耐药细菌及检测(2)
抗菌药物敏感试验+细菌耐药性检测

稀释法的特点
? 定量的药敏试验,测定MIC 、MBC 。 ? 方法比较繁琐,手工操作一般不作为常规试验,常
用于调查罕见耐药。 ? 自动微生物鉴定药敏分析系统采用微量稀释法检测
MIC 。
10
二、纸片扩散法( disc diffusion test)
原理:
(Kirby-Bauer 法)
? 将浸有抗菌药物的纸片贴在涂有测试菌的琼脂平板上。 抗菌药物向琼脂四周扩散形成递减的梯度浓度。
5
6
CLSI 标准 治疗浓度的上限 即表中的 R
治疗浓度
治疗浓度的下限 即表中的 S
耐药
中介耐药 敏感
MIC
7
第一节、抗菌药物敏感性试验方法
需氧和兼性厌氧菌
8
需氧和兼性厌氧菌药敏试验的方法
? 稀释法 ? 肉汤稀释法(试管稀释法) ? 琼脂稀释法(平板稀释法)
? 纸片扩散法(纸片法) ? E-试验 ? 联合药物敏感试验
的效果之和; 20%~25%
? 相加作用:它们联用时的效果 等于单用两种抗生素效果
之和; 60%~70%
? 无关作用: 两种抗生素联用的效果, 仅相当于其中一种 具有较强作用的抗生素的效果;
3
血药浓度与 MIC之间的关系
耐药
上限
中介耐药
下限
敏感
4
敏感和耐药的概念
抗菌药物的治疗浓度与MIC 的关系:
? 若MIC 小于治疗浓度, 则为“敏感”(Sensitive , S ),推荐使用。
? 若MIC 大于治疗浓度, 则为“耐药”( Resistant , R );
? 若MIC 介于治疗浓度的上下限之间 , 则为“中度耐药”( Intermediate , I )或中度敏感
第七节抗菌药物敏感性试验和细菌耐药性检查概要

细菌耐药性的生物化学机制
• 抗菌药物渗透障碍
对革兰阴性菌而言,外膜的通透性对药物进 出菌体至关重要。亲水性的药物通道蛋白为 OmpF 、OmpC 和PhoE。抗生素可以直接扩散进 入膜内并到达菌体内相应作用部位 。疏水性越强 的抗生素 、带负电荷越多的抗生素分子 、较大 的药物分子也不易通过 。外膜蛋白的缺失可导致 细菌耐药性的发生 。 细菌的外膜上特殊的药物泵出系统 使菌 体内的药物浓度不足导致耐药 。铜绿假单胞菌外 膜上有一种蛋白OprK,泵出多种抗生素 ,是产 生耐药的重要机制 。
八、肠杆菌科
• 肺炎克雷伯菌的耐药性主要表现在产生 超广谱-内酰胺酶(ESBL)。产ESBL细 菌对青霉素类、第1、2、3代头孢菌素及 单环菌素耐药,仅对头霉素类、碳青霉 烯类及酶抑制剂(克拉维酸)敏感。 ESBL检测现已作为医院细菌室常规检测 项目。
莫西林/克拉维酸、头孢曲松、头孢噻肟、 头孢呋辛、氧氟沙星、万古霉素的敏感率 为95.6%~100% ,85.1%的PRSP株对头孢曲 松敏感。而红霉素、四环素、复方磺胺甲 恶唑的耐药率高达62.9%~77.4%。
三、金黄色葡萄球菌 • 近年来由于抗生素的广泛应用,耐药菌株迅速增 多,尤其是耐甲氧西林金黄色葡萄球菌 (methicillin-resistant S. aureus,MRSA) 已成为医院感染最常见的致病菌。细菌药敏试验 常规首选抗生素为苯唑西林和青霉素;通过药敏 试验可筛选出耐甲氧西林葡萄球菌(methecillin resmtant Staphylococcus,MRS),该菌株耐所有 青霉素、头孢菌素、碳青霉烯类和β-内酰胺药、 β-内酰胺酶抑制剂类抗生素,同时对氨基糖苷类、 大环内酯类和四环素类抗生素也耐药。
第七节抗菌药物敏感性试验 和细菌耐药性检查
053.革兰氏阳性细菌抗生素耐药检测

金葡菌青霉素酶的表型实验(2)
28株blaZ阳性的金葡菌 3种表型方法阳性的数量(%)
(≤28 mm zone)纸片 纸片扩散法(锐利的抑菌 扩散法(≤28 mm 抑菌 圈边缘) 圈)
16/28 (57.1) 20/28 (71.4)
诱导性头孢肖噻吩(60 min) 11/28 (39.3)
*Oxoid nitrocefin stick 结论:表型方法不能检测出携带blaZ的葡萄球菌,这些菌株可能对青霉素 治疗无反应。 Kaase et al. 2008. Clin Microbiol Infect. 14:614.
• Etest (检测万古霉素和替考拉宁)
– Macro法(高接种量) – GRD(糖肽类耐药检测)
See Yusof et al. 2008. JCM. 46:3042
பைடு நூலகம்
GRD Etest
……并且记住
• 使用目前的MIC方法难以鉴别出万古霉素 敏感菌群中的微妙差别 • 临床医生需同时考虑病人的临床状况和实 验室信息 • 美国感染病学会指南;假如万古霉素MIC 是: – ≤1 µg/ml – 保持万古霉素谷浓度为1520mg/L – ≥2 µg/ml -–使用其他药物替代治疗
标本:骨 诊断:骨髓炎
Final Report
金葡菌
MIC (g/ml)
克林霉素
红霉素 苯唑西林 万古霉素
≤0.5 S
≤0.5 S ≤0.25 S ≤0.5 S
“假如需要青霉素结果请联系实验室”
三.VISA
耐药是由于: 美国报告的数量: 检测 菌落形态 增厚的细胞壁 少于100 困难;表型不稳定
Rybak et al. Clin Infect Dis. 2009. 49:325.
多重耐药菌-检验与解读

2013年《整治方案》
❖ 明确规定标本送检率 ❖ 住院病人抗生素使用前微生物检验样本送检率不低于30% ❖ 接受限制性使用级药物治疗的住院患者,使用药物之前送检
率不低于50% ❖ 接受特殊使用级药物治疗的住院患者,使用药物前送检率不
低于80%
2013年卫计委《抗菌药物专项整治方案》
❖ 提高标本质量,提高血液和无菌部位标本送 检比例
曼不动杆菌
米诺环素
可选择相对敏感药物 联合用药
替加环素体外有抗菌 活性
微生物报告解读
有效利用病原菌及耐药监测信息
❖ 误区
❖ 标本检出细菌一定要用药
❖ 应走出误区
❖ 区别细菌感染、定植、污染
❖
困惑?
定植
❖ 定义:微生物在人体体内一定生境或解剖位 置落脚或存活但并不引起疾病的状态
感染
❖ 定义一:病原菌进入人体增殖并与机体相互斗争(作用)的 过程。
头孢吡肟、头孢噻 厄他培南 利
亚胺培南/西司他汀、 美罗培南、帕尼培南 /倍他米隆治疗有效: 体外敏感的环丙沙星、 头孢他啶、头孢吡肟 可能有效
亚胺培南/西司他汀、 美罗培南、帕尼培南 /倍他米隆治疗有效
产碳青霉烯酶肠杆菌 粘菌素、多粘菌素B、替加环素 科细菌(包括产 NDM-1的细菌
碳青霉烯类耐药的鲍 粘菌素、多粘菌素B、替加环素
一、产超广谱β-内酰胺酶的细菌(ESBL)
❖ 产超广谱β-内酰胺酶 ❖ 从简单的β-内酰胺酶演变而来 ❖ TEM-1,2; SHV-1
广谱酶,导致大肠埃希菌和克雷伯菌对氨苄西林,头孢唑林和哌拉西林耐药 ❖ ESBLs
超广谱-内酰胺酶,由TEM-1,2 和 SHV-1突变而来,可同时水解青霉素 类、头孢菌素类以及单环类的氨曲南。在以往的报告中如果ESBL阳性,我 们会报告该菌株对青霉素类、头孢菌素类和氨曲南耐药。2010年1月CLSI (美国临床和实验室标准协会,是美国国家标准协会最早认定的标准制定 机构,其制定的微生物临床检验标准及操作规范被视为相关检验领域的金 标准)修订了头孢菌素和氨曲南的解释标准后对ESBL不再作常规报告,但 ESBL检测可能对流行病学调查或感染控制是有益的。一些菌株随着三代头 孢菌素治疗时间的延长可发展为耐药菌株。
多重耐药菌监测及处理流程

多重耐药菌监测及处理流程多重耐药菌(MDR)是指对多种抗菌药物产生耐药性的细菌。
由于多重耐药菌在临床治疗中的应用受限,治疗感染性疾病的难度大大增加。
因此,监测和处理多重耐药菌的流程非常重要。
下面将介绍多重耐药菌监测及处理的流程。
流程一:监测2.采集样品:根据具体的感染病例,采集相应的临床样品,如血液、尿液、痰液等,确保样品的无菌采集,并尽快送往实验室进行检测。
3.进行细菌分离和培养:在实验室中,将样品进行细菌的分离和培养,通过不同的培养基和条件,筛选出具有多重耐药性的菌株。
4.鉴定和检测耐药性:对分离出的细菌菌株进行鉴定,确定其属种和菌株特征,并进行耐药性测试,包括常规的药敏试验以及相关的分子生物学检测方法。
5.分析和记录结果:将实验室检测结果进行分析,并记录下菌株的耐药谱以及与此相关的临床信息。
流程二:处理1.制定感染控制措施:根据监测结果,制定相应的感染控制措施。
这包括对感染病例的隔离,严格遵守手卫生和消毒措施,并加强医护人员的培训和宣传。
2.优化抗菌药物使用:通过合理使用抗菌药物,减少对细菌耐药性的选择压力。
根据耐药性的情况,制定相应的抗菌药物使用指南,并加强抗菌药物的监测和审查。
3.加强院内感染控制:加强与多重耐药菌感染有关的设施管理、环境清洁和消毒,提高感染管控的质量和效果,减少感染的传播。
4.开展抗菌药物研究:推动抗菌药物研发和创新,寻找对多重耐药菌有效的新型抗菌药物。
加强与学术界和药企的合作,共同推进抗菌药物研究及开发。
5.增强公众教育:通过开展公众教育活动,提高公众对多重耐药菌的认识和防控意识,引导公众正确使用抗菌药物,避免滥用和误用。
综上所述,多重耐药菌监测及处理流程主要包括监测和处理两个环节。
通过采集样品,进行细菌分离和耐药性检测,可以了解多重耐药菌的分布和耐药机制。
在处理阶段,制定感染控制措施、优化抗菌药物使用、加强院内感染控制、开展抗菌药物研究和增强公众教育等措施,可以有效防控多重耐药菌的传播和感染。
细菌药敏试验及其耐药表型检测

细菌
抗菌药物
嗜麦芽窄食单胞 甲氧苄啶/磺胺甲恶唑、左氧氟沙星、米诺环素、氯霉素、头孢他啶、替卡西林/克拉维
菌
酸)
肠球菌属
氨苄西林、替考拉宁、环丙沙星或左氧氟沙星、万古霉素、红霉素、高浓度庆大霉素 (CN120)或高浓度链霉素(STH300)、青霉素、利奈唑胺、呋喃妥因(尿标本)
肺炎链球菌
苯唑西林、红霉素、左氧氟沙星、莫西沙星、青霉素b(MIC)、头孢噻肟或头孢曲松b (MIC)、万古霉素、美罗培南(脑脊液标本)
• 抑菌圈的大小反映检测菌对测定药物的敏感程度,并与 该药对待检菌的最低抑菌浓度(MIC)呈负相关关系。 即抑菌圈愈大,MIC愈小。
纸片扩散法
试验方法 1 于纯培养平板上,挑取相同的菌落4~5个 2 用无菌生理盐水制成0.5麦氏单位(真菌为2.0麦氏单位)的
细菌悬液
纸片扩散法
3.用无菌棉拭子蘸取菌液,在试管内壁旋转挤去多余菌液;
MIC与抑菌圈直径的线性关系
Log2. MIC
R v
I
S
耐药
中介 敏感
抑菌圈直径(mm)
现有主要标准
• 临床实验室标准化委员会(Clinical and Laboratory Standards Institute, CLSI)
• 欧洲抗菌药物敏感性试验委员会 EUCAST • 参考标准 ISO 20776-1 (国际微量肉汤稀释法的参考方
氨苄西林/舒巴坦、头孢呋辛、头孢唑啉、头孢西丁、庆大霉素、妥布霉素、青霉素、利 福平、磷霉素、甲氧苄啶/磺胺甲恶唑、环丙沙星或左氧氟沙星、克林霉素、红霉素、苯 唑西林、替考拉宁、万古霉素(MIC)、利奈唑胺、呋喃妥因(尿标本)
头孢他啶、头孢吡肟、头孢哌酮、氨曲南、替卡西林/克拉维酸、头孢哌酮/舒巴坦、哌拉 西林/他唑巴坦、左氧氟沙星或环丙沙星、阿米卡星、亚胺培南或美罗培南、妥布霉素、 庆大霉素、哌拉西林、多粘菌素
第二季度细菌耐药情况监测报告

三、 多重耐药菌感染防控措施
多重耐药菌感染防控的关键措施
消毒
隔离 手卫生
为有效降低多重耐药菌感染发 生率,各科室应加大监管力度,加 强多重耐药菌监测,强化消毒隔离 工作,注意个人手卫生,合理使用 抗菌药物,积极做好治疗,有效降 低多耐检出率。
三、 多重耐药菌感染防控措施
目前我院多耐感染管理存在问题:
8.49 10.16
血
痰
尿
其他标本
24年第一季度 24第二季度
一、 全院第二季度多重耐药菌监测情况
本季度多重耐药菌的检出情况
本季度住院患者中分离出多
60
重耐药菌株259株,检出率
50 40
30
19.95%。
20 10
0
图3:2024年第二季度多重耐药菌检出10株以上的科 室
48
21
21
19
14
13
1
个别医生未及时下达多耐隔离医嘱;
部分科室多耐感染隔离措施落实不到位,如未在患者床旁挂蓝
2
色接触隔离标识、患者产生的垃圾未按感染性医废处理、未在
患者病历夹、腕带、检查单上标贴蓝色隔离标识等;
3
个别科室将不同种病原微生物多耐感染患者同室隔离。
三、 多重耐药菌感染防控措施
为降低我院多重耐药菌感染风险,保护易感人群,阻 止病原菌的进一步传播,各科室应加大监管力度,严格落 实多重耐药菌医院感染预防与控制技术指南,增强个人手 卫生,合理使用抗菌药物,提高微生物标本送检意识,规 范感染防控行为,感控科将及时督导各科室防控措施落实 情况,最大程度降低其他医患感染风险。
0.00
一、 全院第二季度多重耐药菌监测情况
标本送检情况
血、痰、尿及其他标本(前列
耐药菌PPT课件

★ESBLs耐药特点
1、青霉素类、一、二、三代头孢菌素、(部分可水解 四代)和单环酰类抗生素均耐药 2、对碳青霉烯类和头霉素类敏感 3、对酶抑制剂敏感 4、产生ESBLs的细菌往往多重耐药。其质粒上常有氨 基糖苷类、氯霉素或TMP-SMZ等的耐药基因。(例有 统计产酶株AMK70.37%耐药、CIP75.30%耐药;不产 酶株分别为13.20%、35.81%)
1耐药机制分类
质粒介导 TEM、 SHV、 OXA等 染色体介导TYPEI(AmpC酶)
2分子生物学分类(Ambler)
A、B、C、D四类
功能分类—Bush分类
1、2、3、4个组
表 1 β 内酰胺酶的分类 Ambler 分类 Bush 分类 2a 酶的基因 基本位置 P(窄谱酶) 主要底物 对克拉维酸 的反应 反应 EDTA 的反 应 不反应 代表酶及菌
细菌产生耐药性的原因
分裂繁殖方式: 以其二分裂繁殖方式使自身可在很短的时 间里分裂繁殖,使自身增加数百亿万倍, 有利于耐药性的播散。 耐药机制的产生: 细菌可以通过多种耐药 机制对抗生素产生耐药性,产生各种灭活 酶、抗生素膜渗透障碍、靶位的改变等.
细菌产生耐药性的原因
抗菌药物的发现和广泛应用 环境的原因
产ESBLs细菌感染的临床表现
1、临床表现难以治愈的感染或反复复发的 感染。
2、三代头孢菌素治疗临床无效。
ESBLs表型的检测
筛选试验
标准纸片琼脂扩散法 MIC肉汤稀释法检测 双纸片协同试验
纸片确认试验 MIC肉汤稀释法 仪器
确认试验
E-test
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耐药细菌及检测(2) 写在课前的话 随着多重耐药或经耐药细菌在教学医院以及综合性医院的流行,院内感染的机会也在不断的增多。一些对青霉素和大环内酯类耐药的肺炎链球菌,对三代头孢菌素耐药的大肠埃希菌、肺炎克雷伯菌、阴沟肠杆菌,以及对碳青霉烯类耐药的铜绿假单胞菌和鲍氏不动杆菌等耐药菌株的流行,加之一些新的病原微生物的不断出现,给临床对感染性疾病的诊断和治疗增加了难度。
一、耐药细菌的检测 细菌的耐药机制各异,针对具有特定耐药机制的细菌的检测方法也是不同的。耐药细菌的检测,主要是采用抗菌药物的敏感试验。具体方法主要有扩散法、稀释法、 E-test 法、自动微生物分析仪检测以及分子生物学方法。
(一)方法 1、扩散法 这种方法是将抗菌药物纸片贴到已经涂布有待检细菌的MH碟子上,通过孵育以后,观察抑菌圈直径,以mm表示,这是一种定性的方法。
2、稀释法 稀释法主要是将抗菌药物的浓度做不同稀释,然后来测定这些不同浓度的抗菌药物对细菌的抑菌作用。通过孵育培养以后,观察最低抑菌浓度,即MIC值,以μg/ml 表示,这是定量的方法。
3 、E-test法 E-test法 主要是综合了扩散法和稀释法的优点,它是把抗菌药物以不同的浓度放在了一个E-test条上,把E-test条直接放在涂有细菌的碟子上,那么可以观察E-test条上抗菌药物与细菌之间相互作用以后,所获得的椭圆形的抑菌圈,来测定一个MIC值,因此这也是一种定量的方法。
4 、自动微生物分析仪 自动微生物分析仪,例如现在很多实验室使用的ViteK, Microscan等,这些微生物分析仪可以给出抗菌药物对于某种细菌的特定的抑菌值,也是MIC值的一种检测方法。
5 、分子生物学方法 分子生物学方法主要是测定耐药细菌的一些耐药基因,比如说mecA基因,当然对于某些耐药基因的检测,应该注意这些耐药基因是否有表达,它们是否是“沉默”的基因。 (二)解释性分类 通过药敏试验我们可以获得定性的结果即抑菌圈的直径,或者是定量的结果,即最低抑菌浓度MIC值。如何将药敏试验结果的值转换成临床容易接收的结果?在药物敏感试验的判读当中,我们就有一个遵循的标准。在我们国家,多数实验室都是遵照着美国临床微生物实验室标准化委员会所给出的解释性的分类标准。通过这个标准我们就可以把药敏试验最终判定为敏感(S)、中介(I)、或者是耐药(R)。
1 、敏感(S) 敏感就是指的针对感染部位,使用推荐剂量的抗菌药物所达到的浓度能够使细菌受到抑制。 2 、中介(I) 中介则是指需要用高于正常剂量的抗菌药物才会有效。或者是一些抗菌药物在机体的特定部位可以浓集,例如当尿路感染时使用喹诺酮类和ß-内酰胺类抗菌药物,它们可以在尿液中进行浓集。中介同时也代表了试验的缓冲区,主要是为了防止微小的未能控制的影响因素造成一些重大的结果解释错误。
3 、耐药(R) 耐药,则是指所测试的抗菌药物对病人的治疗很可能会失败。 (三)药敏试验结果与参考结果的比较 1 、定量试验 药敏结果是否正确,对于临床抗感染治疗起着很重要的指导作用。要使药敏结果能够真正的发挥对临床的指导作用,我们要进行相应的质量控制,也要评比我们的试验结果与参考结果的一致性。
从定量试验方法来看,如果我们检测的结果,与参考的结果相差在一个稀释度范围内,比如说检测结果是1或者是4,而参考结果是2,则这个检测结果跟参考结果是基本一致。当检测结果与参考结果的值是完全相同的,如都是2μg/ml,则检测的结果与参考结果就是完全一致的。
2、定性试验 当进行定性试验的时候,我们将检测结果做了大的分类。当检测结果与参考的结果在分类上是相同的,例如检测与参考的结果都是敏感,或者是检测结果与参考结果都是耐药,那么就是说检测结果与参考结果是一致的,这是可以接受的。当检测结果为敏感,而参考结果为耐药时,这种情况就成了极重大的错误。因为临床很可能根据实验室报告的敏感结果选用这一类抗菌药物对病人进行治疗,而我们的报告跟参考结果是完全不一样的,在分类上出现了很大的误差,那么对病人的治疗很可能就是无效的,就像参考结果中所指的,这是一株耐药的细菌,所以这种情况我们应该避免。还有重大错误,就是检测结果是耐药,而参考结果是敏感。这种时候临床就可能不用我们所报告的耐药的抗菌药物,而去用其他敏感的抗菌药物,但是当病人在其他抗菌药物都是耐药的情况下,医生就很难选择出有敏感的抗菌药物,因此这种情况我们也应该尽量的避免。小错误,就是指检测结果和参考结果在分类上是接近的,例如检测结果是耐药或者是敏感,而参考结果是中介或者相反,检测结果是中介,而参考结果是耐药或者是敏感。
二、几个主要的细菌耐药问题 (一)MRSA 1 、检测方法 MRSA的细菌检测的一个简单的方法就是在涂有待检金葡菌的MH碟子上放上含有30μg头孢西丁的纸片。通过培养24小时以后,观察头孢西丁抑菌圈的直径大小,当抑菌圈直径≤21mm的时候,我们认为这是一株MRSA的细菌,也就是它是由mecA基因介导的,耐甲氧西林的金葡菌。而当直径≥22mm时,认为这是 mecA基因阴性的金黄色葡萄球菌。如果实验室有条件的话,还可以直接检测mecA基因。
2、不均一耐药性 在检测MRSA的时候,我们一定要注意要在33-35 ℃ 的条件下,培养 24 小时来读取结果,而且读取结果的时候,一定要在有透光的地方,观察是否在抑菌圈里存在一些小菌株,因为MRSA菌株往往有不均一耐药的现象。这种不均一耐药性主要表现在在同一培养瓮出现耐药表达与不表达的菌株,表达菌株比不表达菌株的生长更缓慢,所以一定要检测出那些生长缓慢的耐药菌株。
3、发生率 MRSA的发生率统计是不一样的,在2008年的《中华检验医学杂志》上发表了关于全国7家医院耐药检测的一个统计数据,这个MRSA的统计数据是48%。在不同医院、不同地区或者是不同病房这个比率有所差异,有的报告60%、70%多,甚至有的医院或病房达到90%以上,这是相当高的。
4、耐药机理 MRSA的耐药机理主要是在于它产生PBP2a,这种PBP2a与β -内酰胺酶亲和力比较低,不会被接合而破坏。当葡萄球菌产生的其他的青霉素结合蛋白被β -内酰胺酶抗生素结合失去功能的时候, PBP 2a 就可以取而代之,使细菌生长繁殖成为耐药菌。
5、临床意义 检测出来MRSA的主要临床意义有:所有的MRSA的菌株对青霉素类、头孢菌素类、碳青酶烯类、ß- 内酰胺类及ß- 内酰胺类与酶抑制剂的复合制剂的复合抗菌药物都是耐药的。对于氨基糖苷类、大环内酯类和四环素类药物也往往表现为同时耐药。氨基糖苷类、大环内酯类、四环素类我们也应该做相应的检测,它们是否确实存在同时耐药,要看我们的药敏试验的结果。
6 、诱导性克林霉素耐药 在葡萄球菌特定耐药机制的检测当中,实验室还应该重视对诱导性克林霉素的耐药性的检测。这种检测方法也很简单,第一可以采用扩散法,就是将15μg的红霉素纸片,或者是2μg的克林霉素的纸片,这两种纸片同时贴在涂有葡萄球菌的MH碟子上。在培养以后,观察两纸片抑菌圈的形态,当克林霉素纸片在偏向红霉素纸片一侧的抑菌圈,形成所谓的大D,这样我们说这是一个诱导克林霉素耐药的D试验阳性。
也可以用稀释方法来检测,即把抗菌药物红霉素4μg/ml,和克林霉素0.5μg/ml,放在同一测试孔里头,然后接种上细菌,只要有细菌生长,我们认为这就是诱导克林霉素耐药的葡萄球菌。
检测诱导克林霉素耐药的意义就在于,当红霉素耐药,克林霉素敏感的时候,有一部分病人是很容易产生诱导耐药的。那么使用了克林霉素以后,很快就变成耐药了。因此在报告D试验阳性的结果的时候,直接可以报克林霉素耐药。当然,如果病人在没有其他抗菌药物选择的情况下,部分病人对克林霉素可能有效,但是应该提醒临床注意,使用克林霉素以后,很容易产生诱导耐药。
在诱导性克林霉素耐药发生率到底有多少?在《中华检验医学杂志》2005年这一期报道了诱导性克林霉素耐药占金黄色葡萄球菌的18.1%,而在红霉素耐药,克林霉素敏感的菌株当中,诱导性克林霉素的发生率可以达到69.4%。
如何报告克林霉素诱导耐药阳性? (二)VRE 1 、检测方法 检测万古霉素耐药的肠球菌通常采用每片含有30μg万古霉素的纸片进行药物敏感试验,当抑菌圈直径≥17mm时,判为肠球菌对万古霉素是敏感的,而当抑菌圈直径<16mm时,应该进一步测试MIC值,或者是进行琼脂筛选试验,即将含有6μg/ml的万古霉素加到琼脂的培养基当中,点种含有0.5个麦氏单位的菌液10μg,经过培养、观察,平板上有一个菌株生长,那么就认为这是耐万古霉素的肠球菌。
2 、耐药机理 肠球菌对万古霉素的耐药机制主要是因为细菌含有万古霉素的耐药基因,已经确定的有A、B、C甚至还有其他的万古霉素耐药基因。最常见的是A、B、C。万古霉素耐药的VanA基因通常对万古霉素表现为高度耐药,MIC的值往往在64μg/ml以上。对壁霉素表现为低度耐药,由VanB基因介导的对万古霉素的耐药,它对万古霉素的耐药程度是不等的,MIC值从16-512μg/ml,而对壁霉素是敏感的。VanC基因介导的耐药,对万古霉素是低度耐药,而对壁霉素是敏感的。因此从表形上来看,耐万古霉素的肠球菌对万古霉素和壁霉素也就是替考拉宁,它们的耐药程度是不一样的,可以进行初步的判定。当然要确切的知道不同的耐万古霉素的基因需要进行基因的检测。
需要指出来的是,基因的检测可以明确到底是哪一类的基因,尤其是VanA和VanB基因,它们这两种基因如果存在的话,很容易导致耐药性的传播,因为这两种菌是很容易在肠球菌之间进行传播的。
VRE的耐药机制主要是因为耐万古霉素的基因可以编码产生酶,编码产生的酶可以干扰细胞壁上与万古霉素结合成分的合成,从而阻断抗菌活性。
(三)VISA或VRSA 1 、检测方法 对VISA或VRSA的检测,如果实验室通常使用纸片扩散法进行药物敏感试验,当发现万古霉素对葡萄球菌的抑菌圈直径≤14mm时,应进一步检测MIC值。我们也可用筛选的方法,这种方法将6μg/ml的万古霉素加到脑心浸液琼脂培养基当中,制成了平板以后,我们再将用盐水或肉汤自备的具有0.5麦氏单位的金葡菌待检菌取10μg加到含有万古霉素的琼脂平板上,加进去的待检菌最好是用棉拭子或接种环将其涂成10-15mm直径大小的区域,然后把平板放到35 ℃空气培养,连续培养观察24小时,在反射光下仔细观察菌落生长情况。
2 、报告 如果发现有一个以上的菌落生长,再确定接种物是金黄色葡萄球菌纯的培养菌以后,我们可以用稀释法或者是琼脂梯度扩散法,即我们前面讲到的E-text的方法来检测MIC。如果没有菌落生长,直接可以报告万古霉素敏感。通过MIC的检测,知道待检菌具体的MIC值,从而确定是VISA还是VRSA。