饮用水大肠菌群检测方法

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生活饮用水标准检验方法

生活饮用水标准检验方法

生活饮用水标准检验方法在各种水体,特别是污染水体中存在有大量的有机物质,适于各种微生物的生长,因此水体是仅次于土壤的第二种微生物天然培养基。

水体中的微生物主要来源于土壤,以及人类的动物的排泄物及污染。

水体中微生物的数量和种类受各种环境条件的制约。

一般认为,水中微生物以革兰氏阴性杆菌占有较大优势。

与其他水体相比,河水及溪水中革兰氏阳性菌相对较多,这是因为陆地微生物冲洗污染的缘故。

《中华人民共和国国家标准生活饮用水标准检验法》提供了水质中细菌总数和总大肠菌群的检测方法。

1、国家标准中,细菌总数是指1ml水样在营养琼脂培养基中,于37℃经24h培养后,所生长的细菌菌落的总数。

对生活饮用水,直接吸取1ml水样于平皿中,加入营养琼脂后混匀,37℃培养24h,进行计数。

对水源水,根据情况对样品进行10倍梯度稀释,选择适宜稀释液1ml,加注平皿,营养琼脂混匀,37℃培养24h,进行计数。

按照规定格式报告每毫升水中细菌总数。

2、国家标准中,利用总大肠菌群作为粪便污染的指标。

总大肠菌群是指一群需氧及兼性厌氧的,37℃生长时能使乳糖发酵,在24h内产酸产气的革兰氏阴性无芽胞杆菌。

水样中总大肠菌群数的含量,表明水被粪便污染的程度,而且间接地表明有肠道致病菌存在的可能。

国家标准物质提供了多管发酵法及滤膜法检测总大肠菌群的方法。

3、多管发酵法检测总大肠菌群,分为三步:初发酵试验,平板分离,复发酵证实试验。

初发酵试验,采用乳糖蛋白胨培养液37℃培养24h,观察产酸产气情况。

对阳性管培养物,接种于品红亚硫酸钠培养基或伊红美蓝培养基,观察菌落特征,并进行革兰氏染色和镜检。

对典型和可疑菌落,接种于乳糖蛋白胨培养液,进行复发酵证实试验,并根据标准所附检数表报告结果。

其中,对生活饮用水,初发酵试验接种水样总量300ml,即100ml接种2管,10ml接种10管,采用两个稀释度,12支发酵管。

对水源水,初发酵试验接种水样总量55.5ml,即10ml接种5管,1ml接种5管,0.1ml接种10管,共采用三个稀释度,15支发酵管。

检验方法确认-桶装饮用水大肠菌群

检验方法确认-桶装饮用水大肠菌群

GB/T 4789.3-2003 食品微生物学检验大肠菌群计数
方法确认试验
按照GB/T 4789.3-2003 食品微生物学检验大肠菌群计数方法要求对检验方法进行了确认试验。

一、仪器试剂
仪器:高压灭菌器培养箱
培养基:青岛日水()
二、样品来源
阳性样品:(市所提供滴加菌悬液桶装饮用水)
阴性样品:(市所提供灭菌水)
三、试验步骤
取25mL样品加到225ml磷酸盐缓冲液或灭菌生理盐水中,振摇混匀,制成1:10样品匀液,以灭菌生理盐水按10倍递增稀释。

取前3个连续稀释度,每个稀释度接种3管,分别接种至乳糖胆盐发酵管培养,观察产气情况,未产气者为大肠菌群阴性。

于产气管中取1环转种至伊红美兰琼脂平板,取可疑菌落做革兰氏染色,并同时接种乳糖发酵管培养,观察产气情况。

凡乳糖管产气、革兰氏染色为阴性的无芽孢杆菌,即可报告大肠菌群阳性。

根据阳性管数,检索MPN表,报告结果。

结果如下:
四、方法学确认结果
按照GB/T 4789.3-2003 食品卫生微生物学检验大肠菌群测定检验方法的实验步骤,阳性样品均检出大肠菌群,阴性样品均未检出。

饮用水大肠菌群检测方法

饮用水大肠菌群检测方法

饮用水大肠菌群检测方法大肠菌群是指在37℃培养24h 内能发酵乳糖产酸、产气的兼性厌氧的革蓝氏阴性无芽孢杆菌的总称。

主要由肠杆菌科中四个属内的细菌组成,即埃希氏杆菌属、柠檬酸杆菌属、克雷伯氏菌属和肠杆菌属。

水的大肠菌群数是指100 mL水检样内含有的大肠菌群实际数值,以大肠菌群最近似数(MPN)表示。

在正常情况下,肠道中主要有大肠菌群、粪链球菌和厌氧芽孢杆菌等多种细菌。

这些细菌都可以随人畜排泄物进入水源,由于大肠菌群在肠道内数量多,所以,水源中大肠菌群的数量,是直接反映水源被人畜排泄物污染的一项重要指标。

目前,国际上已公认大肠菌群是粪便污染的指标。

因而对饮用水必须进行大肠菌群的检查。

水中大肠菌群的检测方法,常用多管发酵法和滤膜法。

多管发酵法可适用于各种水样的检验,但操作繁琐,需要的时间较长。

滤膜法仅适用于自来水和深井水,操作简单、快速,但不适用于杂质较多、易于堵塞滤孔的水样。

(一)水样的采集供细菌学检验的水样,必须按一般无菌操作的基本要求采集,并保证再运送、贮存过程中不受污染。

水样从采集到检验不应超过4h,在0~4℃下保存不应超过24h ,如不能在4h 内分析,应在检验报告上注明保存时间和条件。

1、自来水取样:应在水龙头打开放水5min,再用无菌容器接取水样,待分析。

如水样内含有余氯,则采样瓶灭菌后按每500mL水样加3%Na2S2O3.5H2O溶液1mL。

2、江、河、湖、池自然水体取样:可用采样器,采样瓶应先灭菌。

采样后,瓶内应留有空隙。

如果与其他化验项目联合取样,细菌学分析水样应采在其他样品之前。

(二)初发酵试验1.水样稀释:制备水样10-1、10-2的稀释液,方法为用无菌移液管吸取水样10mL放于盛有90mL无菌水和若干玻璃珠的锥形瓶中,充分振荡使混合均匀,并使其中的细菌尽量呈单个存在,即为10-1稀释液;再从10-1制备10-2稀释液。

以此类推,稀释到所需倍数。

2.接种和培养:以无菌操作于5支三倍浓缩培养基(接种前一定应先检查杜汉氏小管内有无气泡)中各加入水样10mL,5支普通培养基试管中加入水样1mL,5支普通培养基试管中加入10-1稀释液1mL,小心混匀放入37℃培养箱中培养24h 。

饮用水大肠杆菌测试

饮用水大肠杆菌测试

多管发酵法测大肠杆菌群一、实验目的1、学习测定水中大肠杆菌群数量的国标测试法(主要为多管发酵法)2、了解大肠杆菌群的数量在水中的重要性二、实验原理我国《生活饮用水卫生标准》GB5749-85中关于生活饮用水的细菌标准具体规定如下:1、细菌总数1ml水中不超过100个。

2、大肠杆菌数1L水中不超过3个。

3、若只经过加氯消毒即供作生活饮用水的水源水,大肠杆菌群数平均每升不得超过1000个;经过净化处理及加氯消毒后供作生活饮用水的水源水,大肠杆菌群数平均每升不得超过10000个。

多管发酵法是以最可能数(most probable number)简称MPN 来表示试验结果的。

实际上它是根据统计学理论,估计水体中的大肠杆菌密度和卫生质量的一种方法。

如果从理论上考虑,并且进行大量的重复检定,可以发现这种估计有大于实际数字的倾向。

不过只要每一稀释度试管重复数目增加,这种差异便会减少,对于细菌含量的估计值,大部分取决于那些既显示阳性又显示阴性的稀释度。

因此在实验设计上,水样检验所要求重复的数目,要根据所要求数据的准确度而定。

三、适用范围:大肠菌群系指一群在36℃条件下培养48h能发酵乳糖、产酸产气的需氧和兼性厌氧的革兰氏阴性无芽孢杆菌。

通常用此法作为粪便污染指标来评价食品以及饮用水的卫生质量。

四、检验程序:→→→→→→五、操作方法:5.1 以无菌操作,将检样10ml被测液放于含有90ml灭菌生理盐水或其他稀释液的灭菌玻璃瓶内(瓶内预置适当数量的玻璃珠)或灭菌乳钵内,经充分振摇或研磨做成1:10的均匀稀释液。

5.2 用1ml 灭菌吸管吸取1:10稀释液1ml,沿管壁徐徐注入含有9ml 灭菌生理盐水或其他稀释液的试管内(注意吸管尖端不要触及管内稀释液),振摇试管,混合均(均液的PH值应在6.5~7.5之间,必要时分别用1mol/L 匀,做成1:100的稀释液。

氢氧化钠(NaoH)或(1mol/L)盐酸(HCL)调节。

生活饮用水总大肠菌群(多管发酵法-5管法)检测原始记录

生活饮用水总大肠菌群(多管发酵法-5管法)检测原始记录
检测结果(MPN值)
乳糖发酵试验(日时至日时)分离培养(日时至日来自)证实试验(日时至日时)
备注:
2、分离培养:将产酸产气的发酵算分别转种在伊红美蓝琼脂平板上,于36℃±1℃培养箱内培养18h~24h,观察菌落形态,挑取特征菌落作革兰氏染色、镜检和证实试验;
3、证实试验:经上述染色镜检为革兰氏阴性无芽孢杆菌,同时接种乳糖蛋白胨培养液,置36℃±1℃培养箱内培养24h±2h,有产酸产气者,即证实有总大肠菌群存在;
4、结果报告:如所有乳糖发酵管均阴性时,报告总大肠菌群未检出;若证实为阳性,根据总大肠菌群阳性的管数,查MPN(最可能数)检索表,报告MPN值。
样品编号
5个10mL管中总大肠菌群阳性管数
检测结果(MPN值)
乳糖发酵试验(日时至日时)
分离培养(日时至日时)
证实试验(日时至日时)
备注:
样品编号
5个10mL管中总大肠菌群阳性管数
项目编号
样品名称
生活饮用水
检测项目
总大肠菌群
样品性质
收样时间
检测时间
环境条件
温度: ℃ 湿度: %
检测依据及方法
《生活饮用水标准检验方法 微生物指标》GB/T 5750.12-2023 多管发酵法-5管法
仪器设备及编号
电热恒温培养箱DHP-9082B(KLM-YQSB-006)、生物安全柜BHC-1300ⅡA2(KLM-YQSB-002)、立式蒸汽灭菌器LDZM-60KCS-Ⅱ(KLM-YQSB-022)、电子天平JY2002(KLM-YQSB-012)
培养基及试剂
乳糖蛋白胨培养基、伊红美蓝琼脂、革兰氏染液
样品前处理
直接无菌操作取样。
实验步骤
1、乳糖发酵试验:取10mL水样接种到10mL双料乳糖蛋白胨培养液中,接种5管。将接种管置36℃±1℃培养箱内培养24h±2h。如所有乳糖蛋白胨培养管都不产气产酸,直接报告总大肠菌群阴性,如有产酸产气者,将产酸产气的发酵管进行分离培养;

食品中大肠菌群的检测及分离纯化

食品中大肠菌群的检测及分离纯化

实验8: 食品(饮用水)中大肠菌群的检测(滤膜法)及分离纯化(6学时)一、目的要求1.利用滤膜法测定食品中大肠菌群。

2.掌握分离微生物的基本操作。

二、基本原理1.滤膜法是采用过滤器过滤水样,使其中的细菌截留在滤膜上,然后将滤膜放在适当的培养基上进行培养,大肠菌群可直接在膜上生长,从而可直接计数。

所用滤膜是一种多孔硝化纤维膜或乙酸纤维膜,用水系过滤膜即可,其孔径约0.45μm。

2.在进行菌种鉴定时,所用的微生物一般均要求为纯的培养物。

得到纯培养的过程称为分离纯化。

三、试验原料及器材实验原料:伊红美蓝琼脂平板或远藤氏琼脂平板,乳糖蛋,蛋白胨,灭菌水,饮用水等;器材:镊子;夹钳;烧杯;真空泵;滤膜;过滤器等。

四、操作步骤1.大肠菌群的检测(1)滤膜灭菌将滤膜放入装有蒸馏水的烧杯中,加热煮沸15分钟,共煮沸三次,前两次煮沸后换水洗涤2—3次再煮,以洗去滤膜上残留的溶剂。

(2)过滤器装置用无菌手续将已灭菌的过滤器基座、滤膜、漏斗和抽滤瓶安装好,其中滤膜用灭菌镊子(浸在95%酒精内,用时通过火焰灭菌)移至过滤器的基座上。

其他可直接用手或夹钳操作,但不要碰到伸入抽滤瓶的橡皮塞部分,以免染菌。

(3)将抽滤瓶接上真空泵。

(4)加水样过滤直径50mm的滤膜,所过滤的水量以培养后长出的菌落数一般需要较多过滤器装置,多于50个为适宜,所以采用多联过滤器最好,可以减少误差。

一般清洁的深井水或经处理过的河水与湖水等可取样 300—500 ml;对比较清洁的河水或湖水,可取样1-100ml;严重污染的水样可先进行稀释;未知的水样可做三个稀释度,选择菌落数合适的稀释度进行计算。

本次实验于过滤器漏斗内加入比较河水或湖水100ml,加盖。

(5)开动真空泵进行油滤。

(6)抽完后,加入等量的灭菌水继续抽滤,目的是冲洗漏斗壁。

(7)滤毕,关上真空泵,用灭菌镊子取滤膜边缘,将没有细菌的一面紧贴在伊红美蓝琼脂平板上。

滤膜与培养基之间不得有气泡。

水质大肠杆菌检测标准

水质大肠杆菌检测标准

水质大肠杆菌检测标准水质大肠杆菌是一种常见的水污染指标微生物,其存在往往代表着水体受到了粪便污染,可能存在病原微生物,对人体健康构成潜在威胁。

因此,对水质中的大肠杆菌进行检测具有重要意义。

本文将介绍水质大肠杆菌检测的标准及相关内容。

一、样品采集。

1. 采样地点。

样品采集应根据实际情况选择合适的采样点,通常应选择水流平缓、水深适中的采样点,避免选择有明显污染源的地方进行采样。

2. 采样容器。

采样容器应为无菌容器,避免使用含有抗菌剂的容器,避免对样品造成影响。

3. 采样方法。

在采样时,应尽量避免接触手部或其他物体,避免污染样品。

采样时应尽量避开表层水体,直接将容器浸入水中采集样品。

二、样品保存与运输。

1. 样品保存。

采集后的样品应尽快送至实验室进行检测,若无法立即送检,应在4℃条件下保存,避免样品中微生物的生长。

2. 样品运输。

样品在运输过程中应避免剧烈晃动和温度变化,以免对样品造成影响。

三、检测方法。

1. 培养法。

培养法是一种常见的大肠杆菌检测方法,通过在含有培养基的平板上培养样品中的微生物,并通过特定的培养条件,观察培养基上是否有大肠杆菌的生长。

2. PCR法。

PCR法是一种分子生物学方法,通过特定的引物扩增样品中的DNA,再通过特定的检测手段,判断样品中是否存在大肠杆菌。

四、检测标准。

根据《水质污染物排放标准》(GB 3838-2002)的规定,水体中大肠杆菌的限量标准为每100毫升不得超过500个。

若水样中大肠杆菌数量超过此标准,则代表水质受到了污染。

五、检测结果的解读。

当检测结果显示水样中的大肠杆菌数量超过标准限量时,应立即采取相应的水质改善措施,避免对周围环境和人体健康造成潜在威胁。

同时,应对水源进行全面排查,找出污染源并进行治理。

六、结论。

水质大肠杆菌的检测标准对于保障水质安全具有重要意义,正确的采样和检测方法能够有效地保障水质的监测工作。

同时,检测结果的解读和后续处理也是非常重要的环节,需要引起足够的重视和关注。

水中总大肠菌群的测定法(多管发酵法)

水中总大肠菌群的测定法(多管发酵法)
3.3.2贮备培养基的配制
先将琼脂加至900ml蒸馏水中,加热溶解,然后加入磷酸氢二钾和蛋白胨,混匀使之溶解,再以蒸馏水补足至1000ml,用1mol/L的NaOH或HCl调节pH为7.2~7.4,趁热用脱脂棉或绒布过滤,再加入乳糖,混匀后定量分装于烧瓶内,置于高压蒸汽灭菌器中,以115℃灭菌20分钟,贮存于冷暗处备用。
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接种量,ml
每100ml水样中总大肠菌群数近似数
3.3.3平皿培养基的配制
将上法制备的贮备培养基加热融化,根据烧瓶内培养基的容量,用灭菌吸管按比例吸取一定量已灭菌的2%伊红水溶液及一定量已灭菌的0.5%美蓝水溶液,加入已融化的贮备培养基中,并充分混匀(防止产生气泡),立即将此种培养基适量倾入已灭菌的空平皿内,待其冷却凝固后置冰箱内备用。
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饮用水大肠菌群检测方法
大肠菌群是指在37℃培养24h 内能发酵乳糖产酸、产气的兼性厌氧的革蓝氏阴性无芽孢杆菌的总称。

主要由肠杆菌科中四个属内的细菌组成,即埃希氏杆菌属、柠檬酸杆菌属、克雷伯氏菌属和肠杆菌属。

水的大肠菌群数是指100 mL水检样内含有的大肠菌群实际数值,以大肠菌群最近似数(MPN)表示。

在正常情况下,肠道中主要有大肠菌群、粪链球菌和厌氧芽孢杆菌等多种细菌。

这些细菌都可以随人畜排泄物进入水源,由于大肠菌群在肠道内数量多,所以,水源中大肠菌群的数量,是直接反映水源被人畜排泄物污染的一项重要指标。

目前,国际上已公认大肠菌群是粪便污染的指标。

因而对饮用水必须进行大肠菌群的检查。

水中大肠菌群的检测方法,常用多管发酵法和滤膜法。

多管发酵法可适用于各种水样的检验,但操作繁琐,需要的时间较长。

滤膜法仅适用于自来水和深井水,操作简单、快速,但不适用于杂质较多、易于堵塞滤孔的水样。

(一)水样的采集
供细菌学检验的水样,必须按一般无菌操作的基本要求采集,并保证再运送、贮存过程中不受污染。

水样从采集到检验不应超过4h,在0~4℃下保存不应超过24h ,如不能在4h 内分析,应在检验报告上注明保存时间和条件。

1、自来水取样:应在水龙头打开放水5min,再用无菌容器接取水样,待分析。

如水样内含有余氯,则采样瓶灭菌后按每500mL水样加3%Na2S2O3.5H2O溶液1mL。

2、江、河、湖、池自然水体取样:可用采样器,采样瓶应先灭菌。

采样后,瓶内应留有空隙。

如果与其他化验项目联合取样,细菌学分析水样应采在其他样品之前。

(二)初发酵试验
1.水样稀释:制备水样10-1、10-2的稀释液,方法为用无菌移液管吸取水样10mL放于盛有90mL无菌水和若干玻璃珠的锥形瓶中,充分振荡使混合均匀,并使其中的细菌尽量呈单个存在,即为10-1稀释液;再从10-1制备10-2稀释液。

以此类推,稀释到所需倍数。

2.接种和培养:以无菌操作于5支三倍浓缩培养基(接种前一定应先检查杜汉氏小管内有无气泡)中各加入水样10mL,5支普通培养基试管中加入水样1mL,
5支普通培养基试管中加入10-1稀释液1mL,小心混匀放入37℃培养箱中培养24h 。

此即5管法。

3.结果观察:37℃中培养24h后取出观察,观察有无气体(杜汉氏小管内有无气体)和酸产生(培养基有无变色)。

在48h之间,培养管内倒置的杜汉氏小管内有任何量的气体积累,或培养基颜色从紫色变为黄色,便可初步断定为阳性反应。

若所测定的15支管中均为阳性反应,说明浓水样污染严重,可将样品进一步稀释后,再按上述方法接种、培养和观察。

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