乌拉坦对实验家兔三种手术方式麻醉效果的比较研究

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兔子实验肺水肿实验报告(3篇)

兔子实验肺水肿实验报告(3篇)

第1篇一、实验目的1. 复制兔子实验性肺水肿模型,观察肺水肿的临床表现。

2. 分析肺水肿的发病机制,为临床治疗提供理论依据。

二、实验原理肺水肿是指肺泡、肺间质和肺血管内液体过多积聚,导致肺泡通气、换气功能受损的一种病理状态。

肺水肿的发病机制主要包括以下几方面:1. 毛细血管血压升高:如左心衰竭、高血压等疾病导致心脏负荷加重,引起毛细血管血压升高,使液体渗出至肺泡和肺间质。

2. 胶体渗透压降低:如低蛋白血症、严重烧伤等疾病导致血浆蛋白降低,使胶体渗透压下降,液体渗出至肺泡和肺间质。

3. 淋巴回流障碍:如淋巴管阻塞、炎症等疾病导致淋巴液回流受阻,使液体在肺间质积聚。

4. 毛细血管和肺泡上皮通透性增高:如感染、过敏等疾病导致毛细血管和肺泡上皮通透性增高,使血浆蛋白和液体渗出至肺泡和肺间质。

三、实验对象实验动物:成年家兔,体重2~3kg。

四、实验器材1. 实验动物:家兔,体重2~3kg。

2. 实验动物手术器械:兔手术台、剪刀、镊子、缝合针、线等。

3. 实验动物麻醉与监测设备:麻醉机、呼吸机、心电图仪、血压计等。

4. 实验试剂:25%乌拉坦、0.9%生理盐水、肝素、肾上腺素等。

五、实验步骤1. 实验动物麻醉:采用25%乌拉坦溶液进行麻醉,剂量为4ml/kg体重。

2. 建立实验模型:(1)开胸手术:在兔子胸骨正中切一小口,暴露心脏和肺脏。

(2)结扎左心耳:用丝线结扎兔子左心耳,使血液流入肺循环。

(3)结扎肺静脉:用丝线结扎兔子肺静脉,使血液在肺循环中积聚。

3. 观察指标:(1)呼吸:观察兔子呼吸频率、深度和节律。

(2)血压:监测兔子血压变化。

(3)心脏听诊:观察兔子心脏听诊音变化。

(4)肺水肿程度:观察兔子肺部颜色、湿度和质地。

4. 实验分组:(1)对照组:给予0.9%生理盐水灌胃,观察肺水肿发生情况。

(2)实验组:给予肾上腺素和肝素溶液灌胃,观察肺水肿发生情况。

5. 数据收集与处理:记录实验过程中各项指标变化,采用统计学方法进行数据分析。

功能学实验 家兔高钾血症

功能学实验 家兔高钾血症

功能学实验家兔高钾血症实验报告一.实验目的学习和掌握家兔高钾血症模型的复制方法,观察和记录家兔在高钾血症时的心电图变化,了解和实践高钾血症的抢救措施,最后通过实验加深高钾血症对心肌电生理的影响的理解。

二.实验动物未知种属家兔(实验室提供)一只,体重为2.00 kg。

三.实验过程1. 取一只家兔,称重并根据体重注射适量乌拉坦进行麻醉(家兔体重2.00 kg,故应注射20ml 20%的乌拉坦进行麻醉),然后固定四肢和头部。

2. 气管插管:剪除颈部毛发,依次切开皮肤和组织暴露气管,于恰当位置剪出T形切口,插入气管插管并固定。

3. 颈动脉插管:于气管旁暴露并分离颈动脉,结扎颈动脉头端,动脉夹夹住近心端。

分离3-4cm长度的颈动脉,穿过一根线用于颈动脉插管固定。

颈动脉下垫着镊子,剪开管径一半,插入颈动脉插管,固定,后接充满生理盐水的注射器。

4. 于未滴注KCl之前从颈动脉第一次采血2 ml,静置。

5. 将心电图电极依次插入四肢关节处皮下,连接生物信号处理系统,在MFLab上记录心电图波形。

6. 用生理盐水将蠕动泵滴速调节至1.2 ml/min,用4% KCl溶液从耳缘静脉滴注,观察并记录心电图变化。

待出现P波低平,QRS波压低增宽,T波高尖现象时即停止滴注,第二次采集血液。

7. 继续以相同滴速滴注KCl溶液,观察并记录心电图变化。

待出现室扑时立即停止滴注,从耳缘静脉快速推注10%葡萄糖酸钙溶液10-20 ml,观察心电图并在滴注后第三次采集血液。

8. 然后开胸观察心跳,于颈动脉推注20 ml KCl溶液,观察心脏停搏状态。

从心室第四次抽取血液。

9. 待血液样本凝固后以3000 rpm的转速离心10 min,取血清100 ul,混合蒸馏水9.9 ml稀释,送火焰光度计测量血清钾浓度。

四.实验器材及注意事项实验器材:肢体导联,生物信号处理系统,火焰光度计,10ml刻度离心管,塑料试管,哺乳动物手术器械一套,塑料三通阀两个,Y形气管插管,动脉夹,20ml、10ml、5ml注射器,头皮针三支,输液装置一套,心电针型电极注意事项:1. 耳缘静脉注射乌拉坦麻醉及建立耳缘静脉通路时,在家兔皮肤处涂抹适量局麻药,稍后进行头皮针插入动作,防止家兔在针插入时因疼痛而产生剧烈活动使头皮针插入受阻。

家兔实验性肺水肿

家兔实验性肺水肿
家兔实验性肺水肿
一、目的
1. 学习肺水肿家兔模型复制方法; 2. 观察肺水肿家兔的呼吸及肺的外观等指标; 3. 观察654-2对油酸所致肺水肿的预防作用。
二、器材、药品
手术器械一套、25%乌拉坦、NS、油酸、654-2
三、实验对象家兔来自三、方法、步骤1、实验准备 1)称重,麻醉( 25%乌拉坦,参考剂量4ml/kg),固定。 2)按常规操作,分离气管,并插管。 2、复制肺水肿模型(耳缘静脉注射) 1)对照组: 生理盐水( 0.3 ml/kg) 生理盐水( 0.08 ml/kg) 2)实验组: 生理盐水( 0.3 ml/kg) 油酸( 0.08 ml/kg) 在气管分叉上方 1cm处结扎 3)预防组: 1 cm 654-2(剂量 3 mg/kg ,规格:10mg/ml) 剪除结扎线上方气管 油酸 (剂量 0.08 ml/kg ) 3、观察项目 消除气管长度不等的差异 1)观察呼吸、气管插管内有无泡沫样液体流出。 2)30min后放血处死家兔,打开胸腔,取肺脏,观察大体改变。 在气管分叉上方1cm处结扎,剪除结扎线上方气管称肺重, 计算肺系数[肺重(g)/兔体重(kg)]。正常肺系数4.0-5.0。
四、实验结果
表1
组 别 对照组 实验组
油酸性肺水肿实验观察记录表
兔体重(kg) 肺系数(g/kg) 4-5 6-9 呼吸音 正常 湿罗音 肺大体观 粉红、均一 出血点 淤血斑 泡沫样液体 无 粉红色泡沫 样液体 无
肺重(g)
预防组
5-6
正常
偶见出血点
五、分析讨论
1. 油酸致肺水肿的机制 油酸 趋化因子 单核、巨噬 质、蛋白酶) 损伤肺泡毛细血管膜 2. 654-2(盐酸消旋山莨菪碱) 1. 解除血管平滑肌痉挛,降低血管压力; 2. 抑制自由基、炎症介质、蛋白酶等释放,减轻膜的损伤,防止通透性加大。 聚集激活 通透性增加 释放(自由基、炎症介 血浆渗出 肺水肿

家兔阑尾切除术外科实验教学要点研究

家兔阑尾切除术外科实验教学要点研究

家兔阑尾切除术外科实验教学要点研究《中国医学教育改革和发展纲要》第五条关于深化教育教学改革,完善医学教育体系中要求:“医学是一门实践性很强的学科,医学教学中要加强实践教学环节,强化基本技能训练,提高分析问题和解决问题的能力”[1]。

我校外科教研室,在临床外科教学活动中,秉承大纲要求,在学校领导大力支持下,结合学生实际情况,本着适应社会需求,培养实用型人才的精神,积极开展外科动物实验教学。

学生动手能力得到了强化,并将临床理论与实践活动紧密结合,经回访多家用人医院,对我校毕业学生的动手能力普遍感到满意。

现将开展得比较成功的家兔阑尾切除术实验过程中的几处要点及体会总结如下。

1 实验准备1.1 实验动物每只实验家兔体重宜在3kg以上,实验前称重,并进行标示。

1.2 实验器材兔台、常用外科手术器械、麻醉药品、纱布、备皮器械。

1.3 术区准备家兔腹部皮肤用脱毛剂脱毛。

1.4 麻醉准备在实验教师指导下,学生实施麻醉。

自家兔耳缘静脉注入20%乌拉坦5ml/kg。

待动物腹部痛觉消失后,即可将家兔仰卧四肢固定在兔台上。

1.5 学生角色分配将学生每6人分为一组,同时进行临床手术角色模拟,角色包括:麻醉师主要负责动物的麻醉技术中麻醉效果的维持。

器械护士为手术提供器械,并进行器械整理。

术者主要手术实施者。

第一助手主要辅助术者完成手术。

第二助手、第三助手辅助术者完成手术。

教师在实验前,将各角色主要职责为学生讲解清楚。

2 实验步骤2.1 教师示范在多媒体示教反示教系统辅助下,每个实验小组抽出一人,担任助手,由实验教师示范家兔阑尾切除术操作。

在示范过程中,教师边操作边讲解实验的要点。

讲述组织切开及止血的方法。

强调切开腹膜时交替钳夹提拉腹膜的重要性,在确定未钳夹腹腔内肠管时,方可切开腹膜。

暴露腹腔后,在家兔腹腔右侧中部,轻轻提起结肠和一段空回肠,即可看到阑尾。

或者找到回盲部之后,逆时针即可找到阑尾。

以纱布围绕阑尾根部,保护其他脏器,并使术野清晰。

动物全身麻醉实验报告(3篇)

动物全身麻醉实验报告(3篇)

第1篇一、实验目的本实验旨在掌握动物全身麻醉的方法,了解常用麻醉药物的特点及使用方法,并观察麻醉效果,为动物实验提供安全保障。

二、实验材料1. 实验动物:小鼠(体重20-30g)2. 麻醉药物:戊巴比妥钠、普鲁卡因3. 麻醉设备:麻醉机、注射器、针头、手术器械等4. 实验试剂:生理盐水、实验药物等三、实验方法1. 实验动物准备:选取体重20-30g的小鼠,进行编号,并观察其生命体征。

2. 麻醉药物配置:根据实验需要,配置戊巴比妥钠和普鲁卡因溶液。

3. 麻醉诱导:将小鼠放入麻醉机内,调整麻醉机参数,通过吸入麻醉气体进行诱导。

观察小鼠的反应,直至小鼠进入麻醉状态。

4. 麻醉维持:在麻醉诱导成功后,通过注射器将配置好的戊巴比妥钠溶液注入小鼠体内,维持麻醉状态。

5. 实验操作:在麻醉状态下,进行实验操作,如手术、取血等。

6. 麻醉恢复:实验结束后,逐渐降低麻醉机参数,直至小鼠苏醒。

四、实验结果1. 麻醉诱导:通过吸入麻醉气体,小鼠在短时间内进入麻醉状态,表现出肌肉松弛、呼吸减慢、心跳减慢等特征。

2. 麻醉维持:注射戊巴比妥钠溶液后,小鼠维持麻醉状态,实验操作顺利进行。

3. 麻醉恢复:降低麻醉机参数后,小鼠逐渐苏醒,生命体征恢复正常。

五、实验讨论1. 麻醉药物的选择:本实验中,戊巴比妥钠和普鲁卡因是常用的麻醉药物。

戊巴比妥钠适用于全身麻醉,具有麻醉作用迅速、持续时间长等特点;普鲁卡因适用于局部麻醉,具有麻醉效果显著、安全性高、作用时间短等优点。

2. 麻醉剂量的掌握:麻醉剂量的掌握对实验结果至关重要。

过量可能导致动物死亡,剂量过小则无法达到麻醉效果。

本实验中,根据动物体重和实验要求,合理配置麻醉药物浓度和剂量。

3. 麻醉效果的观察:在麻醉过程中,需密切观察动物的反应,如呼吸、心跳、肌肉松弛等。

通过观察,判断麻醉效果,确保实验顺利进行。

4. 麻醉安全:在进行动物实验时,确保动物的安全至关重要。

本实验中,通过合理配置麻醉药物、掌握麻醉剂量、密切观察动物反应等措施,确保了实验动物的安全。

功能学实验 家兔高钾血症

功能学实验 家兔高钾血症

功能学实验家兔高钾血症实验报告一.实验目的学习和掌握家兔高钾血症模型的复制方法,观察和记录家兔在高钾血症时的心电图变化,了解和实践高钾血症的抢救措施,最后通过实验加深高钾血症对心肌电生理的影响的理解。

二.实验动物未知种属家兔(实验室提供)一只,体重为2.00 kg。

三.实验过程1. 取一只家兔,称重并根据体重注射适量乌拉坦进行麻醉(家兔体重2.00 kg,故应注射20ml 20%的乌拉坦进行麻醉),然后固定四肢和头部。

2. 气管插管:剪除颈部毛发,依次切开皮肤和组织暴露气管,于恰当位置剪出T形切口,插入气管插管并固定。

3. 颈动脉插管:于气管旁暴露并分离颈动脉,结扎颈动脉头端,动脉夹夹住近心端。

分离3-4cm长度的颈动脉,穿过一根线用于颈动脉插管固定。

颈动脉下垫着镊子,剪开管径一半,插入颈动脉插管,固定,后接充满生理盐水的注射器。

4. 于未滴注KCl之前从颈动脉第一次采血2 ml,静置。

5. 将心电图电极依次插入四肢关节处皮下,连接生物信号处理系统,在MFLab上记录心电图波形。

6. 用生理盐水将蠕动泵滴速调节至1.2 ml/min,用4% KCl溶液从耳缘静脉滴注,观察并记录心电图变化。

待出现P波低平,QRS波压低增宽,T波高尖现象时即停止滴注,第二次采集血液。

7. 继续以相同滴速滴注KCl溶液,观察并记录心电图变化。

待出现室扑时立即停止滴注,从耳缘静脉快速推注10%葡萄糖酸钙溶液10-20 ml,观察心电图并在滴注后第三次采集血液。

8. 然后开胸观察心跳,于颈动脉推注20 ml KCl溶液,观察心脏停搏状态。

从心室第四次抽取血液。

9. 待血液样本凝固后以3000 rpm的转速离心10 min,取血清100 ul,混合蒸馏水9.9 ml稀释,送火焰光度计测量血清钾浓度。

四.实验器材及注意事项实验器材:肢体导联,生物信号处理系统,火焰光度计,10ml刻度离心管,塑料试管,哺乳动物手术器械一套,塑料三通阀两个,Y形气管插管,动脉夹,20ml、10ml、5ml注射器,头皮针三支,输液装置一套,心电针型电极注意事项:1. 耳缘静脉注射乌拉坦麻醉及建立耳缘静脉通路时,在家兔皮肤处涂抹适量局麻药,稍后进行头皮针插入动作,防止家兔在针插入时因疼痛而产生剧烈活动使头皮针插入受阻。

B3 121140066 许克波 家兔去大脑僵直实验

生理实验(上午)121140066 许克波2014-12-24家兔去大脑僵直实验B3 121140066 许克波一、实验目的1、感觉运动皮质的运动功能;2、去大脑僵直原理;3、α-僵直与γ-僵直的区别;二、实验动物与器材实验动物:家兔(1只/组)实验试剂:生理盐水、20%乌拉坦;实验设备:生物电、隔离刺激器等;三、实验方法与步骤1、家兔称重,麻醉,进行气管插管手术;2、对家兔进行开颅手术(注意家兔气管通气顺利);3、腘窝处,去脂体,游离腘神经,穿线备用(刺激);4、侧卧,连续刺激感觉运动区,并记录位置;5、拉开枕叶,看见中脑,用竹刀在上下丘之间横断中脑(保留小脑,去中脑);四、实验结果1、在家兔大脑皮层进行刺激时,能观察到不同部位运动(我们组有观察到咀嚼运动区域和前腿伸缩控制区域);2、观察到中脑(上下丘之间),主刀横断后,家兔发生去大脑僵直(全身肌紧张,四肢强直,脊柱反张后挺);3、产生去大脑强僵直的机制有两种,即α僵直和γ僵直。

在中脑上下丘之间切断造成大脑僵直时,经证明主要属于γ僵直(经典的去大脑强僵)。

已证实γ僵直主要是通过网状脊髓束的下行活动实现的,因为当刺激完整动物的网状结构易化区时,肌梭传入冲动增加。

因此可以认为,当网状结构易化区活动增强时,下行冲动首先增强γ运动神经元的活动,使肌梭的敏感性增高,肌梭传入冲动增加。

五、注意事项1、麻醉剂量要适合,既要让家兔麻醉也不能让家兔死亡,严格按照家兔重量进行麻醉剂注射;2、气管插管,注意气管叉通顺;3、刺激家兔大脑时,注意不要将针刺入其大脑,将其损坏;4、横断中脑后出现去大脑僵直现象(全身肌紧张,四肢强直,脊柱反张后挺)不要慌张,是正常现象;5、实验结束后将实验动物处死并按规定处理其尸体。

1。

回肠代膀胱家兔模型制作中不同的麻醉药物

回肠代膀胱家兔模型制作中不同的麻醉药物沈俭;黄春霞;余云兰;刘洪新;程志军【期刊名称】《中国组织工程研究》【年(卷),期】2014(018)049【摘要】背景:家兔回肠代膀胱模型制作对麻醉要求较高,需要手术野清晰,术毕恢复迅速,麻醉药物及方法的选择不影响肠道平滑肌的蠕动。

目的:比较水合氯醛和乌拉坦对家兔回肠代膀胱模型制作的麻醉效果。

方法:18只家兔随机等分为乌拉坦组和水合氯醛组,分别用体积分数10%水合氯醛2 mL/kg和体积分数20%乌拉坦5 mL/kg实施耳缘静脉麻醉后,于原膀胱外1 cm处离断双输尿管,种植于回盲部10 cm处切取的15 cm肠段,建立回肠代膀胱模型。

结果与结论:2组家兔麻醉后心率均较麻醉前出现明显下降(P≤0.05),但2组间差异无显著性意义(P〉0.05)。

与水合氯醛组相比,乌拉坦组兔被麻醉的持续时间、苏醒时间过长,死亡率高。

说明水合氯醛是适合家兔回肠代膀胱模型制作的安全长效的麻醉剂。

【总页数】5页(P7990-7994)【作者】沈俭;黄春霞;余云兰;刘洪新;程志军【作者单位】上海交通大学医学院附属新华医院崇明分院;泌尿科,上海市202150;上海交通大学医学院附属新华医院崇明分院;麻醉科,上海市202150【正文语种】中文【中图分类】R318【相关文献】1.不同麻醉药物对气腹模型下家兔肺损伤情况的影响 [J], 包延丽;黄中华;宁加娟;李雪梅;马利;胡俊;甘丽霞;朱蔚琳2.不同吸入麻醉方式对局灶性大脑中动脉缺血-再灌注模型制作的影响 [J], 叶明;吴浩;吉训明;凌锋3.回肠代膀胱家兔模型制作中不同的麻醉药物 [J], 沈俭;黄春霞;余云兰;刘洪新;程志军4.不同药物联合瑞芬太尼麻醉在食管癌根治术麻醉中的效果对比观察 [J], 闫华;5.丙泊酚联合不同麻醉药物在小儿外科麻醉中的效果对比 [J], 王培培因版权原因,仅展示原文概要,查看原文内容请购买。

病理生理学实验

病理生理学实验1.实验性缺氧症实验目的与要求在动物身上复制低张性缺氧及血液型缺氧的模型;观察两种类型缺氧对动物呼吸的影响和皮肤颜色的变化实验原理广口瓶内空气的氧分压降低-----低张性缺氧动物体内形成大量HbCO-----血液型缺氧动物体内形成大量高铁血红蛋白-----血液型缺氧实验对象小白鼠实验器材与药品125ml带塞广口瓶3只,秒表一块,镊子一把,钠石灰(NaOH·CaO),CO发生装置,甲酸,浓硫酸,5ml,2ml吸管各一支,1ml注射器两只,2.5%亚硝酸钠溶液,1%亚甲蓝(即美蓝)溶液,生理盐水观察指标记录时间,观察小鼠皮肤颜色及活动状态实验步骤低张性缺氧取两只体重相近的健康小白鼠→一只直接放入密闭广口瓶中,另一只放入盛有钠石灰的密闭广口瓶中→观察并分别记录时间血液性缺氧CO中毒:安装好CO发生装置→取一只健康小白鼠观察一般情况后放入CO发生装置的广口瓶中→先取甲酸3ml放入试管中,再加入硫酸2ml后塞紧木塞→加热CO发生装置加速CO产生(不可过热以至液体沸腾,因CO产生过多过快,动物会迅速死亡,血液颜色变化不明显)→观察并记录时间亚硝酸钠中毒:取两只体重相近的健康小白鼠→分别向腹腔内同时注入 2.5%亚硝酸钠0.3ml→立即向其中一只腹腔内注入1%美蓝0.3ml,同时向另一只腹腔内注入生理盐水0.3ml→观察并记录时间注意事项小白鼠放入缺氧瓶后瓶口一定要紧闭产生CO时注意安全腹腔注射时头低尾高,在小鼠左下腹下针以免损伤脏器动物缺氧死亡后可解剖尸体比较肝脏及血液颜色试验结束后未死亡的小白鼠均处死实验结果低张性缺氧:实验组---31’,对照组---18’血液性缺氧CO中毒---18’亚硝酸钠中毒---实验组---四肢,嘴唇,尾部发黑,未死对照组---6’2.家兔高钾血症实验目的与要求学习家兔高钾血症模型的复制方法观察和熟悉高钾血症时家兔心电图变化的特征实验原理家兔高钾血症对机体的影响表现为心脏毒性作用,出现多种心律失常早期由于心室肌细胞动作电位三期复极时间缩短,心电图上主要表现为T波高尖急性严重高钾血症时可因重度传导阻滞或心肌兴奋性降低而引起心脏骤停实验对象家兔实验器材与药品电脑,5ml注射器2只,兔手术台,小儿头皮针,5%KCI,20%乌拉坦(5ml/kg),肝素-生理盐水(125U/ml)观察指标家兔心电图变化实验步骤家兔称重,耳缘静脉注入乌拉坦→观察家兔肌张力,角膜反射,呼吸频率的变化,待动物麻醉成功后以仰卧位固定在兔手术台上→将针极按右前肢(红),左前肢(黄),右后肢(黑),左后肢(绿)的顺序插入家兔四肢皮下,连接好导线→打开测心电软件,调到相应界面准备→记录一段正常心电图波形→将充有肝素-生理盐水的小儿头皮针沿耳缘静脉注入,并将针头固定于耳廓,然后向静脉缓慢推住5%氯化钾溶液,记录异常心电图波形→注射过程中出现心室扑动或纤颤时,立即停止注射氯化钾溶液,观察心电图变化注意事项麻醉要适宜氯化钾时要缓慢注入排除心电图机各种故障的干扰,尽量避免导联线纵横交错实验结果T波高尖----三期复极时间缩短3.大白鼠实验性肺水肿实验目的与要求学习复制大白鼠实验性肺水肿模型观察大白鼠水肿的表现,了解其发生机制实验原理通过左下腹腔注射肾上腺素,引起实验动物外周血管收缩,大量的血液涌入低阻力的肺循环,肺毛细血管内压升高及肺毛细血管壁通透性增加,从而导致肺水肿实验对象大白鼠实验器材与药品抓鼠手套,2ml注射器,天平,剪刀,镊子,滤纸,棉线,0.1%盐酸肾上腺素注射液观察指标肺系数,肺组织外观实验步骤取150g左右大白鼠两只,一只作为实验鼠,一只作为对照鼠,观察一般情况→向实验鼠腹腔注射0.1%盐酸肾上腺素2ml 观察动物的变化(呼吸,口鼻有无液体流出)并记录存活时间→动物死亡后称取大白鼠尸重,解剖大白鼠取肺,擦拭表面血液后称重,计算肺系数→向对照鼠腹腔注入等量的生理盐水,处死大白鼠后,解剖取肺称重计算肺系数→观察比较两肺颜色,体积注意事项取肺时勿损伤到肺,以免影响肺系数值实验结果肺系数=肺重量(g)/体重(kg)正常值约为4.0~8.04.实验性急性右心功能不全实验目的与要求学习复制急性右心功能不全模型观察急性右心功能不全时血流动力学的主要变化实验原理给家兔静脉注射栓塞剂造成肺毛细血管栓塞引起右心后负荷增加快速大量输入生理盐水使回心血量增多,引起右心前负荷增加右心功能不全引发机体发生体循环淤血,水肿,中心静脉压(CVP)升高,动脉血压(BP)下降等病理生理变化实验对象家兔实验器材与药品哺乳动物实验手术器械一套,BL-420生物机能实验系统,压力换能器,中心静脉压测定装置,静脉输液装置,细线,注射器,20%乌拉坦,肝素生理盐水,碳素墨水,生理盐水观察指标心率(HR),呼吸(频率,深度),动脉血压(BP),中心静脉压(CVP)实验步骤麻醉与手术家兔称重后经耳缘静脉缓慢注入乌拉坦,待麻醉好后将家兔以仰卧固定于兔手术台上→颈前部剪毛,沿颈正中线做长约5-7cm的切线分离皮下组织,充分暴露气管,分离左侧颈总动脉和右侧颈外侧静脉,并各穿两根细线备用→将充盈肝素生理盐水的静脉插管用三通管连接中心静脉测压计和输液装置→经耳缘静脉注入肝素生理盐水(1mg/kg)后,将右侧颈外侧静脉远心端结扎,做V字切口,将准备好的静脉插管由切口沿向心方向插入颈静脉,深度为5-6cm,再结扎固定→将左侧颈总动脉进心端用动脉夹夹闭,远心端用细线扎牢,在结扎处近端向心方向做V形切口,向心脏方向插入与压力换能器相连的动脉插管,并用细线固定→连接好压力换能器与BL-420系统观察项目记录实验前动物的BP,CVP,HR,呼吸频率按1ml/kg剂量用2ml注射器抽取碳素墨水经家兔耳缘静脉缓慢注入→当动脉血压开始下降时,立即停止注射,检测上述各项指标通过静脉插管快速输入生理盐水200ml,输液速度呈线状,并观察上述各项指标的变化→输液量达200ml/kg而变化不明显时再补充碳素墨水直至各项指标变化非常明显或动物死亡当证实动物已经形成急性右心功能不全时尝试急救措施如暂时输入生理盐水或经耳缘静脉注射0.01%肾上腺素0.5ml动物死亡后可进行尸体解剖,观察各组织变化注意事项插管过程中尽量减少出血注入碳素墨水时速度一定要缓慢,以免造成严重急性肺梗阻而致动物很快死亡实验结果。

兔子麻醉解剖实验报告

一、实验目的1. 熟悉兔子麻醉和解剖的基本步骤。

2. 掌握兔子麻醉药物的使用方法和注意事项。

3. 了解兔子解剖结构,观察其内部器官的形态和位置。

4. 培养实验操作技能和团队协作能力。

二、实验原理兔子麻醉是通过注射麻醉药物使其失去意识和痛觉,以便进行解剖操作。

常用的麻醉药物有乌拉坦、氨基甲酸乙酯等。

兔子解剖则是通过对兔子进行系统性的解剖,观察其内部器官的形态、位置和相互关系,以加深对哺乳动物解剖结构认识。

三、实验材料与仪器1. 实验材料:活家兔、解剖盘、注射器、镊子、手术刀、手术剪、解剖剪、解剖针、纱布、生理盐水、20%乌拉坦溶液等。

2. 实验仪器:电子秤、麻醉机、手术显微镜、解剖显微镜等。

四、实验步骤1. 准备工作(1)将兔子放入实验室内,适应环境。

(2)用电子秤称量兔子体重,以便计算麻醉药物剂量。

(3)准备好实验材料与仪器。

2. 麻醉(1)将兔子固定在解剖盘上,确保其安全。

(2)根据兔子体重计算乌拉坦溶液剂量,用注射器抽取适量溶液。

(3)将注射器插入兔子耳缘静脉,缓慢注射乌拉坦溶液,直至兔子失去意识和痛觉。

3. 解剖(1)用解剖剪沿兔子颈部正中线剪开皮肤,暴露肌肉和血管。

(2)用解剖剪剪断肌肉和血管,暴露颈部内脏器官。

(3)依次解剖心脏、肺、肝、脾、胃、肠、肾、肾上腺、生殖器官等。

(4)观察每个器官的形态、位置和相互关系。

4. 结果记录(1)用解剖显微镜观察器官的细微结构。

(2)用绘图工具记录器官的形态、位置和相互关系。

(3)整理实验数据,撰写实验报告。

五、实验结果与分析1. 麻醉效果良好,兔子在注射乌拉坦溶液后迅速失去意识和痛觉。

2. 解剖过程中,观察到兔子心脏、肺、肝、脾、胃、肠、肾、肾上腺、生殖器官等器官的形态、位置和相互关系。

3. 通过实验,加深了对兔子解剖结构的认识,了解了哺乳动物内脏器官的分布规律。

六、实验讨论1. 麻醉是进行动物解剖实验的前提条件,麻醉药物的选择和使用方法至关重要。

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乌拉坦对实验家兔三种手术方式麻醉效果的比较研究 目的 本实验旨在观察乌拉坦(氨基甲酸乙酯)对实验家兔蚓突切除术、胃造瘘术、气管插管术三种手术方式中麻醉效能的影响,进而评价其在实验教学中实验动物麻醉的应用。方法 选择健康实验家兔24只,分三组,每组分别经耳缘静脉缓慢推注乌拉坦(20%,4 ml/kg),麻醉满意后A组实施家兔蚓突切除术,B组实施胃造瘘术,C组实施气管插管术,分别记录呼吸频率、心率、麻醉起效时间、麻醉维持时间、麻醉苏醒时间,并对麻醉起效时间、维持时间和苏醒时间进行统计学分析。结果 蚓突切除术组、气管插管术组、胃造瘘术麻醉起效时间分别为(6.4±0.8)min,(9.0±0.6)min,(7.7±0.3)min;麻醉维持时间分别为(32±3.7)min,(35±3.9)min,(40±6.5)min;术后苏醒时间依次为(25±3.7)min,(22±3.9)min,(13±6.4)min。结论 20%乌拉坦的麻醉维持时间长,术后死亡率高,适用于实验要求不高,术后要对动物进行处死的动物实验,乌拉坦对于蚓突切除、胃造瘘等开腹手术麻醉维持时间短,术后苏醒时间长,对于气管插管等非开腹手术麻醉维持时间长,术后苏醒时间较短。

Abstract:Objective The purpose of this experiment was to observe the urethane(ethyl carbamate)on experimental rabbit appendix resection, gastrostomy,anesthesia effects of three surgical methods for tracheal intubation,and to evaluate the application of anesthesia in experimental teaching of experimental animal.Methods 24 rabbits were divided into three groups,each group by intravenously urethane(20%,4 ml/kg),A group received anesthesia satisfaction after resection of fistula in the appendix,B group received gastrostomy,tracheal intubation was performed in C group,respiratory rate,heart rate,time of onset of anesthesia,maintenance time of anesthesia and time of anesthesia recovery were recorded,and the onset time, maintenance time and recovery time of anesthesia were statistically analyzed.Results The appendix resection group,tracheal intubation group, gastrostomy onset time of anesthesia were(6.4±0.8)min,(9.0±0.6)min,(7.7±0.3)min;anesthesia time was(32±3.7)min,(35±3.9)min,(40±6.5)min; postoperative recovery time was(25±3.7)min,(22±3.9)min,(13±6.4)min.Conclusion 20% urethane anesthesia maintained for a long time,postoperative mortality rate is high, suitable for the experimental requirements is not high, Animals were sacrificed after the animal experiments,urethane for earthworm resection,gastric fistula and other open surgery anesthesia to maintain a short time,postoperative recovery time is long,for tracheal intubation and other non-open surgery anesthesia to maintain a long time,postoperative awakening time is shorter.

Key words:Anesthesia;Urethane;Earthworm resection;Tracheotomy;Gastrostomy

醫学院校在日常教学中有许多动物实验,家兔是实验中最常用的动物。麻醉是动物实验中至关重要的一个环节[1],麻醉过浅会使动物遭受过多的痛苦、影响实验进程和实验结果;麻醉过深,轻者影响实验进程、重者可导致实验动物死 亡,严重影响实验结果,浪费时间和精力[2]。麻醉药物的选择至关重要,目前,各大院校在学生动物实验教学中经常使用乌拉坦作为麻醉药物,但乌拉坦麻醉对家兔各项生理功能的影响的相关报道较少,本文旨在观察乌拉坦(氨基甲酸乙酯)对实验家兔蚓突切除术、胃造瘘术、气管插管术三种手术方式中麻醉效能的影响,进而评价其在实验教学中实验动物麻醉的应用,以指导科研人员和在校学生很好地对实验动物进行满意的麻醉[3]。1 材料与方法

1.1 實验动物和药品 健康家兔,体质量大约2 kg,由齐鲁医药学院实验动物中心提供,建议家兔分笼饲养,自由进食和饮水,适应性饲养1 w[4-6]。乌拉坦(北京通县育才精细化工厂),生理盐水。

1.2实验仪器 2 ml、10 ml的一次性注射器,婴儿称,兔固定器,计时器,分析天平,称量纸,玻璃棒,烧杯,棉签等。

1.3药物的选择与配制 分析天平精密称定20 g乌拉坦溶解于生理盐水100 ml中就可得到浓度为20%的乌拉坦溶液[7-8]。

1.4麻醉方法 麻醉前应注意实验家兔要禁食6 h。将外观相似,体质量在2 kg左右的家兔用20%的乌拉坦经耳缘静脉缓慢推注8 ml。B组用0.7%的戊巴比妥钠经耳缘静脉缓慢推注2 ml。耳缘静脉推注时要严格的控制给药的速度,避免因为注射的速度过快而导致的家兔死亡。

1.5观察指标 对麻醉后的家兔行家兔蚓突切除术、胃造瘘术、气管插管术,通过观察呼吸频率(触摸计数)、心率(听诊器计数)、角膜反射、趾蹼反射(钳夹趾间组织引起缩肢)、肌肉紧张度(询问手术医师)、有无躁动等指标,分别记录各组麻醉起效时间、麻醉维持时间、麻醉苏醒时间、呼吸频率、心率、追加给药次数、累计给药量、术后2 h内死亡数,将三种手术方式的麻醉起效时间、麻醉维持时间、麻醉苏醒时间作为比较指标,评价乌拉坦在三种手术中的麻醉效能。

麻醉起效时间的计算从麻醉开始到实验家兔达到麻醉效果为止(当家兔出现头颈下垂、站立不稳、睫毛及角膜反射迟钝、肌肉松弛、趾蹼反射消失后,说明已达到麻醉效果);麻醉维持时间的计算从家兔达到麻醉效果开始到手术结束为止;麻醉苏醒时间的计算从手术结束到家兔睫毛、角膜及趾蹼反射出现时为止。 1.6统计学方法 数据处理采用SPSS17.0统计软件,计量资料以(x±s)表示,比较做方差分析,对有显著差异者行LSD分析,P<0.05为差异有统计学意义。

2 结果 三组家兔各项麻醉指标,见表1。对乌拉坦麻醉后三种手术方式中实验家兔的麻醉起效时间、维持时间和苏醒时间三项指标行单因素方差分析,家兔重量分析结果显示:F=25.06,P=0.07>0.05,无明显统计学差异;麻醉起效时间分析结果显示:F=130.05,P=0.10>0.05,无明显统计学意义;麻醉维持时间分析结果显示:F=38.98,P=0.020.05,无明显统计学差异,其余各组间P均0.05,无明显统计学差异,其余各组间P<0.05,有统计学差异。

3 讨论 乌拉坦属于氨基甲酸酯类药物,它主要通过抑制乙酰胆碱酶的活性,造成乙酰胆碱的累积,影响正常的神经传导而引起的麻醉作用[4-5]。与其他的麻醉剂相比,它廉价、易得,麻醉效果稳定,维持时间长,适用于日常教学的观察性实验。在实验过程中我们发现,随着剂量的增加,乌拉坦对实验家兔的呼吸和心率的影响逐渐增加,同时与静脉注射的速度有密切关系,如药量过大,给药过快,会导致实验动物心跳呼吸骤停[6]。因此,在使用过程中,对乌拉坦的危害性以及其理化性质要有充分认识,制定科学、安全的使用方法,特别是日常教学试验中,由于用量大、人员多,需要在使用前对学生进行专门指导,让他们对乌拉坦有充分的了解,增加实验的安全性和成功率[7]。

本实验三种手术方式中各项指标比较显示,乌拉坦对于实验家兔麻醉诱导和起效的时间各组比较均无统计学差异,这提示乌拉坦的麻醉起效时间比较稳定。麻醉维持时间的比较中,蚓突切除术和胃造瘘术两组比较无统计学差异,这两组与气管插管术比较有统计学差异,这提示对于开腹手术的麻醉维持时间较短,非开腹手术的麻醉维持时间较长。麻醉苏醒时间的比较中,蚓突切除术和胃造瘘术两组比较无统计学差异,这两组与气管插管术比较有统计学差异,这提示对于开腹手术后实验家兔苏醒时间较长,非开腹手术的麻醉苏醒时间较短。

综上所述,在日常的以动物为实验对象的医学教学中,考虑各种人为因素,教学因素,同时也满足节约实验经费的目的,便于学生操作,本研究认为在家兔外科手术(家兔阑尾切除)中,乌拉坦在实验中对动物可起到有效的麻醉作用,麻醉维持时间充足。而且乌拉坦的价格相对低廉,运用于实验教学的成本相对较低,是一种较理想的动物麻醉剂,可在实验教学中推广和应用[8-9]。

参考文献: [1]高堂成,张春才,康庆林,等.硫喷妥钠、氯胺酮与安定在实验兔麻醉中的应用[J].中国比较医学杂志,2004,14(3):171-172.

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