种技术。该技术能够
ｓｙｎｄｒｏｍｅｖｉｒｕｓ（ＰＲＲＳＶ）ａｎｄｐｏｒｃｉｎｅｃｉｒｃｏｖｉｒｕｓ（ＰＣＶ）ｂｙｃｏｍｍｅｒｃｉａｌＥＬＩＳＡｋｉｔｓ．Ｔｈｅｓｅｓａｍｐｌｅｓｗｅｒｅｃｏｌｌｅｃｔｅｄ
和公猪的群体抗体水平高于仔猪。关键词：猪场；抗体；检测；分析
中图分类号：￥８５８．２８文献标识码：Ａ文章编号：１００５－８５６７（２ｏ１３）０４ — ００２４ — ０４
Ａｎａｌｙｓｉｓｏｆｆｏｕｒｄｉｓｅａｓｅａｎｔｉｂｏｉｅｄｓｆｒｏｍｌａｒｇｅ — ｓｃａｌｅｐｉｇｆａｒｍ
山东寿光２６２７００）
摘要：应用商品化ＥＬＩＳＡ检测试剂盒，对某大型猪场５个分场的仔猪、母猪和公猪共２８５份血清，进行了猪瘟（ＣＳＦ）、猪繁殖与呼吸综合征（ＰＲＲＳ）、伪狂犬病（ＰＲ）和圆环病毒病（Ｐｃ）的抗体水平检测。结果显示２个分场的群体抗体水平高于其他各场；ＰＲＲＳ和Ｐｃ的抗体水平高于ＰＲ和ＣＳＦ的抗体水平；母猪
ｒｆｏｍｗｅａｎｅｄｐｉｇ、ＳＯＷａｎｄｂｏａｒｈｅｒｄｓ．ｈｅＴｒｅｓｕｌｔｉｎｄｉｃａｔｅｄｔｈａｔｔｈｅａｎｔｉｂｏｄｙｌｅｖｅｌｒｆｏｍｈｅｔｓｅｃｏｎｄｂｒｅｅｄｉｎｇｓｉｔｅｗａｓｂｅｔｔｅｒｈａｔｎｏｔｈｅｒｓ．Ａｔｈｅｔｐｏｐｕｌａｉｔｏｎｌｅｖｅ１．ｈｅｔａｎｉｔｂｏｄｉｅｓｎｔａｉＰＲＲＳＶｎｄａＰＣＶｉｓｂｅｔｔｅｒｈａｔｎｈｅｔｏｎｅｓａｎｔｉＰＲＶｎｄａＣＳＦ，ａｌｓｏ，ｈｅｔｎｔａｉｂｏｄｉｅｓｏｆｓｏｗａｎｄｂｏｒａｉｓｂｅｔｅｒｈａｔｎｈａｔｔｏｆｗｅａｎｅｄｐｉｇｉｎｈｅｔｓｅｃｏｎｄｂｅｅｒｄｉｎｇｓｉｔｅ．
＆Ｔｅｃｈｎｏｌｏｇｙ，Ｓｈｏｕｇｕａｎｇ２６２７００，Ｃｈｉｎａ）
Ａｂｓｔｒａｃｔ：２８５ｓｗｉｎｅｓｅｒｕｍｓａｍｐｌｅｓｆｒｏｍ５ｂｒｅｅｄｉｎｇｓｉｔｅｓｏｆａｍａｓｓｐｉｇｆａｒｍｗｅｒｅｄｅｔｅｃｔｅｄｆｏｒｉｍｍｕｎｅ
ＺｈｕＸｉｕｇａｏ，ＬｉＹａｎｑｉｎｇ２
（１．ＷｕｈａｎＨｖｓｅｎＢｉｏｔｅｃｈｎｏｌｏｇｙＣｏｍｐａｎｙＬｔｄ．Ｗｕｈａｎ４３００４２，Ｃｈｉｎａ；２．ＢｉｏｒｅｓｅａｒｃｈＣｅｎｔｅｒｏｆＷｅｉｆａｎｇＵｎｉｖｅｒｓｉｔｙｏｆＳｃｉｎｅｎｃｅ
ａｎｔｉｂｏｄｉｅｓａｎｔｉｃｌａｓｓｉｃａｌｓｗｉｎｅｆｅｖｅｒ（ＣＳＦ）、ｐｓｅｕｄｏｒａｂｉｅｓｖｉｒｕｓ（ＰＩ）、ｐｏｒｃｉｎｅｒｅｐｒｏｄｕｃｔｉｖｅａｎｄｒｅｓｐｉｒａｔｏｒｙ
・
２４・兽医ቤተ መጻሕፍቲ ባይዱ床
广东畜牧兽医科技２０１３年（第３８卷）第４期
某规模化猪场４种疫病抗体检测与结果分析
朱秀高，李艳青ｚ（１＿武汉回盛生物科技有限公司，湖北武汉４３００４２；２．潍坊科技学院生物研发中心，