产L-乳酸的鼠李糖乳杆菌发酵培养基的优化

养基组成为：葡萄糖１８８ｇＬ柠檬酸氢二铵２１Ｌ乙酸钠６ｇＬ酵母膏为７５Ｌ蛋白胨０５Ｌ时，３．／、．９、／、．６、．０Ｌ一乳酸的产量为
１４．００４Ｌ。
关键词：鼠李糖乳杆菌；乳酸；ｌｋｔ— ｕａ设计；Ｌ一ＰｃｅＢｒｎａｔｍ中心组合设计
ｏｅｈｏｏｙｕｅＷｕａ３０８４ＨｂｉｈｒａｙＳｈｏ，ｂｉｈｎ４０６，ｈｎ）ｆｃｎｌ，Ｈｂｉｈｎ４０６：ｕｅＰａｍｃｃｏｌＨｕｅＷｕａ３０８ＣｉＴｇａ
Ａｂｔａｔｓｒｃ：ＡｉｄｔｎｒａｅＬ —ｌｃｉｃｄｐｏｕｔｎｂｐｉｚｎｅｍｅｉｍｏｏｅｔｆａｔｂｃｌｓｒａｍｅｏｉｃｅｓａｔａｉｒｄｃｉｙｏｔｃｏｍｉｇｔｄｕｃｍｐｎｎｓｏｃｏａｉｕｈｍ— ｉｈＬｌｎｓ￣ｏｒｓａｉｔａｌｉｎｆａｔｉｇｅｉｎｓｏｌｃｓｏｕ．ｆｕｔｔｉｌｓｇｉｃｎｎｒｄｅｔｆｇｕｏｅ，ｄａｓｃｙｉｉｍｍｏｉｍｙｒｇｎｃｔａｅｏｉｍｃｔｔａｄｙａｔｅｔｃｎｕｈｄｏｅｉｔ，ｓｄｕａｅａｅｎｅｓｘｒｔｒａ
ＨＵＡｎ５ＮＧＦａ．ＷＡｈｎ —ｇｏ５。ｌＮＪａＮＧＣａｇａｉｎ—ｇｏ：。ＣｌＪｔ５ｕＡｕ／，
（ｅａｏａｒｆｅｍｎａｏｎｉｅｒｇＨｂｉｎｖｒｔｏｅｈｏｏｙ，１ＫｙＬｂｒｔｙｏｒｅｔｉｎＥｇｎｅｉ（ｕｅＵｉｅｓｙｆｃｎｌ）ｏＦｔｎｉＴｇ
ｃｉｅｔ０．０ｇＬｗｔｔｅｍｄｕｏｐｓｉｆｌｃｓ３．／ｄａｍｎｕｙｒｇｎｃｒｔ２１／，Ｏｈｅｄａ１４４／，ｉｅｉｍｃｍｏｉｏｏｕｏｅ１８８ｇＬ，ｉｍｏｉｍｈｄｏｅｉａ．９ｇＬＳ— ｖｈｈｔｎｇｔｅ
中图分类号：９５Ｑ３
文献标识码：Ａ

文章编号：０１９７（０２０ — ０９０１０ — ６７２１）７０７ — ４
ＯｐｉｉａｉｎｏｅｕｍｐｎｎｓｏｈｅＰｒｄｔｏｔｍｚｔｏｆＭｄｉｍＣｏｏｅｔｆｔｏｕｃｉｎ
第４０卷第７期
２１０２年４月
广
州
化
工
Ｖｏ．１４０Ｎｏ．７Ａｐｒｌ２２ｉ．０１
ＧｕｎｚｏｈｍｉａｎｕｔａｇｈｕＣｅｃｌＩｄｓｒｙ
产Ｌ一乳酸的鼠李糖乳杆菌发酵培养基的优化冰
张为巍，李元媛，４周铭锋，黄瑶，王常高，林建国，俊蔡
摘要：采用Ｐｃｅ — ｕａ试验设计优化了鼠李糖乳杆菌产Ｌ一ｌｋｔＢｒｎａｔｍ乳酸的发酵培养基，筛选出对Ｌ乳酸产量有显著性影响一
的因素，即葡萄糖、柠檬酸氢二铵、乙酸钠、酵母膏，对这四个显著性因素，中心组合试验优化得到最佳发酵培养基。结果表明：用当培
０ —ｌｃｉｉｙＬｃｏａｉｕａｏｕｆＬａｔＡｃｄｂａｔｂｃｌｓＲｈｍｎｓｓＣＬＲＩｃｌ
ＺＡＧＷｅ — ｅｊＬｕｎ— ｕｎ。ＨＵＭｉｇ— ｅｇ。ＨＮｔｗｉ．ＩＹａｙａｚｏｎｆｎ，
（１发酵工程教育部重点实验室（北工业大学）湖，湖北武汉４０６；３０８２湖北省工业微生物重点实验室，湖北武汉４０６；３０８３湖北工业大学生物工程学院，湖北武汉４０６；３０８４湖北省医药学校，湖北武汉４０６）３０４
ｗｅｅｄｔｒｉｅｙＰａｋｅｔ—Ｂｕａｅｉｎｒｅｅｎｄｂｌｃｔｍｍｒｎｄｓｇ．Ｂａｅｎｔｅｒｓｌｓｏｈｒｔｐａｅ．ｔｅｆｖｓｄｏｈｅｕｔｆｔｅｆｓｈｓｉｈｅ—ｌｖ１ｆｕｉｅｅｏｒ—ｆｃｏｅｔａａｔｒｃｎｒ１ｃｍｐｓｔｅｉｎｗａｍｐｏｅｏｏｔｍｉｅｔｂｏｅｃｔｃｌｆｃｏｓｏｏｉｄｓｇｓｅｌｙｄｔｐｉｚｈｅａｖｒｉａａｔｒ．ＴｈｅｕｔｈｏｄｔｔＬ—ｌｃｉｃｄｙｅｄｗａ — ｅｉｅｒｓｌｓｓｗｅｈａａｔａｉｉｌｓａｃ
ＭｉｓｒｆＥｄｃｔｏｎｉｔｖｏｕａｉｎ．ＨｕｅｂｉＷｕｈｎ４０８；２ＨｕｉＰｏｉｃａｙＬａｏａｏａ３０６ｂｅｒｖｎｉｌＫｅｂｒｔｒｙｏｎｕｓｒａｃｏｏｏ，Ｈｕｅｕａ３０６ｆＩｄｔｌＭｉｒｂｉｌｇｉｙｂｉＷｈｎ４０８；３ＣｏｌｇｆＢｉｅｉｅｒｎｇ，ＨｕｉＵｎｖｒｉｌｅｅｏｏｎｇｎｅｉｂｅｉｅｓｔｙ

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乳酸乳球菌发酵工艺优化的基本流程

乳酸乳球菌发酵工艺优化的基本流程The optimization of the fermentation process of Lactobacillus is a complex and crucial step in the production of various fermented dairy products. 乳酸乳球菌的发酵工艺优化是生产各种发酵乳制品的复杂而关键的一步。

The basic process of optimization involves several key steps, including the selection of appropriate bacterial strains, the determination of fermentation parameters, and the implementationof quality control measures. 发酵工艺的优化基本流程涉及几个关键步骤，包括选择适当的细菌菌株、确定发酵参数以及实施质量控制措施。

One of the first steps in the optimization process is the selection of the most suitable Lactobacillus strains for the specific product being produced. 优化过程中的首要步骤之一是选择适合生产的具体产品的最适合的乳酸乳球菌菌株。

The selection of bacterial strains is based on their ability to produce the desired flavor, texture, and overall quality of the final product. 选择菌株是基于它们产生所需的风味、质地和最终产品的整体质量。

鼠李糖乳杆菌和啤酒酵母共生发酵条件的优化

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化后冷却至５０℃左右，入指示菌液１ｍ，速混合加ｌ迅
采用ＳＳ５统计软件进行正交方差分析，ＰＳ１．１以
Ｓ均匀．入平皿。冷却凝固后，无菌镊子取出牛津ＬＤ法进行多重比较。倒用见表２表３表４、、）杯，为培养液活性检测平板。用移液器吸取１０ｌ３试验结果及分析（作０
表４各因素对培养物生物量和ｐＨ值的影响
注：中的Ａ、ｃＤ分别代表接种比例、种顺序、养温度及培养时间４个因素。表Ｂ、、接培
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、√
、
接种比例
３９．５
接种顺序（ｈ）
看出，大小顺序为：其接种顺序（）培养时间（）培养Ｂ＞Ｄ＞接种时间的逐步后置，养物ｐ培Ｈ值先降再升后稳定，
以鼠李糖乳杆菌先接种１（２２ｈＢ）为最低；因素Ｄ同样
培养物的生物量、Ｈ值和抑菌效果之间可能存在相培养物生物量呈 “ ” 变化，Ａ（１为最好；ｐＳ形以２：）因素
４ｈＢ）培表中各相关系数的自由度均为ｄ＝０２４，ｆ５ — ＝８在相接种２（４养物生物量为最大。
培养温度（）培养时间（）接种比例（）接种顺序（）Ｃ＞Ｄ＞Ａ＞Ｂ。
培养物的抑菌效果与生物量、Ｈ值的相关系数其中，养物生物量随Ｃ的升高而减少，Ｃ（５℃）ｐ培以２生

以玉米为原料发酵生产l-乳酸工艺条件优化

赖于冷却水。3）对于大吨位的蒸馏水生产，热压式蒸馏水机
已经有了良好的适应性，而在多效式蒸馏水机的应用方面，
其需要耗费的蒸汽压力也需要提高；最后，在应用的设备方
面，热压式蒸馏水机无须应用压力容器，因而不需要经过压
力容器检测环节。
源紧张也成为我们需要面对的问题，因此需要我们积极响应国家节能政策。在设备的应用方面，天然气锅炉的应用以及洁净能源的推广也是推广清洁能源的重要手段。热压蒸馏水机在应用过程中可以有效地减少燃烧锅所产生的废气污染，已经得到了社会各界的普遍关注；而热压蒸馏水机的制造工艺也在不断地进步与改善，压缩机设备的制作水平也越来越高，因而对我国热压蒸馏水的发展也创造了必要的条件，将会在我国医用蒸馏水的制备上得到推广。
糖化时间 24 h，糖化 pH 值 4.8，复合酶制剂用量 0.15%。比较
原有糖化工艺，不但在工艺条件方面得到了显著改善，使得可
发酵性的得率提升较高，同时糖液的过滤速度也得到了保障，
使玉米原材料的利用率得到了较大的提高，为后续 L- 乳酸发
酵工艺的持续发展奠定了较扎实的基础。
２发酵工艺各项条件的优化
４结语
随着我国工业化发展水平的不断提高，环境污染以及资
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中国新技术新产品 2019 NO.11（下）
工业技术
粉酶加入比例为 0.1% 时效果较好。
１．３．２糖化工艺条件的优化
糖化工艺条件的研究主要包括 : 糖化温度、pH 值、加酶
量和反应时间等 4 个因素，目的是得到符合乳酸发酵要求的
筛出的玉米蛋白粉则需要经过烘干处理，随后便可包装存储。
１．１试验材料与仪器
材料：选用单位培育的 L- 乳酸高产菌株凝结芽孢杆菌、基氮、斐林试剂。

应用响应面法优化乳酸乳球菌DU101发酵培养基

ＴｅｈｏｃｎｒｔｎｆｔｂｖｏｓｂｔｔｓｗｒｆｒｅｐｉｚｄｂｓｇＣＤ（ｅｔｌｈｎｔｅｃｎｅｔｉｓｏｅａｏｅｔｕｓｒｅｅｅｕｈｒｏｔｅｙｕｉＣＣｎａａｏｈｗａｔｍｉｎｒｃｍｐｓｅｉ）ｎｓｏｓｕａｅａａｓ．ｈｐｍｌｅｍｎｔｎｍｄｕｒｉｎｐｏｕｔｎｏｏｉＤｓｎａｄｒｐｎｅｓｒｃｎｌｉＴｅｏｔａｆｒｅｔｉｅｉｆｓｒｄｃｏｔｇｅｆｙｓｉａｏｍｏＮｉｉ
ＬＮｏｇｈ，ＨＯＤｎＩＧＷｅｘａｇ（ｏｅｅｏｉｃｎｅ，ＨｉｎｊｎｎｅｓｙＩＧＨｎｚｉＺＡａ，ＰＮｎｉｎＣｌｇｆＬｅＳｉｃｓｅｌｇｉｇＵｉｒｉ，ｌｆｅｏａｖｔＨｒｉ１０８，ｈｎ）ａｂｎ００Ｃｉ５ａ
ＡｂｔａｔＴｅｆｒｎａｉｎｓｒｃ：ｈｅｍｅｔｔｍｅｉｍｏｒＮｉｎｒｄｃｉｎｙａｔｃｃｕｌｃｉＵ１１ｏｄｕｆｓｐｏｕｔｂＬｃｏｏｃｓａｔＤ０ｗａｉｏｓｓ
ｏｔｉｅｙｕｉｇｒｓｏｓｕａｅｍｅｈｄｏｙ．ｒｔ，Ｐｌｃｅ－ｒｎｄｓｇｓｕｅｏｅａｕｔｐｉｚｄｂｓｎｅｐｎｅｓｒｃｔｏｏｌｇＦｉｌｍｆｓｙａｋ￣Ｂｕｍａｅｉｎｗａｓｄｔｖｌａｅｔｅｉｆｅｃｓｏｉｈｅａｅａｔｓｉｅｍｅｔｔｎｍｅｉｍ．ｅｒｓｌｈｗｅｈｔｕｏｅａｄＮａｈｎｕｎｅｆｅｇｔｒｌｔｄｆｃｏｒｆｒｎａｉｄｕｌｎｏＴｈｅｕｔｓｏｄｔａｃｓｎＡｃｓｇｌｗｅｅｔｅｍａｉｆｅｔｇｆｃｏｓｗｈｌｈｔｅｄｔｅａｏｓｇｎｆａｔｅｅｔｎＮｉｉｒｄｕｔｎｒｈｎａｃｉａｔｒｉｔｅｏｈｒａｄｉｖｓｈｄｎｉｉｃｎｆｃｓｏｓｎｐｏｃｉ．ｎｅｉｉｏ

鼠李糖乳杆菌乳酸发酵特性及碳氮源研究

鼠李糖乳杆菌乳酸发酵特性及碳氮源研究李海洋;韩军岐;徐长亮【摘要】The abilities of Lactobacillus rhamnosus to utilize various carbon and nitrogen sources were examined with the aim of finding optimal carbon and nitrogen sources for lactic acid production by Lactobacillus rhamnosus.It was indicated that glucose was the best carbon source although it at high concentrations had a certain inhibitory effect on Lactobacillus rhamnosus growth and lactic acid production.Yeast extract was the best nitrogen carbon for Lactobacillus rhamnosus growth and lactic acid production.Basically the same lactic acid production was obtained when yeast extract was replaced with other cheap nitrogen carbons such as soybean meal or ammonium sulfate.The lactic acid yield and productivity were 48.25 mg/mL and 80.53%,respectively after 48 h of culture in a medium containing yeast extract as the nitrogen source and glucose as the carbon nitrogen at an initial concentration of 60 mg/mL under thermostatic anaerobic conditions.%通过对鼠李糖乳杆菌利用碳源、氮源能力的研究,探讨菌株产酸的最佳发酵条件。

重组大肠杆菌产耐热α-L-鼠李糖苷酶高密度发酵条件的优化

α-L-鼠李糖苷酶（α-L-rhamnosidase ，EC 3.2.1.40）广泛存在于自然界中，如哺乳动物组织、植物、真菌、细菌等[1-4]。

该酶是一种应用广泛的糖苷水解酶，它能高效水解多种末端含有非还原性鼠李糖残基的天然化合物，如水解芦丁为异槲皮苷[3]，水解淫羊藿苷C 为淫羊藿苷[5]，水解柚皮苷为普鲁宁等[4]。

此外，少数α-L-鼠李糖苷酶还能以L-鼠李糖为供体，通过逆水解反应催化合成鼠李糖苷，如甘露醇鼠李糖基化、酚类化合物鼠李糖基化等[6，7]。

迄今为止，根据CAZy 数据库，α-L-鼠李糖苷酶分属于三大糖苷水解酶家族，即GH13家族、GH78家族和GH106家族[8]，其中大部分属于GH78家族。

此外，α-L-鼠李糖苷酶是一种重要的酶，在食品和制药工业中有着广泛的应用。

然而，目前报道的α-L-鼠李糖苷酶普遍产量不高，到目前为止，全球还没有商品化的α-L-鼠李糖苷酶产品，这极大限制了该酶在工业上的应用。

大肠杆菌是遗传背景最清楚的菌株，其具有培养成本低、抗污染能力强、生长周期短、蛋白表达量高等优势，已经成为最常用的外源蛋白表达系统。

采用高密度发酵技术，能显著提高所培养的菌体密度，最终增加单位体积单位时间内目的产物的比生产率，缩减生产周期，提升经济效益，已经在工业中有很广泛的应用[9]。

在大肠杆菌高密度发酵中，大多采用补料分批发酵方式，以实现高密度的大肠杆菌和所需的蛋白质生产[10]。

这种补料方式一方面可以避免因某些营养成分初始浓度过高而出现底物抑制现象，另一方面又能够防止因限制性营养成分被耗尽而影响细胞的生长和产物的形成。

重组大肠杆菌高密度发酵是一个复杂的过程，需要对其生长的发酵参数进行优化，如葡萄糖进料速率、诱导温度、诱导pH 等。

葡萄糖是一种便宜且速效碳源，在大肠杆菌发酵生产中优于其他碳源。

但是，在有氧条件下，过多的葡萄糖会导致大肠杆菌代谢副产物的产生。

最常见的副产物是乙酸，它是由磷酸转乙酰酶（PTA ）/乙酸激酶（ACKA ）和丙酮酸氧化酶（POXB ）两种途径产生的[11]，主要原因是加入中央代谢系统的碳与细胞呼吸或三羧酸循环的有限能力之间不平衡[12]。

提高乳酸菌胞外多糖产量的途径

ｐＨ情况下，以１０ｇ／Ｌ葡萄糖为碳源胞外多糖产量
获得高产胞外多糖的最佳发酵温度与乳酸菌培养的最适温度没有直接联系。温度对乳酸菌胞外多糖产量的影响因菌株不同而有差异。一些菌株在低温下胞外多糖产量较高，Ｍｏｚｚｉ等［９］研究发现在３０℃时德氏乳杆菌保加利亚亚种和嗜热乳杆菌产胞外多糖的量达到最大，Ｇａｍａｒ－Ｎｏｕｒａｎｉ等［１０］研究表明，当温度在２５～３７℃时，在开始的５ｈ内，可提高鼠李糖乳杆菌Ｃ８３产ＥＰＳ的量。顾瑞霞［－１１］等对唾液链球菌嗜热亚种研究表明，３７℃该菌的胞
ＮＣＦＢ
ｌｕｓ）胞外多糖产量在１８ｈ为最高，培养超过２４ｈ后多糖产量显著降低。Ｐｈａｍ［７３等报道由于各种糖基转移酶的存在，鼠李糖乳杆菌（Ｌｂ．ｒｈａｍｎｏｓｕｓ）胞外多糖的产量随发酵时间延长而降低。但也有例外，Ｌｉｎ等研究以脱脂乳为培养基，在ｐＨ
ＢＣＲＣｌ４０７６５，３７℃
条件下，观察发酵时间对乳酸菌株瑞士乳杆菌
乳酸菌胞外多糖（ｅｘｏｐｏｌｙｓａｃｃｈａｒｉｄｅｓ，ＥＰＳ）是乳酸菌在生长代谢过程中分泌到细胞壁外常渗于培养基的一类糖类化合物：有的依附于微生物细胞壁形成荚膜多糖（ｃａｐｓｕｌａｒ
ｐｏｌｙｓａｃｃｈａｒｉｄｅｓ，ＣＰＳ），
发酵过程中产生的胞外多糖本身具有增稠、乳化、保湿和稳定等作用，同时还有助于改善发酵的流变学特性，减少发酵乳乳清析出现象，改善发酵乳质地和感官质量。同时，由于乳酸菌具有公认的食用安全性（ＧＲＡＳ）地位，产胞外多糖乳酸菌在食品工业中具有广阔的市场前景。然而，乳酸菌胞外多糖的产量一般来说都比较低（５０ｍｇ／Ｌ～４２５ｒａｇ／
第２８卷第３期２００９年５月
食品与生物技术学报
ＪｏｕｒｎａｌｏｆＦｏｏｄＳｃｉｅｎｃｅａｎｄＢｉｏｔｅｃｈｎｏｌｏｇｙ

1株能利用高粱汁产L-乳酸的菌株鉴定及培养基优化

1株能利用高粱汁产L-乳酸的菌株鉴定及培养基优化谢瑞;杨婷婷;魏燕霞;谢雁【摘要】以产L-乳酸的菌株A2为对象,采用16S rRNA基因测序法结合菌株的表型特征进行鉴定,以甜高粱汁为主要培养基质,采用响应面设计软件对该菌种的发酵培养基进行优化.结果表明,A2菌株为Lactobacillus plantarum S4,优化得到的甜高粱汁培养基配比为甜高粱汁327.83 g/L,蛋白胨1.67 g/L,磷酸氢二钾4.7 g/L,硫酸锰0.17 g/L,在此培养基配比下,Lactobacillus plantarumS4厌氧发酵68 h 后,L-乳酸产量达(61.20±1.36) g/L,L-乳酸/葡萄糖转化率(90.74±2.28)％,L-乳酸/蔗糖转化率(47.20±1.81)％.【期刊名称】《微生物学杂志》【年(卷),期】2018(038)005【总页数】7页(P66-72)【关键词】基因测序法;表型鉴定;培养基优化;高粱汁;L-乳酸发酵【作者】谢瑞;杨婷婷;魏燕霞;谢雁【作者单位】西北师范大学生命科学学院,甘肃兰州730070;福建农林大学园艺学院,福建福州350002;复旦大学生命科学学院,上海200438;兰州财经大学,甘肃兰州730070【正文语种】中文【中图分类】Q93-331;Q939.11+7乳酸(Lactic acid)又名α-羟基丙酸，其单体被广泛应用于食品、化工、纺织和皮革业[1]，聚合物(聚乳酸)则被应用于农业、药学及医学领域[2-4],目前主要利用微生物发酵法来生产乳酸。

国内外主要利用淀粉、纤维素、木薯、糖蜜等[5-6]成本较高的原料发酵生产L-乳酸，且大部分原材料都要进行复杂的预处理，实验操作繁琐，本研究基于以上两点选取西北地区普遍存在的廉价原料高粱为碳源，通过对其培养基进行优化发酵生产L-乳酸，解决了原材料成本高的问题，通过培养基优化进一步降低发酵成本。

植物乳杆菌培养基的优化

植物乳杆菌培养基的优化李达发酵剂是影响发酵产品质量的关键因素, 它的制备需要有良好的增菌培养基, 使植物乳杆菌得以大量增殖, 从而使其在经过喷雾干燥、冷冻、冻干等处理后有足够的活菌数存活。

因此优化植物乳杆菌增菌培养基是一项十分重要的基础研究工作。

植物乳杆菌是泡菜、发酵谷物、发酵肉制品等重要发酵剂的组成菌之一。

植物乳杆菌K25分离于西藏灵菇中, 在对其进行研究时发现, 用MRS培养基培养该菌时, 菌落总数仅能达到6.7×107cfu·mL- 1 左右。

菌液中活菌数的增加, 可以通过培养基的优化设计来实现, 因此需要对培养基进行优化, 提高菌液中活菌数的含量。

本文旨在通过对植物乳杆菌的培养基进行优化, 从而获得活菌数较高的菌液, 为研制高活力的冷冻干燥发酵剂及其产品的开发奠定基础。

1 材料与方法1.1 试验菌种L. plantarum K25, 分离于西藏灵菇。

1.2 材料与设备胰蛋白胨、大豆蛋白胨、酵母膏、牛肉膏为生化试剂; K2HPO4、KH2PO4、Na2HPO4、NaH2PO4和各种糖类均为分析纯。

722 型分光光度计、立式压力蒸汽灭菌器、超净工作台、分析天平、DNG- 9240 型恒温鼓风干燥箱。

1.3 培养基及培养条件活化和计数培养采用MRS 培养基, 蛋白胨10 g、牛肉膏10 g、酵母膏5 g、KH2PO4 2 g、柠檬酸三钠2 g、乙酸钠2 g、葡萄糖20 g、Tween 80 1 mL、MgSO4·7H2O 0.58 g、MnSO4·4H2O 0.25 g, 用蒸馏水定容至1 L, 调pH 6.2~6.4, 121 ℃灭菌15min。

以MRS 培养基为基础, 按照试验设计添加不同生长因子, 接种量0.5%接入150 mL 液体培养基中, 37 ℃静置培养24 h1.4 方法1.4.1 不同碳源、氮源、磷源的选择在MRS 液体培养基的基础上, 分别添加2%(w/v) 乳糖、蔗糖、葡萄糖、果糖作为不同碳源; 选择胰蛋白胨、大豆蛋白胨、酵母膏、牛肉膏, 分别加入2.5%( w/v) 作为的不同氮源; 分别加入0.2%( w/v) K2HPO4、KH2PO4、Na2HPO4、NaH2PO4作为不同磷源, 其他组分均相同。

基于高活菌数的瑞士乳杆菌和鼠李糖乳杆菌混合发酵工艺优化

基于高活菌数的瑞士乳杆菌和鼠李糖乳杆菌混合发酵工艺优化陈庆彩;李敬龙;胡晓珂
【期刊名称】《中国乳品工业》
【年(卷),期】2016(044)006
【摘要】以瑞士乳杆菌和鼠李糖乳杆菌混合发酵培养,利用两菌株细胞代谢的差异,以静置发酵24 h后得到的活菌数目为指标,通过单因素实验和正交实验,研究了瑞士乳杆菌和鼠李糖乳杆菌高活菌数混合发酵的最适发酵条件.结果表明,瑞士乳杆菌和鼠李糖乳杆菌高活菌数混合发酵的最优条件为:发酵温度37℃,初始pH=6.8,接种量6％,瑞士乳杆菌:鼠李糖乳杆菌=1:2,瑞士乳杆菌优先接种3h.最终得到乳酸菌总活菌数为7.2× 109 mL-1.与在相同条件下单独发酵的瑞士乳杆菌和鼠李糖乳杆菌活菌数相比,分别提高了1∶8倍和10.2倍.为乳酸菌的高活菌数发酵奠定了基础.【总页数】5页(P12-15,19)
【作者】陈庆彩;李敬龙;胡晓珂
【作者单位】齐鲁工业大学生物工程学院,济南250353;齐鲁工业大学生物工程学院,济南250353;中国科学院烟台海岸带研究所,山东烟台264000
【正文语种】中文
【中图分类】Q93-335
【相关文献】
1.鼠李糖乳杆菌ZQ-55发酵生产L-乳酸的工艺优化 [J], 张强;薄惠;邢建华;王高峰
2.鼠李糖乳杆菌发酵豆渣、黄浆水产L-乳酸工艺优化 [J], 赵贵丽;罗爱平;邴娅新;
何洪;庞胜利
3.鼠李糖乳杆菌与嗜热链球菌复配发酵乳的工艺优化 [J], 曾丽萍;王欣璐;李启明;聂远洋
4.高活菌数复合益生菌发酵乳工艺优化 [J], 刘成国;易文芝;周辉
5.瑞士乳杆菌和鼠李糖乳杆菌混合培养条件优化及冻干菌粉的制备 [J], 王燕;王发美;张秀苑;白雪;贺红军
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