动物脾脏切除术实验报告
大鼠脾切除脾窝异位辅助肝移植动物模型的建立的开题报告
大鼠脾切除脾窝异位辅助肝移植动物模型的建立的开题报告一、选题背景脾切除脾窝异位辅助肝移植已成为治疗终末期肝病的常用手段之一。
该手术方案通常实施于具有肝衰竭或肝癌的患者，其目的是使肝功能恢复或延长患者生存时间。
但是，该手术过程中局部缺血再灌注损伤、缺氧缺血等不可避免的副作用会影响肝移植效果和术后恢复。
因此，探究该手术过程的分子机制以及寻找针对这些副作用的治疗方法非常必要。
动物模型是研究器官移植手术的重要方法，大多数使用的动物模型为小鼠和大鼠。
在大鼠中，脾切除和肝移植的手术技术尚未得到广泛应用，需要通过建立合适的动物模型来研究这一手术过程的副作用。
二、研究方法通过建立大鼠脾切除脾窝异位辅助肝移植动物模型，研究该手术过程中对肝脏的影响和副作用。
具体方法如下：1. 动物选取：选择健康的雄性Sprague-Dawley大鼠，体重在200-250g之间。
2. 模型建立：大鼠腹腔内行脾切除手术，并建立脾窝异位辅助肝移植模型。
3. 实验组设置：将大鼠分为3组，分别进行肝移植术后24h、72h和7d取材观察。
4. 生物学指标检测：取肝脏组织样本，测定肝功能和细胞凋亡等生物学指标，包括肝酶、乙醛脱氢酶、超氧化物歧化酶、丙二醛、单核细胞趋化蛋白-1等。
5. 组织病理学检测：病理学检测对肝脏损伤程度进行评估。
三、预期效果1. 成功建立大鼠脾切除脾窝异位辅助肝移植动物模型。
2. 观察不同时间点（24h，72h和7d）的生物学指标和组织病理学变化，分析模型建立后对肝脏功能和形态学的影响。
3. 了解脾切除脾窝异位辅助肝移植的分子机制和副作用，为手术过程的优化提供新的治疗靶点和治疗方法。
四、结论建立大鼠脾切除脾窝异位辅助肝移植动物模型的研究，对深入探究该手术的分子机制和寻找治疗方法具有重要意义。
通过对生物学指标和组织病理学变化的观察和分析，能够发掘更深层次的机制，为临床治疗提供理论上的支持。
脾脏切除-四川动物
脾脏切除法治愈京巴犬特发性血小板减少性紫癜一例四川成都华西动物医院（610041）李发志李昆鸿李代兵关键词：血小板减少紫癜脾脏切除犬血小板正常值为200～500×109 / L，当血小板减少到30～60×109 / L时，就会出现血小板减少性紫癜，笔者曾用药物疗法治愈多例血小板减少病犬。
而血小板数为零的病例极其罕见，笔者有幸碰上一例京巴犬血小板为零的特发性血小板减少性紫癜（idiopathic thrombocytopenic purpura，ITP），先采用药物治疗12天恢复正常，停药7天后该病复发，通过切除脾脏，病犬很快康复，现报道如下。
一．患犬概况京巴犬，公，白色，9.5岁，体重6 kg ，发病第三天到成都某动物医院医治，第五天转入我院。
二．临床症状绝食四天，尿血、大便带血两天，全身无力，倒卧不愿行走，呼吸急促，呻吟，全身皮肤、粘膜广泛性出血，多处散在性出血性紫癜，口腔粘膜针尖状出血点，肛门四周及包皮皮肤青紫色，舌色苍白、球结膜苍白，注射药物后针孔凝血时间延长，由此可推断全身实质器官，颅内均有出血现象。
本病主要根据以下4个方面诊断为特发性血小板减少性紫癜。
1．临床症状全身散在性、广泛性出血性紫癜、尿血、便血、血小板数为零、脾脏不增大或仅轻度增大。
2．血液化验血小板明显减少，形态大多正常，偶有体积增大、颗粒减少、染色过深改变。
血小板生存时间明显缩短。
血红蛋白降低，贫血程度与出血有关，白细胞计数正常或稍增高，嗜酸粒细胞可增多（见表一）。
3．生化检查肝功、肾功、血糖、血脂、心肌酶、淀粉酶、钙磷检查，仅见谷丙转氨酶、肌酸激酶、乳酸脱氢酶轻度升高。
4．药物性诊断糖皮质激素激毒治疗有效，病犬康复后不久即复发，脾脏切除后血小板很快恢复正常。
四．药物治疗因该犬绝食多天，体况极差，治疗以输液为主，处方如下，但每天略有变化。
1．静脉滴注5%糖盐水80ml, 氢化可的松10mg ，头孢哌酮舒巴坦钠0.75g ；0.9%Nacl 80ml ,立止血1KU 单位；全血或血浆120ml，或5%葡萄糖80ml，免疫球蛋白（农业部兽医诊断中心生产）10ml.。
解刨小鼠提取脾细胞实验报告
解刨小鼠提取脾细胞实验报告
解刨小鼠提取脾细胞实验报告
一、实验目的
本实验旨在通过解刨小鼠，提取脾细胞，以便进行后续的免疫学研究。
二、实验材料和仪器
1. 实验材料：小白鼠、生理盐水、70%乙醇、福尔马林、石蜡等。
2. 实验仪器：手术刀、注射器、组织培养皿、显微镜等。
三、实验步骤
1. 解剖小白鼠：将小白鼠放入无菌条件下，用70%乙醇消毒表面。
然后用手术刀在胸部进行切口，打开胸腔，找到心脏，将心脏割断。
接
着将小白鼠向上抬起头部，用手术刀在颈部进行切口，打开颈部皮肤
和肌肉层，在颈动脉两侧夹住气管和食管，并清除周围组织。
最后将
气管和食管割断，并将颈动脉及其分支全部割断。
2. 取出脾脏：用注射器注入生理盐水，将脾脏从周围组织中分离出来，然后将脾脏放入组织培养皿中加入生理盐水洗涤。
3. 细胞处理：将清洗干净的脾脏放入福尔马林中固定30分钟，再用酒精和石蜡等物质进行包埋。
最后用显微镜观察并提取细胞。
四、实验结果
通过本实验，成功地解剖出小白鼠，并提取了脾细胞。
经过显微镜观察，我们可以看到细胞形态正常，并且数量充足。
五、实验注意事项
1. 实验操作要求严格无菌。
2. 解剖小白鼠时要保持手术刀的锋利度。
3. 在取出脾脏时要注意不要损伤其结构。
4. 细胞处理过程中要避免污染。
六、实验结论
通过本实验，我们成功地解剖了小白鼠并提取了脾细胞。
这为后续的免疫学研究奠定了基础。
同时，在操作过程中也需要注意无菌和仪器使用等方面的细节。
脾切除术手术记录
脾切除术的过程：1．初步麻醉：氯氨酮5ml/只，静脉给药初步麻醉。
2．固定：绳子绕过犬齿使其狗嘴部不能张开，采取仰卧位四肢展开固定于手术上。
3．备皮：用弯剪刀在狗狗左腹股沟区备皮10c m×10c m面积，在狗狗上至剑突上5cm下至下至脐下5cm备皮。
4.术中麻醉：配置浓度为20%乌拉坦注射液500ml备用；左后肢腹股沟区备皮常规消毒，寻找出左后肢股静脉大概位置，沿股静脉走行依次切开皮肤皮下组织及深筋膜，切口长度3cm，游离出股静脉2cm，取30cm长4号线对折后由止血钳穿带过血管下，剪断丝线，一条丝线远心端结扎血管，另一条丝线备用，用眼科剪刀在股静脉表明进行“T”字造口，再插入麻醉药管，并用另一条丝线固定已插入药管，乌拉坦注射液中速滴入。
采用连续缝合方法先缝合深筋膜，再采用单纯缝合方式缝合皮下组织与皮肤。
5.消毒与铺单：在将手术的区域进行常规消毒，先铺小单再中单最后铺大单，围成暴露手术区域20cm×3cm。
6.手术过程：在前正中线偏右1cm做长15cm纵行切口，上至剑突下,下至脐上5cm ,逐层切开皮肤，皮下组织，腹直肌鞘前层，钝性分离腹直肌，打开腹膜，进入腹腔。
探查腹腔决定行脾切除术。
7．确定肝脾位置后，用手探入腹腔轻轻托起脾脏，下端用温水纱布填塞。
充分显露脾蒂。
结扎并切断胃短血管后小心分离脾蒂，剪开结扎脾的韧带，显露脾动静脉。
用7号线在脾的动静脉处分别进行双重结扎，再切断脾动脉和脾静脉。
8．切断脾蒂后，全齿血管钳钳夹切断脾膈韧带，完全游离脾脏，移走脾脏。
腹腔内反复冲洗，手术野彻底止血，再次检查腹腔内其他脏器未见损伤后逐层关闭腹腔。
采用连续缝合的方式先缝腹直肌层，再缝合皮肤及皮下组织。
9．手术经过顺利，术中出血约100ml，术中狗狗血压平稳，麻醉效果满意，术后标本送病检。
犬脾脏切除术1例
P犬病•繁育Lx isease-Breeding宠物作为人们常见的伙伴，被饲养的数量越来越多。
随着宠物年龄的增长，其自身的脏器功能及免疫力逐步下降，它们将面临着越来越多的疾病风险。
天脾麟初除末/树王浩先刘强倪宏波本文对1例犬的脾脏血肿的病例进行分析。
该犬为老龄中型犬,实质器官功能部分退化，具有一定的运动能力。
通过影像学观察，其腹腔可见明显体积的占位性团块,出现明显的肿胀组织，压迫腹腔其他器官。
为避免病情恶化对其进行开腹探查，并采样送检第三方实验室进行最终确诊。
中国工作犬业&■料咀叹"21D犬病•繁育isease-Breeding一、病例拉布拉多犬，公，10岁、体重35kg,常规疫苗免疫完全，常规驱虫完全，无病史，饮食排泄情况正常，平时饲喂配方犬粮。
2018年8月11日，体检时影像学提示腹部脾脏异常带到医院就诊。
诊断）临床初步诊断主诉：免疫完全，每年正常做体检，平时饮食排泄情况正常。
患犬体重：35kg；休温:38.1%；心率：102次加in；呼吸：24次/min；该犬的营养状况良好。
触碰胸腹部,有明显闪躲情况。
（二）实验室检查1.血常规检查犬后肢静脉采血，末梢静脉采血5mL,血液抽入含有EDTA抗凝剂的试管里，使用全血，对患病犬进行血常规项目实验室检查，根据IDEXX爱德士一血液细胞分析仪的操作方法进行操作，并进行血液样本涂片计数，观察血细胞印象，并对检查结果进行分析。
血常规化验结果分析：白细胞总数及中性粒细胞百分比高于正常范围，提示患犬体内可能出现炎症。
红细胞比容低于正常范围，提示患犬出现轻微贫血。
平均红细胞血红蛋白含量及平均红细胞血红蛋白浓度检测高于正常范围，提示患犬体内存在血液浓缩，因其为10岁的中型犬，怀疑其体液代谢能力有所下降，肾功能可能出现一些退化或损伤情况，需进一步化验确疹。
血细胞计数结果分析：红细胞大小轻微不均，有多染红细胞；皱缩红细胞，偶见豪乔氏小体；中性分叶粒细胞5叶以上较多，有核右移现象，也有少量幼杆。
猪脾脏解剖实验报告(3篇)
一、实验目的1. 了解猪脾脏的位置、形态和结构；2. 掌握猪脾脏的解剖方法；3. 认识猪脾脏的生理功能；4. 培养学生动手操作能力和观察分析能力。
二、实验原理脾脏是猪的重要器官之一，具有血液净化、免疫调节、储血等功能。
通过对猪脾脏的解剖，可以了解其形态结构，掌握其生理功能。
三、实验材料与仪器1. 实验材料：新鲜猪脾脏1个；2. 实验仪器：解剖刀、解剖剪、解剖镊、解剖板、显微镜等。
四、实验步骤1. 将猪脾脏放置于解剖板上，用解剖剪将脾脏表面皮肤剪去；2. 观察猪脾脏的形态、大小和颜色；3. 用解剖刀将猪脾脏横切成两半，观察其内部结构；4. 观察脾脏的表面和内部血管分布情况；5. 将猪脾脏横截面置于显微镜下观察，观察脾小梁、脾窦、脾细胞等结构；6. 记录观察结果。
五、实验结果与分析1. 猪脾脏呈扁椭圆形，位于腹腔左上方，与胃底相邻；2. 猪脾脏表面为红色，内部为紫红色；3. 脾脏表面可见丰富的血管分布，内部血管呈网状；4. 显微镜下观察，可见脾小梁、脾窦、脾细胞等结构。
1. 猪脾脏位于腹腔左上方，与胃底相邻，有利于对血液进行净化和免疫调节；2. 猪脾脏表面和内部血管丰富，有利于血液的运输和免疫细胞的分布；3. 脾小梁、脾窦、脾细胞等结构是猪脾脏的主要组织，具有血液净化、免疫调节、储血等功能。
六、实验结论通过对猪脾脏的解剖实验，我们了解了猪脾脏的位置、形态、结构和生理功能。
猪脾脏在血液循环和免疫系统方面发挥着重要作用，对于猪的健康和生长具有重要意义。
七、实验注意事项1. 实验过程中，应保持猪脾脏的完整性，避免损伤；2. 解剖过程中，应注意观察猪脾脏的形态、大小、颜色等特征；3. 解剖过程中，应注意观察猪脾脏的血管分布情况，以便了解其血液供应；4. 实验结束后，应将猪脾脏妥善处理，避免污染环境。
八、实验拓展1. 通过对猪脾脏的解剖实验，可以进一步研究猪脾脏的生理功能，为动物疾病防治提供理论依据；2. 可以通过比较不同品种、不同年龄猪脾脏的结构和功能，探讨猪脾脏的生物学特性；3. 可以将猪脾脏的解剖实验与其他器官的解剖实验相结合，进行综合性的生物学研究。
小鼠脾脏切片实验报告
小鼠脾脏切片实验报告简介小鼠脾脏是一个重要的免疫器官，承担着过滤和保护机体免受外界微生物和有害物质入侵的功能。
本实验旨在通过对小鼠脾脏进行组织切片的方法，观察和分析脾脏的组织结构以及免疫细胞的分布情况。
实验材料和方法材料1. 实验小鼠（种类、数量等）2. 0.9%生理盐水3. 4% 碱性缓冲液（pH值7.2-7.4）4. 氯仿、醇、苯胂、二乙基氨基乙醇、玻片、显微镜方法1. 准备小鼠的脾脏组织样本：取出小鼠，将其腹部剖开，谨慎取出脾脏并放入0.9%生理盐水中清洗，去除附着在外表的血液。
2. 组织固定：将脾脏样本切块，放入4% 碱性缓冲液中固定，室温下静置2小时。
3. 组织块预处理：脾脏样本去除碱性缓冲液，用氯仿清洗，然后置于含有逐渐增加浓度的醇中，最终浓度为99%的醇溶液，室温下静置4小时。
4. 组织脱水：将脱水后的组织块置于苯胂中，进行脱脂处理。
5. 渗透：将组织块放入苯胂和二乙基氨基乙醇的混合液中，渗透24小时，确保组织块彻底渗透。
6. 切片：将渗透好的组织块置于切片机中，用切片钻制备薄切片（厚度约为5μm），并将薄切片放在玻片上。
7. 干燥：将薄切片放在恒温箱中，用适当温度和时间进行干燥。
8. 上浮脱脂：将干燥后的切片放入40的水中上浮脱脂，然后将切片挂在显微镜载玻片上。
实验结果通过显微镜观察小鼠脾脏切片的结果显示，小鼠脾脏由红髓区和白髓区组成。
红髓区呈现为较为紧密的细胞结构，细胞核显著，呈圆形或椭圆形，周边可见大量红细胞。
白髓区则由较稀疏的细胞结构组成，细胞核呈现为细长形或圆形，周围分布有淋巴细胞集群。
小鼠脾脏切片中可见到免疫细胞的聚集。
由于脾脏是免疫系统中的重要器官，免疫细胞如淋巴细胞、巨噬细胞和浆细胞等在切片中可以观察到。
淋巴细胞呈现为较大的圆形细胞核，周围有少量细胞质。
巨噬细胞则呈现为较大的细胞体积，细胞核较大，细胞质丰富，常位于红髓区中。
浆细胞则呈现为中等大小的圆形或椭圆形细胞，细胞质内可见到免疫球蛋白的沉积。
禽畜内脏处理实验报告
一、实验目的1. 了解禽畜内脏的基本结构和功能。
2. 掌握禽畜内脏的处理方法，包括清洗、切割和去除杂质。
3. 熟悉禽畜内脏的卫生处理流程，确保食品安全。
二、实验材料1. 实验动物：鸡、鸭、猪等。
2. 实验工具：解剖刀、剪刀、镊子、盆、刷子、水龙头、酒精灯、火焰喷灯、手套、口罩、实验服等。
3. 实验用品：食盐、洗涤剂、消毒液等。
三、实验步骤1. 准备工作（1）穿戴实验服、手套、口罩，确保实验过程中个人安全。
（2）将禽畜内脏从禽畜体内取出，放在干净的工作台上。
2. 内脏清洗（1）用刷子将内脏表面的污物刷去。
（2）将内脏放入盆中，加入适量的食盐和洗涤剂，用手轻轻搓洗。
（3）用清水冲洗干净内脏，去除残留的洗涤剂。
3. 内脏切割（1）用解剖刀将内脏分割成小块，以便于观察和处理。
（2）根据需要，将内脏切成不同的形状，如片、块、丝等。
4. 内脏去杂质（1）用镊子去除内脏中的杂质，如血管、淋巴管、脂肪等。
（2）检查内脏是否有异味或异样，如有异常，应立即丢弃。
5. 内脏消毒（1）将处理好的内脏放入消毒液中浸泡。
（2）浸泡时间根据消毒液的要求确定。
（3）取出内脏，用清水冲洗干净。
6. 内脏烹饪（1）将消毒后的内脏进行烹饪，如炒、煮、蒸等。
（2）烹饪过程中，注意火候和调味，确保内脏熟透且美味。
四、实验结果1. 通过本次实验，我们了解了禽畜内脏的基本结构和功能。
2. 掌握了禽畜内脏的处理方法，包括清洗、切割和去除杂质。
3. 熟悉了禽畜内脏的卫生处理流程，确保食品安全。
五、实验讨论1. 在处理禽畜内脏的过程中，应注意个人卫生，防止交叉污染。
2. 在处理过程中，要确保内脏的卫生和质量，避免食用不健康的食物。
3. 禽畜内脏的处理方法可应用于其他动物内脏的处理，具有一定的实用价值。
六、实验总结本次实验使我们了解了禽畜内脏的基本结构和功能，掌握了禽畜内脏的处理方法，提高了我们对食品安全的认识。
在今后的学习和工作中，我们将继续关注食品安全问题，为保障人民群众的饮食健康贡献自己的力量。
小鼠脾脏实验报告
一、实验目的1. 掌握小鼠脾脏的解剖学位置和结构。
2. 学习脾脏细胞分离、培养和计数的方法。
3. 掌握细胞染色、观察和计数的技巧。
4. 了解脾脏细胞在免疫学中的重要作用。
二、实验原理脾脏是机体重要的免疫器官之一，主要负责滤血、产生抗体和清除衰老、异常红细胞等功能。
脾脏中含有丰富的淋巴细胞，如B细胞、T细胞和巨噬细胞等，是研究免疫学的重要模型。
本实验通过分离小鼠脾脏细胞，进行原代培养和计数，观察细胞形态和生长情况，以了解脾脏细胞的生物学特性及其在免疫学中的应用。
三、实验材料1. 实验动物：C57BL/6小鼠。
2. 仪器与试剂：解剖剪、镊子、解剖针、离心管、离心机、PBS缓冲液、胰蛋白酶、细胞培养基、血球计数板、染色剂、显微镜等。
四、实验方法1. 解剖小鼠：处死小鼠后，打开腹腔，分离脾脏。
2. 脾脏细胞分离：将脾脏组织放入PBS缓冲液中，用解剖剪剪碎组织，加入胰蛋白酶消化酶，37℃消化30分钟。
3. 细胞培养：消化后的细胞用PBS缓冲液洗涤，加入细胞培养基，调整细胞密度，进行原代培养。
4. 细胞计数：采用血球计数板对培养细胞进行计数，观察细胞生长情况。
5. 细胞染色：采用染色剂对细胞进行染色，观察细胞形态和活力。
6. 显微镜观察：用显微镜观察细胞形态、生长情况和染色效果。
五、实验结果1. 脾脏细胞分离：成功分离出小鼠脾脏细胞，细胞形态呈圆形或椭圆形，细胞密度约为1×10^6个/mL。
2. 细胞培养：细胞在培养过程中生长良好，呈单层生长，细胞形态正常。
3. 细胞计数：培养细胞密度逐渐增加，生长曲线呈指数增长。
4. 细胞染色：细胞染色效果良好，细胞核染色深，细胞质染色浅，细胞活力较高。
5. 显微镜观察：细胞形态正常，生长旺盛，无明显病变。
六、实验讨论1. 脾脏是机体重要的免疫器官，含有丰富的淋巴细胞，在免疫学研究中具有重要意义。
2. 本实验成功分离出小鼠脾脏细胞，并进行原代培养和计数，为后续研究提供了良好的实验材料。
羊解剖内脏实验报告
一、实验目的本次实验旨在通过解剖羊的尸体，观察和了解羊的内部结构，加深对动物内脏器官的认识，理解各器官的形态、位置、功能以及它们之间的相互联系，从而提高动物解剖学的学习效果。
二、实验时间2023年X月X日三、实验地点生物实验室四、实验对象成年羊一只五、实验材料与工具1. 实验材料：羊尸体、解剖器械（手术刀、手术剪、镊子、解剖针等）。
2. 实验工具：解剖台、解剖图谱、记录本。
六、实验步骤1. 准备工作：将羊尸体放置在解剖台上，用解剖刀在羊的腹部正中线处切开皮肤，暴露腹部肌肉。
2. 腹壁肌肉解剖：逐层解剖腹壁肌肉，包括皮肌、腹外斜肌、腹直肌和腹横肌，观察各肌肉的形态、起止点以及它们之间的相互关系。
3. 腹腔器官解剖：- 腹膜切开：沿腹壁肌肉的深面切开腹膜，使腹腔器官暴露出来。
- 大网膜观察：观察大网膜的形态、位置和分布，注意其与十二指肠、空肠、回肠等器官的连接关系。
- 小网膜观察：观察小网膜的形态、位置和分布，注意其与胃、肝、脾等器官的连接关系。
- 肠系膜观察：观察总肠系膜和小肠系膜的形态、位置和分布，注意其与肠管、血管等器官的连接关系。
4. 腹腔器官分离：- 肝脏解剖：分离肝脏，观察其形态、大小、颜色和质地，注意其与胆囊、胆管等器官的连接关系。
- 胃部解剖：分离胃，观察其形态、大小、颜色和质地，注意其与食管、小肠等器官的连接关系。
- 肠道解剖：分离小肠、大肠，观察其形态、大小、颜色和质地，注意其与肠系膜、血管等器官的连接关系。
5. 心脏解剖：分离心脏，观察其形态、大小、颜色和质地，注意其与血管、心脏瓣膜等器官的连接关系。
6. 肺部解剖：分离肺部，观察其形态、大小、颜色和质地，注意其与气管、支气管等器官的连接关系。
7. 其他器官解剖：分离肾脏、脾脏、肝脏等器官，观察其形态、大小、颜色和质地，注意其与血管、淋巴管等器官的连接关系。
七、实验结果与分析1. 腹腔器官：羊的腹腔器官包括胃、小肠、大肠、肝脏、脾脏、胆囊等。
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动物脾脏切除术实验报告
本实验的目的是为了研究动物脾脏切除术对于生理机能的影响。
本文报告了该实验的具体过程和结果以及对实验结果的分析。
一、实验材料与方法
1. 实验材料
实验动物：实验组10只小鼠，对照组10只小鼠；
实验设备：手术台、手术刀、止血钳、切开器、缝合针、药瓶、注射器等。
2. 实验方法
1）实验动物的准备及分组
将20只小鼠按照体重大小依次编号，采用随机数字表法将其分为实验组和对照组。
实验组10只小鼠进行脾脏切除术，对照组10只小鼠不进行手术操作。
2）脾脏切除术操作
（1）麻醉：使用镇静剂将小鼠麻醉；
（2）消毒：对手术部位进行消毒处理；
（3）切开：在小鼠左下腹部做出5mm长的皮肤切口，用止血钳张开皮肤；
（4）固定：将小鼠固定在手术台上，调整到合适的角度；
（5）切除脾脏：使用手术刀在小鼠左下腹部的剖腹处穿刺，找到脾脏并进行切除；
（6）止血：切除完毕后对手术处进行止血处理；
（7）缝合：用缝合针缝合手术处的皮肤。
3）术后处理
将实验组小鼠进行肠道抑制药物治疗，并加强护理。
对照组小鼠也加强护理。
二、实验结果
1.实验组小鼠
实验组小鼠脾脏切除后，出现了一系列的生理变化：血液中白细胞和红细胞计数均有
不同程度的下降，血红蛋白和红细胞比容值也有下降，伴随着不同程度的贫血表现。
同时，实验组小鼠的体重明显下降，行走困难，甚至出现了运动能力下降的情况。
2.对照组小鼠
对照组小鼠在术后没有出现上述生理变化，正常进食、正常生长、正常运动。
实验组小鼠进行脾脏切除术后，在生理上主要表现为血细胞减少，贫血，运动能力下
降等等。
具体表现为：
1.血液变化，血红蛋白降低，红细胞计数降低，红细胞比容也随之下降。
因为脾脏主
要负责清除血液中不成熟和老化的红细胞，脾脏切除后能引起红细胞过多、血红蛋白水平
下降的情况。
2.能量代谢障碍。
脾脏对于血细胞代谢和储备的控制，能够影响能量代谢。
脾脏切除
后可能导致能量代谢失衡，分解代谢不足，而造成机体代谢障碍。
3.运动能力下降。
实验组小鼠在体力持久性、抗疲劳等运动方面都呈现了明显的下降
趋势。
综上所述，通过对实验组小鼠脾脏切除术后生理变化的结果分析，可以看出脾脏在保
护机体健康、调节生理功能方面的重要性。