临床微生物标本采集规范 ppt课件
❖ 好的微生物检验标本可提升实验室工作效率及病患 照顾质量，降低医疗成本。
微生物样本采样基本原则
1.及时采集微生物标本作病原学检查Байду номын сангаас2.在抗菌药物使用前采集标本 3.采样时严格执行无菌操作 4.采样后立即送检甚至床旁接种尤其是厌氧培养 5.棉拭子标本宜用运送培养基 6.混有正常菌群污染标本，不可置肉汤培养 7.标本容器须灭菌处理，但不得使用消毒剂 8.送检标本应注明来源和检验目的
说明：实验数据表明细菌入血后约1小时，寒战和发 烧开始出现2小时内，此时为采集血培养标本进行 病原菌培养的最佳时机。在不同的时间点采血只有 在以下情况才有必要：疑似感染性心内膜炎或其他 血管内（如导管相关性感染）感染患者的连续性菌 血症。
2.采集部位
要求：从两侧上肢静脉采血，“双瓶双侧”采血 培养。至少做到“双侧双瓶”。必要时从下肢静 脉采血做第三套血培养。
9. CRP升高
对入院危重感染患者未进行系统性抗菌药物治疗之 前，应及时采集血培养。
（二）血培养检测消毒程序
1.皮肤消毒程序：严格执行三步法（防止皮肤寄生菌污染） （1）用75%酒精擦拭静脉穿刺部位待30s以上； （2）然后用1%-2%碘酊作用30秒或10%碘伏作用60秒， 从穿刺点向外画圈消毒，至消毒区域直径达3cm以上； （3）最后用75%酒精脱碘，待酒精挥发干燥后采血。 新生儿及对碘过敏的患者，只能用75%酒精消毒60s， 待穿刺部位酒精挥发干燥后穿刺采血。
说明：除特殊情况之外，在采取血培养后的2至5天 内，无需重复采取血培养。因为抗菌治疗的2至5 天内，血液中的细菌不会立即消失。研究证明， 血培养只做1套的检出率为65%，做2套和3套的 检出率分别为80%和96%。单瓶的血培养检出率 不高，而且结果很难做出临床解释。
4.采血量
要求： 成年患者推荐的采血量为每套不少于10ml，每 瓶不少于5ml。
✓ 所谓“双侧双瓶”，是指从一个部位采血 接种一个需氧瓶，再从另一部位采血接种另 一个厌氧瓶。
✓ 一次静脉采血注入到多个培养瓶中应视为 单个血培养。
3.采集次数
要求：对怀疑菌血症、真菌血症的成人患者，推荐 同时采集2~3套（不同部位）血培养标本。（即 双瓶双臂同时采集血培养标本。）
婴幼儿患者，推荐同时采集2次（不同部位）血培 养标本。
标本有缺陷 正确收集各种临床标本， 关注特检标本采样与送检的方法和条件，是 完成病原学诊断的先决条件。
标本规范化采集的重要性
❖ 正确采集、处理与运送细菌培养的标本直接关系到 致病菌培养的正确性与阳性率的高低，是临床细菌 检验成功的关键。
❖ 标本质量的好坏直接影响诊断结果的正误，不当的 标本可导致假阴性、假阳性结果的出现，因此标本 采集与处理的规范化是准确、及时地向临床提供重 要的临床感染信息的基础。
说明：不建议采集
（1）动脉血，因其诊断价值没有比静脉血更大；
（2）静脉留置导管，因其常伴有高污染率。如果 必须从留置导管内采血，也应同时从外周静脉采 集另外一个血培养标本，以帮助阳性结果的判读。
✓ 所谓“双瓶双侧”，是指从一个部位采血 接种一套培养瓶，再从另一部位采血接种另 一套培养瓶。（通常是双臂）
临床微生物标本 采集规范
2013.12
标本采集和运送是细菌培养成 功的最最重要的关键
但由于标本的采集和运送常由护士或医 生或病人自己完成，所以也是最不容易做好 的事情，而且不知道问题所在之处，造成的 后果是: 临床医生最不能接受的问题:阳性率低
国内微生物标本的采集目前存在的问题 ：
标本送检率低 从全国来看，抗感染治疗 前，送检相关标本可能只占应送标本的一半 左右，与抗菌药物应用率之高形成鲜明的反 差。一些医师在经验性治疗受挫后方送标本， 此时已失去阳性培养的机会。
2.培养瓶消毒程序： （1）用75%酒精消毒血培养瓶橡皮塞，作用60秒。 （2）用无菌纱布或无菌棉签清除橡皮塞表面剩余的酒 精，然后注入血液。
要求： ✓ 严格无菌操作，不允许在皮肤消毒后用手按
压静脉，除非带有无菌手套。 ✓ 不推荐采血和接种血培养瓶更换注射器针头，
采用真空采血装置能降低污染率。 说明：无论采用何种采血方法，血培养可接受
婴幼儿患者推荐的采血量为每瓶不少于2ml。
说明：血标本采集的量是影响检出率的最重要的因素。 成人血培养采血量在2~30ml之间，病原菌检出率与 采血量成正比例增长。每增加1ml的血液，病原菌 的检出率增加3.2%。儿童患者因为血液中病原菌浓 度较高，血培养量无需等同于成人。对血液病患者 或者血容量相对较低的患者建议使用儿童瓶来减少 血液的采集量增加病原菌的检出率。
的污染率通常是≤3%。研究表明，经过专门 培训的熟练抽血者采集血培养的污染率为3%， 而未经培训的住院医生和护士污染率则达 11%。因此对临床护士就血培养标本采集进 行专门的、严格的培训是非常必要的。
（三）血培养标本采集和运送
1.采集时间
要求：对怀疑菌血症、真菌血症的患者，在考虑使用 抗菌药物之前，应立即采集血培养标本。必须同时 或间隔短时间内采集2套（每套包括1只普通血培养 瓶及1只厌氧血培养瓶）以上血培养标本。
6.血培养标本的运送
要求：（1）采集后的血培养瓶应在1小时之内 送往实验室。
（2）血培养瓶在接种前和接种后均不得冷藏和 冷冻。
说明：血培养瓶冷藏或冷冻会将一些微生物杀 灭。
二 痰培养 标本采集规范
我国痰培养现状
❖ 标本送检率低 ❖ 苛养菌检出率极低 ❖ 结果重复性差 ❖ 报告速度慢 ❖ 感染菌与污染菌不易区分 ❖ 药敏结果与治疗反应存在差距
标本收集部位
非无菌部位 眼 耳 呼吸道 肠胃道 泌尿道 皮肤 毛发
无菌部位 血液 脊髓液 胸膜液 腹膜液 关节液
一、血培养标本采集规范
（一）血培养检测采血指征
临床上疑为败血症、脓毒血症或其他血液感染的 患者
1. 发热（≥38℃）或低温（≤36℃） 2. 寒战 3. 白细胞增多（>10×109/L，特别有“核左移”未 成熟的或杆状核白细胞增多） 4. 粒细胞减少（成熟的多核白细胞<1×109/L） 5. 血小板减少 6．皮肤粘膜出血 7．昏迷，休克 8．多器官衰竭
微生物样本采样基本原则
1.及时采集微生物标本作病原学检查Байду номын сангаас2.在抗菌药物使用前采集标本 3.采样时严格执行无菌操作 4.采样后立即送检甚至床旁接种尤其是厌氧培养 5.棉拭子标本宜用运送培养基 6.混有正常菌群污染标本，不可置肉汤培养 7.标本容器须灭菌处理，但不得使用消毒剂 8.送检标本应注明来源和检验目的
说明：实验数据表明细菌入血后约1小时，寒战和发 烧开始出现2小时内，此时为采集血培养标本进行 病原菌培养的最佳时机。在不同的时间点采血只有 在以下情况才有必要：疑似感染性心内膜炎或其他 血管内（如导管相关性感染）感染患者的连续性菌 血症。
2.采集部位
要求：从两侧上肢静脉采血，“双瓶双侧”采血 培养。至少做到“双侧双瓶”。必要时从下肢静 脉采血做第三套血培养。
9. CRP升高
对入院危重感染患者未进行系统性抗菌药物治疗之 前，应及时采集血培养。
（二）血培养检测消毒程序
1.皮肤消毒程序：严格执行三步法（防止皮肤寄生菌污染） （1）用75%酒精擦拭静脉穿刺部位待30s以上； （2）然后用1%-2%碘酊作用30秒或10%碘伏作用60秒， 从穿刺点向外画圈消毒，至消毒区域直径达3cm以上； （3）最后用75%酒精脱碘，待酒精挥发干燥后采血。 新生儿及对碘过敏的患者，只能用75%酒精消毒60s， 待穿刺部位酒精挥发干燥后穿刺采血。
说明：除特殊情况之外，在采取血培养后的2至5天 内，无需重复采取血培养。因为抗菌治疗的2至5 天内，血液中的细菌不会立即消失。研究证明， 血培养只做1套的检出率为65%，做2套和3套的 检出率分别为80%和96%。单瓶的血培养检出率 不高，而且结果很难做出临床解释。
4.采血量
要求： 成年患者推荐的采血量为每套不少于10ml，每 瓶不少于5ml。
✓ 所谓“双侧双瓶”，是指从一个部位采血 接种一个需氧瓶，再从另一部位采血接种另 一个厌氧瓶。
✓ 一次静脉采血注入到多个培养瓶中应视为 单个血培养。
3.采集次数
要求：对怀疑菌血症、真菌血症的成人患者，推荐 同时采集2~3套（不同部位）血培养标本。（即 双瓶双臂同时采集血培养标本。）
婴幼儿患者，推荐同时采集2次（不同部位）血培 养标本。
标本有缺陷 正确收集各种临床标本， 关注特检标本采样与送检的方法和条件，是 完成病原学诊断的先决条件。
标本规范化采集的重要性
❖ 正确采集、处理与运送细菌培养的标本直接关系到 致病菌培养的正确性与阳性率的高低，是临床细菌 检验成功的关键。
❖ 标本质量的好坏直接影响诊断结果的正误，不当的 标本可导致假阴性、假阳性结果的出现，因此标本 采集与处理的规范化是准确、及时地向临床提供重 要的临床感染信息的基础。
说明：不建议采集
（1）动脉血，因其诊断价值没有比静脉血更大；
（2）静脉留置导管，因其常伴有高污染率。如果 必须从留置导管内采血，也应同时从外周静脉采 集另外一个血培养标本，以帮助阳性结果的判读。
✓ 所谓“双瓶双侧”，是指从一个部位采血 接种一套培养瓶，再从另一部位采血接种另 一套培养瓶。（通常是双臂）
临床微生物标本 采集规范
2013.12
标本采集和运送是细菌培养成 功的最最重要的关键
但由于标本的采集和运送常由护士或医 生或病人自己完成，所以也是最不容易做好 的事情，而且不知道问题所在之处，造成的 后果是: 临床医生最不能接受的问题:阳性率低
国内微生物标本的采集目前存在的问题 ：
标本送检率低 从全国来看，抗感染治疗 前，送检相关标本可能只占应送标本的一半 左右，与抗菌药物应用率之高形成鲜明的反 差。一些医师在经验性治疗受挫后方送标本， 此时已失去阳性培养的机会。
2.培养瓶消毒程序： （1）用75%酒精消毒血培养瓶橡皮塞，作用60秒。 （2）用无菌纱布或无菌棉签清除橡皮塞表面剩余的酒 精，然后注入血液。
要求： ✓ 严格无菌操作，不允许在皮肤消毒后用手按
压静脉，除非带有无菌手套。 ✓ 不推荐采血和接种血培养瓶更换注射器针头，
采用真空采血装置能降低污染率。 说明：无论采用何种采血方法，血培养可接受
婴幼儿患者推荐的采血量为每瓶不少于2ml。
说明：血标本采集的量是影响检出率的最重要的因素。 成人血培养采血量在2~30ml之间，病原菌检出率与 采血量成正比例增长。每增加1ml的血液，病原菌 的检出率增加3.2%。儿童患者因为血液中病原菌浓 度较高，血培养量无需等同于成人。对血液病患者 或者血容量相对较低的患者建议使用儿童瓶来减少 血液的采集量增加病原菌的检出率。
的污染率通常是≤3%。研究表明，经过专门 培训的熟练抽血者采集血培养的污染率为3%， 而未经培训的住院医生和护士污染率则达 11%。因此对临床护士就血培养标本采集进 行专门的、严格的培训是非常必要的。
（三）血培养标本采集和运送
1.采集时间
要求：对怀疑菌血症、真菌血症的患者，在考虑使用 抗菌药物之前，应立即采集血培养标本。必须同时 或间隔短时间内采集2套（每套包括1只普通血培养 瓶及1只厌氧血培养瓶）以上血培养标本。
6.血培养标本的运送
要求：（1）采集后的血培养瓶应在1小时之内 送往实验室。
（2）血培养瓶在接种前和接种后均不得冷藏和 冷冻。
说明：血培养瓶冷藏或冷冻会将一些微生物杀 灭。
二 痰培养 标本采集规范
我国痰培养现状
❖ 标本送检率低 ❖ 苛养菌检出率极低 ❖ 结果重复性差 ❖ 报告速度慢 ❖ 感染菌与污染菌不易区分 ❖ 药敏结果与治疗反应存在差距
标本收集部位
非无菌部位 眼 耳 呼吸道 肠胃道 泌尿道 皮肤 毛发
无菌部位 血液 脊髓液 胸膜液 腹膜液 关节液
一、血培养标本采集规范
（一）血培养检测采血指征
临床上疑为败血症、脓毒血症或其他血液感染的 患者
1. 发热（≥38℃）或低温（≤36℃） 2. 寒战 3. 白细胞增多（>10×109/L，特别有“核左移”未 成熟的或杆状核白细胞增多） 4. 粒细胞减少（成熟的多核白细胞<1×109/L） 5. 血小板减少 6．皮肤粘膜出血 7．昏迷，休克 8．多器官衰竭
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临床微生物标本采集及运送PPT课件
已接种的培养基放co培养箱35培养1824h55培养基的选择痰标本血巧伤口分泌物脓汁血mac淋球菌gc真菌培养血念显大便血macss院感普通营养琼脂霍乱培养血macssvib或tcbs56已经检测完的标本盖回塞子每天的标本统一放入注明当天日期的袋子里血液标本48冰库保存对亍超过保存期微生物所有的标本由生物安全员或指定人员对其进行高压灭菌后放入医用垃圾桶中再由环卫部门定期上门接收统一处理
，避免碰到其它
组织
1. 用一压舌板压 住舌
2. 用无菌拭子在 后咽部、扁桃体 及发炎部位采集 标本
1.将一藻酸钙拭子经 鼻腔轻轻插入鼻咽 喉部
2. 缓慢转动拭子5秒 钟吸收分泌物
3. 取出拭子并床边 接种或将拭子放入 运送培养基
采集注意事项
采集标本应于抗生素治疗前，以晨起进食前为宜，取样前数小时内不 得用消毒药物漱口或涂抹病灶部位。
好的微生物检验标本可提升实验室工作效率及病患照顾质量，降低医疗 成本。
临床标本的分类
带菌体液 痰液 咽拭子 尿液 粪便
其他类别
无菌体液 血液 脑脊液
关节腔积液 胸腹水、胆汁
其他类别
1. 发现感染应及时采集微生物标本作病原学检查，二、三级医院微生物标本 送 检率不应低于70%。
2. 尽量在抗菌药物使用前采集标本。
脑脊液标本的运送
采集后应正确盖好，防止泄漏或容器外部留有残留物。常 温立即送检，实验室收到标本后应立即接种。脑脊液标本 送检的理想时间为 15 分钟内，半小时送检是可接受的，如 果送检时间超过 1 小时，则会影响结果。
注：某些细菌具有自溶酶，放置时间过长易自溶死亡，因此， 标本应立即送检，并且保温（禁止放冰箱，因脑膜炎双球 菌遇冷死亡）
标本采集
一般认为来自正常尿液是无菌的，而尿道口有正常菌群寄生，标本的采集 必须无菌操作。
，避免碰到其它
组织
1. 用一压舌板压 住舌
2. 用无菌拭子在 后咽部、扁桃体 及发炎部位采集 标本
1.将一藻酸钙拭子经 鼻腔轻轻插入鼻咽 喉部
2. 缓慢转动拭子5秒 钟吸收分泌物
3. 取出拭子并床边 接种或将拭子放入 运送培养基
采集注意事项
采集标本应于抗生素治疗前，以晨起进食前为宜，取样前数小时内不 得用消毒药物漱口或涂抹病灶部位。
好的微生物检验标本可提升实验室工作效率及病患照顾质量，降低医疗 成本。
临床标本的分类
带菌体液 痰液 咽拭子 尿液 粪便
其他类别
无菌体液 血液 脑脊液
关节腔积液 胸腹水、胆汁
其他类别
1. 发现感染应及时采集微生物标本作病原学检查，二、三级医院微生物标本 送 检率不应低于70%。
2. 尽量在抗菌药物使用前采集标本。
脑脊液标本的运送
采集后应正确盖好，防止泄漏或容器外部留有残留物。常 温立即送检，实验室收到标本后应立即接种。脑脊液标本 送检的理想时间为 15 分钟内，半小时送检是可接受的，如 果送检时间超过 1 小时，则会影响结果。
注：某些细菌具有自溶酶，放置时间过长易自溶死亡，因此， 标本应立即送检，并且保温（禁止放冰箱，因脑膜炎双球 菌遇冷死亡）
标本采集
一般认为来自正常尿液是无菌的，而尿道口有正常菌群寄生，标本的采集 必须无菌操作。
微生物标本采集标ppt课件
③呼吸道分泌物细菌培养尤需重视半定量培养。HAP特别 是机械通气患者的痰标本(包括下呼吸道标本)病原学检查 存在的问题不是假阴性，而是假阳性。培养结果意义的判 断需参考细菌浓度。此外，呼吸道分泌物分离到的表皮葡 萄球菌、除奴卡菌外的其他革兰阳性细菌、除流感嗜血杆 菌外的嗜血杆菌属细菌、微球菌、肠球菌、念珠菌属和厌 氧菌临床意义不明确。
分析前质量控制
5
全部检验流程中各分析阶段 实验室检验错误
32-75%
理解检验的需求性 检验申请的必要条件 病人准备 标本采集 标本处理
分析前
4-32% 9-55%
标本分析
报告单的生成 报告单修正 报告判读
分析中 分析后
b.Med 3:541-551,1983 Clinical Chenistry 48:5,691-698,2002
医护人员能正确进 行标本采集与运送
病人 准备
标本 采集
标本 运送
临检科对临床医生选择项 目时,提出自己的建议
检查、监督标本是 否符合要求
分 分析 析后 中
用
于
分
临 床
析诊
测断
定与
治
疗
对检验科工作人员不断进行专业知识继 续教育,不断提高整体素质和学术水平
参与临床诊断、查房等医疗活动，帮助临床医生 合理分析、正确使用检验结果
采集“足量”标本 不可直接以棉拭子携送标本到检验室 在病人使用抗生素或伤口局部治疗前采集标本
16
微生物检查标本的采集与运送原则
标本中不可添加防腐剂，以免干扰病原菌分离 同时直接涂片，以供显微镜检查 装标本的容器须避免他人被感染 检验申请单上提供足够临床数据 立刻将标本送到检验科，不得拖延
25
分析前质量控制
5
全部检验流程中各分析阶段 实验室检验错误
32-75%
理解检验的需求性 检验申请的必要条件 病人准备 标本采集 标本处理
分析前
4-32% 9-55%
标本分析
报告单的生成 报告单修正 报告判读
分析中 分析后
b.Med 3:541-551,1983 Clinical Chenistry 48:5,691-698,2002
医护人员能正确进 行标本采集与运送
病人 准备
标本 采集
标本 运送
临检科对临床医生选择项 目时,提出自己的建议
检查、监督标本是 否符合要求
分 分析 析后 中
用
于
分
临 床
析诊
测断
定与
治
疗
对检验科工作人员不断进行专业知识继 续教育,不断提高整体素质和学术水平
参与临床诊断、查房等医疗活动，帮助临床医生 合理分析、正确使用检验结果
采集“足量”标本 不可直接以棉拭子携送标本到检验室 在病人使用抗生素或伤口局部治疗前采集标本
16
微生物检查标本的采集与运送原则
标本中不可添加防腐剂，以免干扰病原菌分离 同时直接涂片，以供显微镜检查 装标本的容器须避免他人被感染 检验申请单上提供足够临床数据 立刻将标本送到检验科，不得拖延
25
临床微生物标本采集规范
6.血培养标本的运送
要求：（1）采集后的血培养瓶应在1小时之内 送往实验室。
（2）血培养瓶在接种前和接种后均不得冷藏和 冷冻。
说明：血培养瓶冷藏或冷冻会将一些微生物杀 灭，将装着液体的容器冰冻也会使容器破裂。
7.血培养的培养周期
要求：自动化血培养仪的标准血培养周期为5天。
说明：有研究表明，95%-97%的有临床价值的 细菌会在3-4天内被自动血培养系统检出，目 前仍推荐5天的培养周期。特殊情况可适当延 长培养时间。如临床怀疑布鲁菌感染，可延 长培养至28天等。
我国痰培养现状
❖ 标本送检率低 ❖ 苛养菌检出率极低 ❖ 结果重复性差 ❖ 报告速度慢 ❖ 感染菌与污染菌不易区分 ❖ 药敏结果与治疗反应存在差距
❖ 标本采集方法
咳痰标本
医师或护士直视下采集标本
病人先漱口，去除表面的菌群
教育病人深咳，收集从下呼吸道咳出的痰液
❖ 临床上约半数咳痰标本不合格！
咳痰途经口咽部 不可避免地受到污染
✓ 由于婴幼儿患者厌氧菌所致菌血症比较罕见， 婴幼儿血培养可以仅用需氧瓶，为提高检出 率、区分污染菌，应采用两只需氧瓶为一组 血培养。仍然采用双侧双瓶的采血方式。
✓ 真菌血培养采用需氧血培养瓶采集标本。采 用中和/灭活抗菌药物的血培养瓶可提高真菌 的检出率。自动化血培养系统不能用于双相 真菌的检测。
国内微生物标本的采集目前存在的问题 ：
标本送检率低 从全国来看，抗感染治疗 前，送检相关标本可能只占应送标本的一半 左右，与抗菌药物应用率之高形成鲜明的反 差。一些医师在经验性治疗受挫后方送标本， 此时已失去阳性培养的机会。
标本有缺陷 正确收集各种临床标本， 关注特检标本采样与送检的方法和条件，是 完成病原学诊断的先决条件。
微生物样本采集的标准化与规范化ppt课件
4）咽用压舌板压舌；用无菌拭子在后咽部、扁桃体 和其它感染部位采集标本；怀疑白喉可用无菌拭
子从患者病变部位假膜及其边缘取材立刻送检。 肉汤拭子≤2小时，室温；拭子：≤1小时，室温， 1次/天。
咽拭子标本采集
3. 尿
外尿道多寄居有正常菌群，故采集尿液时 更应注意无菌操作，常用清洁中段尿作为 送检标本。中段尿用于细菌培养，最好用 晨尿。诊断泌尿系感染的细菌学标准一般 为菌落计数≥105CFU/ml。针对于老年人多 重症及卧床患者排尿困难，可相应采用导 尿管采集标本。采集和容器为无菌尿瓶， 标本量≥1毫升，条件≤2小时，室温，1次/ 天。
3）肛拭子：小心将拭子插入肛门，大约在括约肌之 上2-3厘米；轻轻旋转拭子采集肛门隐窝的标本；
要在拭子上明显看到粪便，才能检测腹泻病原体 。拭子采集，≤2小时，室温，1次/天。除了长期
卧床、无便（如中毒性痢疾）患者及频繁腹泻患
者，不推荐做拭子常规培养。用于检测淋病奈瑟 菌、志贺菌、弯曲菌、B群链球菌的肛携带者以及 不能留取粪便标本的患者。可检测霍乱弧菌。
培养瓶消毒程序：
用75％酒精擦拭血培养瓶橡皮塞（不能用含碘消 毒剂），作用60s。用无菌纱布或无菌棉签清除橡 皮塞表面残余液体．然后注入血液。
血 培 养 标 本 采 集 流 程 需氧和厌氧血培养瓶
采集次数
急性脓毒血症 10分钟内从不同部位抽血2-3次； 急性感染性心内膜炎 从不同部位抽血3次，每次
10. 褥疮
褥疮拭子培养的临床意义不大。应选择供 活检组织或注射器吸出物。以无菌盐水清 洗褥疮表面；如不做活检，用力以拭子抹 取褥疮基底部；将拭子置入肉汤培养基中 。≤2小时，室温，1次/天/来源。
参考文献
汪复 张婴元 吴菊芳等，实用抗感染治疗学 ，北京： 人民卫生出版社，2004，24 ~33.
子从患者病变部位假膜及其边缘取材立刻送检。 肉汤拭子≤2小时，室温；拭子：≤1小时，室温， 1次/天。
咽拭子标本采集
3. 尿
外尿道多寄居有正常菌群，故采集尿液时 更应注意无菌操作，常用清洁中段尿作为 送检标本。中段尿用于细菌培养，最好用 晨尿。诊断泌尿系感染的细菌学标准一般 为菌落计数≥105CFU/ml。针对于老年人多 重症及卧床患者排尿困难，可相应采用导 尿管采集标本。采集和容器为无菌尿瓶， 标本量≥1毫升，条件≤2小时，室温，1次/ 天。
3）肛拭子：小心将拭子插入肛门，大约在括约肌之 上2-3厘米；轻轻旋转拭子采集肛门隐窝的标本；
要在拭子上明显看到粪便，才能检测腹泻病原体 。拭子采集，≤2小时，室温，1次/天。除了长期
卧床、无便（如中毒性痢疾）患者及频繁腹泻患
者，不推荐做拭子常规培养。用于检测淋病奈瑟 菌、志贺菌、弯曲菌、B群链球菌的肛携带者以及 不能留取粪便标本的患者。可检测霍乱弧菌。
培养瓶消毒程序：
用75％酒精擦拭血培养瓶橡皮塞（不能用含碘消 毒剂），作用60s。用无菌纱布或无菌棉签清除橡 皮塞表面残余液体．然后注入血液。
血 培 养 标 本 采 集 流 程 需氧和厌氧血培养瓶
采集次数
急性脓毒血症 10分钟内从不同部位抽血2-3次； 急性感染性心内膜炎 从不同部位抽血3次，每次
10. 褥疮
褥疮拭子培养的临床意义不大。应选择供 活检组织或注射器吸出物。以无菌盐水清 洗褥疮表面；如不做活检，用力以拭子抹 取褥疮基底部；将拭子置入肉汤培养基中 。≤2小时，室温，1次/天/来源。
参考文献
汪复 张婴元 吴菊芳等，实用抗感染治疗学 ，北京： 人民卫生出版社，2004，24 ~33.
微生物标本采集PPT
四、标本运输 ① 标本采集后需尽快送到实验室； ② 不要冷藏标本。
四、标本采集—气道吸取标本
一、临床采样指征 有气管插管或气管切开等人工气道患者，无法自行咳
痰，可通过吸痰管从气道吸取标本。
二、标本采集 通过气管内插管将一次性无菌吸痰管推进呼吸道直至
遇到阻力后开始抽吸，留取标本在吸痰杯内。
四、标本采集—气道吸取标本
二、生物标本运送的基本原则
三、微生物实验室对标本的拒收标准
1. 标本采集至实验室接收过程间隔过长，或无标本采集时 间，或保存的温度不当。
2. 标本运送条件不正确：如厌氧培养标本却在有氧条件下 送检。
3. 容器不规范：如容器有裂缝或被打破导致标本泄露、容 器非无菌等。
4. 未贴标签或贴错标签：标本与检验目的不符合，如痰培 养送检尿标本；患者信息与标本不符，如女性患者送检 前列腺标本。
四、标本采集—血培养
二、标本采集： 1.菌血症： ① 采血时机：寒战开始时，发热高峰前30-60min内；使用抗菌药物治疗前
采集，如已用药，则在下一次用药之前采集最佳。 ② 采血部位：通常为肘静脉，切忌在静滴抗菌药物的静脉处采血。除非怀
疑有导管相关的血流感染，应避免从留置静脉或动脉导管取血，因为导 管常伴有定植菌存在。 ③ 采血工具：真空血培养瓶，如培养瓶的储存温度为2-8℃，应先复温 30min左右，平衡至室温再采血。同一部位双瓶采集时不建议更换针头。 ④ 采血次数、血培养瓶选择：对于成人患者，应同时分别在两个部位采集 血标本；每个部位应需氧和厌氧培养各一瓶。 ⑤ 采血量：影响阳性率的重要因素，过少明显降低阳性率，5-10ml/瓶。 ⑥ 皮肤、血培养瓶消毒：穿刺前皮肤和培养瓶口进行消毒并充分干燥。 ⑦ 避免采血管内空气注入厌氧血培养瓶。
四、标本采集—气道吸取标本
一、临床采样指征 有气管插管或气管切开等人工气道患者，无法自行咳
痰，可通过吸痰管从气道吸取标本。
二、标本采集 通过气管内插管将一次性无菌吸痰管推进呼吸道直至
遇到阻力后开始抽吸，留取标本在吸痰杯内。
四、标本采集—气道吸取标本
二、生物标本运送的基本原则
三、微生物实验室对标本的拒收标准
1. 标本采集至实验室接收过程间隔过长，或无标本采集时 间，或保存的温度不当。
2. 标本运送条件不正确：如厌氧培养标本却在有氧条件下 送检。
3. 容器不规范：如容器有裂缝或被打破导致标本泄露、容 器非无菌等。
4. 未贴标签或贴错标签：标本与检验目的不符合，如痰培 养送检尿标本；患者信息与标本不符，如女性患者送检 前列腺标本。
四、标本采集—血培养
二、标本采集： 1.菌血症： ① 采血时机：寒战开始时，发热高峰前30-60min内；使用抗菌药物治疗前
采集，如已用药，则在下一次用药之前采集最佳。 ② 采血部位：通常为肘静脉，切忌在静滴抗菌药物的静脉处采血。除非怀
疑有导管相关的血流感染，应避免从留置静脉或动脉导管取血，因为导 管常伴有定植菌存在。 ③ 采血工具：真空血培养瓶，如培养瓶的储存温度为2-8℃，应先复温 30min左右，平衡至室温再采血。同一部位双瓶采集时不建议更换针头。 ④ 采血次数、血培养瓶选择：对于成人患者，应同时分别在两个部位采集 血标本；每个部位应需氧和厌氧培养各一瓶。 ⑤ 采血量：影响阳性率的重要因素，过少明显降低阳性率，5-10ml/瓶。 ⑥ 皮肤、血培养瓶消毒：穿刺前皮肤和培养瓶口进行消毒并充分干燥。 ⑦ 避免采血管内空气注入厌氧血培养瓶。
临床微生物标本采集和运送规范
19
脓液或伤口分泌物标本 采集运送标准
❖ 本卷须知 ❖ 迅速送往实验室，1小时内不能培养应将标本冷藏。 ❖ 皮肤消毒对培养结果至关重要。 ❖ 不要仅送检脓液。脓液不能代表伤口特点，应在病灶
活动区域或基底部采集标本。 ❖ 除非有渗出物，枯燥、结痂伤口一般不做培养 ❖ 标记：不要只写“伤口〞标记标本，应有专门的描述
5
二、临床各类标本的采集、 运送及保存标准
6
血培养的采集、运送标准
❖ 采集程序: ❖ 皮肤消毒程序：推荐三步法 〔酒精→碘伏→酒精〕 ❖ 培养瓶消毒程序：75%酒精消毒 ❖ 静脉穿刺和培养瓶接种程序
❖ 采血量：成人8-10ml，儿童1-3ml。 骨髓采集量1-2ml ❖ 采血时间和数量: ❖ 采血时间:在寒战或体温顶峰到来之前0.5-1h，或于寒战
储存 环境
标本来源
4℃冰 箱
痰、尿液、粪便、气管冲洗物、导尿管、静脉导管、脓液和伤口分泌物 细菌或真菌培养；无菌体液（胸腹水、心包液、关节液、鞘膜积液、胆 汁）真菌培养；支原体培养；衣原体检查；血清学检查（包括ASO、RF、 肥达反应）
室温 脑脊液、生殖道、眼、耳、鼻、喉、血培养、血管导管尖、活检组织细
❖ 注意：从静脉取血；不要与血气和血沉标本一起采血； 不推荐血入瓶前换针头；不推荐静脉血直接入瓶；不宜 在静脉导管或静脉留置口采血〔除非疑心导管相关性血 流感染〕。
8
血培养的采血量
❖ 成人采血量5-10ml〔最好8-10ml〕，儿童采血量1-3ml 〔不超过总血量的1％〕。血液和肉汤之比为1：5~1： 10。骨髓采集量1-2ml。
❖ 应注明具体标本来源如眼标本注明是眼睑、结膜 还是角膜，并注明左眼还是右眼。
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脓液或伤口分泌物标本 采集运送标准
脓液或伤口分泌物标本 采集运送标准
❖ 本卷须知 ❖ 迅速送往实验室，1小时内不能培养应将标本冷藏。 ❖ 皮肤消毒对培养结果至关重要。 ❖ 不要仅送检脓液。脓液不能代表伤口特点，应在病灶
活动区域或基底部采集标本。 ❖ 除非有渗出物，枯燥、结痂伤口一般不做培养 ❖ 标记：不要只写“伤口〞标记标本，应有专门的描述
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二、临床各类标本的采集、 运送及保存标准
6
血培养的采集、运送标准
❖ 采集程序: ❖ 皮肤消毒程序：推荐三步法 〔酒精→碘伏→酒精〕 ❖ 培养瓶消毒程序：75%酒精消毒 ❖ 静脉穿刺和培养瓶接种程序
❖ 采血量：成人8-10ml，儿童1-3ml。 骨髓采集量1-2ml ❖ 采血时间和数量: ❖ 采血时间:在寒战或体温顶峰到来之前0.5-1h，或于寒战
储存 环境
标本来源
4℃冰 箱
痰、尿液、粪便、气管冲洗物、导尿管、静脉导管、脓液和伤口分泌物 细菌或真菌培养；无菌体液（胸腹水、心包液、关节液、鞘膜积液、胆 汁）真菌培养；支原体培养；衣原体检查；血清学检查（包括ASO、RF、 肥达反应）
室温 脑脊液、生殖道、眼、耳、鼻、喉、血培养、血管导管尖、活检组织细
❖ 注意：从静脉取血；不要与血气和血沉标本一起采血； 不推荐血入瓶前换针头；不推荐静脉血直接入瓶；不宜 在静脉导管或静脉留置口采血〔除非疑心导管相关性血 流感染〕。
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血培养的采血量
❖ 成人采血量5-10ml〔最好8-10ml〕，儿童采血量1-3ml 〔不超过总血量的1％〕。血液和肉汤之比为1：5~1： 10。骨髓采集量1-2ml。
❖ 应注明具体标本来源如眼标本注明是眼睑、结膜 还是角膜，并注明左眼还是右眼。
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脓液或伤口分泌物标本 采集运送标准