α-淀粉酶抑制剂
α-淀粉酶抑制剂
来源：小麦提取
英文名 α-Amylase inhibitor,wheat seed
CAS号:63-42-3
分子量:
分子量 相对分子质量21000
冻干粉末。含约50%蛋白，余为磷酸钠缓冲盐。溶于水。
酶活力：20u/mg;40u/mg
包装规格：25kg/桶
质量标准：企业标准
单位定义：预先在25℃培育后，使2单位α-淀粉酶的活力降低50%的抑制剂量为1单位
报价：1300/kg
小麦α淀粉酶抑制剂的药理药效研究
南京工业大学
硕士学位论文
小麦α-淀粉酶抑制剂的药理药效研究
姓名：陈宁
申请学位级别：硕士
专业：生物化工
指导教师：陈国广;张琪
20060601 i摘 要
目的：为了进一步的研究和了解由我校生化中心采用专利技术从小麦粉中分
离纯化的α-淀粉酶抑制剂的化学成分和作用机理，以便更全面的开发和利用这种
资源，本课题进行了小麦α-淀粉酶抑制剂的降糖﹑调脂和减肥功能的作用研究，
并且系统研究了α-淀粉酶抑制剂的作用机理，从而为今后把α-淀粉酶抑制剂开
发成保健品或药品提供依据和参考。
方法：
（1）α-淀粉酶抑制剂降血糖作用的实验研究：四氧嘧啶性糖尿病小鼠灌胃
给予α-淀粉酶抑制剂45 mg·kg-1，测定其淀粉耐量和糖耐量；四氧嘧啶性糖尿病
小鼠灌胃给予α-淀粉酶抑制剂（5、15、45 mg·kg-1），连续21d后，测定血糖值
和小肠内二糖酶活性。
（2） α-淀粉酶抑制剂的调脂作用：采用不同剂量α-淀粉酶抑制剂（5、15、
45 mg·kg-1）分别对高脂血症大鼠进行预防性给药和治疗性给药，给药结束后测
定其血液中的TC﹑TG﹑HDL－C和LDL－C含量，称取大鼠肝脏并称肝重，并
测定肝脏TC、TG含量，同时对肝脏进行常规切片、HE染色后在光镜下观察组
织形态改变。
（3） α-淀粉酶抑制剂的减肥作用：以肥胖模型大鼠为研究对象，通过对肥
胖大鼠灌胃不同剂量的α-淀粉酶抑制剂（5、15、45 mg·kg-1），连续28d，动态
监测大鼠体重变化，并测定lee指数和脂肪湿重。
结果：
（1）α-淀粉酶抑制剂能够增加小鼠的淀粉耐量而对其葡萄糖耐量没有影响；
糖尿病小鼠灌服α-淀粉酶抑制剂45 mg·kg-1和15 mg·kg-1后，血糖值均明显低于
模型对照组，结果有显著性差异；α-淀粉酶抑制剂能有效抑制小鼠小肠内各部分
的麦芽糖酶和蔗糖酶活性，尤其是对前段小肠内二糖酶的活性抑制较强。
（2）α-淀粉酶抑制剂在对高脂血症大鼠进行预防性给药时可以明显抑制
α-淀粉酶
根据淀粉酶对淀粉的水解方式不同，可将其分为α-淀粉酶、β-淀粉酶、葡萄糖淀粉酶和异淀粉酶等。其中，α-淀粉酶（α-1，4-葡聚糖-4-葡聚糖苷酶)多是胞外酶，其作用于淀粉时可从分子内部随机地切开淀粉链的α-1，4糖苷键，而生成糊精和还原糖，产物的末端残基碳原子构型为α-构型，故称α-淀粉酶。
α-淀粉酶来源广泛，主要存在发芽谷物的糊粉细胞中，当然，从微生物到高等动、植物均可分离到，是一种重要的淀粉水解酶，也是工业生产中应用最为广泛的酶制剂之一。它可以由微生物发酵制备，也可以从动植物中提取。不同来源的α-淀粉酶的性质有一定的区别，工业中主要应用的是真菌和细菌α-淀粉酶。
目前，α-淀粉酶已广泛应用于变性淀粉及淀粉糖、焙烤工业、啤酒酿造、酒精工业、发酵以及纺织等许多行业，是一种重要工业用酶。如在淀粉加工业中，微生物α-淀粉酶已成功取代了化学降解法；在酒精工业中能显著提高出酒率。其应用于各种工业中对缩短生产周期，提高产品得率和原料的利用率，提高产品质量和节约粮食资源，都有着极其重要的作用。相对地，关于α-淀粉酶抑制剂国内外也有很多研究报道，α-淀粉酶抑制剂是糖苷水解酶的一种。它能有效地抑制肠道内唾液及胰淀粉酶的活性，阻碍食物中碳水化合物的水解和消化，降低人体糖份吸收、降低血糖和血脂的含量，减少脂肪合成，减轻体重。有报道表明，α-淀粉酶可以帮助改善糖尿病患者的耐糖量。
α-淀粉酶是淀粉及以淀粉为材料的工业生产中最重要的一种水解酶，其最早的商业化应用在1984年，作为治疗消化紊乱的药物辅助剂。现在，α-淀粉酶已广泛应用于食品、清洁剂、啤酒酿造、酒精工业和造纸工业。
在焙烤工业中的应用：
α-淀粉酶用于面包加工中可以使面包体积增大，纹理疏松；提高面团的发酵速度；改善面包心的组织结构，增加内部组织的柔软度；产生良好而稳定的面包外表色泽；提高入炉的急胀性；抗老化，改善面包心的弹性和口感；延长面包心储存过程中的保鲜期
红芸豆α-淀粉酶抑制剂和中草药组合饲料的应用价值
522020年第24期中国饲料
为了面对饲用抗生素禁用后的严峻形势，推
进新型饲料资源的开发和利用，本文综述了杂粮
作物红芸豆的特点及其营养价值，以及其中的活
性物质α-淀粉酶抑制剂的特点，并通过检索到
的相关文献探讨了红芸豆α-淀粉酶抑制剂和中
草药组合饲料在实际生产中的应用价值。
1 红芸豆的特点及营养价值芸豆原产于美洲大陆，属于蝶形花科菜豆属
植物，约在16世纪末引入我国，目前是我国一类
比较重要的小杂粮（陈振家等，2009）。芸豆根据
种皮颜色可分为红芸豆、白芸豆、黑芸豆等多个品
种，具有耐干旱耐贫瘠、适应性强、生育期短等特
点，在我国很多省市都有种植。红芸豆产量高，价
格便宜，常以原料的形式大量出口，以红芸豆淀粉
为原料的各种食品生产也在不断增长，进一步提
高了红芸豆的经济价值。此外，据中医药本记载，
芸豆性温、味略甘平，是一种具有滋补效果的食物
（赵蓉等，2008），近些年的研究表明，红芸豆具有
降血糖、润肺消肿、提高人体免疫力的效果，逐渐
得到人们的认可（冯源，2019；杜双奎等，2012）。
红芸豆的主要营养成分是淀粉，含量在45%
左右，蛋白含量约为22%、脂肪含量在3%左右（陈晓萌，2015）。此外，红芸豆的铁、钙、B族维生
素都比较丰富，特别适合低血钾症患者、心脏病患
者食用，是比较难得的高钾、低钠、高镁食物（王
竹怡等，2014）。红芸豆还含有许多活性成分，如
花色苷和皂苷，具有一定的抗炎作用，对关节炎患
者有缓解疼痛的效果（陈晓萌，2015）；红芸豆中
含有的植物凝集素、尿素酶、球蛋白等活性成分能
激活淋巴细胞，提高人体免疫力和抗病力（吴叶，
2008）。
红芸豆通常作为原料出口，能增加外汇，提
高农民收入。市场上的红芸豆除了直接食用外，
通过不同的淀粉提取工艺还可制成豆馅、豆沙、豆
粉、豆酥等产品。除此以外，目前还有对红芸豆的
深加工利用研究，主要集中在植物凝集素和α-
淀粉酶抑制剂上。植物凝集素是一类糖蛋白，能
特异性识别细胞表面的糖类，在自然界广泛存在，
抑制动力学α淀粉酶
抑制动力学α淀粉酶
抑制动力学α淀粉酶是一项重要的研究领域，它对于探索生物体内化学反应的调控机制具有重要意义。α淀粉酶是一种参与淀粉分解的酶类，其活性的调控对于维持生物体内部代谢平衡至关重要。
在研究中，科学家们发现了一些方法可以抑制动力学α淀粉酶的活性，从而发现了一些潜在的药物或化合物，这些物质可以用于治疗与α淀粉酶活性异常相关的疾病。
研究人员发现，某些天然植物提取物中存在可以抑制α淀粉酶活性的成分。这些植物提取物中的活性成分可以与α淀粉酶发生特定的化学反应，从而抑制其活性。这种抑制作用可以通过影响α淀粉酶的构象变化、干扰酶底物结合或改变酶的催化活性等多种途径实现。
研究人员还发现，一些化学合成的小分子化合物也可以抑制动力学α淀粉酶的活性。这些化合物的结构经过精心设计，能够与α淀粉酶的活性中心发生相互作用，从而阻止酶底物结合或改变酶的构象，进而抑制酶的催化活性。
除了天然植物提取物和化学合成的小分子化合物，还有一些其他方法可以抑制动力学α淀粉酶的活性。例如，通过改变环境条件，如调节温度、pH值或离子浓度等，也可以影响α淀粉酶的活性。此外，一些研究还发现，某些蛋白质或多肽可以与α淀粉酶发生特异性结合，从而抑制其活性。
通过对动力学α淀粉酶的抑制研究，科学家们可以更好地理解酶的结构和功能，并为疾病的治疗提供新的思路。这项研究的进展为开发新型药物或治疗手段提供了潜在的可能性。然而，目前的研究还存在许多挑战，如寻找更有效的抑制剂、研究抑制剂与酶的相互作用机制等。因此，未来还需要进一步深入研究，以更好地利用动力学α淀粉酶的抑制作用来解决相关疾病问题。
鹰嘴豆中α-淀粉酶抑制剂抗氧化特性研究
粮油食品科技第２２卷２０１４年第１期 粮食加工
鹰嘴豆中ＯＬ一淀粉酶
抑制剂抗氧化特性研究
郝小燕 ， ，崔竹梅 ，麻浩 ，顾爱星
（１．南京农业大学作物遗传与种质创新国家重点实验室，江苏南京２１００９５；
２．常州市新北区孟河镇农业综合服务站，江苏常州２１３１３８；
３．常州市新北区农业局，江苏常州２１３０２２；
４．常熟理工学院生物与食品工程学院，江苏常熟２１５５００； ５．新疆农业大学农学院，新疆乌鲁木齐８３００５２）
摘要：研究了从粗提取、硫酸铵分级沉淀、离子交换和反相液相三步纯化步骤获得的鹰嘴豆 一
淀粉酶抑制剂的ＤＰＰＨ、－ＯＨ和・Ｏ 一自由基清除能力和还原力特性。结果表明：反应体系中，在
一定浓度范围内，ｏ【一淀粉酶抑制剂的抑制活力、自由基清除能力和还原力不仅随浓度增加而增 加，也随纯度增加而增强。
关键词：鹰嘴豆；蛋白质样ｏｌ一淀粉酶抑制剂；粗提液；自由基清除力；还原力
中图分类号：Ｓ ５２９文献标识码：Ａ文章编号：１００７—７５６１（２０１４）０１—００１９—０５
Ｒｅｓｅａｒｃｈ ｏｎ ａｎｔｉｏｘｉｄａｎｔ ｐｒｏｐｅｒｔｉｅｓ ｏｆ ０【一ａｍｙｌａｓｅ ｉｎｈｉｂｉｔｏｒ ｉｎ ｃｈｉｃｋｐｅａ
ＨＡ０ Ｘｉａ０一ｙａｎ ， 。ＣＵＩ Ｚｈｕ—ｍｅｉ４，ＭＡ Ｈａ０ ，ＧＵ Ａｉ—ｘｉｎｇ （１．Ｓｔａｔｅ Ｋｅｙ Ｌａｂｏｒａｔｏｒｙ ｏｆ Ｃｒｏｐ Ｇｅｎｅｔｉｃｓ ａｎｄ Ｇｅｒｍｐｌａｓｍ Ｉｎｎｏｖａｔｉｏｎ，Ｎａｎｊｉｎｇ Ａｇｒｉｃｕｔｕｒａｌ Ｕｎｉｖｅｒｓｉｔｙ，
Ｎａｎｊｉｎｇ Ｊｉａｎｇｓｕ ２１００９５：２．Ｍｅｎｇｈｅ Ｔｏｗｎ Ａｇｒｉｃｕｌｔｕｒａｌ Ｃｏｍｐｒｅｈｅｎｓｉｖｅ Ｓｅｒｖｉｃｅ Ｓｔａｔｉｏｎ ｏｆ Ｎｅｗ Ｎｏｒｔｈ Ｄｉｓｔｒｉｃｔ ｉｎ Ｃｈａｎｇｚｈｏｕ Ｃｉｔｙ，Ｃｈａｎｇｚｈｏｕ Ｊｉａｎｇｓｕ ２１３１３８；３．Ａｇｒｉｃｕｌｔｕｒｅ Ｂｕｒｅａｕ ｏｆ
实验七 淀粉酶动力学分析
实验七 淀粉酶动力学分析（Ⅱ）
——淀粉酶解米氏常数测定与阿卡波糖竞争性抑制动力学计算（4学时）
第四部分 α-淀粉酶Km值的测定
一、实验目的
了解并掌握米氏常数的意义和测定方法。
二、实验原理
当底物浓度在较低浓度增加时，酶促反应速度随着底物浓度的增加而迅速增加。当底物增至一定浓度后，即使再增加其浓度，反应速度也不会增加很快。这是由于酶浓度限制了所形成的中间络合物浓度的缘故。
Michaelis和Menten推导得出底物浓度和酶促反应速度的关系式为：
][][maxSKSVm
此式称为米氏方程，式中：为反应速度，即每升反应体系中每分钟形成葡萄糖的摩尔数（mol/（L·min））；maxV为最大反应速度（mol/（L·min））；][S为底物浓度，此实验以反应体中淀粉中葡萄糖残基的摩尔浓度表示（mol/L），注意！应以反应体系总体积计算底物浓度，如淀粉溶液浓度为1%，反应体系中有3 mL淀粉溶液和1 mL淀粉酶液，则淀粉底物浓度应为：13316210S0.0463 mol/L
10——1%的淀粉溶液浓度为10 g/L
180——淀粉中的葡萄糖残基的分子量
3——反应体系中1%淀粉溶液的体积（mL）
1——反应体系中α-淀粉酶的体积（mL）
mK为米氏常数，单位与底物浓度相同（mol/L）。
按此方程，可用作图法求出mK，常用的方法为双倒数作图法。
取米氏方程的倒数，以1对][1S作图： maxmax1][11VSVKm
得一直线，其斜率为maxVKm，截距为max1V，求出mK。
三、实验器材与试剂
实验器材
1-16. 见实验七第一部分
17. 化学试剂：见实验七第二部分
实验试剂
1. pH5.0的磷酸氢二钠-柠檬酸缓冲液
2. 1%淀粉溶液：称取1 g可溶性淀粉的200 mL烧杯中，用5 mL pH5.0的磷酸氢二钠-柠檬酸缓冲液调成糊状。另取200 mL烧杯，盛入95 mL pH5.0的磷酸氢二钠-柠檬酸缓冲液，于电炉上烧开，倒入60 mL于盛有淀粉糊的烧杯中，搅拌均匀，继续煮开并搅拌至透明状，冷却后移至100 mL容量瓶中，用剩余缓冲液荡洗烧杯，倒入容量瓶中，最后用蒸馏水定容至刻度（老师准备）。
离子交换法纯化α-淀粉酶抑制剂
第８卷第５期 ２０１０年９月 生物加工过程 Ｃｈｉｎｅｓｅ Ｊｏｕｒｎａｌ ｏｆ Ｂｉｏｐｒｏｃｅｓｓ Ｅｎｇｉｎｅｅｒｉｎｇ Ｖｏ１．８ Ｎｏ．５ Ｓｅｐ．２０１０
离子交换法纯化 ～淀粉酶抑制剂
李干禄 ，李 磊 ，张景明 ，陈晓春 ，应汉杰
（１．南京工业大学 生物与制药工程学院，南京２１０００９；２．江苏省环境监测中心，南京２１００３６）
摘要：采用离子交换法，利用弱碱性阴离子交换树脂Ｄ 吸附小麦粉初提液中的０／．一淀粉酶抑制剂，对其静态吸
附以及洗杂洗脱条件进行研究。通过对静态吸附条件的摸索，得出静态下的最佳工艺条件：上样料液的蛋白质量
浓度Ｐｏ＝２．５～３．５ ｍ ｍＬ、ｐＨ：８．５～９．５、温度ｔ＝３０ ｏＣ、转速１５０ ｒ／ｍｉｎ。最佳洗脱条件：０．１ ｍｏｌ／Ｌ ＮａＣ１洗杂，
０．５ ｍｏ［／Ｌ ＮａＣ１洗脱。在该条件下， 一淀粉酶抑制剂纯化倍数为４．２５倍，收率为６４．５８％。
关键词：Ｏｔ一淀粉酶抑制剂；洗杂洗脱；离子交换法；静态吸附
中图分类号：ＴＳ２０１．２ 文献标志码：Ａ 文章编号：１６７２—３６７８（２０１０）０５—０Ｏ４４—０４
Ｐｕｒｉｆｉｃａｔｉｏｎ ｏｆ ｃ￣－ａｍｙｌａｓｅ ｉｎｈｉｂｉｔｏｒ ｂｙ ｉｏｎ ｅｘｃｈａｎｇｅ ｍｅｔｈｏｄ
ＬＩ Ｇａｎ—ｌｕ ，ＬＩ Ｌｅｉ ，ＺＨＡＮＧ Ｊｉｎｇ—ｍｉｎｇ ，ＣＨＥＮ Ｘｉａｏ—ｃｈｕｎ ，ＹＩＮＧ Ｈａｎ—ｊｉｅ
（１．Ｃｏｌｌｅｇｅ ｏｆ Ｂｉｏｔｅｃｈｎｏｌｏｇｙ ａｎｄ Ｐｈａｒｍａｃｅｕｔｉｃａｌ Ｅｎｇｉｎｅｅｒｉｎｇ，Ｎａｎｊｉｎｇ Ｕｎｉｖｅｒｓｉｔｙ ｏｆＴｅｃｈｎｏｌｏｇｙ，Ｎａｎｊｉｎｇ ２１０００９，Ｃｈｉｎａ；
２．Ｊｉａｎｇｓｕ Ｐｒｏｖｉｎｃｉａｌ Ｅｎｖｉｒｏｎｍｅｎｔａｌ Ｍｏｎｉｔｏｒｉｎｇ Ｃｅｎｔｅｒ，Ｎａｎｊｉｎｇ ２１００３６，Ｃｈｉｎａ）
Ａｂｓｔｒａｃｔ：Ｔｈｅ 一ａｍｙｌａｓｅ ｉｎｈｉｂｉｔｏｒ ｆｒｏｍ ｗｈｅａｔ ｆｌｏｕｒ ｗａｓ ｓｅｐａｒａｔｅｄ ｂｙ ａｎｉｏｎ ｅｘｃｈａｎｇｅ ｒｅｓｉｎ Ｄ３１５．Ｔｈｅ ｃｏｎ—
几种茶叶中α-淀粉酶抑制剂的研究
第３７卷第５期 西南民族大学学报・自然科学版 Ｊｏｕｒｎａｌ ｏｆ Ｓｏｕｔｈｗｅｓｔ Ｕｎｉｖｅｒｓｉｔｙ ｆｏｒ Ｎａｔｉｏｎａｌｉｔｉｅｓ・Ｎａｔｕｒａｌ Ｓｃｉｅｎｃｅ Ｅｄｉｔｉｏｎ
文章编号：１００３－２８４３（２０１１）０５・０７６８－０３
几种茶叶中Ｑ。淀粉酶抑制剂的研究
伍红，安莉颖，施思，刘熙娅
（西南民族大学生命科学与技术学院，四川成都６１００４１）
摘要：对熟普洱、生普洱、苦丁、龙井、铁观音等五种茶叶中ａ．淀粉酶抑制剂进行了研究．结果显示：普洱茶的ａ一淀粉
酶抑制剂的最佳作用温度为７Ｏ℃；五种茶叶中０【．淀粉酶抑制剂的抑制率依次为苦丁茶＞热普洱嫩观音＞龙井＞生普洱．
关键词：茶叶；ａ．淀粉酶抑制剂；降低血糖
中图分类号：Ｑ５；ＴＳ２７２ 文献标识码：Ａ
ｄｏｉ：１０．３９６９０．ｉｓｓｎ．１００３－２４８３．２０１ １．０９．２０
茶叶是人们日常生活必不可少的饮品，以其香气独特，味道回味无穷而倍受人们青睐．有研究表明，大多数
茶具有降血脂、抑菌、抗癌、防治心血管疾病等多种生物功能，极具有开发利用价值¨圳． －淀粉酶抑制剂
（ ．ａｍｙｌａｓｅ ｉｎｈｉｂｉｔｏ￣简称ａＡＩ）属于糖Ｌ苷Ｎ水解酶抑制剂中的一种，它能有效地抑制唾液淀粉酶及肠道内胰
淀粉酶的活性，阻碍食物中碳水化合物的水解和消化，减少糖分的摄取，降低血糖和血脂含量水平，食后不产生
高血糖症，从而胰岛素分泌减少，脂肪合成降低，体重减轻．因此在治疗糖尿病、减肥以及干扰内源性甘油三酯
合成等药物开发方面具有诱人前景 剖．另外，旺一淀粉酶抑制剂作为一种新的保鲜、防腐等食品添加剂也正在被
研究和开发中．在农业上ｃ【＿淀粉酶抑制剂基因还可作为抗虫基因，改良植物抗虫性，以减少杀虫剂的使用．本研
究对茶叶中０【．淀粉酶抑制剂的作用温度及在五种常见茶叶中ｏ．ＡＩ的抑制活性进行了比较，为进一步认识茶叶的
功效成分，正确地泡茶饮茶，保障人们的身体健康提供了科学的依据．
鼠尾草黄酮对α-淀粉酶和α-葡萄糖苷酶抑制作用的研究
鼠尾草黄酮对α-淀粉酶和α-葡萄糖苷酶抑制作用的研究
Behvar Asgharia,b*, Peyman Salehib, Ali Sonbolic, Samad Nejad Ebrahimib,d
摘要
人们认为抑制碳水化合物水解酶的活性，包括α-淀粉酶和α-葡萄糖苷酶，是降低餐后血糖水平的治疗方法之一，特别是治疗2型糖尿病患者。药用植物及其他们提取物是找到新的酶抑制剂的主要来源之一。我们从鼠尾草的地上部分分离得到四种黄酮类化合物, 即木犀草素-7-O-葡萄糖苷(1)，木犀草素-7-O-葡萄糖苷酸(2)，香叶木素-7-O-葡萄糖苷酸(3)和三裂鼠尾草素(4)。通过α-淀粉酶和α-葡萄糖苷酶的抑酶试验对这些化合物的活性进行了评估。化合物1、2和3表现出明显的α-葡萄糖苷酶的抑制作用，其IC50值分别为18.3，14.7，
17.1μM。这些化合物也表现出适度的的α-淀粉酶的抑制作用，其IC50值分别为81.7，61.5，和76.3μM。
关键词：鼠尾草；α-淀粉酶；α-葡萄糖苷酶；酶抑制作用；黄酮类化合物
前言
糖尿病是全球新兴的一个健康问题。最近调查评估说明了一个严峻的现实,到2050年将有三分之一的人口患有糖尿病(1)。1型糖尿病(胰岛素依赖型)和2型糖尿病(非胰岛素依赖型)是糖尿病主要的两种类型。全世90%的糖尿病患者属于2型糖尿病患者，主要是因体重增加和缺乏锻炼导致的。已有研究表明，2型糖尿病表现为餐后血糖水平异常升高。因此，控制餐后血糖水平是治疗2型糖尿病的一个重要因素，α-淀粉酶和α-葡萄糖苷酶是催化复杂碳水化合物糖苷键断裂的关键酶，如催化淀粉糖苷键断裂释放可吸收的葡萄糖。α-淀粉酶是胰腺分泌的主要产物之一，约占5 - 6%，它催化淀粉水解为较短的寡糖(3)。α-淀粉酶的蛋白质结构包含3个结构域：A，B和C。催化三联体(Asp197，Glu233和Asp300)位于结构域A。淀粉的水解过程就是一个双取代反应过程，酸催化形成β-D-吡葡亚硝脲-酶中间复合物，接着碱催化水解中间复合物。Asp197作为亲核中心进攻位于糖异头物中心的底物， Glu233和Asp300起到酸催化或碱催化的作用，要么单独作用要么两者协同作用(4)。α-葡萄糖苷酶是催化非还原性末端以1,4-糖苷键链接的葡萄糖残基释放出游离的葡萄糖分子。研究表明氨基酸残基Trp516和Asp518是酶催化功能的关键(5)。抑制α-淀粉酶和α-葡萄糖苷酶的活性可以延缓葡萄糖的释放，有效控制餐后血糖水平。α-淀粉酶和α-葡萄糖苷酶抑制剂目前已有临床应用，如阿卡波糖和米格列醇，会产生严重的副作用。越来越多的报道揭露了这些制剂的抗药性(6)。为了克服这些问题，寻找新的α-淀粉酶和α-葡萄糖苷酶抑制剂，特别是从天然产物来源中寻找有效的抑制剂正在进行着且被推崇(7)。
淀粉酶抑制剂-来自baidu百科
能抑制α-淀粉酶的抑制剂
如链霉菌YM-25菌株产生的hairm；链霉菌S. corchoruchii菌株产生的paim以及链霉菌S. dimorph ogenes菌株产生的萃他丁(trestatin)等都是α-淀粉酶抑制剂，它们对不同来源的α-淀粉酶均显示出强的抑制作用，但不抑制β-淀粉酶和β-糖苷酶。
以萃他丁为例：它含有A,B,C三个组分的α-淀粉酶抑制剂属于低聚糖同系物。它是无色粉末，紫外光谱呈末端吸收，对蒽酮、酚-硫酸呈阳性反应，对坂口、红四唑呈阴性反应。Trestatin对猪胰α-淀粉酶、曲霉α-淀粉酶、枯草杆菌α-淀粉酶都有抑制作用，但不抑制β-淀粉酶和β-葡萄糖苷酶。
国外α-淀粉酶抑制剂研究起步较早，早在上世纪四十年代就有小麦种子中α-淀粉酶抑制剂的报道[5~7]。它是一种电迁移率为0.2，分子量为21000的蛋白质。但在随后的25年间很少有这方面的报道[8]。之后Shainkin和Birk[9]提出小麦粉中存在两种α-淀粉酶抑制剂，并阐述了它们的分离和性质。它们的电迁移率不同，对不同来源的α-淀粉酶专一性不同。从后来的研究[10~14]知道：它们在小麦种子中是多分子形式的蛋白质，能不同程度的抑制昆虫和哺乳动物的淀粉酶。
1945又在普通大豆上有过报道[15~16]，1972年α-淀粉酶抑制剂曾经在微生物上有过报道，因其在医药上的价值而被广泛研究。α-淀粉酶抑制剂在20世纪70年代被深入研究，在20世纪80年代和90年代，由于发现其在医学上的重要性，尤其在抑制糖尿病和高血糖以及对昆虫选择性控制等方面具有重要作用而加速研究[17]。
70年代以来，已研究发现100多种来自植物和微生物的抑制α-淀粉酶的活性物质，有的已经进入临床实验[18]。微生物来源的糖苷水解酶抑制剂的筛选研究在近些年来已成为比较活跃的领域之一，尤其在联邦德国和日本。现已报道的这类酶抑制剂20~30种。Namiki等报道从一株链霉菌发酵液中分理出一种新的寡糖类α-糖苷水解酶抑制剂Adiposin。体内实验Trestatins对胰腺或唾液的α-淀粉酶有很强的抑制作用，并能降低血糖和血脂的浓度，是一种新的α-淀粉酶抑制剂[19]。