金黄色葡萄球菌检测方法
金黄色葡萄球菌检验

金黄色葡萄球菌产生磷脂酶、蛋白酶、脂 肪酶和溶菌酶等,大多数菌株可水解天然 的动物蛋白并释放脂肪酸。在BP平板产生 磷脂环。
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食品安全检验技术(微生物部分) 金色葡萄球菌检验
生物学特性 ——致 病 性
•金黄色葡萄球菌为条件致病菌,菌株致病力的强弱主要取 决于其产生的毒素和侵袭性酶: •a.溶血素:外毒素,能损伤血小板,破坏溶酶体,引起肌 体局部缺血和坏死;在血平板培养出现溶血环。 •b.杀白细胞素:可破坏人的白细胞和巨噬细胞; •c.血浆凝固酶:当金黄色葡萄球菌侵入人体时,该酶使血 液或血浆中的纤维蛋白沉积于菌体表面或凝固,阻碍吞噬 细胞的吞噬作用。 •d.耐热核酸酶 •e.肠毒素:引起急性胃肠炎。
有毒性,并使菌落产生黑色
✓ 卵黄提供营养和有利于观察卵磷脂环
✓ 甘氨酸和氯化锂对金黄色葡萄球菌以外的其它菌株有抑制 作用。
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食品安全检验技术(微生物部分) 金色葡萄球菌检验
在BP平板上典型菌落为:圆形,表面光滑、凸起、湿 润、菌落直径为2mm~3mm, 颜色呈灰黑色至黑色,有光泽, 常有浅色(非白色)的边缘,周围绕以不透明圈(沉淀),其外常 有一清晰带。当用接种针触及菌落时具有黄油样黏稠感。
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食品安全检验技术(微生物部分) 金色葡萄球菌检验
•葡萄球菌性食物中毒是葡萄球菌肠毒素所引起的疾病, 可引发不同程度的急性胃肠炎症状,恶心、呕吐最为突 出而且普遍,腹痛、腹泻次之。 •当金黄色葡萄球菌污染了含淀粉及水分较多的食品,如 牛奶和奶制品、肉、蛋等,在温度条件适宜时,经8-10 小时即可相当数量的肠毒素。
利用金黄色葡萄球菌耐盐的特性(最高可耐受 15%的氯化钠),用7.5%氯化钠肉汤增菌。
食品中金黄色葡萄球菌检验 GBT4789.10-2010

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定性方法
2003版
结 果 判 定
划线Baird-Parker平板:
§菌落直径为2mm~3mm ; §颜色呈灰色到黑色,边缘为淡色,周围为一混浊带,在其外 层有一透明圈; §用接种针接触菌落有似奶油至树胶样的硬度,偶然会遇到非 脂肪溶解的类似菌落;但无混浊带及透明圈;
§长期保存的冷冻或干燥食品中所分离的菌落比典型菌落所产 生的黑色较淡些,外观可能粗糙并干燥;
方法的注意事项
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使用前,如Baird-Parker平板表面有水珠,可放 在25℃~50℃的培养箱里干燥,直到平板表面的 水珠消失。 如样液不易吸收,可将平板放在36℃±1℃孵育 1 h;等样液吸收后反转平皿, 再培养。
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Baird-Parker法
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计算
统一了样品的处理程序 增加了计数要求 选择20—200cfu菌数的平板
ml 无 加 10 10ml 菌水溶解
于37°C 下进行孵育 24小时
Baird Parker 琼脂 + RPF 与平板表面计数法的比較
g样品 + 225 ml 稀释液 25 25g 225ml
第一天
第二天
BPA+RPF BPA
阅读結果 ) (无需确认 无需确认)
挑可疑菌落 酶试验 进行凝固 行凝固酶试验
第三天
确认结果
MPN法
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依据
AOAC 987.09 FDA BAM 2001 德国 DIN EN ISO 6888-3:2003 SN0172-92标准 台湾检验方法 欧美国的一些产品的卫生标准要求
图 1 Baird -Parker 平板法检验程序 金黄色葡萄球菌 金黄色葡萄球菌Baird Baird- Parker平板法检验程序
耐甲氧西林金黄色葡萄球菌(MRSA) 检测(荧光PCR法)

汇报人:XX
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03
05
02
04
荧光PCR法是一种 基于DN聚合酶链 反应的检测方法
荧光PCR法通过荧 强弱来定 量分析DN序列
荧光PCR法具有高 灵敏度、高特异性 、快速、简便等优 点
灵敏度高:能够检测到极低浓度的MRS 特异性强:能够准确区分MRS和其他细菌 快速简便:操作简便,检测时间短 结果准确:检测结果准确可靠,重复性好
护公众健康
灵敏度高:荧光PCR法具有 较高的灵敏度,能够检测到 极低浓度的MRS
特异性强:荧光PCR法具有 较高的特异性,能够准确区 分MRS和其他细菌
快速高效:荧光PCR法具 有快速高效的特点,能够在 短时间内完成MRS的检测
自动化程度高:荧光PCR法 可以实现自动化操作,提高 检测效率和准确性
荧光PCR法在MRS检测中的前景展望:提高灵敏度和特异性,提高检测准确性和 可靠性,降低检测成本,提高检测效率,推动MRS检测技术的发展。
汇报人:XX
临床诊断:用于检 测MRS感染,快速 准确
科研研究:用于研 究MRS的传播、变 异和耐药性
公共卫生:用于监 测MRS的流行病学 和防控策略
食品检测:用于检 测食品中的MRS污 染,保障食品安全
样本类型:血液、 尿液、痰液等
采集方法:无菌操 作,避免污染
保存条件:低温、 干燥、避光
处理方法:离心、 过滤、稀释等
样品采集:采集患者样本,如血液、痰液等
核酸提取:使用核酸提取试剂盒提取样本中的DN或RN
荧光PCR反应:将提取的核酸与荧光PCR反应试剂混合,进行 PCR反应
荧光PCR检测:使用荧光PCR检测仪检测反应产物,判断样本 中是否存在MRS
金黄色葡萄球菌的分离培养试验

实验金黄色葡萄球菌的分离培养一.实验目的;1.掌握Baird-Parker培养基的配制方法2.掌握利用选择性培养基分离金黄色葡萄球菌的检验方法二.实验内容1原理;Baird-Parker培养基在含有氮源的基础上,补充了促进细菌生长的丙酮酸钠,又含有抑制剂:亚碲酸钾,故有较好的选择性。
但对于金葡萄球菌没有抑制,其能将亚碲酸钾还原为碲在菌落中心呈黑色,易于观察;加入卵黄,由于卵磷酯酶阳性特征,其菌落周围可出现明显的沉淀环。
利用选择性培养基进行常见致病菌的分离是致病菌检测中的重要部分。
2 仪器与试剂250ml三角瓶灭菌锅量筒Baird-Parker氏培养基、亚碲酸盐卵黄增菌液、7.5%氯化钠肉汤3操作步骤3.1 培养基配制Baird-Parker琼脂培养板:称取58克干粉,加热溶解于950ml蒸馏水中,分装每瓶95ml,121℃高压灭菌15分钟,冷至50℃左右,于每95 ml加入常温解冻的卵黄亚碲酸钾增菌剂5 ml,摇匀后倾入无菌平皿。
7.5%氯化钠肉汤(蛋白胨10g 牛肉膏5g 氯化钠75g蒸馏水1000mlph7.4)将上述成分加热溶解,调节pH,分装,每瓶225 mL,121 ℃高压灭菌15 min。
3.2增菌及分离培养挑取金黄色葡萄球菌接种于7.5%NaCl肉汤培养基内,置于(37℃)恒温箱中培养6-8h.3.将上述培养物,分别划线接种到Baird-Parker 平板,于36 ℃±1 ℃培养18 h~24 h 或45 h~48 h。
3.3观察菌落形态4、结果判定根据菌落形态,鉴别检样中细菌种类三、实验结果实验金黄色葡萄球菌的染色镜检一.实验目的;掌握细菌革兰氏染色方法;在显微镜下观察金黄色葡萄球菌的形态。
二.实验内容1原理;革兰氏阳性菌经结晶紫染色乙醇脱色后,仍为紫色,而革兰氏阴性菌被复染为其他颜色。
2仪器与试剂;结晶紫染色液(结晶紫1g 95%乙醇20ml 1%草酸铵水溶液80ml将结晶紫完全溶解于乙醇中,然后与草酸铵溶液混合。
GB 4789.10-2016 食品安全国家标准 食品微生物学检验 金黄色葡萄球菌检验

中华人民共和国国家标准G B4789.10 2016食品安全国家标准食品微生物学检验金黄色葡萄球菌检验2016-12-23发布2017-06-23实施中华人民共和国国家卫生和计划生育委员会前言本标准代替G B4789.10 2010‘食品安全国家标准食品微生物学检验金黄色葡萄球菌检验“㊁S N/T0172 2010‘进出口食品中金黄色葡萄球菌检验方法“㊁S N/T2154 2008‘进出口食品中凝固酶阳性葡萄球菌检测方法兔血浆纤维蛋白原琼脂培养基技术“㊂本标准与G B4789.10 2010相比,主要变化如下:试验用增菌液统一为7.5%氯化钠肉汤㊂食品安全国家标准食品微生物学检验金黄色葡萄球菌检验1范围本标准规定了食品中金黄色葡萄球菌(S t a p h y l o c o c c u s a u r e u s)的检验方法㊂本标准第一法适用于食品中金黄色葡萄球菌的定性检验;第二法适用于金黄色葡萄球菌含量较高的食品中金黄色葡萄球菌的计数;第三法适用于金黄色葡萄球菌含量较低的食品中金黄色葡萄球菌的计数㊂2设备和材料除微生物实验室常规灭菌及培养设备外,其他设备和材料如下:2.1恒温培养箱:36ħʃ1ħ㊂2.2冰箱:2ħ~5ħ㊂2.3恒温水浴箱:36ħ~56ħ㊂2.4天平:感量0.1g㊂2.5均质器㊂2.6振荡器㊂2.7无菌吸管:1m L(具0.01m L刻度)㊁10m L(具0.1m L刻度)或微量移液器及吸头㊂2.8无菌锥形瓶:容量100m L㊁500m L㊂2.9无菌培养皿:直径90mm㊂2.10涂布棒㊂2.11p H计或p H比色管或精密p H试纸㊂3培养基和试剂3.17.5%氯化钠肉汤:见A.1㊂3.2血琼脂平板:见A.2㊂3.3 B a i r d-P a r k e r琼脂平板:见A.3㊂3.4脑心浸出液肉汤(B H I):见A.4㊂3.5兔血浆:见A.5㊂3.6稀释液:磷酸盐缓冲液:见A.6㊂3.7营养琼脂小斜面:见A.7㊂3.8革兰氏染色液:见A.8㊂3.9无菌生理盐水:见A.9㊂第一法金黄色葡萄球菌定性检验4检验程序金黄色葡萄球菌定性检验程序见图1㊂图1金黄色葡萄球菌检验程序5操作步骤5.1样品的处理称取25g样品至盛有225m L7.5%氯化钠肉汤的无菌均质杯内,8000r/m i n~10000r/m i n均质1m i n~2m i n,或放入盛有225m L7.5%氯化钠肉汤无菌均质袋中,用拍击式均质器拍打1m i n~ 2m i n㊂若样品为液态,吸取25m L样品至盛有225m L7.5%氯化钠肉汤的无菌锥形瓶(瓶内可预置适当数量的无菌玻璃珠)中,振荡混匀㊂5.2增菌将上述样品匀液于36ħʃ1ħ培养18h~24h㊂金黄色葡萄球菌在7.5%氯化钠肉汤中呈混浊生长㊂5.3分离将增菌后的培养物,分别划线接种到B a i r d-P a r k e r平板和血平板,血平板36ħʃ1ħ培养18h~ 24h㊂B a i r d-P a r k e r平板36ħʃ1ħ培养24h~48h㊂5.4初步鉴定金黄色葡萄球菌在B a i r d-P a r k e r平板上呈圆形,表面光滑㊁凸起㊁湿润㊁菌落直径为2mm~3mm,颜色呈灰黑色至黑色,有光泽,常有浅色(非白色)的边缘,周围绕以不透明圈(沉淀),其外常有一清晰带㊂当用接种针触及菌落时具有黄油样黏稠感㊂有时可见到不分解脂肪的菌株,除没有不透明圈和清晰带外,其他外观基本相同㊂从长期贮存的冷冻或脱水食品中分离的菌落,其黑色常较典型菌落浅些,且外观可能较粗糙,质地较干燥㊂在血平板上,形成菌落较大,圆形㊁光滑凸起㊁湿润㊁金黄色(有时为白色),菌落周围可见完全透明溶血圈㊂挑取上述可疑菌落进行革兰氏染色镜检及血浆凝固酶试验㊂5.5确证鉴定5.5.1染色镜检:金黄色葡萄球菌为革兰氏阳性球菌,排列呈葡萄球状,无芽胞,无荚膜,直径约为0.5μm~1μm㊂5.5.2血浆凝固酶试验:挑取B a i r d-P a r k e r平板或血平板上至少5个可疑菌落(小于5个全选),分别接种到5m LB H I和营养琼脂小斜面,36ħʃ1ħ培养18h~24h㊂取新鲜配制兔血浆0.5m L,放入小试管中,再加入B H I培养物0.2m L~0.3m L,振荡摇匀,置36ħʃ1ħ温箱或水浴箱内,每半小时观察一次,观察6h,如呈现凝固(即将试管倾斜或倒置时,呈现凝块)或凝固体积大于原体积的一半,被判定为阳性结果㊂同时以血浆凝固酶试验阳性和阴性葡萄球菌菌株的肉汤培养物作为对照㊂也可用商品化的试剂,按说明书操作,进行血浆凝固酶试验㊂结果如可疑,挑取营养琼脂小斜面的菌落到5m LB H I,36ħʃ1ħ培养18h~48h,重复试验㊂5.6葡萄球菌肠毒素的检验(选做)可疑食物中毒样品或产生葡萄球菌肠毒素的金黄色葡萄球菌菌株的鉴定,应按附录B检测葡萄球菌肠毒素㊂6结果与报告6.1结果判定:符合5.4㊁5.5,可判定为金黄色葡萄球菌㊂6.2结果报告:在25g(m L)样品中检出或未检出金黄色葡萄球菌㊂第二法金黄色葡萄球菌平板计数法7检验程序金黄色葡萄球菌平板计数法检验程序见图2㊂图2金黄色葡萄球菌平板计数法检验程序8操作步骤8.1样品的稀释8.1.1固体和半固体样品:称取25g样品置于盛有225m L磷酸盐缓冲液或生理盐水的无菌均质杯内,8000r/m i n~10000r/m i n均质1m i n~2m i n,或置于盛有225m L稀释液的无菌均质袋中,用拍击式均质器拍打1m i n~2m i n,制成1ʒ10的样品匀液㊂8.1.2液体样品:以无菌吸管吸取25m L样品置于盛有225m L磷酸盐缓冲液或生理盐水的无菌锥形瓶(瓶内预置适当数量的无菌玻璃珠)中,充分混匀,制成1ʒ10的样品匀液㊂8.1.3用1m L无菌吸管或微量移液器吸取1ʒ10样品匀液1m L,沿管壁缓慢注于盛有9m L磷酸盐缓冲液或生理盐水的无菌试管中(注意吸管或吸头尖端不要触及稀释液面),振摇试管或换用1支1m L 无菌吸管反复吹打使其混合均匀,制成1ʒ100的样品匀液㊂8.1.4按8.1.3操作程序,制备10倍系列稀释样品匀液㊂每递增稀释一次,换用1次1m L无菌吸管或吸头㊂8.2样品的接种根据对样品污染状况的估计,选择2个~3个适宜稀释度的样品匀液(液体样品可包括原液),在进行10倍递增稀释的同时,每个稀释度分别吸取1m L样品匀液以0.3m L㊁0.3m L㊁0.4m L接种量分别加入三块B a i r d-P a r k e r平板,然后用无菌涂布棒涂布整个平板,注意不要触及平板边缘㊂使用前,如B a i r d-P a r k e r平板表面有水珠,可放在25ħ~50ħ的培养箱里干燥,直到平板表面的水珠消失㊂8.3培养在通常情况下,涂布后,将平板静置10m i n,如样液不易吸收,可将平板放在培养箱36ħʃ1ħ培养1h;等样品匀液吸收后翻转平板,倒置后于36ħʃ1ħ培养24h~48h㊂8.4典型菌落计数和确认8.4.1金黄色葡萄球菌在B a i r d-P a r k e r平板上呈圆形,表面光滑㊁凸起㊁湿润㊁菌落直径为2mm~ 3mm,颜色呈灰黑色至黑色,有光泽,常有浅色(非白色)的边缘,周围绕以不透明圈(沉淀),其外常有一清晰带㊂当用接种针触及菌落时具有黄油样黏稠感㊂有时可见到不分解脂肪的菌株,除没有不透明圈和清晰带外,其他外观基本相同㊂从长期贮存的冷冻或脱水食品中分离的菌落,其黑色常较典型菌落浅些,且外观可能较粗糙,质地较干燥㊂8.4.2选择有典型的金黄色葡萄球菌菌落的平板,且同一稀释度3个平板所有菌落数合计在20C F U~ 200C F U之间的平板,计数典型菌落数㊂8.4.3从典型菌落中至少选5个可疑菌落(小于5个全选)进行鉴定试验㊂分别做染色镜检,血浆凝固酶试验(见5.5);同时划线接种到血平板36ħʃ1ħ培养18h~24h后观察菌落形态,金黄色葡萄球菌菌落较大,圆形㊁光滑凸起㊁湿润㊁金黄色(有时为白色),菌落周围可见完全透明溶血圈㊂9结果计算9.1若只有一个稀释度平板的典型菌落数在20C F U~200C F U之间,计数该稀释度平板上的典型菌落,按式(1)计算㊂9.2 若最低稀释度平板的典型菌落数小于20C F U ,计数该稀释度平板上的典型菌落,按式(1)计算㊂9.3 若某一稀释度平板的典型菌落数大于200C F U ,但下一稀释度平板上没有典型菌落,计数该稀释度平板上的典型菌落,按式(1)计算㊂9.4 若某一稀释度平板的典型菌落数大于200C F U ,而下一稀释度平板上虽有典型菌落但不在20C F U~200C F U 范围内,应计数该稀释度平板上的典型菌落,按式(1)计算㊂9.5 若2个连续稀释度的平板典型菌落数均在20C F U~200C F U 之间,按式(2)计算㊂9.6 计算公式式(1):T =A BC d(1)式中:T样品中金黄色葡萄球菌菌落数;A某一稀释度典型菌落的总数;B某一稀释度鉴定为阳性的菌落数;C某一稀释度用于鉴定试验的菌落数;d 稀释因子㊂式(2):T =A 1B 1/C 1+A 2B 2/C 21.1d(2)式中:T样品中金黄色葡萄球菌菌落数;A 1第一稀释度(低稀释倍数)典型菌落的总数;B 1第一稀释度(低稀释倍数)鉴定为阳性的菌落数;C 1第一稀释度(低稀释倍数)用于鉴定试验的菌落数;A 2第二稀释度(高稀释倍数)典型菌落的总数;B 2第二稀释度(高稀释倍数)鉴定为阳性的菌落数;C 2第二稀释度(高稀释倍数)用于鉴定试验的菌落数;1.1计算系数;d 稀释因子(第一稀释度)㊂10 报告根据9中公式计算结果,报告每g (m L )样品中金黄色葡萄球菌数,以C F U /g(m L )表示;如T 值为0,则以小于1乘以最低稀释倍数报告㊂第三法 金黄色葡萄球菌M P N 计数11 检验程序金黄色葡萄球菌M P N 计数检验程序见图3㊂图3金黄色葡萄球菌M P N法检验程序12操作步骤12.1样品的稀释按8.1进行㊂12.2接种和培养12.2.1根据对样品污染状况的估计,选择3个适宜稀释度的样品匀液(液体样品可包括原液),在进行10倍递增稀释的同时,每个稀释度分别接种1m L样品匀液至7.5%氯化钠肉汤管(如接种量超过1m L,则用双料7.5%氯化钠肉汤),每个稀释度接种3管,将上述接种物36ħʃ1ħ培养,18h~24h㊂12.2.2用接种环从培养后的7.5%氯化钠肉汤管中分别取培养物1环,移种于B a i r d-P a r k e r平板36ħʃ1ħ培养,24h~48h㊂12.3典型菌落确认按8.4.1㊁8.4.3进行㊂13结果与报告根据证实为金黄色葡萄球菌阳性的试管管数,查M P N检索表(见附录C),报告每g(m L)样品中金黄色葡萄球菌的最可能数,以M P N/g(m L)表示㊂附录A培养基和试剂A.17.5%氯化钠肉汤A.1.1成分蛋白胨10.0g牛肉膏5.0g氯化钠75g蒸馏水1000m LA.1.2制法将上述成分加热溶解,调节p H至7.4ʃ0.2,分装,每瓶225m L,121ħ高压灭菌15m i n㊂A.2血琼脂平板A.2.1成分豆粉琼脂(p H7.5ʃ0.2)100m L脱纤维羊血(或兔血)5m L~10m LA.2.2制法加热溶化琼脂,冷却至50ħ,以无菌操作加入脱纤维羊血,摇匀,倾注平板㊂A.3B a i r d-P a r k e r琼脂平板A.3.1成分胰蛋白胨10.0g牛肉膏5.0g酵母膏1.0g丙酮酸钠10.0g甘氨酸12.0g氯化锂(L i C l㊃6H2O)5.0g琼脂20.0g蒸馏水950m LA.3.2增菌剂的配法30%卵黄盐水50m L与通过0.22μm孔径滤膜进行过滤除菌的1%亚碲酸钾溶液10m L混合,保存于冰箱内㊂A.3.3制法将各成分加到蒸馏水中,加热煮沸至完全溶解,调节p H至7.0ʃ0.2㊂分装每瓶95m L,121ħ高压灭菌15m i n㊂临用时加热溶化琼脂,冷至50ħ,每95m L加入预热至50ħ的卵黄亚碲酸钾增菌剂5m L摇匀后倾注平板㊂培养基应是致密不透明的㊂使用前在冰箱储存不得超过48h㊂A.4脑心浸出液肉汤(B H I)A.4.1成分胰蛋白质胨10.0g氯化钠5.0g磷酸氢二钠(12H2O)2.5g葡萄糖2.0g牛心浸出液500m LA.4.2制法加热溶解,调节p H至7.4ʃ0.2,分装16mmˑ160mm试管,每管5m L置121ħ,15m i n灭菌㊂A.5兔血浆取柠檬酸钠3.8g,加蒸馏水100m L,溶解后过滤,装瓶,121ħ高压灭菌15m i n㊂兔血浆制备:取3.8%柠檬酸钠溶液一份,加兔全血4份,混好静置(或以3000r/m i n离心30m i n),使血液细胞下降,即可得血浆㊂A.6磷酸盐缓冲液A.6.1成分磷酸二氢钾(K H2P O4)34.0g蒸馏水500m LA.6.2制法贮存液:称取34.0g的磷酸二氢钾溶于500m L蒸馏水中,用大约175m L的1m o l/L氢氧化钠溶液调节p H至7.2,用蒸馏水稀释至1000m L后贮存于冰箱㊂稀释液:取贮存液1.25m L,用蒸馏水稀释至1000m L,分装于适宜容器中,121ħ高压灭菌15m i n㊂A.7营养琼脂小斜面A.7.1成分蛋白胨10.0g牛肉膏3.0g氯化钠5.0g琼脂15.0g~20.0g蒸馏水1000m LA.7.2制法将除琼脂以外的各成分溶解于蒸馏水内,加入15%氢氧化钠溶液约2m L调节p H至7.3ʃ0.2㊂加入琼脂,加热煮沸,使琼脂溶化,分装13mmˑ130mm试管,121ħ高压灭菌15m i n㊂A.8革兰氏染色液A.8.1结晶紫染色液A.8.1.1成分结晶紫1.0g95%乙醇20.0m L1%草酸铵水溶液80.0m LA.8.1.2制法将结晶紫完全溶解于乙醇中,然后与草酸铵溶液混合㊂A.8.2革兰氏碘液A.8.2.1成分碘1.0g碘化钾2.0g蒸馏水300m LA.8.2.2制法将碘与碘化钾先行混合,加入蒸馏水少许充分振摇,待完全溶解后,再加蒸馏水至300m L㊂A.8.3沙黄复染液A.8.3.1成分沙黄0.25g95%乙醇10.0m L蒸馏水90.0m LA.8.3.2制法将沙黄溶解于乙醇中,然后用蒸馏水稀释㊂A.8.4染色法a)涂片在火焰上固定,滴加结晶紫染液,染1m i n,水洗㊂b)滴加革兰氏碘液,作用1m i n,水洗㊂c)滴加95%乙醇脱色约15s~30s,直至染色液被洗掉,不要过分脱色,水洗㊂d)滴加复染液,复染1m i n,水洗㊁待干㊁镜检㊂A.9无菌生理盐水A.9.1成分氯化钠8.5g蒸馏水1000m LA.9.2制法称取8.5g氯化钠溶于1000m L蒸馏水中,121ħ高压灭菌15m i n㊂附录B葡萄球菌肠毒素检验B.1试剂和材料除另有规定外,所用试剂均为分析纯,试验用水应符合G B/T6682对一级水的规定㊂B.1.1 A㊁B㊁C㊁D㊁E型金黄色葡萄球菌肠毒素分型E L I S A检测试剂盒㊂B.1.2p H试纸,范围在3.5~8.0,精度0.1㊂B.1.30.25m o l/L㊁p H8.0的T r i s缓冲液:将121.1g的T r i s溶解到800m L的去离子水中,待温度冷至室温后,加42m L浓H C L,调p H至8.0㊂B.1.4p H7.4的磷酸盐缓冲液:称取N a H2P O4㊃H2O0.55g(或N a H2P O4㊃2H2O0.62g)㊁N a2H P O4㊃2H2O2.85g(或N a2H P O4㊃12H2O5.73g)㊁N a C l8.7g溶于1000m L蒸馏水中,充分混匀即可㊂B.1.5庚烷㊂B.1.610%次氯酸钠溶液㊂B.1.7肠毒素产毒培养基B.1.7.1成分蛋白胨20.0g胰消化酪蛋白200m g(氨基酸)氯化钠5.0g磷酸氢二钾1.0g磷酸二氢钾1.0g氯化钙0.1g硫酸镁0.2g菸酸0.01g蒸馏水1000m Lp H7.3ʃ0.2B.1.7.2制法将所有成分混于水中,溶解后调节p H,121ħ高压灭菌30m i n㊂B.1.8营养琼脂B.1.8.1成分蛋白胨10.0g牛肉膏3.0g氯化钠5.0g琼脂15.0g~20.0g蒸馏水1000m LB.1.8.2制法将除琼脂以外的各成分溶解于蒸馏水内,加入15%氢氧化钠溶液约2m L校正p H至7.3ʃ0.2㊂加入琼脂,加热煮沸,使琼脂溶化㊂分装烧瓶,121ħ高压灭菌15m i n㊂B.2仪器和设备B.2.1电子天平:感量0.01g㊂B.2.2均质器㊂B.2.3离心机:转速3000g~5000g㊂B.2.4离心管:50m L㊂B.2.5滤器:滤膜孔径0.2μm㊂B.2.6微量加样器:20μL~200μL㊁200μL~1000μL㊂B.2.7微量多通道加样器:50μL~300μL㊂B.2.8自动洗板机(可选择使用)㊂B.2.9酶标仪:波长450n m㊂B.3原理本方法可用A㊁B㊁C㊁D㊁E型金黄色葡萄球菌肠毒素分型酶联免疫吸附试剂盒完成㊂本方法测定的基础是酶联免疫吸附反应(E L I S A)㊂96孔酶标板的每一个微孔条的A~E孔分别包被了A㊁B㊁C㊁D㊁E 型葡萄球菌肠毒素抗体,H孔为阳性质控,已包被混合型葡萄球菌肠毒素抗体,F和G孔为阴性质控,包被了非免疫动物的抗体㊂样品中如果有葡萄球菌肠毒素,游离的葡萄球菌肠毒素则与各微孔中包被的特定抗体结合,形成抗原抗体复合物,其余未结合的成分在洗板过程中被洗掉;抗原抗体复合物再与过氧化物酶标记物(二抗)结合,未结合上的酶标记物在洗板过程中被洗掉;加入酶底物和显色剂并孵育,酶标记物上的酶催化底物分解,使无色的显色剂变为蓝色;加入反应终止液可使颜色由蓝变黄,并终止了酶反应;以450n m波长的酶标仪测量微孔溶液的吸光度值,样品中的葡萄球菌肠毒素与吸光度值成正比㊂B.4检测步骤B.4.1从分离菌株培养物中检测葡萄球菌肠毒素方法待测菌株接种营养琼脂斜面(试管18mmˑ180mm)36ħ培养24h,用5m L生理盐水洗下菌落,倾入60m L产毒培养基中,36ħ振荡培养48h,振速为100次/m i n,吸出菌液离心,8000r/m i n 20m i n,加热100ħ,10m i n,取上清液,取100μL稀释后的样液进行试验㊂B.4.2从食品中提取和检测葡萄球菌毒素方法B.4.2.1牛奶和奶粉将25g奶粉溶解到125m L㊁0.25M㊁p H8.0的T r i s缓冲液中,混匀后同液体牛奶一样按以下步骤制备㊂将牛奶于15ħ,3500g离心10m i n㊂将表面形成的一层脂肪层移走,变成脱脂牛奶㊂用蒸馏水对其进行稀释(1ʒ20)㊂取100μL稀释后的样液进行试验㊂B.4.2.2脂肪含量不超过40%的食品称取10g样品绞碎,加入p H7.4的P B S液15m L进行均质㊂振摇15m i n㊂于15ħ,3500g离心10m i n㊂必要时,移去上面脂肪层㊂取上清液进行过滤除菌㊂取100μL的滤出液进行试验㊂B.4.2.3脂肪含量超过40%的食品称取10g样品绞碎,加入p H7.4的P B S液15m L进行均质㊂振摇15m i n㊂于15ħ,3500g离心10m i n㊂吸取5m L上层悬浮液,转移到另外一个离心管中,再加入5m L的庚烷,充分混匀5m i n㊂于15ħ,3500g离心5m i n㊂将上部有机相(庚烷层)全部弃去,注意该过程中不要残留庚烷㊂将下部水相层进行过滤除菌㊂取100μL的滤出液进行试验㊂B.4.2.4其他食品可酌情参考上述食品处理方法㊂B.4.3检测B.4.3.1所有操作均应在室温(20ħ~25ħ)下进行,A㊁B㊁C㊁D㊁E型金黄色葡萄球菌肠毒素分型E L I S A检测试剂盒中所有试剂的温度均应回升至室温方可使用㊂测定中吸取不同的试剂和样品溶液时应更换吸头,用过的吸头以及废液处理前要浸泡到10%次氯酸钠溶液中过夜㊂B.4.3.2将所需数量的微孔条插入框架中(一个样品需要一个微孔条)㊂将样品液加入微孔条的A~G 孔,每孔100μL㊂H孔加100μL的阳性对照,用手轻拍微孔板充分混匀,用黏胶纸封住微孔以防溶液挥发,置室温下孵育1h㊂B.4.3.3将孔中液体倾倒至含10%次氯酸钠溶液的容器中,并在吸水纸上拍打几次以确保孔内不残留液体㊂每孔用多通道加样器注入250μL的洗液,再倾倒掉并在吸水纸上拍干㊂重复以上洗板操作4次㊂本步骤也可由自动洗板机完成㊂B.4.3.4每孔加入100μL的酶标抗体,用手轻拍微孔板充分混匀,置室温下孵育1h㊂B.4.3.5重复B.4.3.3的洗板程序㊂B.4.3.6加50μL的TM B底物和50μL的发色剂至每个微孔中,轻拍混匀,室温黑暗避光处孵育30m i n㊂B.4.3.7加入100μL的2m o l/L硫酸终止液,轻拍混匀,30m i n内用酶标仪在450n m波长条件下测量每个微孔溶液的O D值㊂B.4.4结果的计算和表述B.4.4.1质量控制测试结果阳性质控的O D值要大于0.5,阴性质控的O D值要小于0.3,如果不能同时满足以上要求,测试的结果不被认可㊂对阳性结果要排除内源性过氧化物酶的干扰㊂B.4.4.2临界值的计算每一个微孔条的F孔和G孔为阴性质控,两个阴性质控O D值的平均值加上0.15为临界值㊂示例:阴性质控1=0.08阴性质控2=0.10平均值=0.09临界值=0.09+0.15=0.24B.4.4.3结果表述O D值小于临界值的样品孔判为阴性,表述为样品中未检出某型金黄色葡萄球菌肠毒素;O D值大于或等于临界值的样品孔判为阳性,表述为样品中检出某型金黄色葡萄球菌肠毒素㊂B.5生物安全因样品中不排除有其他潜在的传染性物质存在,所以要严格按照G B19489‘实验室生物安全通用要求“对废弃物进行处理㊂附录C金黄色葡萄球菌最可能数(M P N)检索表每g(m L)检样中金黄色葡萄球菌最可能数(M P N)的检索见表C.1㊂表C.1金黄色葡萄球菌最可能数(M P N)检索表阳性管数0.100.010.001M P N 95%置信区间下限上限000<3.0 9.5 0013.00.159.6 0103.00.1511 0116.11.218 0206.21.218 0309.43.638 1003.60.1718 1017.21.318 102113.638 1107.41.320 111113.638 120113.642 121154.542 130164.542 2009.21.438 201143.642 202204.542 210153.742 211204.542 212278.794阳性管数0.100.010.001M P N95%置信区间下限上限220214.542 221288.794 222358.794 230298.794 231368.794 300234.694 301388.7110 3026417180 310439180 3117517200 31212037420 31316040420 3209318420 32115037420 32221040430 323290901000 330240421000 331460902000 33211001804100 333>1100420注1:本表采用3个稀释度[0.1g(m L)㊁0.01g(m L)和0.001g(m L)]㊁每个稀释度接种3管㊂注2:表内所列检样量如改用1g(m L)㊁0.1g(m L)和0.01g(m L)时,表内数字应相应降低10倍;如改用0.01g (m L)㊁0.001g(m L)㊁0.0001g(m L)时,则表内数字应相应增高10倍,其余类推㊂。
PCR检测乳品中金黄色葡萄球菌

实验结果
实验中分别对含金黄色葡萄球菌的乳品样本和不含该菌的样本进行了PCR检 测。结果显示,含有金黄色葡萄球菌的样本在凝胶电泳中出现了明显的目标条带, 而不含该菌的样本则没有目标条带。这表明该PCR方法可以准确检测乳品中的金 黄色葡萄球菌。
实验评估
实验灵敏度
通过对比不同浓度的金黄色葡萄球菌悬液进行PCR检测,发现该方法可以检 测到低至10 CFU/mL的金黄色葡萄球菌。因此,该PCR方法具有较高的灵敏度。
文献综述:
金黄色葡萄球菌广泛存在于自然界和人类环境中,肉类及肉制品是其主要污 染源之一。近年来,由于抗生素滥用和耐药性的增加,金黄色葡萄球菌引起的食 物中毒事件时有发生。因此,建立一种准确、快速的检测方法对于预防和控制金 黄色葡萄球菌的传播具有重要意义。
研究方法:
本研究采用PCR技术,设计特异性引物和探针,对肉及肉制品中的金黄色葡 萄球菌进行检测。同时,采用优化后的采样和洗涤方法,以提高检测的灵敏度和 准确度。具体实验步骤包括样品处理、DNA提取、PCR扩增和产物检测。
参考内容
摘要:
本研究旨在建立一种高效、特异的PCR方法,用于检测肉及肉制品中的金黄 色葡萄球菌。通过优化采样和洗涤方法,提高了检测的灵敏度和准确度。结果表 明,该方法具有较高的实用性和推广价值,对于保障食品安全具有重要意义。
引言:
金黄色葡萄球菌是一种常见的食源性致病菌,可引起食物中毒、烫伤样皮肤 综合征、毒性休克综合征等多种疾病。在肉类及肉制品中,金黄色葡萄球菌的污 染较为普遍,因此建立一种快速、准确的检测方法对于保障食品安全至关重要。 本研究采用PCR技术,针对金黄色葡萄球菌的特异性基因片段进行扩增,以提高 检测的灵敏度和准确度。
PCR检测乳品中金黄色葡萄球菌
6.金黄色葡萄球菌GB 4789.10-2016

金黄色葡萄球菌的检测方法
• • • • • • GB 4789.10-2016 ISO 6888 FDA(BAM) online chapter 12 化妆品卫生规范 USP/BP/EP ……
GB4789.10-2016的主要变化
• 1.删除了英文名称 • 2.修改操作程序,删除了分离培养基血平板 • 3.删除了增菌液10%氯化钠胰酪胨大豆肉汤 (跟国际接轨,FDA,ISO等均无定性方法, 且都使用7.5%氯化钠肉汤) • 4.修改葡萄球菌肠毒素检验为可选项
的,可能导致假阴性; 3,不能使用甘露醇氯化钠琼脂上的菌落,高盐 可能导致假阴性。
GB 4789.10-2010
第一法:定性检测
第二法:平板计数法
第三法:MPN计数法
平 板 计 数 法
平板计数法——平板接种
• 步骤: • 10倍系列梯度稀释,并选取2-3个适宜梯度; • 每个梯度吸取1mL,以0.3,0.3,0.4mL分别接种3 个BP平板; • 涂布,完全吸收样液后,倒置培养; • 选取3个平板菌落数合计20-200cfu的梯度平板, 计数典型菌落数 注意点: • 挑去5个典型菌落(不够5个全挑)做血浆凝 1,用于涂布平板必须干燥; 固酶实验。
• 如果金葡目标菌数量多,表明食品加工或 卫生欠佳,但并不足以证明该食品一定是 食品中毒的病原。除非已经证明其菌株的 产肠毒素能力。相反,未检出目标菌的食 品,仍有可能导致肠毒素中毒。
d-----稀释因子
平板计数法——计算
• e)两个连续稀释度平板菌落数均在20 CFU200 CFU之间,按以下公式计算:
T=
式中:
A1B1/C1+A2B2/C2
1.1d
T --------样品中金黄色葡萄球菌二稀释度(高稀释倍数)典型菌落总数
金黄色葡萄球菌检测课件

分布
• 在自然界中广泛存在,空气、水、灰尘及人和动物的排泄物 中都可找到。
• 作为人和动物的常见病原菌,其主要存在于人和动物的鼻腔、 咽喉、头发上,50%以上健康人的皮肤上都有金黄色葡萄球菌 存在。因而,食品受其污染的机会很多。
定量
盐水
检测 (MPN法)
选三个连续梯度,每个梯度梯各度取稀3释mL加入3管胰酪
胨大豆肉汤 36± 1℃
将有生长的管48划hr线 接种
适用于检测可能含 有少量金黄色葡萄 球菌,却带有大量
36± 1℃ 镜 检48hr 营养肉汤
竞争菌的样品
36± 1℃
血浆凝固2酶4hr
实验
36± 1℃ 6hr 报告结果 MPN/g(mL)
性,并使菌落产生黑色 ✓ 卵黄提供营养和有利于观察卵磷脂环 ✓ 甘氨酸和氯化锂对金黄色葡萄球菌以外的其它菌株有抑制作
用。
检测步骤 ---分离
• 在BP平板上其典型菌落为:圆形,光滑突起,湿润,直径23mm,颜色呈灰色到黑玉色,边缘常为淡色(米黄色或灰白色 略带灰色或黄色的白色),周围为一混浊带,在其外缘常有 一透明圈。用接种针接触菌落似有黄油树胶的粘稠感。
• 所有这些实验不能作为鉴别其产毒与否的依据。
定性 检测
25g样品+ 225ml 生理 盐水
5mL样品匀液(1:10)+ 50mL胰酪胨大
豆肉汤 36± 1℃
24hr
血平板
BP平板
36± 1℃ 镜 检24hr 营养肉汤
36± 1℃ 血浆凝固24酶hr
实验
36± 1℃ 6hr 报告结果
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金黄色葡萄球菌检测方法Revised as of 23 November 2020金黄色葡萄球菌检测方法1.纸片法目前广泛应用的一种方法,用纸片、膜、胶片等作为培养基载体,将特定的培养基和显色物质附着在上面,通过观察微生物在测试片上面的生长、显色来测定食品中微生物。
采用快速测试片检测具有显着的优点:可测定少量检品,不需要配制试剂,不需要大量的玻璃器皿,操作简便迅速;易于消毒保存,便于运输携带方便,价格低廉;除纸片外无其他任何废液废物,大大减少了工作量;可以在取样时同时接种,结果更能反映当时样本中真实细菌数,防止延长接种时间时细菌繁殖造成的污染。
技术优点:操作简单使用方便,避免了繁琐的操作。
技术缺点:用时间比较长,无法准确定性及计数。
此方法现在应用于快速检测领域,美国3M公司Petrifilm为载体的测试片应用最为广泛。
但其也存在一些问题:Petrifilm测试片上覆盖了一层薄膜,当样品粘液过多时会出现菌落的扩散和融合,影响计数;Petrifilm测试片面积较小,当菌量大于250cfu时,准确计数较困难;待测样品中含有的某些有机物可能使显色减缓。
使目视效果下降,导致计数偏低。
2.免疫学方法各种免疫学方法的基本原理都是抗原抗体反应。
抗原抗体反应是指抗原与相应抗体之间所发生的特异性结合反应。
金黄色葡萄球菌特异的抗原能激发机体产生相应的特异性抗体。
在免疫检测中,可利用单克隆抗体检测金黄色葡萄球菌的特异抗原,也可利用金黄色葡萄球菌抗原检测体内产生的特异抗体,两种方法均能判断机体的感染状况。
目前对于金黄色葡萄球菌的测定主要进行了肠毒素的测定,方法以酶联免疫吸附实验为主,有胶体金方法,也有用亲和素一生物素乳胶凝集实验和免疫荧光实验,但都有一定的局限性。
免疫学方法包括下面两个部分:(1)抗原抗体技术分析:抗原抗体技术是免疫技术中的核心部分,对于金黄色葡萄球菌检测全菌免疫筛选抗体是很困难的事情,现在目前市场有的大多都是对金黄色葡萄球菌毒素类进行免疫得到的抗体,金黄色葡萄球菌毒素有12种,军事医学科学院生产的金黄色葡萄球菌毒素A、B、C的抗体。
毒素抗体优势在于敏感度高,易于检查,缺点毒素种类多,检测其中几种不具有普遍性。
毒素分离工艺复杂,要得到纯毒素成本比较高。
(2)免疫学方法技术分析:上述免疫学技术应用最多的是酶联免疫技术和胶体金侧向层析技术。
酶联免疫技术广泛应用于实验室检测,由于一次可以检测多个样本,此技术多用于体外诊断,目前也广泛用于食品安全。
胶体金技术由于操作简单,检测适度快等优势,在食品安全领域广泛用于现场快速检测。
基于免疫学方法的技术主要分为:酶联免疫技术、胶体金侧向层析技术、免疫荧光技术、免疫沉淀技术、乳胶凝集技术、免疫磁珠技术。
3.分子生物学方法金黄色葡萄球菌的致病力强弱主要取决于其产生的毒素和侵袭性酶:肠毒素、血浆凝固酶、溶血素、杀白细胞素、表皮溶解毒素、毒性体克综合重量毒素I 等。
而这些致病因子基因的鉴定(包括耐药性相关基因、毒素基因、酶基因及多种特异性鉴别基因)使得分子生物学检测成为近年来应用于食品中致病微生物快速检测的方法。
基于分子生物学方法的技术主要分为:聚合酶链式反应PCR技术和实时荧光定量PCR(rtPCR)技术、生物芯片技术、测序技术。
分子生物学检测技术是检测技术的发展方向,是检测技术的未来,从DNA、RNA 角度深度检测。
但是由于检测方法复杂,需要仪器设备及专业人员操作,对实验室环境有要求,检测成本高等因素,目前该技术没有广泛应用。
针对市场上食品中金黄色葡萄球菌进行大批量的检测,是一件很不容易的事情。
目前市场上还没有真正好的产品能够对金黄色葡萄球菌进行快速检测。
首先要求检测速度快,目前的方法大部分需要培养,至少24~48小时,不利于现场检测,48小时以上商家才能拿到检测结果,才能进行市场销售,熟食就没有了新鲜度可言,所以检测速度成了菌类包括金黄色葡萄球菌检测的关键影响因素。
其次是目前中国食品安全的重视度不够,一般市场没有相应的检测实验室和检测设备。
上述需要仪器设备的检测方法完全行不通。
熟食和冷藏食品中金黄色葡萄球菌数量很少,在10个以内,为快速检测增加了难度。
而且人员素质低,专业人员比例少是客观存在的现实,不可能进行如分子生物学检测之类的实验,检测成本问题也不可忽视,百姓不希望在买菜的同时附加上一大笔检测费用。
解决关键性问题可以提高检测速度,通过不断的研究和总结金黄色葡萄球菌快速增殖的环境和条件,在增菌液中进行扩增,使菌数达到胶体金的检测下限,用胶体金方法检测,此方法检测时间为4~10个小时(其中金黄色葡萄球菌扩增时间为4~10小时,检测时间为3分钟),操作简单,不用任何实验室仪器设备,检测试剂盒价格低廉,比较适合金黄色葡萄球菌检测初筛。
检测胶体金试剂卡分两种,一种是检测金葡菌肠毒素ABC,另一种选取特异性菌壁蛋白,用基因工程方法合成抗原,对鼠进行免疫制出两株单克隆抗体,用双抗夹心法制成胶体金检测卡,对于金黄色葡萄球菌属检测率为96%。
特异性实验证明与副溶血弧菌、鼠伤寒沙门氏菌、痢疾杆菌、霍乱弧菌小川型、O139型及569B型等菌无交叉反应;假阳性率在5%以下、假阴性率在1%以下;同一批次的试纸条10次重复试验结果一致。
检测方法:将待检测食品取10g食物样品在10%NaCl溶液中涮洗5次,加入增菌液增菌(配合37℃手持小仪器使用可缩短增菌时间),加入菌裂解液摇匀,取3滴点板。
结果判断如下图示:金黄色葡萄球菌仍然是食品安全的隐患,检测依然重要。
人们吃上放心的食品是食品安全工作者的责任。
希望今后能够继续开发出更好的金葡菌快速检测方法和检测试剂盒4直接平板计数法(FDABAM&ISO)1.检样(50g+450mL稀释液)2.适当十倍稀释样品3.选择2~3个连续适宜稀释度4.吸取1ml菌液按照、、分别涂布于3块90mmBaird-Parker平板上(做平行试验)35℃,45~48h5.确证试验报告FDABAM金黄色葡萄球菌检验—MPN法1.检样(50g+450mL稀释液)2.适当十倍稀释样品3.选择3个适宜的连续稀释度的样品稀释液,每个稀释度接种三管10%NaClTSB肉汤,每管接种1mL35℃,48±2h4.从生长的管中接种1环划线于Baird-Parker平板上35℃,48h5.确证试验6.报告FDABAM金黄色葡萄球菌确证试验1.凝固酶试验方法:从平板上至少挑取1个可疑金黄色葡萄球菌菌落,移种到TSB/BHI肉汤中,置35℃培养18-24h。
取肉汤培养物同凝固酶试验兔血浆充分混合,置35℃培养,定时观察是否有凝块形成,至少观察6h。
试验中需同时做已知阳性和阴性对照。
结果判定:以内容物完全凝固,使试管倒置或倾斜时不流动为阳性。
部分凝固(2+和3+)的必须进行生化鉴定加以证实。
FDABAM金黄色葡萄球菌确证试验2.革兰氏染色对所有的可疑培养物都要进行革兰氏染色。
3.生化鉴定过氧化氢酶试验葡萄糖厌氧利用试验甘露醇厌氧利用试验金葡溶菌酶敏感性试验耐热核酸酶试验(辅助)ISO金黄色葡萄球菌检验—MPN法1.检样(xg+9xmL稀释液)2.适当十倍稀释样品3.选择3个适宜的连续稀释度的样品稀释液,每个稀释度接种三管modifiedGiolittiandCantonibroth,37℃,24~48h4.从变黑或出现黑色沉淀的管中接种1环培养物于Baird-Parker平板上37℃,48h5.确证试验6.报告简介金黄色葡萄球菌细胞壁含90%的和10%的。
其肽聚糖的网状结构比革兰氏阴性菌致密,染色时结晶紫附着后不被酒精脱色故而呈现紫色,相反,阴性菌没有细胞壁结构,所以紫色被酒精冲掉然后附着了沙黄的红色。
金黄色葡萄球菌与的发现有很大的渊源。
当年就是在他的金黄色葡萄球菌的培养皿中发现有些球菌被杀死了,于是发现了青霉素。
而研究也表明青霉素只对以金黄色葡萄球菌为代表的革兰氏阳性菌作用明显。
这也是由肽聚糖层的厚度和结构造成的。
新出现的耐甲氧西林,被称作,几乎能抵抗人类现在所有的药物,但是万古霉素可以对付它。
典型的金黄色葡萄球菌为球型,直径μm左右,下排列成葡萄串状。
显微图像金黄色葡萄球菌无芽胞、,大多数无荚膜,阳性。
金黄色葡萄球菌营养要求不高,在普通上生长良好,需氧或兼性厌氧,最适生长温度37°C,最适生长,干燥环境下可存活数周。
平板上厚、有光泽、圆形凸起,直径1~2mm。
血平板菌落周围形成透明的溶血环。
金黄色葡萄球菌有高度的耐盐性,可在10~15%NaCl肉汤中生长。
可分解、、、,产酸不产气。
反应阳性,VP反应弱阳性。
许多菌株可分解,水解,还原,液化。
金黄色葡萄球菌具有较强的抵抗力,对类药物敏感性低,但对青霉素、等高度敏感。
对碱性染料敏感,十万分之一的龙胆紫液即可抑制其生长。
耐药性(resistance)是微生物对抗菌药物的相对抗性,是微生物进化过程的自然界规律,也是微生物耐药基因长期进化的必然结果。
由于抗菌药物杀死了敏感菌群,而对耐药菌的存活和繁殖无效,所以耐药性是过度使用和滥用抗菌药的必然后果。
当前,耐药菌的产生和蔓延已经成为世界性问题。
如肺炎、结核病和疟疾等,由于其微生物对许多现有药物产生了耐药性而变得越来越难以治疗。
耐药性是如何形成和发展的如何遏制这一威胁已经成为全球关注的热点问题。
1耐药性的类型耐药性分为:天然耐药性、获得耐药性、多重耐药性以及交叉耐药性[1]。
天然耐药性,又称原发性耐药性,遗传性耐药性,内源性耐药性,它决定抗菌谱。
如全部肠杆菌科细菌对大环内酯类、克林霉素、利萘唑酮、奎奴普丁和莫匹罗星;鲍曼不动杆菌对氨苄西林、阿莫西林和第一代头孢菌素;铜绿假单胞菌对氨苄西林、阿莫西林、阿莫西林/克拉维酸、第一、二代头孢菌素、头孢噻肟、头孢曲松、萘啶酸和甲氧嘧啶;肺炎链球菌对甲氧嘧啶和氨基糖苷类;嗜麦芽窄食单孢菌对亚胺培南;沙雷菌属对氨苄西林、阿莫西林、阿莫西林/克拉维酸、第一代头孢菌素、头孢呋辛和多黏菌素E均属天然耐药。
天然耐药性是某种细菌固有的特点,其原因可能是此类细菌具有天然屏障,药物无法进入细菌体内或由于细菌缺少对药物敏感的靶位所至。
获得性耐药性是在微生物接触抗菌药物后,由于遗传基因的变化、生存代谢途径的改变而产生的耐药性。
获得性耐药性可分为相对耐药性(又称中间耐药性)和绝对耐药性(又称高度耐药性),前者是在一定时间内MIC逐渐升高,后者即使高浓度也没有抗菌活性,如耐庆大霉素的铜绿假单胞菌[2,3]。
获得性耐药性又有社会获得性耐药性和医院获得性耐药性之分。
常见的医院获得性耐药菌株为耐甲氧西林金葡菌(MRSA)和凝固酶阴性葡萄球菌、耐万古霉素肠球菌(VRE),多重耐药菌有克雷伯杆菌属、肠杆菌属以及假单孢菌。